EP1664103A2

EP1664103A2 - Differentiell in tumoren exprimierte genprodukte und deren verwendung

Info

Publication number: EP1664103A2
Application number: EP04765088A
Authority: EP
Inventors: Özlem TÜRECI; Ugur Sahin; Michael Koslowski
Original assignee: Ganymed Pharmaceuticals GmbH
Current assignee: Ganymed Pharmaceuticals GmbH
Priority date: 2003-09-10
Filing date: 2004-09-10
Publication date: 2006-06-07
Also published as: WO2005026205A2; EP2327721A3; EP3095791A1; JP2013009673A; EP2336157A3; EP2322544A3; EP2314613A3; EP2314613A2; WO2005026205A3; US20100203040A1; JP5007123B2; AU2004272270B2; CA2538528C; EP2327721B1; AU2004272270A1; EP2336156A2; US8765389B2; JP2012050441A; ES2663242T3; JP5711698B2

Abstract

Erfindungsgemäss wurden Tumor-assoziiert exprimierte Genprodukte und die dafür kodierenden Nukleinsäuren identifiziert. Die vorliegende Erfindung betrifft die Therapie und Diagnose von Erkrankungen, bei denen diese Tumor-assoziiert exprimierten Genprodukte aberrant exprimiert werden. Des weiteren betrifft die Erfindung Proteine, Polypeptide und Peptide, die Tumor-assoziiert exprimiert werden und die dafür kodierenden Nukleinsäuren.

Description

Differentiell in Tumoren exprimierte Genprodukte und deren Verwendung

Trotz interdisziplinärer Ansätze und Ausreizung klassischer Therapiemodalitäten gehören Krebserkrankungen weiterhin zu den fuhrenden Todesursachen. Neuere therapeutische Konzepte zielen darauf ab, das patienteneigene Immunsystem durch Einsatz von rekombinanten Tumorvakzinen und anderen spezifischen Maßnahmen wie Antikörpertherapie in das therapeutische Gesamtkonzept mit einzubeziehen. Voraussetzung für den Erfolg einer solchen Strategie ist die Erkennung von Tumor-spezifischen oder Tumor-assoziierten Antigenen bzw. Epitopen durch das Immunsystem des Patienten, dessen Effektorfunktionen interventionell verstärkt werden sollen. Tumorzellen unterscheiden sich biologisch wesentlich von ihren nichtmalignen Ursprungszellen. Diese Differenzen sind durch während der Tumorentwicklung erworbene genetische Veränderungen bedingt und führen u.a. auch zur der Bildung qualitativ oder quantitativ veränderter molekularer Strukturen in den Krebszellen. Werden solche Tumor-assoziierten Strukturen vom spezifischen Immunsystem des tumortragenden Wirtes erkannt, spricht man von tumor-assoziierten Antigenen. An der spezifischen Erkennung von tumor-assoziierten Antigenen sind zelluläre und humorale Mechanismen beteiligt, die zwei miteinander funktionell vernetzte Einheiten darstellen: CD4⁺ und CD8⁺ T-Lymphozyten erkennen prozessierte Antigene, die auf den Molekülen der MHC- (Major Histocompatibility complex = Histokompatibilitäts Antigene) Klassen II bzw. I präsentiert werden, während B-Lymphozyten zirkulierende Antikörpermoleküle produzieren, die direkt an unprozessierte Antigene binden. Die potentielle klinisch-therapeutische Bedeutung von tumor-assoziierten Antigenen ergibt sich aus der Tatsache, dass die Erkennung von Antigenen auf neoplastischen Zellen durch das Immunsystem zur Initiierung von cytotoxischen Effektormechanismen führt und bei Vorhandensein von T-Helferzellen die Elimination der Krebszellen bewirken kann (Pardoll, Nat. Med. 4:525-31, 1998). Entsprechend ist es eine zentrale Zielsetzung der Tumorimmunologie, diese Strukturen molekular zu definieren. Die molekulare Natur dieser Antigene blieb lange enigmatisch. Erst als entsprechende Klonierungstechniken entwickelt wurden, gelang es, durch Analyse der Zielstrukturen von cytotoxischen T-Lymphozyten (CTL) (van der Bruggen et al., Science 254:1643-7, 1991) bzw. mit zirkulierenden Autoantikörpern (Sahin et al., Curr. Opin. Immunol 9:709-16, 1997) als Sonden cDNA-Expressionbanken von Tumoren systematisch auf tumor-assoziierte Antigene zu screenen. Hierzu wurden cDNA-Expressionsbanken aus frischem Tumorgewebe hergestellt und in geeigneten Systemen als Proteine rekombinant exprimiert. Aus Patienten isolierte Immuneffektoren, nämlich CTL-Klone mit Tumor- spezifischem Lysemuster, oder zirkulierende Autoantikörper wurden genutzt, um die respektiven Antigene zu klonieren.

Durch diese Ansätze sind in den letzten Jahren eine Vielzahl von Antigenen in verschiedenen Neoplasien definiert worden. Von großem Interesse ist dabei die Klasse der Cancer/Testis- Antigene (CTA). CTA und sie kodierende Gene (Cancer/Testis-Gene oder CTG) sind durch ihr charakteristisches Expressionsmuster definiert [Tureci et al, Mol Med Today. 3:342-9, 1997]. Sie finden sich nicht in Normalgeweben bis auf Testis bzw. Keimzellen, werden jedoch in einer Reihe von humanen Malignomen exprimiert und zwar nicht tumortypspezifisch, sondern mit unterschiedlicher Häufigkeit in Tumorentitäten ganz unterschiedlicher Herkunft (Chen & Old, Cancer J Sei. Am. 5:16-7, 1999). Auch Serumreaktivitäten gegen CTA finden sich nicht in gesunden Kontrollen, sondern lediglich in Tumorpatienten. Insbesondere aufgrund ihrer Gewebeverteilung ist diese Antigenklasse von besonderem Wert für immuntherapeutische Vorhaben und wird in derzeit laufenden klinischen Patientenstudien getestet (Marchand et al., Int. J. Cancer 80:219-30, 1999; Knuth et al., Cancer Chemother. Pharmacol. 46: S46-51, 2000).

Allerdings nutzen die oben dargestellten klassischen Verfahren zur Antigenidentifizierung Immuneffektoren (zirkulierende Autoantikörper oder CTL-Klone) aus Patienten mit in der Regel bereits fortgeschrittenem Krebs als Sonden. Aus einer Reihe von Daten geht hervor, dass Tumoren z.B. zur Tolerisierung und Anergisierung von T-Zellen führen können und gerade im Verlauf der Erkrankung diejenigen Spezifitäten aus dem Immuneffektorenrepertoire verloren gehen, die eine effektive Immunerkennung bewirken könnten. Aus laufenden Patientenstudien hat sich noch kein gesicherter Beweis für eine tatsächliche Wirkung der bisher entdeckten und genutzten tumor-assoziierten Antigene ergeben. Entsprechend kann nicht ausgeschlossen werden, dass spontane Immunantworten evozierende Proteine die falschen Zielstrukturen sind.

Es war die Aufgabe der vorliegenden Erfindung Zielstrukturen für eine Diagnose und Therapie von Krebserkrankungen bereitzustellen.

Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß durch den Gegenstand der Patentansprüche gelöst.

Erfindungsgemäß wurde eine Strategie für eine Identifizierung und Bereitstellung Tumorassoziiert exprimierter Antigene und der dafür kodierenden Nukleinsäuren verfolgt. Diese Strategie beruht auf der Tatsache, dass eigentlich Testis- und damit Keimzell-spezifische Gene, die normalerweise in adulten Geweben silent sind, in Tumorzellen ektop und unerlaubt reaktiviert werden. Durch Datamining wird zunächst eine möglichst komplette Liste aller bekannten Testis-spezifischen Gene aufgestellt und diese sodann durch Expressionsanalysen mittels spezifischer RT-PCR auf ihre aberrante Aktivierung in Tumoren evaluiert. Datamining ist ein bekanntes Verfahren zur Identifizierung von Tumor-assoziierten Genen. Bei den herkömmlichen Strategien werden allerdings in der Regel Transkriptome von Normalgewebebanken elektronisch von Tumorgewebsbanken subtrahiert unter der Annahme, dass die verbleibenden Gene Tumor-spezifisch sind (Schmitt et al., Nucleic Acids Res. 27:4251-60, 1999; Vasmatzis et al, Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 95:300-4, 1998. Scheurle et al, Cancer Res. 60:4037-43, 2000).

Das erfindungsgemäße Konzept, das sich als viel erfolgreicher erwiesen hat, beruht jedoch darauf, Datamining zur elektronischen Extraktion aller Testis-spezifischer Gene zu nutzen und diese sodann auf ektope Expression in Tumoren zu evaluieren.

Somit betrifft die Erfindung in einem Aspekt eine Strategie zur Identifizierung von differentiell in Tumoren exprimierten Genen. Diese kombiniert Datamining von öffentlichen Sequenzbanken ("in silico") mit darauffolgenden evaluierenden labor-experimentellen ("wet bench") Untersuchungen.

Eine kombinierte Strategie basierend auf zwei unterschiedlichen biomformatischen Skripten ermöglichte erfindungsgemäß die Identifizierung neuer Mitglieder der Cancer/Testis (CT) Genklasse. Diese sind bisher als rein Testis-, Keimzell-, oder Spermien-spezifisch eingestuft worden. Die Erkenntnis, dass diese Gene aberrant in Tumorzellen aktiviert werden, erlaubt, ihnen eine substantiell neue Qualität mit funlctionellen Implikationen zuzuordnen. Die Identifizierung und Bereitstellung dieser tumor-assoziierten Gene und der dadurch kodierten

Genprodukte erfolgte erfindungsgemäß unabhängig von einer immunogenen Wirkung.

Die erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigene weisen eine Aminosäuresequenz auf, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 1-5, 19-21, 29, 31-33, 37, 39, 40, 54-57, 62, 63, 70, 74, 85-88 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist, (b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert, (c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und (d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist. In einer bevorzugten Ausführungsform weist ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen eine Aminosäuresequenz auf, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 1-5, 19-21, 29, 31-33, 37, 39, 40, 54-57, 62, 63, 70, 74, 85-88 ausgewählt ist. In einer weiteren bevorzugten Ausfuhrungsform umfasst ein erfmdungsgemäß identifiziertes tumor-assoziiertes Antigen eine Aminosäuresequenz, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 6-13, 14-18, 22-24, 30, 34-36, 38, 41, 58-61, 64, 65, 71, 75, 80-84, 89-100, 101-117 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist.

Die vorliegende Erfindung betrifft allgemein die Verwendung von erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigenen oder von Teilen davon, von dafür kodierenden Nukleinsäuren oder von Nukleinsäuren, die gegen die kodierenden Nukleinsäuren gerichtet sind oder von Antikörpern, die gegen die erfmdungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigene oder Teile davon gerichtet sind, für die Therapie und Diagnose. Diese Nutzung kann einzelne, aber auch Kombinationen von mehreren dieser Antigene, funktionalen Fragmente, Nukleinsäuren, Antikörper etc betreffen, in einer Ausführungsform auch in Kombination mit anderen tumor-assoziierten Genen und Antigenen für eine Diagnose, Therapie und Verlaufskontrolle. Bevorzugte Erkrankungen für eine Therapie und/oder Diagnose sind solche, bei denen eine selektive Expression oder abnormale Expression von einem oder mehreren der erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigenen vorliegt.

Die ektope Aktivierung von Genen in Tumoren kann auch zurückführbar sein auf ein verändertes Genmethylierungsmuster ihrer Nukleotidsequenz. So ist z.B. beschrieben worden, dass Alterationen der Methylierung am Cytosin hierzu beitragen (De Smet et al, 1996 und 1999).

Die Erfindung betrifft auch Nukleinsäuren und Genprodukte, die tumorzellassoziiert exprimiert werden und die durch verändertes Spleißen (Spleißvarianten) bekannter Gene bzw. durch veränderte Translation unter Nutzung alternativer offener Leserahmen entstehen. Diese Nukleinsäuren umfassen die Sequenzen gemäß (SEQ ID NO:2-5, 20, 21, 31-33, 54-57, 85-88) des Sequenzprotokolls. Ferner umfassen die Genprodukte Sequenzen gemäß (SEQ ID NO:7- 13, 23, 24, 34-36, 58-61, 89-100) des Sequenzprotokolls. Die erfindungsgemäßen Spleißvarianten sind erfϊndungsgemäß als Targets für die Diagnostik und Therapie von Tumorerkrankungen verwendbar.

Für die Entstehung von Spleißvarianten können verschiedenste Mechanismen ursächlich sein, beispielsweise die Nutzung variabler Transkriptionsinitiationsstellen die Nutzung zusätzlicher Exons - vollständiges oder unvollständiges Aus Spleißen von einzelnen oder mehreren Exons, über Mutation veränderte Spleißregulatorsequenzen (Deletion bzw. Schaffung neuer Donor/Acceptorsequenzen), die unvollständige Elimination von Intronsequenzen.

Das veränderte Spleißen eines Gens führt zu einer veränderten Transkriptsequenz (Spleißvariante). Wird eine Spleißvariante im Bereich ihrer veränderten Sequenz translatiert, resultiert ein verändertes Protein, welches sich von dem ursprünglichen in Struktur und Funktion deutlich unterscheiden kann. Bei tumorassoziierten Spleißvarianten können tumorassoziierte Transkripte und tumorassoziierte Proteine/ Antigene entstehen. Diese können als molekulare Marker sowohl zum Nachweis von Tumorzellen als auch zum therapeutischen Targeting von Tumoren genutzt werden. Die Detektion von Tumorzellen z.B. im Blut, Serum, Knochenmark, Sputum, Bronchial-Lavage, Körpersekreten und Gewebsbiopsien kann erfmdungs gemäß z.B. nach Extraktion von Nukleinsäuren durch PCR-Amplifikation mit Spleißvariantenspezifischen Oligonukleotiden erfolgen. Zum Nachweis eignen sich erfindungsgemäß alle Sequenz-abhängigen Detektionssysteme. Neben der PCR sind diese z.B. Genchip-/Microarraysysteme, Northern-Blot, RNAse protection assays (RDA) und andere. Allen Detektionssystemen ist gemeinsam, dass die Detektion auf einer spezifischen Hybridisierung mit mindestens einer Spleißvarianten-spezifischen Nukleinsäuresequenz basiert. Die Detektion von Tumorzellen kann jedoch auch erfindungsgemäß durch Antikörper erfolgen, die ein durch die Spleißvariante kodiertes spezifisches Epitop erkennen. Für die Herstellung der Antikörper können Peptide zur Immunisierung verwendet werden, die für diese Spleißvariante spezifisch sind. Für die Immunisierung eignen sich besonders die Aminosäuren, die deutliche Epitopunterschiede zu der Variante(n) des Genprodukts aufweisen, welche(s) bevorzugt in gesunden Zellen gebildet wird. Der Nachweis der Tumorzellen mit Antikörper kann dabei an einer vom Patienten isolierten Probe oder als Imaging mit intravenös applizierten Antikörpern erfolgen. Neben der diagnostischen Nutzbarkeit stellen Spleißvarianten, die neue oder veränderte Epitope aufweisen, attraktive Targets für die Immuntherapie dar. Die erfindungsgemäßen Epitope können zum Targeting von therapeutisch wirksamen monoklonalen Antikörpern oder T-Lymphozyten genutzt werden. Bei der passiven Immuntherapie werden hierbei Antikörper oder T-Lymphozyten adoptiv transferriert, die Spleißvarianten-spezifische Epitope erkennen. Die Generierung von Antikörpern kann wie bei anderen Antigenen auch unter Nutzung von Standardtechnologien (Immunisierung von Tieren, Panningstrategien zur Isolation von rekombinanten Antikörpern) unter Nutzung von Polypeptiden, die diese Epitope beinhalten, erfolgen. Alternativ können zur Immunisierung Nukleinsäuren genutzt werden, die für Oligo- oder Polypeptide kodieren, die diese Epitope beinhalten. Verschiedene Techniken zur in vitro oder in vivo Generierung von epitopspezifischen T-Lymphozyten sind bekannt und ausführlich beschrieben z.B. (Kessler JH, et al. 2001, Sahin et al, 1997) und basieren ebenfalls auf der Nutzung von Oligo- oder Polypeptide, die die Spleißvarianten-spezifischen Epitope beinhalten oder Nukleinsäuren, die für diese kodieren. Oligo-oder Polypeptiden, die die Spleißvarianten- spezifischen Epitope beinhalten oder Nukleinsäuren, die für diese Polypeptide kodieren sind auch für die Nutzung als pharmazeutisch wirksame Substanzen bei der aktiven Immuntherapie (Vakzinierung, Vakzintherapie) verwendbar.

In einem Aspekt betrifft die Erfindung eine pharmazeutische Zusammensetzung umfassend ein Mittel, das das erfindungsgemäß identifizierte Tumor-assoziierte Antigen erkennt und vorzugsweise selektiv für Zellen ist, die eine Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens aufweisen. Das Mittel kann in bestimmten Ausführungsformen die Induktion des Zelltods, die Reduktion des Zellwachstums, die Schädigung der Zellmembran oder die Sekretion von Zytokinen bewirken und weist vorzugsweise eine tumorhemmende Aktivität auf. In einer Ausführungsform ist das Mittel eine Antisense-Nukleinsäure, die selektiv mit der Nukleinsäure hybridisiert, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert. In einer weiteren Ausführungsform ist das Mittel ein Antikörper, der selektiv an das Tumor-assoziierte Antigen bindet, insbesondere ein komplementaktivierter Antikörper, der selektiv an das Tumor-assoziierte Antigen bindet. In einer weiteren Ausführungsform umfasst das Mittel mehrere Mittel, die jeweils selektiv verschiedene Tumor-assoziierte Antigene erkennen, wobei mindestens eines der Tumorassoziierten Antigene ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen ist. Die Erkennung muss nicht direkt mit einer Hemmung von Aktivität oder Expression des Antigens einhergehen. In diesem Aspekt der Erfindung dient das selektiv auf Tumoren beschränkte Antigen vorzugsweise als Markierung zur Rekrutierung von Effektormechanismen an diesen spezifischen Ort. In einer bevorzugten Ausführungsform ist das Mittel ein cytotoxischer T- Lymphozyt, der das Antigen auf einem HLA-Molekül erkennt und die derartig markierte Zelle lysiert. In einer weiteren Ausführungsform ist das Mittel ein Antikörper, der selektiv an das Tumor-assoziierte Antigen bindet und somit natürliche oder artifizielle Effektormechanismen zu dieser Zelle rekrutiert. In einer weiteren Ausführungsform ist das Mittel ein T-Helfer-Lymphozyt, der Effektorfunktionen von anderen Zellen, die spezifisch dieses Antigen erkennen, stärkt.

In einem Aspekt betrifft die Erfindung eine pharmazeutische Zusammensetzung umfassend ein Mittel, das die Expression oder Aktivität eines erfindungsgemäß identifizierten Tumorassoziierten Antigens hemmt. In einer bevorzugten Ausführungsform ist das Mittel eine Antisense-Nukleinsäure, die selektiv mit der Nukleinsäure hybridisiert, die für das Tumorassoziierte Antigen kodiert. In einer weiteren Ausführungsform ist das Mittel ein Antikörper, der selektiv an das Tumor-assoziierte Antigen bindet. In einer weiteren Ausführungsform umfasst das Mittel mehrere Mittel, die jeweils selektiv die Expression oder Aktivität verschiedener Tumor-assoziierter Antigene hemmen, wobei mindestens eines der Tumorassoziierten Antigene ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen ist.

Die Aktivität eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens kann eine jegliche Aktivität eines Proteins oder Peptids sein. In einer Ausfuhrungsform ist die Aktivität eines enzymatische Aktivität wie die Laktatdehydrogenaseaktivität im Fall von Sequenzen, die LDHC betreffen (vgl. Beispiel 1). In einer weiteren Ausführungsform betrifft diese Aktivität eine Beteiligung bei einer zellulären Migration und/oder Metastatisierung wie im Fall der TPTE betreffenden Sequenzen (vgl. Beispiel 2). Somit können die erfindungsgemäßen Therapie- und Diagnosverfahren auch auf Hemmung oder Reduktion dieser Aktivität oder auf ein Testen dieser Aktivität abzielen.

Des weiteren betrifft die Erfindung eine pharmazeutische Zusammensetzung, die ein Mittel umfasst, das bei einer Verabreichung selektiv die Menge an Komplexen zwischen einem HLA-Molekül und einem Peptidepitop aus dem erfindungsgemäß identifizierten Tumorassoziierten Antigen erhöht. Das Mittel umfasst in einer Ausführungsform einen oder mehrere Bestandteile, die aus der Gruppe ausgewählt sind, bestehend aus (i) dem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon, (ii) einer Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon kodiert, (iii) einer Wirtszelle, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon exprimiert, und (iv) isolierten Komplexen zwischen Peptidepitopen aus dem Tumor-assoziierten Antigen und einem MHC-Molekül. In einer Ausführungsform umfasst das Mittel mehrere Mittel, die jeweils selektiv die Menge an Komplexen zwischen MHC- Molekülen und Peptidepitopen verschiedener Tumor-assoziierter Antigene erhöhen, wobei mindestens eines der Tumor-assoziierten Antigene ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen ist.

Des weiteren betrifft die Erfindung eine pharmazeutische Zusammensetzung, die einen oder mehrer Bestandteile umfasst, die aus der Gruppe ausgewählt sind, bestehend aus (i) einem erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon, (ii) einer Nukleinsäure, die für ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen oder einen Teil davon kodiert, (iii) einem Antikörper, der an ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen oder einen Teil davon bindet, (iv) einer Antisense-Nukleinsäure, die spezifisch mit einer Nukleinsäure, die für ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumorassoziiertes Antigen kodiert, hybridisiert, (v) einer Wirtszelle, die ein erfmdungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen oder einen Teil davon exprimiert, und (vi) isolierten Komplexen zwischen einem erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon und einem HLA-Molekül.

Eine Nukleinsäure, die für ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen oder einen Teil davon kodiert, kann in der pharmazeutische Zusammensetzung in einem Expressionsvektor vorliegen und funktioneil mit einem Promotor verbunden sein.

Eine in einer erfmdungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzung enthaltene Wirtszelle kann das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon sekretieren, auf der Oberfläche exprimieren oder kann zusätzlich ein HLA-Molekül exprimieren, das an das Tumorassoziierte Antigen oder den Teil davon bindet. In einer Ausfuhrungsform exprimiert die Wirtszelle das HLA-Molekül endogen. In einer weiteren Ausführungsform exprimiert die Wirtszelle das HLA-Molekül und/oder das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon rekombinant. Vorzugsweise ist die Wirtszelle nicht-proliferativ. In einer bevorzugten Ausführungsform ist die Wirtszelle eine Antigen-präsentierende Zelle, insbesondere eine dendritische Zelle, ein Monozyt oder ein Makrophage. Ein in einer erfindungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzung enthaltener Antikörper kann ein monoklonaler Antikörper sein. In weiteren Ausführungsformen ist der Antikörper ein chimärer oder humanisierter Antikörper, ein Fragment eines natürlichen Antikörpers, oder ein synthetischer Antikörper, die durch kombinatorische Techniken hergestellt werden können. Der Antikörper kann mit einem therapeutisch oder diagnostisch nützlichen Mittel gekoppelt sein.

Eine in einer erfmdungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzung enthaltene Antisense- Nukleinsäure kann eine Sequenz von 6-50, insbesondere 10-30, 15-30 und 20-30 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure, die für das erfindungsgemäß identifizierte Tumor-assoziierte Antigen kodiert, umfassen.

In weiteren Ausfuhrungsformen bindet ein durch eine erfindungsgemäße pharmazeutische Zusammensetzung entweder direkt oder durch die Expression einer Nukleinsäure bereitgestelltes Tumor-assoziiertes Antigen oder ein Teil davon an MHC-Moleküle auf der Oberfläche von Zellen, wobei die Bindung vorzugsweise eine cytolytische Reaktion hervorruft und/oder eine Cytokinausschüttung induziert.

Eine erfindungsgemäße pharmazeutische Zusammensetzung kann einen pharmazeutisch verträglichen Träger und/oder ein Adjuvans umfassen. Das Adjuvans kann aus Saponin, GM- CSF, CpG-Nukleotiden, RNA, einem Zytokin oder einem Chemokin ausgewählt sein. Eine erfindungsgemäße pharmazeutische Zusammensetzung wird vorzugsweise zur Behandlung einer Erkrankung eingesetzt, die sich durch die selektive Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet. In einer bevorzugten Ausführungsform ist die Erkrankung Krebs.

Des weiteren betrifft die Erfindung Verfahren zur Behandlung oder Diagnose einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines oder mehrerer Tumor-assoziierter Antigene auszeichnet. In einer Ausfülirungsform umfasst die Behandlung die Verabreichung einer erfindungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzung.

In einem Aspekt betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Diagnose einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet. Das Verfahren umfasst den Nachweis (i) einer Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder eines Teils davon und/oder (ii) den Nachweis des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Teils davon, und/oder (iii) den Nachweis eines Antikörpers gegen das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon und/oder (iv) den Nachweis von cytotoxischen oder Helfer-T-Lymphozyten, die für das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon spezifisch sind in einer aus einem Patienten isolierten biologischen Probe. In bestimmten Ausführungsformen umfasst der Nachweis (i) die Kontaktierung der biologischen Probe mit einem Mittel, das spezifisch an die Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder den Teil davon, an das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon, an den Antikörper oder an cytotoxische oder Helfer-T-Lymphozyten, die für das Tumor-assoziierte Antigen oder Teile davon spezifisch sind, bindet und (ii) den Nachweis der Komplexbildung zwischen dem Mittel und der Nukleinsäure oder dem Teil davon, dem Tumor-assoziierten Antigen oder dem Teil davon, dem Antikörper oder den cytotoxischen oder Helfer-T-Lymphozyten. In einer Ausfuhrungsform zeichnet sich die Erkrankung durch die Expression oder abnormale Expression mehrerer verschiedener Tumor-assoziierter Antigene aus und der Nachweis umfasst einen Nachweis mehrerer Nukleinsäuren, die für die mehreren verschiedenen Tumorassoziierten Antigene kodieren, oder von Teilen davon, den Nachweis der mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene oder von Teilen davon, den Nachweis mehrerer Antikörper, die an die mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene oder an Teile davon binden oder den Nachweis mehrerer cytotoxischer oder Helfer-T-Lymphozyten, die für die mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene spezifisch sind. In einer weiteren Ausführungsform wird die isolierte biologische Probe aus dem Patienten mit einer vergleichbaren normalen biologischen Probe verglichen.

Die erfindungsgemäßen Diagnoseverfahren können auch eine Nutzung der erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigene als prognostische Marker betreffen, um eine Metastatisierung z.B. durch Testen des Migrationsverhalten von Zellen und daher einen verschlechterten Krankheitsverlauf zu prädizieren, wodurch unter anderem die Planung einer aggressiveren Therapie ermöglicht wird. Insebsondere sind die TPTE betreffenden Sequenzen (vgl. Beispiel 2) für diesen Zweck geeignet. Sie sind auch dafür geeignet, noch gutartige Veränderungen z.B. Hyperplasien von bereits ungünstig zu wertenden Tumor- Vorstufen abzugrenzen und somit eine Krebsneigung vorherzusehen noch bevor ein invasiver Tumor sich gebildet hat. In dieser Ausführungsform betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Diagnose einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, wobei das Verfahren eine Bewertung des Migrationsverhaltens von Zellen aus einem Patienten umfasst. In besonders bevorzugten Ausführungsformen dient das Verfahren einer Bestimmung des Ausmaßes oder einer Prädiktion einer Metastatisierung und/oder von Lymphknoten- und/oder Fernmetastasen, wobei ein erhöhtes Migrationsverhalten von Zellen in bestimmten Ausführungsformen darauf hinweist, dass der getestete Patient an der Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens auszeiclmet, erkrankt ist, daran erkranken wird und/oder ein Potential für eine derartige Erkrankung aufweist. In besonders bevorzugten Ausführungsformen weist ein erhöhtes Migrationsverhalten auf eine Metastatisierung und/oder Bildung von Lymphknoten- und/oder Fernmetastasen oder ein Potential dafür hin. In dieser Ausführungsform weist das erfindungsgemäß identifizierte Tumor-assoziierte Antigen vorzugsweise eine Sequenz auf, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus: (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, und 54-57, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist, (b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert, (c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und (d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist. Das Tumor-assoziierte Antigen umfaßt vorzugsweise eine Aminosäuresequenz, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 22-24, 58-61, 81, 82, und 103-105, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist.

Erfindungsgemäße Verfahren zur Behandlung zielen in diesem Aspekt vorzugsweise auf die

Verabreichung von pharmazeutischen Zusammensetzungen ab, die das Migrationsverhalten normalisieren, vorzugsweise hemmen.

In einer weiteren Ausführungsform betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Diagnose einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, wobei das Verfahren eine Bestimmung des Methylierungsmusters und/oder des Grades an Methylierung innerhalb einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, insbesondere innerhalb der nicht-kodierenden Bereiche davon, bevorzugt innerhalb des Promotorbereiches davon umfaßt. Vorzugsweise weist das erfindungsgemäß identifizierte Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz auf, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus: (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, und 54-57, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist, (b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert, (c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und (d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist, und die Bestimmung erfolgt bezüglich dieser Nukleinsäure, vorzugsweise innerhalb des Promotorbereiches davon, und insbesondere innerhalb der in SEQ ID NO:822 gezeigten Sequenz, insbesondere innerhalb der Nukleotide von Position 121 bis 540 der in SEQ ID NO:822 gezeigten Sequenz (TPTE Promotorsequenz auf Chromosom 21; Position -36S/+952 bezogen auf den Transkriptionsstart). Das Tumor-assoziierte Antigen umfaßt vorzugsweise eine Aminosäuresequenz, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 22-24, 58-61, 81, 82, und 103-105, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist. Eine im Vergleich zu einer Kontrolle geringere Methylierung oder eine fehlende Methylierung weist vorzugsweise darauf hin, dass der getestete Patient an der Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, erkrankt ist, daran erkranken wird und/oder ein erhöhtes Potential für eine derartige Erkrankung aufweist.

Erfmdungsgemäße Verfahren zur Behandlung zielen in diesem Aspekt vorzugsweise auf die Verabreichung von pharmazeutischen Zusammensetzungen ab, die das Methylierungsmuster und/oder den Grad der Methylierung normalisieren, vorzugsweise erhöhen.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Bestimmung der Regression, des Verlaufs oder des Ausbruchs einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend die Überwachung einer Probe aus einem Patienten, der die Erkrankung aufweist oder in Verdacht steht, an der Erkrankung zu erkranken in Bezug auf einen oder mehrere Parameter, die aus der Gruppe ausgewählt sind, bestehend aus (i) der Menge der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder eines Teil davon, (ii) der Menge des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Teils davon, (iii) der Menge an Antikörpern, die an das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon binden, und (iv) der Menge an cytolytischen T-Zellen oder Helfer-T-Zellen, die für einen Komplex zwischen dem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon und einem MHC-Molekül spezifisch sind. Vorzugsweise umfasst das Verfahren die Bestimmung des oder der Parameter zu einem ersten Zeitpunkt in einer ersten Probe und zu einem zweiten Zeitpunkt in einer weiteren Probe, wobei durch einen Vergleich der beiden Proben der Verlauf der Erkrankung ermittelt wird. In bestimmten Ausführungsformen zeichnet sich die Erkrankung durch die Expression oder abnormale Expression mehrerer verschiedener Tumor-assoziierter Antigene aus und die Überwachung umfasst eine Überwachung (i) der Menge mehrerer Nukleinsäuren, die für die mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene kodieren, oder von Teilen davon und/oder (ii) der Menge der mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene oder von Teilen davon und/oder (iii) der Menge mehrerer Antikörper, die an die mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene oder an Teile davon binden, und/oder (iv) der Menge mehrerer cytolytischer T-Zellen oder Helfer-T-Zellen, die für Komplexe zwischen den mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigenen oder von Teilen davon und MHC- Molekülen spezifisch sind.

Ein Nachweis einer Nukleinsäure oder eines Teils davon oder eine Überwachung der Menge einer Nukleinsäure oder eines Teils davon kann erfindungsgemäß mit einer Polynukleotid- Sonde erfolgen, die spezifisch mit der Nukleinsäure oder dem Teil davon hybridisiert oder kann durch selektive Amplifikation der Nukleinsäure oder des Teils davon erfolgen. In einer Ausführungsform umfasst die Polynukleotid-Sonde eine Sequenz von 6-50, insbesondere 10- 30, 15-30 und 20-30 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure.

In bestimmten Ausführungsformen liegt das nachzuweisende Tumor-assoziierte Antigen oder der Teil davon intrazellulär oder auf der Zelloberfläche vor. Ein Nachweis eines Tumorassoziierten Antigens oder eines Teils davon oder eine Überwachung der Menge eines Tumor-assoziierten Antigens oder eines Teils davon kann erfmdungsgemäß mit einem Antikörper erfolgen, der spezifisch an das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon bindet.

In weiteren Ausführungsformen liegt das nachzuweisende Tumor-assoziierte Antigen oder der Teil davon in einem Komplex mit einem MHC-Molekül, insbesondere einem HLA- Molekül vor. Ein Nachweis eines Antikörpers oder die Überwachung der Menge an Antikörpern kann erfindungsgemäß mit einem Protein oder Peptid erfolgen, das spezifisch an den Antikörper bindet.

Ein Nachweis von cytolytischen T-Zellen oder Helfer-T-Zellen oder die Überwachung der Menge an cytolytischen T-Zellen oder Helfer-T-Zellen, die für Komplexe zwischen einem Antigen oder einem Teil davon und MHC-Molekülen spezifisch sind, kann erfindungsgemäß mit einer Zelle erfolgen, die den Komplex zwischen dem Antigen oder dem Teil davon und einem MHC-Molekül präsentiert.

Die für einen Nachweis oder für eine Überwachung verwendete Polynukleotid-Sonde, der Antikörper, das Protein oder Peptid oder die Zelle sind vorzugsweise nachweisbar markiert. In bestimmten Ausführungsformen ist der nachweisbare Marker ein radioaktiver Marker oder ein Enzymmarker. Der Nachweis von T-Lymphozyten kann zusätzlich erfolgen durch Nachweis ihrer Proliferation, ihrer Zytokinproduktion, sowie ihret cytotoxischen Aktivität, die ausgelöst wird durch die spezifische Stimulation mit dem Komplex aus MHC und tumorassoziiertem Antigen oder Teilen davon. Der Nachweis von T-Lymphozyten kann ferner erfolgen durch ein rekombinantes MHC-Molekül oder auch ein Komplex aus mehreren MHC-Molekülen, die beladen sind mit dem jeweiligen immunogenen Fragment aus einem oder mehreren der tumorassoziierten Antigene und durch Kontaktierung des spezifischen T-

Zell-Rezeptors die spezifischen T-Lymphozyten identifizieren können.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Behandlung, Diagnose oder Überwachung einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend die Verabreichung eines Antikörpers, der an das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon bindet und mit einem therapeutischen oder diagnostischen Mittel gekoppelt ist. Der Antikörper kann ein monoklonaler Antikörper sein. In weiteren Ausführungsformen ist der Antikörper ein chimärer oder humanisierter Antikörper oder ein Fragment eines natürlichen Antikörpers.

Die Erfindung betrifft auch ein Verfahren zur Behandlung eines Patienten mit einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfmdungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend (i) die Entfernung einer Probe mit immunreaktiver Zellen aus dem Patienten, (ii) die Kontaktierung der Probe mit einer Wirtszelle, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon exprimiert, unter Bedingungen, die eine Produktion cytolytischer T-Zellen gegen das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon begünstigen, und (iii) das Einbringen der cytolytischen T- Zellen in den Patienten in einer Menge, die geeignet ist, Zellen zu lysieren, die das Tumorassoziierte Antigen oder einen Teil davon exprimieren. Die Erfindung betrifft ebenfalls die Klonierung des T-Zell-Rezeptors von cytolytischen T-Zellen gegen das Tumor-assoziierte Antigen. Dieser kann in andere T-Zellen transferiert werden, die damit die erwünschte Spezifität erhalten und wie unter (iii) in den Patienten eingebracht werden können.

In einer Ausführungsform exprimiert die Wirtszelle ein HLA-Molekül endogen. In einer weiteren Ausführungsform exprimiert die Wirtszelle ein HLA-Molekül und/oder das Tumorassoziierte Antigen oder den Teil davon rekombinant. Vorzugsweise ist die Wirtszelle nicht- proliferativ. In einer bevorzugten Ausführungsform ist die Wirtszelle eine Antigen- präsentierende Zelle, insbesondere eine dendritische Zelle, ein Monozyt oder ein Makrophage.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Behandlung eines Patienten mit einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor- assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend (i) die Identifizierung einer für ein erfmdungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen kodierenden Nukleinsäure, die von Zellen exprimiert wird, die mit der Erkrankung assoziiert sind, (ii) die Transfektion einer Wirtszelle mit der Nukleinsäure oder einem Teil davon, (iii) die Kultivierung der transfizierten Wirtszelle für eine Expression der Nukleinsäure (dies ist bei Erreichen einer hohen Transfektionsrate nicht obligat), und (iv) das Einbringen der Wirtszellen oder eines Extrakts davon in den Patienten in einer Menge, die geeignet ist, die Immunreaktion gegen die Zellen des Patienten, die mit der Erkrankung assoziiert sind, zu erhöhen. Das Verfahren kann ferner die Identifizierung eines MHC-Moleküls, das das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon präsentiert, umfassen, wobei die Wirtszelle das identifizierte MHC- Molekül exprimiert und das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon präsentiert. Die Immunreaktion kann eine B-Zellen-Reaktion oder eine T-Zellen-Reaktion umfassen. Des weiteren kann eine T-Zellen-Reaktion die Produktion von cytolytischen T-Zellen und/oder Helfer-T-Zellen umfassen, die spezifisch für die Wirtszellen sind, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon präsentieren oder spezifisch für Zellen des Patienten sind, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon exprimieren.

Die Erfindung betrifft auch ein Verfahren zur Behandlung einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumorassoziierten Antigens auszeichnet, umfassend (i) die Identifikation von Zellen aus dem Patienten, die abnormale Mengen des Tumor-assoziierten Antigens exprimieren, (ii) die Isolierung einer Probe der Zellen, (iii) die Kultivierung der Zellen und (iv) das Einbringen der Zellen in den Patienten in einer Menge, die geeignet ist, eine Immunreaktion gegen die Zellen auszulösen.

Vorzugsweise sind die erfindungsgemäß verwendeten Wirtszellen nicht-proliferativ oder werden nicht-proliferativ gemacht. Eine Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, ist insbesondere Krebs.

Des weiteren betrifft die vorliegende Erfindung eine Nukleinsäure, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 2-5, 20-21, 31-33, 39, 54-57, 62, 63, 85-88 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist, (b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert, (c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und (d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist. Des weiteren betrifft die Erfindung eine Nukleinsäure die für ein Protein oder Polypeptid kodiert, das eine Aminosäuresequenz umfasst, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 7-13, 14-18, 23-24, 34-36, 58-61, 64, 65, 89-100, 101-107 einem Teil oder Derivat davon.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung Promotorsequenzen von erfindungsgemäßen Nukleinsäuren. Diese können funktionell mit einem anderen Gen vorzugsweise in einem Expressionsvektor verbunden werden, und somit die selektive Expression dieses Gens in entsprechenden Zellen gewährleisten.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein rekombinantes Nukleinsäuremolekül, insbesondere DNA- oder RNA-Molekül, das eine erfindungsgemäße Nukleinsäure umfasst. Die Erfindung betrifft auch Wirtszellen, die eine erfindungsgemäße Nukleinsäure oder ein rekombinantes Nukleinsäuremolekül, das eine erfindungsgemäße Nukleinsäure umfasst, enthalten.

Die Wirtszelle kann ferner eine Nukleinsäure umfassen, die für ein HLA-Molekül kodiert. In einer Ausfuhrungsform exprimiert die Wirtszelle das HLA-Molekül endogen. In einer weiteren Ausführungsform exprimiert die Wirtszelle das HLA-Molekül und/oder die erfindungsgemäße Nukleinsäure oder einen Teil davon rekombinant. Vorzugsweise ist die Wirtszelle nicht-proliferativ. In einer bevorzugten Ausfuhrungsform ist die Wirtszelle eine Antigen-präsentierende Zelle, insbesondere eine dendritische Zelle, ein Monozyt oder ein Makrophage.

In einer weiteren Ausführungsform betrifft die Erfindung Oligonukleotide, die mit einer erfindungsgemäß identifizierten Nukleinsäure hybridisieren und als genetische Sonden oder als "Antisense"-Moleküle verwendet werden können. Nukleinsäuremoleküle in der Form von Oligonukleotid-Primern oder kompetenten Proben, die mit einer erfindungsgemäß identifizierten Nukleinsäure oder Teilen davon hybridisieren, können zum Auffinden von Nukleinsäuren verwendet werden, die zu der erfindungsgemäß identifizierten Nukleinsäure homolog sind. PCR-Amplifikation, Southern- und Northern-Hybridisierung können zum Auffinden homologer Nukleinsäuren eingesetzt werden. Die Hybridisierung kann unter niedrig-, besser unter mittel- und am besten unter hoch-stringenten Bedingungen erfolgen. Der Begriff „stringente Bedingungen" betrifft erfindungsgemäß Bedingungen, die eine spezifische Hybridisierung zwischen Polynukleotiden erlauben.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Protein oder Polypeptid, das von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 2-5, 20-21, 31-33, 39, 54-57, 62, 63, 85-88 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist, (b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert, (c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und (d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist. In einer bevorzugten Ausführungsform betrifft die Erfindung ein Protein oder Polypeptid, das eine Aminosäuresequenz umfasst, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 7-13, 14-18, 23-24, 34-36, 58-61, 64, 65, 89-100, 101- 107 einem Teil oder Derivat davon.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein immunogenes Fragment eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens. Das Fragment bindet vorzugsweise an einen menschlichen HLA-Rezeptor oder menschlichen Antikörper. Vorzugsweise umfasst ein erfmdungsgemäßes Fragment eine Sequenz von mindestens 6, insbesondere mindestens 8, mindestens 10, mindestens 12, mindestens 15, mindestens 20, mindestens 30 oder mindestens 50 Aminosäuren.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Mittel, das an ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen oder an einen Teil davon bindet. In einer bevorzugten Ausführungsform ist das Mittel ein Antikörper. In weiteren Ausführungsformen ist der Antikörper ein chimärer, ein humanisierter oder mit kombinatorischen Techniken hergestellte Antikörper oder ein Fragment eines Antiköφers. Des weiteren betrifft die Erfindung einen Antikörper, der selektiv an einen Komplex aus (i) einem erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon und (ii) einem MHC- Molekül bindet, an das das erfmdungsgemäß identifizierte Tumor-assoziierte Antigen oder der Teil davon bindet, wobei der Antiköper nicht alleine an (i) oder (ii) bindet. Ein erfindungsgemäßer Antiköφer kann ein monoklonaler Antiköφer sein. In weiteren Ausführungsformen ist der Antiköφer ein chimärer oder humanisierter Antiköφer oder ein Fragment eines natürlichen Antiköφers.

Des weiteren betrifft die Erfindung ein Konjugat zwischen einem erfindungsgemäßen Mittel, das an ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen oder an einen Teil davon bindet, oder einem erfmdungsgemäßen Antiköφer und einem therapeutischen oder diagnostischen Mittel. In einer Ausführungsform ist das therapeutische oder diagnostische Mittel ein Toxin.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung einen Kit zum Nachweis der Expression oder abnormalen Expression eines erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigens, umfassend Mittel zum Nachweis (i) der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder eines Teils davon, (ii) des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Teils davon, (iii) von Antiköφern, die an das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon binden, und/oder (iv) von T-Zellen, die für einen Komplex zwischen dem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon und einem MHC-Molekül spezifisch sind. In einer Ausführungsform sind die Mittel zum Nachweis der Nukleinsäure oder des Teils davon Nukleinsäuremoleküle für die selektive Amplifikation der Nukleinsäure, die insbesondere eine Sequenz von 6-50, insbesondere 10-30, 15-30 und 20-30 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure umfassen.

Detaillierte Beschreibung der Erfindung

Erfmdungsgemäß werden Gene beschrieben, die in Tumorzellen selektiv exprimiert oder aberrant exprimiert werden und Tumor-assoziierte Antigene darstellen.

Erfindungsgemäß sind diese Gene oder ihre Derivate bevorzugte Zielstrukturen für therapeutische Ansätze. Konzeptionell können die therapeutischen Ansätze auf eine Hemmung der Aktivität des selektiv exprimierten tumor-assoziierten Genproduktes zielen. Dies ist dann sinnvoll, wenn die aberrante respektive selektive Expression funktionell von tumoφathogenetischer Bedeutung ist und ihre Unterbindung mit einer selektiven Schädigung der entsprechenden Zellen einhergeht. Andere therapeutische Konzepte betrachten tumorassoziierte Antigene als Markierungen, die Effektormechanismen mit zeilschädigendem Potential selektiv zu Tumorzellen rekrutieren. Hierbei ist die Funktion des Zielmoleküls selbst und seine Rolle bei der Tumorentstehung vollkommen unerheblich.

Mit "Derivat" einer Nukleinsäure ist erfindungsgemäß gemeint, dass einzelne oder multiple Nukleotidsubstitution, -deletion und/oder -addition in der Nukleinsäure vorliegen. Weiterhin umfasst der Begriff „Derivat" auch eine chemische Derivatisierung einer Nukleinsäure an einer Nukleotidbase, am Zucker oder am Phosphat. Der Begriff „Derivat" umfasst auch Nukleinsäuren, die nicht in der Natur vorkommende Nukleotide und Nukleotidanaloga enthalten.

Eine Nukleinsäure ist erfmdungsgemäß vorzugsweise Desoxyribonukleinsäure (DNA) oder

Ribonukleinsäure (RNA). Nukleinsäuren umfassen erfindungsgemäß genomische DNA, cDNA, mRNA, rekombinant hergestellte und chemisch synthetisierte Moleküle. Eine Nukleinsäure kann erfmdungsgemäß als einzelsträngiges oder doppelsträngiges und lineares oder kovalent kreisförmig geschlossenes Molekül vorliegen. Die erfindungsgemäß beschriebenen Nukleinsäuren sind vorzugsweise isoliert. Der Begriff "isolierte Nukleinsäure" bedeutet erfindungsgemäß, dass die Nukleinsäure (i) in vitro amplifiziert wurde, zum Beispiel durch Polymerase-Kettenreaktion (PCR), (ii) rekombinant durch Klonierung produziert wurde, (iii) gereinigt wurde, zum Beispiel durch Spaltung und gelelektrophoretische Auftrennung oder (iv) synthetisiert wurde, zum Beispiel durch chemische Synthese. Eine isolierte Nukleinsäure ist eine Nukleinsäure, die für eine Manipulierung durch rekombinante DNA-Techniken zur Verfügung steht.

Eine Nukleinsäure ist dann zu einer anderen Nukleinsäure „komplementär", wenn die beiden Sequenzen miteinander hybridisieren und ein stabiles Duplex eingehen können, wobei die

Hybridisierung vorzugsweise unter Bedingungen erfolgt, die eine spezifische Hybridisierung zwischen Polynukleotiden erlauben (stringente Bedingungen). Stringente Bedingungen sind beispielsweise in Molecular Cloning: A Laboratory Manual, J. Sambrook et al., Hrsg., 2.

Auflage, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 1989 oder Current Protocols in Molecular Biology, F.M. Ausubel et al., Hrsg., John Wiley & Sons, Inc.,

New York beschrieben und betreffen beispielsweise die Hybridisierung bei 65°C in

Hybridisierungspuffer (3,5 x SSC, 0,02% Ficoll, 0,02% Polyvinylpyrrolidon, 0,02%

Rinderserumalbumin, 2,5mM NaH₂PO₄ (pH7), 0,5% SDS, 2mM EDTA). SSC ist 0,15 M

Natriumchlorid/ 0,15 M Natriumeitrat, pH 7. Nach der Hybridisierung wird die Membran, auf die die DNA übertragen wurde beispielsweise in 2 x SSC bei Raumtemperatur und sodann in

0,1 - 0,5 x SSC/ 0,1 x SDS bei Temperaturen bis 68°C gewaschen.

Komplementäre Nukleinsäuren weisen erfindungsgemäß mindestens 40%, insbesondere mindestens 50%, mindestens 60%, mindestens 70%, mindestens 80%, mindestens 90% und vorzugsweise mindestens 95%, mindestens 98 oder mindestens 99% Identität der Nukleotide auf.

Nukleinsäuren, die für Tumor-assoziierte Antigene kodieren, können erfindungsgemäß alleine oder in Kombination mit anderen Nukleinsäuren, insbesondere heterologen Nukleinsäuren, vorliegen. In bevorzugten Ausfuhrungsformen liegt eine Nukleinsäure funktionell in Verbindung mit Expressionskontrollsequenzen oder regulatorischen Sequenzen vor, die in Bezug zu der Nukleinsäure homolog oder heterolog sein können. Eine kodierende Sequenz und eine regulatorische Sequenz sind dann "funktionell¹¹ miteinander verbunden, falls sie derart kovalent miteinander verknüpft sind, dass die Expression oder Transkription der kodierenden Sequenz unter der Kontrolle oder unter dem Einfluss der regulatorischen Sequenz steht. Falls die kodierende Sequenz in ein funktionelles Protein translatiert werden soll, führt bei einer funktioneilen Verbindung einer regulatorischen Sequenz mit der kodierenden Sequenz eine Induktion der regulatorischen Sequenz zu einer Transkription der kodierenden Sequenz, ohne dass es zu einer Leserasterverschiebung in der kodierenden Sequenz oder zu einem Unvermögen der kodierenden Sequenz kommt, in das gewünschte Protein oder Peptid translatiert zu werden.

Der Begriff „Expressionskontrollsequenz" oder „regulatorische Sequenz" umfasst erfindungsgemäß Promotoren, Enhancer und andere Kontrollelemente, die die Expression eines Gens steuern. In bestimmten erfindungsgemäßen Ausführungsformen sind die

Expressionskontrollsequenzen regulierbar. Die genaue Struktur von regulatorischen

Sequenzen kann speziesabhängig oder zelltypusabhängig variieren, umfasst jedoch im allgemeinen 5'-nicht-transkribierte und 5'-nicht-translatierte Sequenzen, die an der Initiation der Transkription bzw. Translation beteiligt sind wie TATA-Box, Capping-Sequenz, CAAT-

Sequenz und ähnliches. Insbesondere umfassen 5'-nicht-transkribierte Regulationssequenzen eine Promotorregion, die eine Promotorsequenz für eine transkriptionelle Kontrolle des funktionell verbundenen Gens einschließt. Regulatorische Sequenzen können auch Enhancer-

Sequenzen oder stromaufwärts gelegene Aktivatorsequenzen umfassen.

Zum einen können also die hier dargestellten tumorassoziierten Antigene mit beliebigen Expressionskontrollsequenzen und Promotoren kombiniert werden. Zum anderen aber können erfindungsgemäß die Promotoren der hier dargestellten tumor-assoziierten Genprodukte mit beliebigen anderen Genen kombiniert werden. Dies erlaubt, die selektive Aktivität dieser Promotoren zu nutzen.

Des weiteren kann eine Nukleinsäure erfindungsgemäß in Verbindung mit einer anderen Nukleinsäure vorliegen, die für ein Polypeptid kodiert, das eine Sekretion des durch die Nukleinsäure kodierten Proteins oder Polypeptids aus einer Wirtszelle steuert. Auch kann eine Nukleinsäure erfindungsgemäß in Verbindung mit einer anderen Nukleinsäure vorliegen, die für ein Polypeptid kodiert, das eine Verankerung des kodierten Proteins oder Polypeptids auf der Zellmembran der Wirtszelle oder seine Kompartimentalisierung in bestimmte Organellen dieser Zelle herbeiführt. In einer bevorzugten Ausführungsform ist ein rekombinantes DNA-Molekül erfindungsgemäß ein Vektor, gegebenenfalls mit einem Promotor, der die Expression einer Nukleinsäure, z.B. einer Nukleinsäure, die für eine erfmdungsgemäßes Tumor-assoziiertes Antigen kodiert, steuert. Der Begriff "Vektor" wird dabei in seiner allgemeinsten Bedeutung verwendet und umfasst jegliche intermediären Vehikel für eine Nukleinsäure, die es z.B. ermöglichen die Nukleinsäure in prokaryotische und/oder in eukaryotische Zellen einzubringen und gegebenenfalls in ein Genom zu integrieren. Solche Vektoren werden vorzugsweise in der Zelle repliziert und/oder exprimiert. Ein intermediäres Vehikel kann z.B. für den Gebrauch bei der Elektroporation, beim Mikroprojektilbeschuss, bei der liposomalen Verabreichung, beim Transfer mit Hilfe von Agrobakterien oder bei der Insertion über DNA- oder RNA- Viren angepasst sein. Vektoren umfassen Plasmide, Phagemide oder Virusgenome.

Die Nukleinsäuren, die für ein erfindungsgemäß identifiziertes Tumor-assoziiertes Antigen kodieren, können für eine Transfektion von Wirtszellen eingesetzt werden. Mit Nukleinsäuren ist dabei sowohl rekombinante DNA wie auch RNA gemeint. Rekombinante RNA kann durch in-vitro-Transkription von einer DNA-Matritze hergestellt werden. Sie kann des weiteren vor Applikation durch stabilisierende Sequenzen, Capping und Poly-Adenylierung modifiziert werden. Der Begriff „Wirtszelle" betrifft erfindungsgemäß jede Zelle, die mit einer exogenen Nukleinsäure transformierbar oder transfizierbar ist. Der Begriff „Wirtszellen" umfasst erfindungsgemäß prokaryontische (z.B. E. coli) oder eukaryontische (z.B. dendritische Zellen, B-Zellen, CHO-Zellen, COS-Zellen, K562-Zellen, Hefezellen und Insektenzellen). Besonders bevorzugt sind Säugerzellen wie Zellen aus Mensch, Maus, Hamster, Schwein, Ziege, Primaten. Die Zellen können aus einer Vielzahl von Gewebetypen abgeleitet sein und umfassen primäre Zellen und Zelllinien. Spezifische Beispiele umfassen Keratinozyten, periphere Blutleukozyten, Stammzellen des Knochenmarks und embryonale Stammzellen. In weiteren Ausführungsformen ist die Wirtszelle eine Antigen-präsentierende Zelle, insbesondere eine dendritische Zelle, Monozyt oder ein Makrophage. Eine Nukleinsäure kann in der Wirtszelle in einer einzigen oder in mehreren Kopien vorliegen und wird in einer Ausführungsform in der Wirtszelle exprimiert.

Der Begriff "Expression" wird erfindungsgemäß in seiner allgemeinsten Bedeutung verwendet und umfasst die Produktion von RNA oder von RNA und Protein. Er umfasst auch eine teilweise Expression von Nukleinsäuren. Des weiteren kann die Expression transient oder stabil erfolgen. Bevorzugte Expressionssysteme in Säugerzellen umfassen pcDNA3.1 und pRc/CMV (Invitrogen, Carlsbad, CA), die einen selektierbaren Marker enthalten wie ein Gen, das eine Resistenz gegenüber G418 verleiht (und somit eine Selektion stabil transfizierter Zelllinien ermöglicht) und die Enhancer-Promotor-Sequenzen von Cytomegalovirus (CMV).

In den Fällen der Erfindung, in denen ein HLA-Molekül ein Tumor-assoziiertes Antigen oder einen Teil davon präsentiert, kann ein Expressionsvektor auch eine Nukleinsäuresequenz umfassen, das für das HLA-Molekül kodiert. Die Nukleinsäuresequenz, die für das HLA- Molekül kodiert, kann auf demselben Expressionsvektor wie die Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon kodiert, vorliegen oder beide Nukleinsäuren können auf verschiedenen Expressionsvektoren vorliegen. Im letzteren Fall können die beiden Expressionsvektoren in eine Zelle cotransfiziert werden. Falls eine Wirtszelle weder das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon noch das HLA-Molekül exprimiert, werden beide dafür kodierenden Nukleinsäuren entweder auf demselben Expressionsvektor oder auf verschiedenen Expressionsvektoren in die Zelle transfiziert. Falls die Zelle bereits das HLA- Molekül exprimiert, kann nur die Nukleinsäuresequenz, die für das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon kodiert, in die Zelle transfiziert werden.

Erfindungsgemäß umfasst sind Kits zur Amplifikation einer Nukleinsäure, die für ein Tumor- assoziiertes Antigen kodiert. Solche Kits umfassen beispielsweise ein Paar von Amplifikationsprimern, die an die Nukleinsäure hybridisieren, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert. Die Primer umfassen vorzugsweise eine Sequenz von 6-50, insbesondere 10- 30, 15-30 und 20-30 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure und sind nicht- überlappend, um die Bildung von Primer-Dimeren zu vermeiden. Einer der Primer wird an einen Strang der Nukleinsäure hybridisieren, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, und der andere Primer wird an den komplementären Strang in einer Anordnung hybridisieren, die eine Amplifikation der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, erlaubt.

"Antisense"-Moleküle oder „Antisense"-Nukleinsäuren können zur Regulierung, insbesondere der Reduktion der Expression einer Nukleinsäure verwendet werden. Der Begriff "Antisense-Molekül" oder "Antisense-Nukleinsäure" betrifft erfindungsgemäß ein Oligonukleotid, das ein Oligoribonukleotid, Oligodesoxyribonukleotid, modifiziertes Oligoribonukleotid oder modifiziertes Oligodesoxyribonukleotid ist und das unter physiologischen Bedingungen an DNA, die ein bestimmtes Gen umfasst, oder mRNA dieses Gens hybridisiert, wodurch die Transkription dieses Gens und/oder die Translation dieser mRNA gehemmt wird. Ein "Antisense-Molekül" umfasst erfindungsgemäß auch ein Konstrukt, das eine Nukleinsäure oder einen Teil davon in reverser Orientierung in Bezug auf ihren natürlichen Promotor enthält. Ein Antisense-Transkript einer Nukleinsäure oder eines Teils davon kann eine Duplex mit der natürlich vorkommenden mRNA, die das Enzym spezifiziert, eingehen und so eine Akkumulation von oder die Translation der mRNA in das aktive Enzym verhindern. Eine weitere Möglichkeit ist die Verwendung von Ribozymen zur Inaktivierung einer Nukleinsäure. Bevorzugte erfindungsgemäße Antisense-Oligonukleotide weisen eine Sequenz von 6-50, insbesondere 10-30, 15-30 und 20-30 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Ziel-Nukleinsäure auf und sind vorzugsweise vollständig zu der Ziel- Nukleinsäure oder einem Teil davon komplementär.

In bevorzugten Ausführungsformen hybridisiert das Antisense-Oligonukleotid mit einer N- terminalen oder 5'-stromaufwärts gelegenen Stelle wie einer Translationsinitiations-, Transkriptionsinitiations- oder Promotorstelle. In weiteren Ausfulirungsformen hybridisiert das Antisense-Oligonukleotid mit einer 3'-nicht-translatierten Region oder mRNA-Splicing- Stelle.

In einer Ausführungsform besteht ein erfindungsgemäßes Oligonukleotid aus Ribonukleotiden, Desoxyribonukleotiden oder einer Kombination davon. Dabei sind das 5'- Ende eines Nukleotids und das 3'-Ende eines anderen Nukleotids durch eine Phosphodiesterbindung miteinander verknüpft. Diese Oligonukleotide können in herkömmlicher Weise synthetisiert oder rekombinant produziert werden.

In bevorzugten Ausführungsformen ist ein erfindungsgemäßes Oligonukleotid ein "modifiziertes" Oligonukleotid. Dabei kann das Oligonukleotid, um beispielsweise seine Stabilität oder therapeutische Wirksamkeit zu erhöhen, auf verschiedenste Art und Weise modifiziert sein ohne dass seine Fähigkeit, an sein Ziel zu binden, beeinträchtigt wird. Der Begriff "modifiziertes Oligonukleotid" bedeutet erfindungsgemäß ein Oligonukleotid bei dem (i) mindestens zwei seiner Nukleotide durch eine synthetische Internukleosidbindung (d.h. eine Internukleosidbindung, die keine Phosphodiesterbindung ist) miteinander verknüpft sind und/oder (ii) eine chemische Gruppe kovalent mit dem Oligonukleotid verbunden ist, die normalerweise nicht bei Nukleinsäuren auftritt. Bevorzugte synthetische Internukleosidbindungen sind Phosphorothioate, Alkylphosphonate, Phosphorodithioate, Phosphatester, Alkylphosphonothioate, Phosphoramidate, Carbamate, Carbonate, Phosphattriester, Acetamidate, Carboxymethylester und Peptide.

Der Begriff "modifiziertes Oligonukleotid" umfasst auch Oligonukleotide mit einer kovalent modifizierten Base und/oder Zucker. "Modifizierte Oligonukleotide" umfassen beispielsweise Oligonukleotide mit Zuckerresten, die kovalent an organische Gruppen mit einem geringen Molekulargewicht gebunden sind, die keine Hydroxylgruppe an der 3 '-Position und keine Phosphatgruppe an der 5'-Position sind. Modifizierte Oligonukleotide können beispielsweise einen 2'-O-alkylierten Riboserest oder einen anderen Zucker anstelle von Ribose wie Arabinose umfassen.

Die erfindungsgemäß beschriebenen Proteine und Polypeptide sind vorzugsweise isoliert. Die Begriffe "isoliertes Protein" oder "isoliertes Polypeptid" bedeuten, dass das Protein oder Polypeptid von seiner natürlichen Umgebung getrennt ist. Ein isoliertes Protein oder Polypeptid kann in einem im wesentlichen aufgereinigten Zustand vorliegen. Der Begriff "im wesentlichen aufgereinigt" bedeutet, dass das Protein oder Polypeptid im wesentlichen frei von anderen Substanzen vorliegt, mit denen es in der Natur oder in vivo vorliegt.

Solche Proteine und Polypeptide dienen beispielsweise der Herstellung von Antiköφern und sind in einem immunologischen oder diagnostischen Assay oder als Therapeutika einsetzbar. Erfindungsgemäß beschriebene Proteine und Polypeptide können aus biologischen Proben wie Gewebe- oder Zellhomogenaten isoliert werden und können auch rekombinant in einer Vielzahl pro- oder eukaryontischer Expressionssysteme exprimiert werden.

„Derivate" eines Proteins oder Polypeptids oder einer Aminosäuresequenz im Sinne dieser Erfindung umfassen Aminosäure-Insertionsvarianten, Aminosäure-Deletionsvarianten und/oder Aminosäure-Substitutionsvarianten.

Aminosäure-Insertionsvarianten umfassen amino- und/oder carboxyterminale Fusionen, sowie Insertionen von einzelnen oder mehreren Aminosäuren in einer bestimmten Aminosäuresequenz. Bei Aminosäure-Sequenzvarianten mit einer Insertion werden ein oder mehrere Aminosäurereste in eine vorbestimmte Stelle in einer Aminosäuresequenz eingebracht, obwohl eine zufällige Insertion mit geeignetem Screening des resultierenden Produkts auch möglich ist. Aminosäure-Deletionsvarianten sind durch das Entfernen von einer oder mehreren Aminosäuren aus der Sequenz charakterisiert. Aminosäure- Substitutionsvarianten zeichnen sich dadurch aus, dass wenigstens ein Rest in der Sequenz entfernt und ein anderer Rest an dessen Stelle eingefügt wird. Vorzugsweise befinden sich die Modifikationen an Positionen in der Aminosäuresequenz, die zwischen homologen Proteinen oder Polypeptiden nicht konserviert sind. Vorzugsweise werden Aminosäuren durch andere mit ähnlichen Eigenschaften ersetzt, wie Hydrophobizität, Hydrophilizität, Elektronegativität, Volumen der Seitenkette und ähnliches (konservative Substitution). Konservative Substitutionen betreffen beispielsweise den Austausch einer Aminosäure durch eine andere, nachstehend in derselben Gruppe wie die substituierte Aminosäure aufgeführte Aminosäure:

1. kleine aliphatische, nicht-polare oder leicht-polare Reste: Ala, Ser, Thr (Pro, Gly)

2. negativ geladene Reste und ihre Amide: Asn, Asp, Glu, Gin

3. positiv geladene Reste: His, Arg, Lys 4. große aliphatische, nicht-polare Reste: Met, Leu, Ile, Val (Cys) 5. große aromatische Reste: Phe, Tyr, Tφ.

Drei Reste sind aufgrund ihrer besonderen Rolle für die Proteinarchitektur in Klammern gesetzt. Gly ist der einzige Rest ohne eine Seitenkette und verleiht der Kette somit Flexibilität. Pro besitzt eine ungewöhnliche Geometrie, die die Kette stark einschränkt. Cys kann eine Disulfidbrücke bilden.

Die oben beschriebenen Aminosäure-Varianten können leicht mit Hilfe von bekannten Peptidsynthesetechniken wie z.B. durch „Solid Phase Synthesis" (Merrifield, 1964) und ähnliche Verfahren oder durch rekombinante DNA-Manipulation hergestellt werden. Techniken, um Substitutionsmutationen an vorbestimmten Stellen in DNA einzubringen, die eine bekannte oder teilweise bekannte Sequenz besitzt, sind gut bekannt und umfassen z.B. M13-Mutagenese. Die Manipulation von DNA-Sequenzen zur Herstellung von Proteinen mit Substitutionen, Insertionen oder Deletionen ist z.B. in Sambrook et. al. (1989) ausführlich beschrieben.

„Derivate" von Proteinen oder Polypeptiden umfassen erfindungsgemäß auch einzelne oder multiple Substitutionen, Deletionen und/oder Additionen jeglicher Moleküle, die mit dem Enzym assoziiert sind, wie Kohlenhydrate, Lipide und/oder Proteine oder Polypeptide. Ferner erstreckt sich der Begriff "Derivat" auch auf alle funktioneilen chemischen Äquivalente der Proteine oder Polypeptide.

Ein Teil oder Fragment eines Tumor-assoziierten Antigens weist erfindungsgemäß eine funktioneile Eigenschaft des Polypeptids auf, aus dem es abgeleitet sind. Solche funktioneilen Eigenschaften umfassen die Interaktion mit Antiköφern, die Interaktion mit anderen Polypeptiden oder Proteinen, die selektive Bindung von Nukleinsäuren und eine enzymatische Aktivität. Eine bedeutende Eigenschaft ist die Fähigkeit, einen Komplex mit HLA einzugehen und gegebenenfalls eine Immunreaktion zu erzeugen. Diese Immunreaktion kann auf Stimulation von cytotoxischen oder Helfer T-Zellen beruhen. Vorzugsweise umfasst ein erfindungsgemäßer Teil oder Fragment eines Tumor-assoziierten Antigens eine Sequenz von mindestens 6, insbesondere mindestens 8, mindestens 10, mindestens 12, mindestens 15, mindestens 20, mindestens 30 oder mindestens 50 aufeinanderfolgenden Aminosäuren aus dem Tumor-assoziierten Antigen.

Bevorzugte Teile oder Fragmente eines Tumor-assoziierten Antigens weisen erfindungsgemäß vorzugsweise eine der nachstehend aufgeführten Sequenzen auf, die von den erfindungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigenen abgeleitet sind, und sind vorzugsweise Peptidepitope, die erfindungsgemäß insbesondere zur Stimulierung von cytotoxischen T-Lymphozyten in vivo aber auch zur Herstellung expandierter und stimulierter T-Lymphozyten zum therapeutischen adoptiven Transfer ex vivo geeignet sind. Diese Sequenzen sind insbesondere Peptidepitope für die nachstehend angegebenen MHC Klasse I Allele:

HLA-A*0201

HLA-A*2402

HLA-A*01

HLA-A*03

HLA-B*0702

Ein Teil oder ein Fragment einer Nukleinsäure, die für ein Tumor-assoziiertes Antigen kodiert, betrifft erfmdungsgemäß den Teil der Nukleinsäure, der zumindest für das Tumorassoziierte Antigen kodiert und/oder für einen Teil oder ein Fragment des Tumor-assoziierten Antigens wie vorstehend definiert kodiert.

Die Isolierung und Identifizierung von Genen, die für Tumor-assoziierte Antigene kodieren, ermöglicht auch die Diagnose einer Erkrankung, die sich durch die Expression von einem oder mehreren Tumor-assoziierten Antigenen auszeichnet. Diese Verfahren umfassen die Bestimmung einer oder mehrerer Nukleinsäuren, die für ein Tumor-assoziiertes Antigen kodieren, und/oder die Bestimmung der kodierten Tumor-assoziierten Antigene und/oder von davon abgeleiteten Peptiden. Eine Bestimmung der Nukleinsäure kann in herkömmlicher Weise erfolgen, einschließlich durch Polymerase-Kettenreaktion oder Hybridisierung mit einer markierten Sonde. Eine Bestimmung von Tumor-assoziierten Antigenen oder davon abgeleiteten Peptiden kann durch ein Screening von Patienten-Antiseren in Bezug auf eine Erkennung des Antigens und/oder der Peptide erfolgen. Sie kann auch erfolgen durch ein Screening von T-Zellen des Patienten auf Spezifität für das entsprechende tumor-assoziierte Antigen.

Die vorliegende Erfindung ermöglicht auch die Isolierung von Proteinen, die an hier beschriebene Tumor-assoziierte Antigene binden, einschließlich Antiköφer und zelluläre Bindepartner der Tumor-assoziierten Antigene.

Erfindungsgemäß werden auch in bestimmten Ausführungsformen "dominant negative" Polypeptide bereitgestellt, die von Tumor-assoziierten Antigenen abgeleitet sind. Ein dominant negatives Polypeptid ist eine inaktive Variante eines Proteins, die durch Interaktion mit der zellulären Maschinerie ein aktives Protein von seiner Interaktion mit der zellulären Maschinerie verdrängt oder mit dem aktiven Protein kompetitiert, wodurch die Wirkung des aktiven Proteins verringert wird. Zum Beispiel kann ein dominant negativer Rezeptor, der einen Liganden bindet, jedoch kein Signal in Reaktion auf die Bindung des Liganden erzeugt, die biologische Wirkung des Liganden verringern. In ähnlicher Weise kann eine dominant negative katalytisch-inaktive Kinase, die normalerweise mit Zielproteinen interagiert, jedoch die Zielproteine nicht phosphoryliert, die Phosphorylierung der Zielproteine in Reaktion auf ein zelluläres Signal verringern. In ähnlicher Weise kann ein dominant negativer Transkriptionsfaktor, der an eine Promotorstelle in der Kontrollregion eines Gens bindet, jedoch die Transkription des Gens nicht erhöht, die Wirkung eines normalen Transkriptionsfaktors durch die Besetzung von Promotorbindestellen ohne eine Erhöhung der Transkription verringern.

Das Ergebnis der Expression eines dominant negativen Polypeptids in einer Zelle ist eine Verringerung der Funktion aktiver Proteine. Der Fachmann kann dominant negative Varianten eines Proteins beispielsweise durch herkömmliche Mutageneseverfahren und Bewerten der dominant negativen Wirkung des Varianten-Polypeptids herstellen.

Erfindungsgemäß umfasst sind auch Stoffe wie Polypeptide, die an Tumor-assoziierte Antigene binden. Solche Bindestoffe können z.B. in Screening- Assays für einen Nachweis von Tumor-assoziierten Antigenen und Komplexen von Tumor-assoziierten Antigenen mit ihren Bindepartnern sowie bei einer Aufreinigung der Tumor-assoziierten Antigene und von Komplexen davon mit ihren Bindepartnern Verwendung finden. Solche Stoffe können auch für eine Hemmung der Aktivität Tumor-assoziierter Antigene beispielsweise durch Bindung an solche Antigene Verwendung finden.

Erfindungsgemäß umfasst sind daher Bindestoffe wie z.B. Antiköφer oder Antiköφerfragmente, die die Fähigkeit aufweisen, selektiv an Tumor-assoziierte Antigene zu binden. Antiköφer umfassen polyklonale und monoklonale Antiköφer, die in herkömmlicher Weise hergestellt werden.

Es ist bekannt, dass nur ein kleiner Teil eines Antiköφermoleküls, das Paratop, an der Bindung des Antiköφers an sein Epitop beteiligt ist (vgl. Clark, W.R. (1986), The Experimental Foundations of Modern Immunology, Wiley & Sons, Inc., New York; Roitt, I. (1991), Essential Immunology, 7. Auflage, Blackwell Scientific Publications, Oxford). Die pFc'- und Fc-Regionen sind z.B. Effektoren der Komplementkaskade, sind jedoch nicht an der Antigenbindung beteiligt. Ein Antiköφer, von dem die pFc' -Region enzymatisch abgespalten wurde oder der ohne die pFc' -Region hergestellt wurde, bezeichnet als F(ab')₂-Fragment, trägt beide Antigenbindestellen eines vollständigen Antiköφers. In ähnlicher Weise trägt ein Antiköφer, von dem die Fc-Region enzymatisch abgespalten wurde oder der ohne die Fc- Region hergestellt wurde, bezeichnet als Fab-Fragment, eine Antigenbindestelle eines intakten Antiköφermoleküls. Des weiteren bestehen Fab-Fragmente aus einer kovalent gebundenen leichten Kette eines Antiköφers und einem Teil der schweren Kette des Antiköφers, bezeichnet als Fd. Die Fd-Fragmente sind die Haupt-Determinanten der Antiköφer-Spezifität (ein einzelnes Fd-Fragment kann mit bis zu zehn verschiedenen leichten Ketten assoziiert werden, ohne die Spezifität des Antiköφers zu verändern) und Fd- Fragmente behalten bei einer Isolierung die Fähigkeit, an ein Epitop zu binden.

Innerhalb des Antigen-bindenden Teils eines Antiköφers befinden sich komplementaritätsbestimmende Regionen (CDRs), die direkt mit dem Epitop des Antigens wechselwirken, und Gerüstregionen (FRs), die die Tertiärstruktur des Paratops aufrechterhalten. Sowohl in dem Fd-Fragment der schweren Kette als auch in der leichten Kette von IgG-Immunglobulinen befinden sich vier Gerüstregionen (FRl bis FR4), die jeweils durch drei komplementaritätsbestimmende Regionen (CDR1 bis CDR3) getrennt sind. Die CDRs und insbesondere die CDR3 -Regionen und noch mehr die CDR3 -Region der schweren Kette sind größtenteils für die Antiköφer-Spezifität verantwortlich.

Man weiß, dass die Nicht-CDR-Regionen eines Säuger- Antiköφers durch ähnliche Regionen von Antiköφern mit der gleichen oder einer anderen Spezifität ersetzt werden können, wobei die Spezifität für das Epitop des ursprünglichen Antiköφers erhalten bleibt. Dies ermöglichte die Entwicklung sogenannter "humanisierter" Antiköφer, bei denen nicht-menschliche CDRs kovalent mit menschlichen FR- und/oder Fc/pFc'-Regionen für die Herstellung eines funktionellen Antiköφers verbunden sind.

Zum Beispiel beschreibt die WO 92/04381 die Herstellung und Verwendung von humanisierten RSV-Antiköφern aus Maus, bei denen mindestens ein Teil der FR-Regionen aus Maus durch FR-Regionen eines menschlichen Ursprungs ersetzt wurden. Solche Antiköφer, einschließlich Fragmente intakter Antiköφer mit einer Antigen-Bindefähigkeit werden oft als "chimäre" Antiköφer bezeichnet.

Erfindungsgemäß werden auch F(ab')₂-, Fab-, Fv- und Fd-Fragmente von Antiköφern, chimäre Antiköφer, bei denen die Fc- und/oder FR- und/oder CDR1- und/oder CDR2- und/oder leichte Kette-CDR3 -Regionen durch homologe menschliche oder nicht-menschliche Sequenzen ersetzt wurden, chimäre F(ab') -Fragment-Antiköφer, bei denen die FR- und/oder CDR1- und/oder CDR2- und/oder leichte Kette-CDR3 -Regionen durch homologe menschliche oder nicht-menschliche Sequenzen ersetzt wurden, chimäre Fab-Fragment- Antiköφer, bei denen die FR- und/oder CDR1- und/oder CDR2- und/oder leichte Kette- CDR3-Regionen durch homologe menschliche oder nicht-menschliche Sequenzen ersetzt wurden, und chimäre Fd-Fragment- Antiköφer, bei denen die FR- und/oder CDR1- und/oder CDR2-Regionen durch homologe menschliche oder nicht-menschliche Sequenzen ersetzt wurden, bereitgestellt. Erfindungsgemäß umfasst sind auch sogenannte einzelkettige Antiköφer.

Vorzugsweise ist ein erfmdungsgemäß verwendeter Antiköφer gegen eine der in SEQ ID NO:14-18, 80-84 oder 101-116 des Sequenzprotokolls dargestellten Sequenzen gerichtet und/oder kann durch Immunisierung mit diesen Peptiden erhalten werden.

Erfmdungsgemäß umfasst sind auch Polypeptide, die spezifisch an Tumor-assoziierte Antigene binden. Beispielsweise können solche Polypeptid-Bindestoffe durch degenerierte Peptid-Bibliotheken bereitgestellt werden, die einfach in Lösung in einer immobilisierten Form oder als Phagen-Display-Bibliotheken hergestellt werden können. Kombinatorische Bibliotheken aus Peptiden mit einer oder mehreren Aminosäuren können ebenfalls hergestellt werden. Ferner können Bibliotheken aus Peptoiden und nicht-peptidischen synthetischen Resten hergestellt werden.

Phagen-Display kann besonders wirksam bei der Identifizierung erfindungsgemäßer Bindepeptide sein. Dabei wird beispielsweise eine Phagen-Bibliothek (durch Verwendung beispielsweise des ml 3-, fd- oder lambda-Phagen) hergestellt, die Inserts einer Länge von 4 bis etwa 80 Aminosäureresten präsentiert. Es werden sodann Phagen ausgewählt, die Inserts tragen, die an das Tumor-assoziierte Antigen binden. Dieser Prozess kann über mehrere Zyklen einer Rückselektion von Phagen wiederholt werden, die an das Tumor-assoziierte Antigen binden. Wiederholte Runden führen zu einer Anreicherung von Phagen, die bestimmte Sequenzen tragen. Es kann eine Analyse von DNA-Sequenzen erfolgen, um die Sequenzen der exprimierten Polypeptide zu identifizieren. Der kleinste lineare Anteil der Sequenz, der an das Tumor-assoziierte Antigen bindet, kann bestimmt werden. Das "two- hybrid-System" aus Hefe kann auch für die Identifizierung von Polypeptiden eingesetzt werden, die an ein Tumor-assoziiertes Antigen binden. Erfindungsgemäß beschriebene Tumor-assoziierte Antigene oder Fragmente davon können für ein Screening von Peptid- Bibliotheken, einschließlich Phagen-Display-Bibliotheken, eingesetzt werden, um Peptid- Bindepartner der Tumor-assoziierten Antigene zu identifizieren und selektieren. Solche Moleküle können beispielsweise für Screening-Assays, Aufreinigungsprotokolle, für eine Interferenz mit der Funktion des Tumor-assoziierten Antigens und für andere Zwecke, die dem Fachmann bekannt sind, verwendet werden.

Die vorstehend beschriebenen Antiköφer und andere Bindemoleküle können beispielsweise für die Identifizierung von Gewebe verwendet werden, das ein Tumor-assoziiertes Antigen exprimiert. Antiköφer können auch an spezifische diagnostische Stoffe für eine Darstellung von Zellen und Geweben gekoppelt werden, die Tumor-assoziierte Antigene exprimieren. Sie können ferner an therapeutisch nützliche Stoffe gekoppelt werden. Diagnostische Stoffe umfassen in nicht begrenzender Weise Bariumsulfat, Iocetaminsäure, lopansäure, Calcium- Ipodat, Natrium-Diatrizoat, Meglumin-Diatrizoat, Metrizamid, Natrium-Tyropanoat und Radiodiagnostika, einschließlich Positronen-Emitter wie Fluorin-18 und Carbon-11, gamma- Emitter wie Iodin-123, Technitium-99m, Iod-131 und Indium-111, Nuklide für magnetische Kernresonanz wie Fluorin und Gadolinium. Der Begriff "therapeutisch nützlicher Stoff meint erfindungsgemäß jedes therapeutische Molekül, das wunschgemäß selektiv zu einer Zelle geführt wird, die ein oder mehrere Tumor-assoziierte Antigene exprimiert, einschließlich Antikrebsmittel, mit radioaktivem Iod versehene Verbindungen, Toxine, cytostatische oder cytolytische Arzneistoffe, usw. Antikrebsmittel umfassen beispielsweise Aminoglutethimid, Azathioprin, Bleomycinsulfat, Busulfan, Carmustin, Chlorambucil, Cisplatin, Cyclophosphamid, Cyclosporin, Cytarabidin, Dacarbazin, Dactinomycin, Daunorubin, Doxorubicin, Taxol, Etoposid, Fluoruracil, Interferon-α, Lomustin, Mercaptopurin, Methotrexat, Mitotan, Procarbazin-HCl, Thioguanin, Vinblastinsulfat und Vincristinsulfat. Weitere Antikrebsmittel sind beispielsweise in Goodman und Gilman, "The Pharmacological Basis^' of Therapeutics", 8. Auflage, 1990, McGraw-Hül, Inc., insbesondere Kapitel 52 (Antineoplastic Agents (Paul Calabresi und Bruce A. Chabner) beschrieben. Toxine können Proteine wie Pokeweed-antivirales Protein, Choleratoxin, Pertussistoxin, Ricin, Gelonin, Abrin, Diphtherie-Exotoxin oder Pseudomonas-Exotoxin sein. Toxinreste können auch Hochenergie-emittierende Radionuklide wie Kobalt-60 sein.

Im Fall von TPTE (vgl. Beispiel 2) konnte erfindungsgemäß gezeigt werden, dass dieses nicht nur ein membranständiges Protein ist, sondern auch zu internalisieren vermag. Daher können die TPTE betreffenden erfingungsgemäß identifizierten Tumor-assoziierten Antigene selbst einem Transport von daran bindenden Substanzen, insbesondere den vorstehend beschriebenen therapeutischen Antiköφern, von der Membran ins Cytoplasma und somit einer Internalisierung dienen, wo diese Substanzen vorzugsweise ihre Wirkung wie eine zellzerstörende Wirkung entfalten können.

Der Begriff "Patient" bedeutet erfindungsgemäß Mensch, nicht menschlicher Primat oder ein anderes Tier, insbesondere Säugetier wie Kuh, Pferd, Schwein, Schaf, Ziege, Hund, Katze oder Nagetier wie Maus und Ratte. In einer besonders bevorzugten Ausführungsform ist der Patient ein Mensch.

Der Begriff "Erkrankung" betrifft erfindungsgemäß jeden pathologischen Zustand, bei dem Tumor-assoziierte Antigene exprimiert oder abnormal exprimiert werden. „Abnormale Expression" bedeutet erfindungsgemäß, dass die Expression gegenüber dem Zustand bei einem gesunden Individuum verändert, vorzugsweise erhöht ist. Eine Erhöhung der Expression betrifft eine Erhöhung um mindestens 10%, insbesondere mindestens 20%, mindestens 50% oder mindestens 100%). In einer Ausführungsform wird das Tumor- assoziierte Antigen nur in Gewebe eines erkrankten Individuums exprimiert, während die Expression bei einem gesunden Individuum reprimiert ist. Ein Beispiel einer solchen Erkrankung ist Krebs, insbesondere Seminome, Melanome, Teratome, Gliome, Kolorektal-, Brust-, Prostata-, Gebärmutter-, Ovarial-, und Lungenkrebs.

Eine biologische Probe kann erfindungsgemäß eine Gewebe- und/oder zelluläre Probe sein und kann für eine Verwendung in den verschiedenen, hier beschriebenen Verfahren in herkömmlicher Weise gewonnen werden, wie durch Gewebebiopsie, einschließlich Stanzbiopsie, und Entnahme von Blut, Bronchialaspirat, Urin, Fäces oder anderen Köφerflüssigkeiten.

Der Begriff "immunreaktive Zelle" bedeutet erfindungsgemäß eine Zelle, die in eine Immunzelle (wie B-Zelle, T-Helferzelle oder cytolytische T-Zelle) bei geeigneter Stimulierung reifen kann. Immunreaktive Zellen umfassen CD34⁺ hämatopoietische Stammzellen, unreife und reife T-Zellen sowie unreife und reife B-Zellen. Falls die Herstellung cytolytischer oder Helfer T-Zellen, die ein Tumor-assoziiertes Antigen erkennen, gewünscht ist, wird die immunreaktive Zelle mit einer Zelle, die ein Tumor-assoziiertes Antigen exprimiert, unter Bedingungen in Kontakt gebracht, die eine Produktion, Differenzierung und/oder Selektion von cytolytischen sowie Helfer T-Zellen begünstigen. Die Differenzierung von T-Zell- Vorläufern in eine cytolytische T-Zelle bei einer Exposition gegenüber einem Antigen ist ähnlich zur klonalen Selektion des Immunsystems.

Manche therapeutische Verfahren beruhen auf einer Reaktion des Immunsystems eines Patienten, die zu einer Lyse Antigen-präsentierender Zellen führt, wie Krebszellen, die ein oder mehrere Tumor-assoziierte Antigene präsentieren. Dabei werden beispielsweise autologe cytotoxische T-Lymphozyten, die für einen Komplex aus einem Tumor-assoziierten Antigen und einem MHC-Molekül spezifisch sind, an einen Patienten mit einer Zellabnormalie verabreicht. Die Produktion solcher cytotoxischer T-Lymphozyten in vitro ist bekannt. Ein Beispiel für ein Verfahren zur Differenzierung von T-Zellen findet sich in der WO-A- 9633265. Im Allgemeinen wird eine Probe mit Zellen wie Blutzellen aus dem Patienten entnommen und die Zellen werden mit einer Zelle in Kontakt gebracht, die den Komplex präsentiert und eine Vermehrung von cytotoxischen T-Lymphozyten auslösen kann (z.B. dendritische Zellen). Die Zielzelle kann eine transfizierte Zelle wie eine COS -Zelle sein. Diese transfizierten Zellen präsentieren den gewünschten Komplex auf ihrer Oberfläche und stimulieren bei einer Kontaktierung mit cytotoxischen T-Lymphozyten deren Vermehrung. Die klonal expandierten autologen cytotoxischen T-Lymphozyten werden sodann an den Patienten verabreicht.

Bei einem anderen Verfahren zur Selektion Antigen-spezifischer cytotoxischer T- Lymphozyten werden fluorogene Tetramere von MHC-Klasse I-Molekül/Peptid-Komplexen für einen Nachweis spezifischer Klone von cytotoxischen T-Lymphozyten verwendet (Altman et al, Science 274:94-96, 1996; Dunbar et al., Curr. Biol 8:413-416, 1998). Lösliche MHC-Klasse I-Moleküle werden in vitro in Gegenwart von ß₂-Mikroglobulin und eines Peptid- Antigens, das an das Klasse I-Molekül bindet, gefaltet. Nach Aufreinigung der MHC/Peptid-Komplexe werden diese mit Biotin markiert. Tetramere werden durch Mischen der biotinylierten Peptid-MHC-Komplexe mit markiertem Avidin (z.B. Phycoerythrin) bei einem molaren Verhältnis von 4:1 gebildet. Tetramere werden sodann mit cytotoxischen T- Lymphozyten wie peripherem Blut oder Lymphknoten in Kontakt gebracht. Die Tetramere binden an cytotoxische T-Lymphozyten, die den Peptid- Antigen/MHC-Klasse I-Komplex erkennen. Zellen, die an die Tetramere gebunden werden, können durch Fluoreszenzgesteuerte Zellsortierung für eine Isolierung reaktiver cytotoxischer T-Lymphozyten sortiert werden. Die isolierten cytotoxischen T-Lymphozyten können sodann in vitro vermehrt werden. Bei einem therapeutischen Verfahren, das als adoptiver Transfer bezeichnet wird (Greenberg, J Immunol 136(5):1917, 1986; Riddel et al., Science 257:238, 1992; Lynch et al., Eur. J Immunol 21:1403-1410, 1991; Käst et al, Cell 59:603-614, 1989), werden Zellen, die den gewünschten Komplex präsentieren (z.B. dendritische Zellen) mit cytotoxischen T- Lymphozyten des zu behandelnden Patienten kombiniert, was zu einer Vermehrung spezifischer cytotoxischer T-Lymphozyten führt. Die vermehrten cytotoxischen T- Lymphozyten werden sodann an einen Patienten mit einer zellulären Abnormalie verabreicht, die sich durch bestimmte abnormale Zellen auszeichnet, die den spezifischen Komplex präsentieren. Die cytotoxischen T-Lymphozyten lysieren sodann die abnormalen Zellen, wodurch eine gewünschte therapeutische Wirkung erreicht wird.

Oft lassen sich aus dem T-Zell-Repertoire eines Patienten lediglich niedrig-affine T-Zellen gegen einen solchen spezifischen Komplex vermehren, da die hochaffmen durch Toleranzentwicklung ausgelöscht worden sind. Eine Alternative kann hier ein Transfer des T- Zell-Rezeptors selbst sein. Hierfür werden ebenfalls Zellen, die den gewünschten Komplex präsentieren (z.B. dendritische Zellen) mit cytotoxischen T-Lymphozyten von Gesunden kombiniert. Dies führt zu einer Vermehrung hochaffiner spezifischer cytotoxischer T- Lymphozyten, wenn der Spender mit dem spezifischen Komplex bisher keinen Kontakt hatte. Der hochaffine T-Zell-Rezeptor aus diesen vermehrten spezifischen T-Lymphozyten wird kloniert und kann durch Gentransfer z.B. mit retroviralen Vektoren beliebig in T-Zellen von anderen Patienten transduziert werden. Adoptiver Transfer erfolgt dann mit diesen genetisch veränderten T-Lymphozyten (Stanislawski et al., Nat Immunol. 2:962-70, 2001 ; Kessels et al, Nat Immunol. 2:957-61, 2001).

Die vorstehenden therapeutischen Aspekte gehen davon aus, dass zumindest manche der abnormalen Zellen des Patienten einen Komplex aus einem Tumor-assoziierten Antigen und einem HLA-Molekül präsentieren. Eine Identifizierung solcher Zellen kann in an sich bekannter Weise erfolgen. Sobald Zellen, die den Komplex präsentieren, identifiziert wurden, können sie mit einer Probe aus dem Patienten, die cytotoxische T-Lymphozyten enthält, kombiniert werden. Falls die Zellen, die den Komplex präsentieren, durch die cytotoxischen T-Lymphozyten lysiert werden, kann angenommen werden, dass ein Tumor-assoziiertes Antigen präsentiert wird.

Der adoptive Transfer ist nicht die einzige Therapieform, die erfindungsgemäß anwendbar ist. Cytotoxische T-Lymphozyten können auch in vivo in an sich bekannter Weise erzeugt werden. Bei einem Verfahren werden nicht-proliferative Zellen verwendet, die den Komplex exprimieren. Die Zellen, die dabei verwendet werden, werden diejenigen sein, die normalerweise den Komplex exprimieren, wie bestrahlte Tumorzellen oder Zellen, die mit einem oder beiden Genen transfiziert wurden, die für eine Präsentation des Komplexes notwendig sind (d.h. das Antigene Peptid und das präsentierende HLA-Molekül). Verschiedene Zelltypen können eingesetzt werden. Des weiteren können Vektoren verwendet werden, die eines oder beide der interessierenden Gene tragen. Virale oder bakterielle Vektoren sind besonders bevorzugt. Zum Beispiel können Nukleinsäuren, die für ein Tumorassoziiertes Antigen oder einen Teil davon kodieren, funktionell mit Promotor- und Enhancersequenzen verknüpft werden, die eine Expression des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Fragments davon in bestimmten Geweben oder Zelltypen steuern. Die Nukleinsäure kann in einen Expressionsvektor eingebaut werden. Expressionsvektoren können nicht-modifizierte extrachromosomale Nukleinsäuren, Plasmide oder virale Genome sein, in die eine Insertion exogener Nukleinsäuren möglich ist. Nukleinsäuren, die für ein Tumor-assoziiertes Antigen kodieren, können auch in ein retrovirales Genom inseriert werden, wodurch die Integration der Nukleinsäure in das Genom des Zielgewebes oder der Zielzelle ermöglicht wird. Bei diesen Systemen trägt ein Mikroorganismus wie Vacciniavirus, Poxvirus, Heφes simplex- Virus, Retrovirus oder Adenovirus das interessierende Gen und "infiziert" de facto Wirtszellen. Eine weitere bevorzugte Form ist die Einbringung des tumor- assoziierten Antigenes in Form von rekombinanter RNA. Diese kann z.B. durch liposomalen Transfer oder durch Elektroporation in Zellen eingebracht werden. Die resultierenden Zellen präsentieren den interessierenden Komplex und werden von autologen cytotoxischen T- Lymphozyten erkannt, die sich sodann vermehren.

Eine ähnliche Wirkung kann durch Kombination des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Fragments davon mit einem Adjuvans erreicht werden, um einen Einbau in Antigen- präsentierende Zellen in vivo zu ermöglichen. Das tumor-assoziierte Antigen oder ein Fragment davon können als Protein, als DNA (z.B. innerhalb eines Vektors) oder als RNA repräsentiert sein. Das Tumor-assoziierte Antigen wird prozessiert, um einen Peptidpartner für das HLA-Molekül zu ergeben, während ein Fragment davon präsentiert werden kann, ohne dass eine weitere Prozessierung erforderlich ist. Letzteres ist insbesondere der Fall, wenn diese and HLA-Moleküle binden können. Verabreichungsformen, bei denen das Gesamt-Antigen in vivo von einer Dendritischen Zelle prozessiert wird, sind bevorzugt, da hier auch Helfer T-Zell- Antworten entstehen können. Eine effektive Immunantwort benötigt diese (Ossendoφ et al, Immunol Lett. 74:75-9, 2000; Ossendoφ et al, J Exp. Med. 187:693- 702, 1998). Im allgemeinen kann eine wirksame Menge des Tumor-assoziierten Antigens an einen Patienten z.B. durch eine intradermale Injektion verabreicht werden. Die Injektion kann aber auch intranodal in einen Lymphknoten erfolgen (Maloy et al, Proc Natl Acad Sei USA 98:3299-303, 2001). Sie kann auch in Kombination mit Reagenzien erfolgen, die eine Aufnahme in Dendritische Zellen erleichtern. Eine in vivo Bevorzugte Tumor-assoziierte Antigene umfassen diejenigen, die mit allogenen Krebs- Antiseren oder mit T-Zellen vieler Krebs-Patienten reagieren. Von besonderem Interesse sind aber auch solche, gegen die keine spontanen Immunantworten vorbestehen. Gegen diese können nachweislich Immunantworten induziert werden, die Tumoren lysieren können (Keogh et al, J Immunol 167:787-96, 2001; Appella et al, Biomed Pept Proteins Nucleic Acids 1:177-84, 1995; Wentworth et al, Mol Immunol. 32:603-12, 1995).

Die erfindungsgemäß beschriebenen pharmazeutischen Zusammensetzungen können auch als Vacccinen für die Immunisierung eingesetzt werden. Die Begriffe "Immunisierung" oder "Vaccinierung" bedeuten erfindungsgemäß eine Erhöhung oder Aktivierung einer Immunreaktion gegenüber einem Antigen. Tiermodelle können für ein Testen einer immunisierenden Wirkung gegenüber Krebs durch Verwendung eines Tumor-assoziierten Antigens oder einer dafür kodierenden Nukleinsäure eingesetzt werden. Zum Beispiel können menschhche Krebszellen in eine Maus für die Schaffung eines Tumors eingebracht werden und eine oder mehrere Nukleinsäuren, die für Tumor-assoziierte Antigene kodieren, können verabreicht werden. Die Wirkung auf die Krebszellen (beispielsweise Verringerung der Tumorgröße) kann als Maß für die Wirksamkeit einer Immunisierung durch die Nukleinsäure gemessen werden.

Als Teil der Zusammensetzung für eine Immunisierung werden eines oder mehrere Tumorassoziierte Antigene oder stimulierende Fragmente davon mit einem oder mehreren Adjuvanzien für eine Induktion einer Immunreaktion oder eine Erhöhung einer Immunreaktion verabreicht. Ein Adjuvans ist eine Substanz, die in das Antigen eingebaut oder gemeinsam mit diesem verabreicht wird und die Immunreaktion verstärkt. Adjuvanzien können die Immunreaktion durch Bereitstellen eines Antigen-Reservoirs (extrazellulär oder in Makrophagen), Aktivierung von Makrophagen und Stimulierung bestimmter Lymphozyten verstärken. Adjuvanzien sind bekannt und umfassen in nicht begrenzender Weise Monophosphoryl-Lipid-A (MPL, SmithKline Beecham), Saponine wie QS21 (SmithKline Beecham), DQS21 (SmithKline Beecham; WO 96/33739), QS7, QS17, QS18 und QS-Ll (So et al, Mol. Cells 7:178-186, 1997), unvollständiges Freundsches Adjuvans, vollständiges Feundsches Adjuvans, Vitamin E, Montanid, Alaun, CpG-Oligonukleotide (vgl. Kreig et al., Nature 374:546-9, 1995) und verschiedene Wasser-in-Öl-Emulsionen, die aus biologisch abbaubaren Ölen wie Squalen und/oder Tocopherol hergestellt werden. Vorzugsweise werden die Peptide in einer Mischung mit DQS21/MPL verabreicht. Das Verhältnis von DQS21 zu MPL beträgt typischerweise etwa 1:10 bis 10:1, vorzugsweise etwa 1:5 bis 5:1 und insbesondere etwa 1:1. Für eine Verabreichung an den Menschen sind DQS21 und MPL typischerweise in einer Vaccine-Formulierung in einem Bereich von etwa 1 μg bis etwa 100 μg vorhanden.

Andere Stoffe, die eine Immunreaktion des Patienten stimulieren, können auch verabreicht werden. Zum Beispiel sind Cytokine bei einer Vaccinierung aufgrund ihrer regulatorischen Eigenschaften auf Lymphozyten verwendbar. Solche Cytokine umfassen z.B. Interleukin-12 (IL-12), von dem gezeigt wurde, dass es die schützenden Wirkungen von Vaccinen verstärkt (vgl. Science 268:1432-1434, 1995), GM-CSF und IL-18.

Es gibt eine Reihe von Verbindungen, die eine Immunreaktion verstärken und die daher bei einer Vaccinierung eingesetzt werden können. Diese umfassen co-stimulierende Moleküle, die in Form von Proteinen oder Nukleinsäuren bereitgestellt werden. Solche co- stimulierenden Moleküle sind beispielsweise B7-1 und B7-2 (CD80 bzw. CD86), die auf dendritischen Zellen (DC) exprimiert werden und mit dem auf den T-Zellen exprimierten CD28-Molekül interagieren. Diese Interaktion stellt eine Co-Stimulierung (Signal 2) für eine Antigen/MHC/TCR-stimulierte (Signal 1) T-Zelle bereit, wodurch die Vermehrung der T- Zelle und die Effektorfunktion verstärkt wird. B7 interagiert auch mit CTLA4 (CD 152) auf T- Zellen und Untersuchungen, die CTLA4- und B7-Liganden einbeziehen, zeigen, dass die B7- CTLA4-Interaktion eine Antitumor-Immunität und CTL- Vermehrung verstärken kann (Zheng, P. et al., Proc. Natl. Acad. Sei. USA 95(11):6284-6289 (1998)).

B7 wird typischerweise nicht auf Tumorzellen exprimiert, so dass diese keine wirksamen Antigen-präsentierenden Zellen (APCs) für T-Zellen sind. Eine Induktion der B7-Expression würde ermöglichen, dass Tumorzellen wirksamer eine Vermehrung von cytotoxischen T- Lymphozyten und eine Effektorfunktion stimulieren. Eine Co-Stimulierung durch eine Kombination von B7/IL-6/IL-12 zeigte eine Induktion des IFN-gamma- und Thl-Cytokin- Profils in einer T-Zell-Population, was zu einer weiter verstärkten T-Zell-Aktivität f hrt (Gajewski et al, J. Immunol 154:5637-5648 (1995)).

Eine vollständige Aktivierung von cytotoxischen T-Lymphozyten und eine vollständige Effektorfunktion erfordert eine Mitwirkung von T-Helferzellen durch die Interaktion zwischen dem CD40-Liganden auf den T-Helferzellen und dem CD40-Molekül, das von dendritischen Zellen exprimiert wird (Ridge et al., Nature 393:474 (1998), Bennett et al, Nature 393:478 (1998), Schönberger et al, Nature 393:480 (1998)). Der Mechanismus dieses co-stimulierenden Signals betrifft wahrscheinlich die Steigerung der B7- und assoziierten IL- 6/IL-12-Produktion durch die dendritischen Zellen (Antigen-präsentierenden Zellen). Die CD40-CD40L-Interaktion komplementiert so die Interaktionen des Signals 1 (Antigen/MHC- TCR) und des Signals 2 (B7-CD28).

Die Verwendung von anti-CD40-Antiköφern für eine Stimulierung von dendritischen Zellen würde erwartungsgemäß direkt eine Reaktion gegenüber Tumor- Antigenen verstärken, die normalerweise außerhalb des Bereichs einer entzündlichen Reaktion liegen oder von nichtprofessionellen Antigen-präsentierenden Zellen (Tumorzellen) präsentiert werden. In diesen Situationen werden T-Helfer- und B7-co-stimulierende Signale nicht bereitgestellt. Dieser Mechanismus könnte im Zusammenhang mit Therapien verwendet werden, die auf Antigen- gepulsten dendritischen Zellen basieren, oder in Situationen, bei denen T-Helfer-Epitope nicht in bekannten TRA-Vorläufern definiert wurden.

Erfindungsgemäß vorgesehen ist auch eine Verabreichung von Nukleinsäuren, Polypeptiden oder Peptiden. Eine Verabreichung von Polypeptiden und Peptiden kann in an sich bekannter Weise erfolgen. In einer Ausführungsform erfolgt die Verabreichung von Nukleinsäuren durch ex vzvo-Verfahren, d.h. durch Entfernung von Zellen aus einem Patienten, genetische Veränderung der Zellen, um ein Tumor-assoziiertes Antigen einzubauen, und Wiedereinbringung der veränderten Zellen in den Patienten. Dies umfasst im Allgemeinen das Einbringen einer funktioneilen Kopie eines Gens in die Zellen eines Patienten in vitro und die Rückführung der genetisch veränderten Zellen in den Patienten. Die funktioneile Kopie des

Gens steht unter fuhktioneller Kontrolle von regulatorischen Elementen, die eine Expression des Gens in den genetisch veränderten Zellen erlauben. Transfektions- und Transduktionsverfahren sind dem Fachmann bekannt. Erfindungsgemäß vorgesehen ist auch eine Verabreichung von Nukleinsäuren in vivo durch die Verwendung von Vektoren wie Viren und zielgesteuerten Liposomen.

In einer bevorzugten Ausfuhrungsform ist ein viraler Vektor für die Verabreichung einer Nukleinsäure, die für ein Tumor-assoziiertes Antigen kodiert, aus der Gruppe ausgewählt bestehend aus Adenoviren, Adeno-assoziierten Viren, Poxviren, einschließlich Vacciniavirus und attenuierten Poxviren, Semliki-Forest- Virus, Retroviren, Sindbis- Virus und Ty- Virusähnlichen Partikeln. Besonders bevorzugt sind Adenoviren und Retroviren. Die Retroviren sind üblicherweise replikationsdefizient (d.h. sie sind unfähig, infektiöse Partikel zu erzeugen).

Verschiedene Verfahren können eingesetzt werden, um erfmdungsgemäß Nukleinsäuren in Zellen in vitro oder in vivo einzubringen. Solche Verfahren umfassen die Transfektion von Nukleinsäure-CaPO₄-Präzipitaten, die Transfektion von Nukleinsäuren, die mit DEAE assoziiert sind, die Transfektion oder Infektion mit den vorstehenden Viren, die die interessierenden Nukleinsäuren tragen, die Liposomen-vermittelte Transfektion und ähnliches. In bestimmten Ausführungsformen ist eine Steuerung der Nukleinsäure an bestimmte Zellen bevorzugt. In solchen Ausführungsformen kann ein Träger, der für die Verabreichung einer Nukleinsäure an eine Zelle (z.B. ein Retrovirus oder ein Liposom) eingesetzt wird, ein gebundenes Zielsteuerungsmolekül aufweisen. Zum Beispiel kann ein Molekül wie ein Antiköφer, der für ein Oberflächenmembran-Protein auf der Zielzelle spezifisch ist, oder ein Ligand für einen Rezeptor auf der Zielzelle in den Nukleinsäureträger eingebaut oder daran gebunden werden. Bevorzugte Antiköφer umfassen Antiköφer, die selektiv ein Tumor-assoziiertes Antigen binden. Falls eine Verabreichung einer Nukleinsäure durch Liposomen erwünscht ist, können Proteine, die an ein Oberflächenmembran-Protein binden, das mit der Endozytose assoziiert ist, in die Liposomenformulierung eingebaut werden, um eine Zielsteuerung und/oder Aufnahme zu ermöglichen. Solche Proteine umfassen Kapsid-Proteine oder Fragmente davon, die für einen bestimmten Zelltyp spezifisch sind, Antiköφer gegen Proteine, die internalisiert werden, Proteine, die eine intrazelluläre Stelle ansteuern und ähnliches.

Die erfindungsgemäßen therapeutischen Zusammensetzungen können in pharmazeutisch verträglichen Zubereitungen verabreicht werden. Solche Zubereitungen können gewöhnlich pharmazeutisch verträgliche Konzentrationen von Salzen, Pufferstoffen, Konservierungsstoffen, Trägern, ergänzenden immunitätssteigernden Stoffen wie Adjuvanzien, CpG und Cytokine und gegebenenfalls andere therapeutische Wirkstoffe enthalten.

Die erfmdungsgemäßen therapeutischen Wirkstoffe können auf jedem herkömmlichen Weg verabreicht werden, einschließlich durch Injektion oder durch Infusion. Die Verabreichung kann beispielsweise oral, intravenös, intraperitoneal, intramuskulär, subkutan oder transdermal erfolgen. Eine therapeutische Verabreichung von Antiköφern erfolgt vorzugsweise durch ein Lungenaerosol. Die Verabreichung von Antisense-Nukleinsäuren erfolgt vorzugsweise durch langsame intravenöse Verabreichung.

Die erfindungsgemäßen Zusammensetzungen werden in wirksamen Mengen verabreicht. Eine "wirksame Menge" betrifft die Menge, die alleine oder zusammen mit weiteren Dosen eine gewünschte Reaktion oder eine gewünschte Wirkung erzielt. Im Fall einer Behandlung einer bestimmten Erkrankung oder eines bestimmten Zustands, der sich durch die Expression eines oder mehrerer Tumor-assoziierter Antigene auszeichnet, betrifft die gewünschte Reaktion die Hemmung des Krankheitsverlaufs. Dies umfasst die Verlangsamung des Fortschreitens der Erkrankung und insbesondere eine Unterbrechung des Fortschreitens der Erkrankung. Die gewünschte Reaktion bei einer Behandlung einer Krankheit oder eines Zustands kann auch die Verzögerung des Ausbruchs oder eine Verhinderung des Ausbruchs der Krankheit oder des Zustands sein.

Eine wirksame Menge einer erfindungsgemäßen Zusammensetzung wird von dem zu behandelnden Zustand, der Schwere der Krankheit, den individuellen Parametern des Patienten, einschließlich Alter, physiologischer Zustand, Größe und Gewicht, der Dauer der

Behandlung, der Art einer begleitenden Therapie (falls vorhanden), dem spezifischen Verabreichungsweg und ähnlichen Faktoren abhängen.

Die erfindungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzungen sind vorzugsweise steril und enthalten eine wirksame Menge der therapeutisch wirksamen Substanz für die Erzeugung der gewünschten Reaktion oder der gewünschten Wirkung.

Die Dosen der erfindungsgemäßen Zusammensetzungen, die verabreicht werden, können von verschiedenen Parametern wie der Verabreichungsart, dem Zustand des Patienten, dem gewünschten Verabreichungszeitraum, usw. abhängen. Für den Fall, dass eine Reaktion bei einem Patienten bei einer anfänglichen Dosis unzureichend ist, können höhere Dosen (oder effektiv höhere Dosen, die durch einen anderen, stärker lokalisierten Verabreichungsweg erzielt werden) eingesetzt werden.

Im Allgemeinen werden für eine Behandlung oder für eine Erzeugung oder Erhöhung einer Immunreaktion Dosen des Tumor-assoziierten Antigens von 1 ng bis 1 mg, vorzugsweise von 10 ng bis 100 μg formuliert und verabreicht. Falls die Verabreichung von Nukleinsäuren (DNA sowie RNA), die für Tumor-assoziierte Antigene kodieren, erwünscht ist, werden Dosen von 1 ng bis 0,1 mg formuliert und verabreicht.

Die erfindungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzungen werden im Allgemeinen in pharmazeutisch verträglichen Mengen und in pharmazeutisch verträglichen Zusammensetzungen verabreicht. Der Begriff "pharmazeutisch verträglich" betrifft ein nicht- toxisches Material, das nicht mit der Wirkung des aktiven Bestandteils der pharmazeutischen Zusammensetzung wechselwirkt. Solche Zubereitungen können gewöhnlich Salze, Pufferstoffe, Konservierungsstoffe, Träger und gegebenenfalls andere therapeutische Wirkstoffe enthalten. Bei einer Verwendung in der Medizin sollten die Salze pharmazeutisch verträglich sein. Nicht-pharmazeutisch verträgliche Salze können jedoch für die Herstellung pharmazeutisch verträglicher Salze davon verwendet werden und sind erfindungsgemäß umfasst. Solche pharmakologisch und pharmazeutisch verträglichen Salze umfassen in nicht begrenzender Weise diejenigen, die aus den nachstehenden Säuren hergestellt werden: Chlorwasserstoff-, Bromwasserstoff-, Schwefel-, Salpeter-, Phosphor-, Malein-, Essig-, Salicyl-, Citronen-, Ameisen-, Malon-, Bernsteinsäure und ähnliches. Pharmazeutisch verträgliche Salze können auch als Alkalimetall- oder Erdalkalimetallsalze wie Natrium-, Kalium- oder Calciumsalze hergestellt werden.

Eine erfindungsgemäße pharmazeutische Zusammensetzung kann einen pharmazeutisch verträglichen Träger umfassen. Der Begriff "pharmazeutisch verträglicher Träger" betrifft erfmdungsgemäß einen oder mehrere kompatible feste oder flüssige Füllstoffe, Verdünnungsmittel oder Kapselsubstanzen, die für eine Verabreichung an einen Menschen geeignet sind. Der Begriff "Träger" betrifft einen organischen oder anorganischen Bestandteil, natürlicher oder synthetischer Natur, in dem der aktive Bestandteil kombiniert wird, um eine Anwendung zu erleichtern. Die Bestandteile der erfindungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzung sind gewöhnlich derart, dass keine Interaktion auftritt, die die gewünschte pharmazeutische Wirksamkeit wesentlich beeinträchtigt.

Die erfindungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzungen können geeignete Pufferstoffe wie Essigsäure in einem Salz, Citronensäure in einem Salz, Borsäure in einem Salz und Phosphorsäure in einem Salz enthalten.

Die pharmazeutischen Zusammensetzungen können auch gegebenenfalls geeignete Konservierungsstoffe wie Benzalkoniumchlorid, Chlorbutanol, Parabene und Thimerosal enthalten.

Die pharmazeutischen Zusammensetzungen werden gewöhnlich in einer einheitlichen Dosisform dargeboten und können in an sich bekannter Weise hergestellt werden. Erfindungsgemäße pharmazeutische Zusammensetzungen können beispielsweise in Form von Kapseln, Tabletten, Lutschpastillen, Suspensionen, Sirupen, Elixieren oder als Emulsion vorliegen.

Zusammensetzungen, die für eine parenterale Verabreichung geeignet sind, umfassen gewöhnlich eine sterile wässrige oder nicht-wässrige Zubereitung des Wirkstoffs, die vorzugsweise mit dem Blut des Empfängers isotonisch ist. Verträgliche Träger und Lösungsmittel sind beispielsweise Ringer-Lösung und isotonische Natriumchloridlösung. Zusätzlich werden gewöhnlich sterile, fixierte Öle als Lösungs- oder Suspensionsmedium eingesetzt.

Die vorliegende Erfindung wird durch die nachstehenden Abbildungen und Beispiele ausführlich beschrieben, die ausschließlich der Erläuterung dienen und nicht begrenzend zu verstehen sind. Dem Fachmann sind aufgrund der Beschreibung und der Beispiele weitere Ausführungsformen zugänglich, die ebenfalls erfindungsgemäß umfasst sind. Abbildungen:

Abb. 1: Schematische Darstellung der Klonierung von eCT. Die Strategie umfasst die Identifizierung von Kandidaten-Genen (GOI = „Genes of interest") in Datenbanken und das Testen dieser Gene durch RT-PCR.

Abb. 2: Splicing von LDH C. Alternative Splicingereignisse führen zum Fehlen von Exon 3 (SEQ ID NO:2), der beiden Exons 3 und 4 (SEQ ID NO:3), der Exons 3, 6 und 7 (SEQ ID NO:4) bzw. von Exon 7 (SEQ ID NO:5). ORF = Offener Leserahmen, aa = Aminosäure.

Abb. 3: Alignment von möglichen LDH-C-Proteinen. SEQ ID NO:8 und SEQ ID NO:10 stellen frankierte Anteile des Prototyp-Proteins (SEQ ID NO: 6) dar. Die Proteinsequenzen von SEQ ID NO:7, SEQ ID NO:9, SEQ ID NO:l l, SEQ ID NO:12 und SEQ ID NO:13 sind zusätzlich verändert und beinhalten ausschließlich Tumor-spezifische Epitope (fett gedruckt). Das katalytische Zentrum ist gerahmt.

Abb. 4: Quantifizierung von LDH C in verschiedenen Geweben durch Real-Time-PCR.

Es wurden keine Transkripte in Normalgeweben außer Testis, allerdings signifikante Expressionslevel in Tumoren nachgewiesen.

Abb. 5: Exon-Zusammensetzung von TPTE-Varianten. Erfindungsgemäß wurden Splicevarianten identifiziert (SEQ ID NO:20, SEQ ID NO:21, SEQ ID NO:54, SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56, SEQ ID NO:57), die in testikulärem Gewebe und Tumoren exprimiert werden und Leserasterverschiebungen und somit veränderte Sequenzbereiche aufweisen.

Abb. 6: Alignment der möglichen TPTE-Proteine. Alternative Splicing-Ereignisse resultieren in Veränderungen des kodierten Proteins, wobei das Leseraster grundsätzlich erhalten bleibt. Die putativen transmembrandomänen sind fettgedruckt, die katalytische Domäne ist eingerahmt.

Abb. 7: Alignment von TSBP- Varianten auf Nukleotidebene. Die Unterschiede in den Nukleotidsequenzen der erfindungsgemäß aufgefundenen TSBP- Varianten (SEQ ID NO:31, SEQ ID NO:32, SEQ ID NO:33) zu der bekannten Sequenz (NM_006781, SEQ ID NO:29) sind fett gedruckt.

Abb. 8: Alignment von TSBP-Varianten auf Proteinebene. Leserasterverschiebungen führen bei den Proteinen, die durch die erfindungsgemäß aufgefundenen TSBP-Varianten kodiert werden (SEQ ID NO:34, SEQ ID NO:35, SEQ ID NO:36), zu substantiellen Unterschieden zu dem vorbeschriebenen Protein (SEQ ID NO:30, NM_006781) und sind durch Fettdruck gekennzeichnet.

Abb. 9: RT-PCR für MS4A12. In den getesteten Geweben konnte eine Expression nur in Testis, Kolon und kolorektalen Karzinomen (Kolon-Ca's) nachgewiesen werden. Von den gezeigten 6 Lebergewebsproben wurde in einer ein positiver Nachweis für MS4A12 geführt, da diese infiltriert ist durch eine Metastase eines Kolonkarzinoms. Spätere Untersuchungen zeigten auch eine deutliche Expression In Kolonkarzinim-Metastasen

Abb. 10: RT-PCR für BRCO1. In Brusttumoren ist BRCO1 im Vergleich zu der Expression in normalem Brustdrüsengewebe deutlich überexprimiert.

Abb 11: RT-PCR für MORC, TPX1, LDHC, SGY-1. Untersuchung verschiedener Normalgewebe zeigt Expression lediglich in Testis (1 Haut, 2 Dünndarm, 3 Kolon, 4 Leber, 5 Lunge, 6 Magen, 7 Brust, 8 Niere, 9 Ovar, 10 Prostata, 11 Schilddrüse, 12 Leukozyten, 13 Thymus, 14 Negativ-Kontrolle, 15 Testis). Die Untersuchung von Tumoren (1-17 Lungentumoren, 18-29 Melanome, 30 Negativ-Kontrolle, 31 Testis) zeigt ektope Expression in diesen in unterschiedlichen Frequenzen für die einzelnen eCT.

Abb 12: Mitochondriale Lokalisation von LDHC in der MCF-7 Brustkrebs-Zelllinie.

MCF-7 Zellen wurden transient mit einem LDHC-Expressions-Plasmid transfiziert. Das Antigen wurde mit LDHC-spezifischen Antiköφern detektiert und zeigte eine deutliche Kolokalisation mit dem mitochondrialen Atmungsketten-Enzym Cytochome C-Oxidase.

Abb 13: Prädizierte Topologie von TPTE und subzelluläre Lokalisation an der Zelloberfläche von MCF-7 Zellen. Das linke Schema zeigt die 4 putativen Trabsmembran- Domänen (Pfeile) von TPTE. MCF-7 Zellen wurden transient mit einem TPTE-Expressions- Plasmid transfiziert. Das Antigen wurde mit TPTE-spezifischen Antikörpern detektiert und zeigte eine deutliche Kolokalisation mit an der Zelloberfläche lokalisierten MHC I Molekülen.

Abb. 14: MS4A12 Lokalisation an der Zellmembran. Tumorzellen wurden transient mit einem GFP-getaggten MS4A12-Konstrukt transfiziert und zeigten in der konfokalen Immunfluoreszenz-Mikrskopie eine komplette Kolokalisation mit Plamamembranmarkern.

Abb. 15: Western Blot Nachweis von LDHC in Normalgeweben. Die Expression von LDHC ist nur in Testis nachweisbar, alle anderen getesteten Normalgewebe sind negativ. 1- Testis, Normalgewebe, 2-Hautnormalgewebe, 3-Mammanormalgewebe, 4- Lebernormalgewebe, 5-Milznormalgewebe, 6-Kolonnormalgewebe, 7-Lungenormalgewebe, 8 -Nierenormalgewebe, 9 -Lymphknotennormalgewebe

Abb. 16: Expression von LDHC in der HCT116 DKO Zellinie. HCT116 P und HCT116 DKO wurden mit einem LDHC-spezifischen Antiköφer gefärbt. Endogene LDHC ist nur in HCT116 DKO Zellen nachweisbar.

Abb. 17: Mitochondriale Lokalisation von LDHC in der MCF-7 Brustkrebs-Zelllinie.

Abb. 18: Membranlokalisation von heterolog und endogen exprimierter TPTE in Zellinien. (Links) NIH3T3 Zellen wurden transient mit einem TPTE-Expressions-Plasmid transfiziert. TPTE wurde mit spezifischen Antiköφern detektiert und zeigte eine deutliche Kolokalisation mit an der Zelloberfläche lokalisierten MHC I Molekülen. (Rechts) Endogene TPTE in SK-Mel 37 Zellen wurde mit einem spezifischen Antiköφer detektiert und zeigt deutliche Membranlokalisation.

Abb. 19: Quantifizierung der TPTE mRNA Expression in verschiedenen Geweben durch Real-Time PCR. Expression in Normalgeweben ist nur in Testis nachweisbar. Signifikante Expressionslevel finden sich auch in Tumoren und Tumorzellinien. Abb. 20: Nachweis der Antiköper-Spezifität. Schnitte von Testisgewebe wurden mit TPTE- spezifischem Antiköφer gefärbt. Der spezifische Nachweis von TPTE wird durch Blocken (rechts) des Antiköφers mit dem zur Immunisierung eingesetzten Peptid verhindert.

Abb. 21: Immunhistochemischer Nachweis von TPTE in Bronchialkarzinomen. Schnitte von Bronchialkarzinomen wurden mit TPTE-spezifischem Antiköφer gefärbt. TPTE wird homogen im gesamten Tumor exprimiert und ist an der Zellmembran lokalisiert.

Abb. 22: Nachweis der TPTE-Lokalisation in vitalen Zellen. NIH3T3 Zellen wurden transient mit einem TPTE-Expressions-Plasmid transfiziert und mittels Time-Lapse Mikroskopie analysiert. Die Lokalisation von TPTE an die Membran von Zellprotrusionen und Pseudoposien hat die unmittelbare Refraktion der betreffenden Membranbereiche zur Folge.

Abb. 23: TPTE verstärkt Zellmigration in chemotaktischen Gradienten. (Links) Schematische Darstellung des Boyden-Kammer Assays. NIH3T3/c-erbB-2 Zellen wurden mit TPTE-eGFP transfiziert und die Migration der Zellen im Vergleich mit nicht-transfizierten und mit Leer-pEGFP- Vektor transfizierten Zellen bestimmt. (Rechts oben) Die Expression von TPTE f hrt zu einer um den Faktor 4-5 erhöhten Migration der Zellen bei Einsatz von 10%FCS als Chemotaktikum. (Recht unten) Die Expression von TPTE fuhrt schon bei sehr geringen Konzentrationen von PDGF zu einer signifikanten Steigerung der Migration.

Abb. 24: Expression TPTE in Tumoren ist assoziiert mit Metastasierung. Statistische Auswertung der TNM- Stadien von 58 Tumoφroben in Korrelation mit der Expression von TPTE zeigt, dass TPTE positive Tumoren signifankt häufiger lymphogen und hämatogen metastasieren.

Abb. 25: Expression von TSBP in der HCT116 DKO Zellinie. HCT116 P und HCT116 DKO wurden mit einem TSBP-spezifischen Antiköφer gefärbt. Endogenes TSBP ist nur in HCT116 DKO Zellen nachweisbar und ist mit der Kernmembran assoziiert.

Abb. 26: Nachweis der MS4A12 mRNA Expression in Geweben durch RT-PCR und Real-Time PCR. Die Expression von MS4A12 in Normalgeweben ist beschränkt auf Kolon, Rektum, terminales Ileum und Testis. 80% der Kolonkarzinome und 80% der Kolonkarzinommetastasen zeigen signifikante Expressionslevel von MS4A12.

Abb.27: Western Blot Nachweis von MS4A12 in Kolon und Kolonkarzinomen. Die spezifische Bande ist normalem Kolongewebe und in einigen Kolonkarzinomen nachweisbar. M-MagicMark (Invitrogen), 1 -Kolonnormalgewebe, 2-6-Kolontumorgewebe

Abb. 28: MS4A12 Lokalisation an der Zellmembran. Tumorzellen wurden transient mit MS4A12-eGFP transfiziert und zeigen nach Färbung mit einem MS4A12-spezifischen Antiköφer in der konfokalen Immunfluoreszenz-Mikroskopie Lokalisation an der Plasmamembran.

Abb. 29: Immunhistoch emischer Nachweis von MS4A12 in Kolon und Kolonkarzinomen. Gewebeschnitte wurden mit einem MS4A12-spezifischen Antiköφer gefärbt. In normalem Kolon wird MS4A12 nur in den apikalen Enterozyten exprimiert. In Kolonkarzinomen ist die die Expression von MS4A12 in allen Tumorzellen nachweisbar.

Abb. 30: Quantifizierung der BRCOl mRNA Expression in verschiedenen Geweben durch Real-Time PCR. Die Expression von BRCOl in Normalgeweben ist beschränkt auf Brust und Testis. Signifikante Expressionlevel von BRCOl sind in allen untersuchten Mammakarzinomen nachweisbar. 50% der Tumoren zeigen eine Überexpression von BRCOl im Vergleich mit exprimierenden Normalgeweben.

Abb. 31: Überexpression von BRCOl in Mammakarzinomen. Real-Time PCR Untersuchung von BRCOl in Mammakarzinomen und dem adjazenten Normalgeweben zeigt eine Überexpression von BRCOl in 50% der Mammakarzinome.

Abb. 32: Quantifizierung der PCSC mRNA Expression in verschiedenen Geweben durch Real-Time PCR. Die Expression von PCSC in Normalgeweben ist beschränkt auf Kolon, Rektum und terminales Ileum. Expression von PCSC ist in allen Kolonkarzinomen nachweisbar. 85% der Kolonkarzinommetastasen zeigen eine signifikante Überexpression von PCSC im Vergleich mit den Primärtumoren. Abb. 33: Nachweis der Induzierbarkeit von TPTE durch genomische Demethylierung.

Real-Time RT-PCR Analyse der TPTE-Expression in nicht-exprimierenden Zellinien BT549 und HCTl 16 nach Behandlung der Zellen mit 2μM bzw. lOμM 5-Aza-2'-deoxycytidin und in DNA-Methyltransferase defizienten HCTl 16 Zellen.

Abb. 34: Western Blot Nachweis von TPTE in Normalgeweben und Tumorzellinien. Die Expression von LDHC ist nur in Testis und Tumorzellinien (SK-Mel-37, LCLC-107, PC-3) nachweisbar, alle anderen getesteten Normalgewebe sind negativ. Die Spezifität des Antiköφers wird durch den Nachweis von TPTE in transfizierten NIH3T3 Zellen (TPTE- pcDNA3.1) bestätigt.

Abb. 35: TPTE kolokalisiert mit PIP4.5. TPTE transfizierte NIH3T3/c-erb-2 Zellen wurden mit PH-eGFP von PLC-deltal kotransfiziert und mit TPTE-spezifischem Antiköφer gefärbt. In der Überlagerung zeigt sich eine eindeutige Kolokalisation von TPTE mit PLC-deltal -PH- eGFP als Marker für PIP4,5-

Abb. 36: Knock-down der TPTE-Expression in PC-3 Zellen durch RNAi. PC-3 Zellen wurden mit lμM siRNA spezifisch für TPTE elektroporiert. Nach 24h wurde die mRNA- Expression mittels Real-Time RT-PCR quantifiziert. Als Kontrolle dienten nicht- elektroporierte Zellen und Zellen, die mit DsRed siRNA elektroporiert wurden.

Abb. 37: Verminderung der Zellmigration von PC-3 Zellen nach Elektroporation mit TPTE-siRNA. 48h nach Elektropration mit lμM TPTE-siRNA zeigt sich eine relevante Abnahme der Zellmigration im Boyden-Kammer Assay.

Abb. 38: Region von Position 121 bis 540 der in SEQ ID NO:822 des Sequenzprotokolls gezeigten Sequenz. Beispiele:

Material und Methoden

Die Begriffe "in silico", "elektronisch" und "virtuell klonieren" beziehen sich rein auf die Nutzung von auf Datenbanken beruhenden Verfahren, mit denen auch Labor-experimentelle Vorgänge simuliert werden können.

Alle anderen Begriffe und Termini sind, falls nicht explizit anders definiert, so verwendet, wie sie der Fachmann versteht. Die genannten Techniken und Methoden erfolgen in an sich bekannter Weise und sind z.B. in Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2. Auflage (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N. Y beschrieben. Alle Verfahren, die die Verwendung von Kits und Reagenzien einschließen, sind entsprechend den Angaben der Hersteller durchgeführt.

Datamining-basierte Strategie zur Ermittlung von eCT (elektronisch Monierte Cancer/Testis-Gene)

Zwei in silico Strategien nämlich GenBank-Schlagwort-Suche und der cDNAxProfiler wurden kombiniert (Abb. 1). Es wurde unter Nutzung des ENTREZ Search and Retrieval Systems des NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Entrez) eine Suche nach Kandidaten-Genen in der GenBank durchgeführt, die annotiert sind als spezifisch exprimiert in testikulärem Gewebe (Wheeler et al., Nucleic Acids Research 28:10-14, 2000).

Durch Suchabfragen mit den Schlagworten "testis-specifϊc gene", "sperm-specific gene", "spermatogonia-specific gene" wurden Kandidatengene (GOI, genes of interest) aus den Datenbanken herausextrahiert. Die Suche wurde auf einen Teil der Gesamtinformation dieser Datenbanken eingeschränkt, indem als Limits "homo sapiens" für den Organismus und "mRNA" für die Molekülart eingesetzt wurden.

Die Liste der gefundenen GOI wurde kuratiert, indem unterschiedliche Bezeichnungen für dieselbe Sequenz ermittelt und solche Redundanzen behoben wurden. Alle Kandidatengene, die sich durch die Schlagwort- Suche ergaben, wurden wiederum durch das Verfahren des "electronic Northern" (eNorthern) bezüglich ihrer Gewebeverteilung untersucht. Der eNorthern basiert darauf, dass die Sequenz eines GOI gegenüber einer EST- (expressed sequence tag) Datenbank (Adams et al, Science 252:1651, 1991) abgeglichen wird (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST). Zu jedem EST, das sich als homolog zum eingegebenen GOI ergibt, lässt sich die Gewebeherkunft ermitteln und durch die Summe aller ESTs auf diese Weise eine vorläufige Einschätzung der Gewebeverteilung des GOI erreichen. Nur diejenigen GOI wurden weiteren Untersuchungen zugeführt, die keine Homologien zu EST aus nicht-testikulären Normalgeweben mit Ausnahme von Plazenta und fetalem Gewebe hatten. Für dies Beurteilung wurde auch berücksichtigt, dass es falsch-annotierte cDNA Banken in der öffentlichen Domäne gibt (Scheurle et al., Cancer Res. 60:4037-4043, 2000) (www.fau.edu/cmbb/publications/cancergenes6.htm).

Als zweites Datamining- Verfahren wurde der cDNA xProfiler des Cancer Genome Anatomy Projekts des NCBI (http://cgap.nci.nih.gov/Tissues/xProfiler) genutzt (Hillier et al., Genome Research 6:807-828, 1996; Pennisi, Science 276:1023-1024, 1997). Dieser erlaubt Pools von in Datenbanken abgelegten Transkriptomen durch logische Operatoren in Beziehung zueinander zu setzen. Wir haben einen Pool A definiert, dem alle aus Testis hergestellten Expressionsbibliotheken, unter Ausschluss von gemischten Bibliotheken zugeordnet wurden. Dem Pool B wurden alle cDNA-Bibliotheken zugeordnet, die von Normalgeweben mit Ausnahme von Testis, Ovar und Fetalgewebe hergestellt waren. Generell wurden alle cDNA- Banken unabhängig vom zugrundeliegenden Herstellungsverfahren genutzt, allerdings lediglich solche mit einer Mächtigkeit > 1000 zugelassen. Mittels des BUT NOT Operators wurde Pool B digital von Pool A subtrahiert. Auch das Set der auf diese Weise gefundenen GOI wurde eNorthern-Studien unterzogen, sowie durch eine Literaturrecherche abgesichert. Dieses kombinierte Datamining schließt alle etwa 13 000 Vollänge-Gene in der öffentlichen Domäne ein und prädiziert aus diesen insgesamt 140 Gene mit potentieller Testis-spezifischer Expression. Unter diesen waren 25 bereits bekannte Gene der CT-Genklasse, was die Effizienz unserer Strategie unterstreicht.

Alle anderen Gene wurden zunächst durch spezifische RT-PCR in Normalgeweben evaluiert. Alle GOI, die sich als in nicht-testikulären Normalgeweben exprimiert erwiesen, hatten als Falsch-Positive zu gelten und wurden aus weiteren Untersuchungen ausgeschlossen. Die verbliebenen wurden in einem großen Panel an verschiedensten Tumorgeweben untersucht. Die unten dargestellten Antigene erwiesen sich dabei als ektop in Tumorzellen aktiviert.

RNA-Extraktion, Herstellung von poly-d(T) geprimter cDNA und RT-PCR Analyse Gesamt-RNA aus nativem Gewebematerial wurde unter Verwendung von Guanidium- isothiocyanate als chaotrophem Agens extrahiert (Chomczynski & Sacchi, Anal. Biochem. 162:156-9, 1987). Nach Extraktion mit saurem Phenol und Fällung mit Isopropanol wurde die RNA in DEPC-behandeltem Wasser gelöst. Aus 2-4 μg Gesamt-RNA wurde in einem 20μl Reaktionsansatz mittels Superscript II (Invitrogen) entsprechend den Angaben des Herstellers eine Erststrang-cDNA-Synthese durchgeführt. Als Primer wurde ein dT(18) Oligonukleotid verwendet. Integrität und Qualität der cDNA wurden durch Amplifikation von p53 in einer 30 Zyklen-PCR (sense CGTGAGCGCTTCGAGATGTTCCG, antisense CCTAACCAGCTGCCCAACTGTAG, Hybridisierungstemperatur 67°C) übeφriift.

Es wurde ein Archiv aus Erststrang-cDNAs aus einer Reihe von Normalgeweben und Tumorentitäten hergestellt. Für Expressionsstudien wurden 0,5 μl dieser cDNAs in einem 30μl Reaktionsansatz mit GOI-spezifischen Primern (siehe unten) und 1 U HotStarTaq DNA Polymerase (Qiagen) amplifiziert. Der Reaktionsansatz enthielt jeweils 0,3 mM dNTPs, je 0,3 μM jeden Primers und 3 μl 10 x Reaktionspuffer.

Die Primer wurden so ausgewählt, dass sie in 2 verschiedenen Exons liegen und die Beseitigung der Interferenz durch kontaminierende genomische DNA als Grund für falsch positive Resultate wurde durch Testen von nicht revers transkribierter DNA als Matritze bestätigt. Nach 15 Minuten bei 95°C zur Aktivierung der HotStarTaq DNA Polymerase wurden 35 Zyklen PCR durchgeführt (1 min 94°C, 1 min jeweilige Hybridisierungstemperatur, 2 min 72°C und abschließende Elongation bei 72°C für 6 min). 20μl dieser Reaktion wurden auf einem mit Ethidiumbromid gefärbten Agarosegel aufgetrennt und analysiert.

Folgende Primer wurden für die Expressionsanalyse der entsprechenden Antigene bei der angegebenen Hybridisierungstemperatur verwendet.

LDH-C (67°C) sense TGCCGTAGGCATGGCTTGTGC, antisense CAACATCTGAGACACCATTCC

TPTE (64°C) sense TGGATGTCACTCTCATCCTTG, antisense CCATAGTTCCTGTTCTATCTG

TSBP (63 °C) sense TCTAGCACTGTCTCGATCAAG, antisense TGTCCTCTTGGTACATCTGAC MS4A12 (66°C) sense CTGTGTCAGCATCCAAGGAGC, antisense TTCACCTTTGCCAGCATGTAG

BRCOl (60°C) sense CTTGCTCTGAGTCATCAGATG, antisense CACAGAATATGAGCCATACAG

TPX1 (65°C) sense TTTTGTCTATGGTGTAGGACC, antisense GGAATGGCAATGATGTTACAG

Herstellung von Random-Hexamer-geprimter cDNA und quantitative Real-Time-PCR

Die Expression von LDHC wurde mittels Real-Time-PCR quantifiziert. Das Prinzip der quantitativen Real-Time-PCR mit dem ABI PRISM Sequence Detection System (PE Biosystems, USA) nutzt die 5'-3' Exonuklease- Aktivität der Taq DNA Polymerase zur direkten und spezifischen Detektion von PCR-Produkten durch Freisetzung von Fluoreszenz-Reporterfarbstoffen. Neben Sense- und Antisense-Primern wird bei der PCR eine doppelt fluoreszenz-markierte Sonde (TaqMan-Probe) eingesetzt die an eine Sequenz des PCR-Produkts hybridisiert. Die Sonde ist 5' mit einem Reporterfarbstoff (z.B. FAM) und 3' mit einem Quencherfarbstoff (z.B. TAMRA) markiert. Ist die Sonde intakt, supprimiert die räumliche Nähe von Reporter zu Quencher die Emission der Reporterfluoreszenz. Hybridisiert die Sonde während der PCR an das PCR-Produkt, wird sie durch die 5'-3' Exonuklease-Aktivität der Taq DNA Polymerase gespalten und die Suppression der Reporterfluorszenz aufgehoben. Das Ansteigen der Reporterfluoreszenz als Folge der Zielamplifikation wird nach jedem PCR-Zyklus gemessen und zur Quantifizierung genutzt. Die Expressionsquantifizierung des Zielgens erfolgt absolut oder relativ zur Expression eines Kontrollgens mit konstanter Expression in den zu untersuchenden Geweben. Die Expression von LDHC wurde nach Normalisierung der Proben gegen 18s RNA als sog. Housekeeping- Gen mittels der ΔΔ- Methode (PE Biosystems, USA) berechnet. Die Reaktionen wurden in Duplex- Ansätzen durchgeführt und in Duplikaten bestimmt. Die Synthese der cDNA erfolgte mit dem High Capacity cDNA Archive Kit (PE Biosystems, USA) unter Verwendung von Hexamer-Primern nach Angaben des Herstellers. Jeweils 5 μl der verdünnten cDNA wurden in 25 μl Gesamtvolumen für die PCR eingesetzt: sense-Primer (GGTGTCACTTCTGTGCCTTCCT) 300 nM; antisense-Primer

(CGGCACCAGTTCCAACAATAG) 300 nM; TaqMan-Probe

(CAAAGGTTCTCCAAATGT) 250 nM; sense-Primer 18s RNA 50 nM; antisense-Primer 18s RNA 50 nM; 18 s RNA-Probe 250 nM; 12,5 μl TaqMan Universal PCR Master Mix; anfängliche Denaturierung 95°C (10 min); 95°C (15 sec); 60°C (1 min); 40 Zyklen. Durch die Amplifikation eines 128 bp-Produkts über die Grenze von Exon 1 und Exon 2 wurden alle beschriebenen Splicevarianten von LDHC in die Quantifizierung einbezogen.

Die Expression von TPTE, MS4A12, PCSC und BRCOl wurde ebenfalls mittels Real-Time- PCR quantifiziert, jedoch wurden die PCR-Produkte mit SYBR-Green als Reporterfarbstoff detektiert. Die Reporterfluoreszenz von SYBR-Green ist in Lösung supprimiert und erst nach Bindung an dopplesträngige DNA-Fragmente ist der Farbstoff aktiv. Das Ansteigen der SYBR-Green Fluoreszenz als Folge der spezifischem Amplifikation mittels GOI-spezifische Primern nach jedem PCR Zyklus wird zur Quantifizierung genutzt. Die Expressionsquantifizierung des Zielgens erfolgt absolut oder relativ zur Expression eines Kontrollgens mit konstanter Expression in den zu untersuchenden Geweben. Die Expression von LDHC wurde nach Normalisierung der Proben gegen 18s RNA als sog. Housekeeping- Gen mittels der ΔΔ- Methode (PE Biosystems, USA) berechnet. Die Reaktionen wurden in Duplex-Ansätzen durchgeführt und in Triplikaten bestimmt. Verwendet wurde das QuantiTect SYBR-Green PCR Kit (Qiagen, Hilden) nach Angaben des Herstellers. Die Synthese der cDNA erfolgte mit dem High Capacity cDNA Archive Kit (PE Biosystems, USA) unter Verwendung von Hexamer-Primern nach Angaben des Herstellers. Jeweils 5 μl der verdünnten cDNA wurden in 25 μl Gesamtvolumen für die PCR eingesetzt: sense-Primer 300nM, antisense-Primer 300nM; initiale Denaturierung 95° 15 min; 95° 30 sec; Annealing 30 sec; 72° 30 sec; 40 Zyklen.

TPTE (62°) sense GAGTCTACAATCTATGCAGTG, antisense CCATAGTTCCTGTTCTATCTG

MS4A12 (65°) sense CTGTGTCAGCATCCAAGGAGC, antisense TTCACCTTTGCCAGCATGTAG

PCSC (59°) sense AGAATAGAATGTGGCCTCTAG, antisense TGCTCTTACTCCAAAAAGATG

BRCOl (60°) sense CTTGCTCTGAGTCATCAGATG, antisense CACAGAATATGAGCCATACAG

Klonierung und Sequenzanalyse Klonierung von Vollängen bzw. Genfragmenten erfolgte nach gängigen Methoden. Zur Ermittlung der Sequenz wurden entsprechende Antigene mittels der Proofreading-Polymerase pfu (Stratagene) amplifiziert. Nach Beendigung der PCR wurde Adenosin mittels HotStarTaq DNA Polymerase an die Enden des Amplikons ligiert, um die Fragmente entsprechend den Angaben des Herstellers in den TOPO-TA Vektor zu klonieren. Die Sequenzierung wurde durch einen kommerziellen Service durchgeführt. Die Sequenzen wurden mittels gängiger Prädiktionsprogramme und Algorithmen analysiert.

Western blot Zellen aus Zellkultur (endogene Expression des Zielgens oder Synthese des Zielproteins nach Transfektion eines Expressionsvektors, der das Zielprotein kodiert) oder Gewebeproben, die das Zielprotein enthalten könnten, werden in einer l%igen SDS Lösung lysiert. Das SDS denaturiert dabei die im Lysat enthaltenen Proteine. Die Lysate eines experimentellen Ansatzes werden abhängig von der erwarteten Proteingröße auf 8-15 %igen denaturierenden Polyacrylamidgelen (enthalten 1% SDS) der Größe nach elekrophoretisch aufgetrennt (SDS- Polyacrylamid Gelelektrophorese, SDS-PAGE). Anschließend werden die Proteine durch das semi-dry Elektroblot Verfahren (Biorad) auf Nitrozellulose Membran (Schleicher & Schüll) transferiert, auf der das gewünschte Protein nachgewiesen werden kann. Dazu wird die Membran zunächst blockiert (z.B. mit Milchpulver) und anschließend mit dem spezifischen Antiköφer in einer Verdünnung von 1:20-1:200 (je nach Spezifität des Antiköφers) für 60 Minuten inkubiert. Nach einem Waschschritt wird die Membran mit einem zweiten, mit einem Marker (z.B. Enzyme wie Peroxidase oder alkalische Phosphatase) gekoppelten Antiköφer inkubiert, der den ersten Antiköφer erkennt. Nach einem weiteren Waschschritt wird anschließend das Zielprotein in einer Färb- oder ChennTumineszenz-Reaktion auf der Membran mittels einer Enzymreaktion sichtbar gemacht (z.B. ECL, Amersham Bioscience). Das Ergebnis wird durch Aufnahme mit einer geeigneten Kamera dokumentiert.

Immunfluoreszenz

Es werden Zellen etablierter Zelllinien benutzt, die entweder das Zielprotein endogen synthetisieren (Nachweis der RNA in der RT-PCR oder des Proteins im Western blot) oder aber vor der IF mit Plasmid-DNA transfiziert worden sind. Zur Transfektion von Zelllinien mit DNA sind die verschiedensten Methoden (z.B. Elektroporation, Liposomen basierte Transfektion, Calciumphosphatpräzipitation) gut etabliert (z.B. Lemoine et al. Methods Mol Biol. 1997; 75: 441-7). Das transfizierte Plasmid kann bei der Immunfluoreszenz das unmodifizierte Protein kodieren oder aber auch unterschiedliche Aminosäuremarker an das Zielprotein koppeln. Die wichtigsten Marker sind z.B. das fluoreszierende „green fluorescent protein" (GFP) in seinen verschiedenen differentiell fluoreszierenden Formen, kurze Peptidsequenzen von 6-12 Aminosäuren, für die hoch affine und spezifische Antiköφer zur Verfügung stehen. Zellen, die das Zielprotein synthetisieren, werden mit Paraformaldehyd; Saponin oder Methanol fixiert. Anschließend können die Zellen bei Bedarf durch Inkubation mit Detergenzien (z.B. 0,2% Triton X-100) permeabilisiert werden. Nach der Fixierung/Permeabilisierung werden die Zellen mit einem primären Antiköφer inkubiert, der gegen das Zielprotein oder gegen einen der gekoppelten Marker gerichtet ist. Nach einem Waschschritt wird der Ansatz mit einem zweiten, mit einem fluoreszierenden Marker (z.B. Fluorescin, Texas Red, Dako) gekoppelten Antiköφer inkubiert, der an den ersten Antiköφer bindet. Anschließend werden die so markierten Zellen mit Glycerin überschichtet und mit Hilfe eines Fluoreszenzmikroskops nach den Angaben des Herstellers analysiert. Spezifische Fluoreszenzemissionen werden dabei, abhängig von den eingesetzten Substanzen, durch spezifische Anregung erreicht. Die Analyse erlaubt in der Regel die sichere Lokalisation des Zielproteins, wobei zur Bestätigung der Antiköφerqualität und des Zielproteins in Doppelfärbungen zusätzlich zum Zielprotein auch die gekoppelten Aminosäuremarker oder andere Markeφroteine angefärbt werden, deren Lokalisation bereits in der Literatur beschrieben ist. Ein Sonderfall stellt das GFP und seine Derivate dar, dass direkt angeregt werden kann und selbst fluoresziert, so dass zum Nachweis keine Antiköφer benötigt werden.

Immunhistochemie

Die IHC dient im einzelnen dazu, um (1) die Menge an Zielprotein in Tumor und Normalgeweben abschätzen zu können, (2) zu analysieren, wie viele Zellen in Tumor und gesundem Gewebe das Zielgen synthetisieren, (3) den Zelltyp in einem Geweben (Tumor, gesunde Zellen) zu definieren, in dem das Zielprotein nachweisbar ist. Je nach individuellem Antiköφer müssen unterschiedliche Protokolle verwendet werden (z.B. „Diagnostic Immunohistochemistry by David J., MD Dabbs ISBN: 0443065667" oder in „Microscopy, Immunohistochemistry, and Antigen Retrieval Methods: For Light and Electron Microscopy ISBN: 0306467704").

Formalin fixierte (andere Fixierungen: z.B. Methanol) und in Paraffin eingebettete Gewebestücke mit einer Dicke von ca. 4μm werden auf einem Glasträger aufgebracht und z.B. mit Xylene deparaffiniert. Die Proben werden mit TBS-T gewaschen in Serum blockiert. Anschließend erfolgt die Inkubation mit dem ersten Antiköφer (Verdünnung: 1 :2 bis 1 :2000) für 1-18 Stunden, wobei in der Regel affmitätsgereinigete Antiköφer verwendet werden. Nach einem Waschschritt erfolgt eine ca. 30-60 minütige Inkubation mit einem zweiten mit Alkalischer Phosphatase (alternativ: z.B. Peroxidase) gekoppelten Antikörper, der gegen den ersten Antiköφer gerichtet ist. Anschließend erfolgt eine Farbreaktion unter Verwendung der Alkalischen Phosphatase (Referenzen: Shi et al. J Histochem Cytochem 1991 39: 741-748; Shin et al. Lab Invest. 1991 64: 693-702). Zum Nachweis der Antiköφerspezifität kann die Reaktion durch vorherige Zugabe des Immunogens blockiert werden.

Immunisierung (Siehe auch Monoclonal Antibodies: A Practical Approach by Philip Shepherd, Christopher Dean isbn 0-19-963722-9; Antibodies: A Laboratory Manualby Ed Harlow, David Lane ISBN: 0879693142; Using Antibodies : A Laboratory Manual : Portable Protocol NO. by Edward Harlow, David Lane, Ed Harlow ISBN: 0879695447). Im Folgenden wird der Herstellungsprozess von Antiköφern kurz beschrieben, Details sind den zitierten Publikationen zu entnehmen. Zunächst werden Tiere (z.B. Kaninchen) durch eine erste Injektion des gewünschten Zielproteins immunisiert. Durch eine zweite oder dritte Immunisierung innerhalb eines definierten Zeitraums (ca. 2-4 Wochen nach der vorangegangenen Immunisierung) lässt sich die Immunantwort des Tieres gegen das Immunogen verstärken. Wiederum nach verschiedenen definierten Zeitabständen (1. Blutung nach 4 Wochen, anschließend ca. alle 2 Wochen mit insgesamt bis zu 5 Entnahmen) wird den Tieren Blut entnommen und daraus ein Immunserum gewonnen.

Die Immunisierung der Tiere erfolgt in der Regel über eines von vier gut etablierte Verfahren, wobei auch andere Verfahren existieren. Immunisiert werden kann dabei mit Peptiden, die für das Zielprotein spezifisch sind, dem gesamten Protein, mit extrazellulären Teilsequenzen eines Proteins, das experimentell oder über Prediktionsprogramme identifiziert werden kann. (1) Im ersten Fall werden an KLH (keyhole limpet hemocyanin) konjugierte-Peptide (Länge: 8-12 Aminosäuren) über ein standardisiertes in vitro Verfahren synthetisiert und diese Peptide zur Immunisierung verwendet. In der Regel erfolgen 3 Immunisierungen mit einer Konzentration von 5-1000 μg/Immunisierung. Die Durchführung der Immunisierung kann auch als Service von Dienstleistern erfolgen. (2) Alternativ kann die Immunisierung durch rekombinante Proteine erfolgen. Dazu wird die klonierte DNA des Zielgens in einen Expressionsvektor kloniert und das Zielprotein analog den Bedingungen des jeweiligen Herstellers (z.B. Röche Diagnostics, Invitrogen, Clontech, Qiagen) z.B. zellfrei in vitro, in Bakterien (z.B. E. coli), in Hefe (z.B. S. pombe), in Insektenzellen oder in mammalen Zellen synthetisiert. Nach Synthese in einem der Systeme wird das Zielprotein aufgereinigt, die Aufreinigung erfolgt dabei in der Regel über standardisierte chromatografische Methoden. Dabei können auch Proteine für die Immunisierung verwendet werden, die über einen molekularen Anker als Hilfsmittel zur Reinigung verfügen (z.B. His-Tag, Qiagen; FLAG-Tag, Röche Diagnostics; Gst Fusionsproteine). Eine Vielzahl von Protokollen befinden sich z.B. in den „Current Protocols in Molecular Biology (John Wiley & Sons Ltd, Wiley InterScience). (3) Falls eine Zelllinie zur Verfügung steht, die das gewünschte Protein endogen synthetisiert, kann auch diese Zelllinie zur Herstellung des spezifischen Antiserums verwendet werden. Die Immunisierung erfolgt dabei in 1-3 Injektionen mit jeweils ca. 1-5 x lO⁷ Zellen. (4) Die Immunisierung kann auch durch Injektion von DNA (DNA Immunisierung) erfolgen. Dazu wird das Zielgen zunächst in einen Expressionsvektor kloniert, so dass die Zielsequenz unter der Kontrolle eines starken eukaryontischen Promotors steht (z.B. CMV Promotor). Anschließend werden 5-100 μg DNA als Immunogen mit einer „gene gun" in stark durchblutete, kapillare Bereiche eines Organismus transferiert (z.B. Maus, Kaninchen). Die transferierte DNA wird von Zellen des Tieres aufgenommen, das Zielgen wird exprimiert und das Tier entwickelt schließlich eine Immunantwort gegen das Zielgen (Jung et al, Mol Cells 12: 41-49, 2001; Kasinrerk et a., Hybrid Hybridomics 21: 287-293, 2002).

Affϊnitätsreinigung

Die Reinigung der polyklonalen Seren erfolgte im Fall der Peptidantiköφer gänzlich oder im Fall der Antiköφer gegen rekombinante Proteine teilweise als Service durch die beauftragten Firmen. Hierzu wurde in beiden Fällen das entsprechende Peptid bzw. rekombinante Protein kovalent an eine Matrix gebunden, diese nach der Kopplung mit einem nativen Puffer (PBS: phosphate buffered saline) äquilibriert und im Anschluß mit dem Rohserum inkubiert. Nach einem weiteren Waschschritt mit PBS wurde der Antiköφer mit 100 mM Glycin pH 2,7 eluiert und das Eluat sogleich in 2 M TRIS pH 8 neutralisiert. Die so gereinigten Antiköφer konnten dann zur spezifischen Detektion der Zielproteine sowohl durch Westernblotting als auch durch Immunfluoreszenz eingesetzt werden.

Boydenkammer Migrationsassay Die Boydenkammer dient der Quantifizierung der Zellmigration in Reaktion auf chemotaktische Stimuli. Die Kammer besteht aus zwei Kompartimenten die durch eine Micropore-Membran voneinander getrennt sind. In das obere Kompartment gibt man die zu untersuchenden Zellen in Minimalmedium, währen das untere Kompartment mit Medium gefüllt wird welches das entsprechende Chemotaktikum enthält. Die Zellen wandern entsprechend des Gradienten durch die Membran und adhärieren an die Unterseite der Membran. Nach Fixation können die transmigrierten Zellen unter dem Mikroskop ausgezählt werden.

Der Migrationsassay wurde zur Bestimmung des promigratorischen Potentials von TPTE durchgeführt. Eingesetzt wurden mit TPTE-eGFP transfizierte, c-erbB2 transformierte NIH3T3 Fibroblasten. Als Kontrollzellen wurden nicht-transfizierte Zellen und mit eGFP-N3 Leervektor transfizierte Zellen eingesetzt. Für den Assay wurden Transwell Kammern (Becton Dickinson) mit einer Porengrösse von 8,0 μM in der Membran verwendet. Jeweils 4xl0⁴ Zellen in 400 μl Serum-freiem DMEM Medium wurden in das obere Kompartiment gegeben. Das untere Kompartiment wurde mit 800 μl DMEM Medium gefüllt, dem 10%FCS oder PDGF-BB in aufsteigenden Konzentrationen (10-300ng/μl) zugefügt wurde. Die Kammern wurden für 40h bei 37° inkubiert. Anschliessend wurden die transmigrierten Zellen in eiskaltem Methanol fixiert, die Membranen wurden ausgeschnitten und auf Objektträgern mit Hoechst Kernfarbstoff (DAKO) zur Fluoreszenzmikroskopie eingedeckt. Zellen in fünf Gesichtsfeldern (Vergrösserung 20fach) pro Membran wurden ausgezählt. Alle Experimente wurden in Triplikaten durchgeführt.

RNA-Interferenz (RNAi)

Die siRNA-Oligos wurden entsprechend der Tuschl-Klriterien ausgewählt (Elbashir et al., Nature 411(6836):428-9, 2001). TPTE siRNA-Oligos (sense 5'-

CCCUGCCACAUGUUCAUAUdTdT-3'; antisense 5'-

AUAUGAACAUGUGGCAGGGdTdT-3') targetierten die Nukleotide 2043-2061 der TPTE mRNA-Sequenz (NM_013315). Als Kontrolle wurden siRNA-Oligos spezifisch für das irrelevante DsRed-Fluoreszenzprotein (AF506025) eingesetzt (sense 5'- AGUUCCAGUACGGCUCCAAdTdT-5'; antisense 5'-

UUGGAGCCGUACUGGAACUdTdT-3'). Zur Generierung der siRNA-Duplexe wurden jeweils 200μM der entsprechenden sense- und antisense-Oligos in Hybridisierungspuffer (30mM HEPES (pH 7,4), lOOmM Natrium- Acetat, 2mM Magnesium- Acetat) nach initialer Denaturierung (1 min. bei 90°C) für lh bei 37°C inkubiert.

siRNA-Elektroporation

5x10⁶ Zellen wurden in 250μl Serum-freiem X-VIVO 15 Medium aufgenommen und mit lμM der entsprechenden siRNA-Duplexe elektroporiert (200V, 250μF). Die TPTE mRNA- Expression wurde 24h später mittels Real-Time RT-PCR quantifiziert. Methylierungsstudien

Zur Untersuchung der Induzierbarkeit der TPTE-Expression durch genomische Demethylierung wurden die TPTE-negative Zellinien BT549 (Mamma-Ca) und HCTl 16 (Kolon-Ca) für 72h mit 2μM bzw. lOμM 5-Aza-2'-deoxycytidin kultiviert. Anschliessend wurde die TPTE-Expression mittels Real-Time RT-PCR quantifiziert. Desweiteren wurde die TPTE-Expression in DNA-Methyltransferase (DNMT) defizienten HCTl 16 Zellen quantifiziert. Während DNMT1 (HCT116^DNMTW-) bzw. DNMT3b (_HCT116^DNMT3W-) defiziente Zellen ein nahezu unverändertes Methylierungsmuster im Vergleich zur parentalen Zellinie aufweisen (HCT116^par), sind Zellen in denen beide DNMTs gemeinsam deletiert sind (HCT116^DK0) durch fast vollständige Demethylierung der genomischen DNA gekennzeichnet.

Time-Lapse Mikroskopie

Die Membranlokalisation von TPTE und die Beteilung an der Regulation von Membrandynamiken in vitalen Zellen wurde mittels Time-Lapse Mikroskopie untersucht. Hierfür wurden TPTE-eGFP transfizierte Zellen für 12h in serum-freiem DMEM Medium inkubiert. Zur Induktion von spontanen Zellmemdynamiken in Form von Membranprotrusionen, Pseudopodien und Filopodien wurden die Zellen vor der Analyse durch Zugabe von FCS stimuliert. Bilder der vitalen Zellen wurden in 30sec Abständen mit einem üivert Olympus Mikroskop (1X70) mit einer TILL IMAGO-VGA CCD Kamera aufgenommen.

Herstellung EGFP-Transfektanten

Für die Immunfluoreszenz-Mikroskopie von heterolog exprimierter TPTE wurde der komplette ORF von TPTE in pEGFP-Cl und pEGFP-N3 Vektoren (Clontech) kloniert. Auf

Objekträgern kultivierte CHO und NIH3T3 Zellen wurden mit den entsprechenden

Plasmidkonstrukten unter Verwendung von Fugene Transfektionsreagenz (Röche) nach

Herstellerangaben transfiziert und nach 12-24h miteis Immunfluoreszenz-Mikroskopie anlysiert.

Prädiktion von Peptidepitopen für MHC Klasse I

Peptidepitope aus jeder der Proteinsequenzen mit Bindungseigenschaften für die polymoφhen HLA-Allele A*0201, A*2402, A*0101, A*0301, B*0702 wurden unter

Nutzung des unter http://syfpeithi.bmi-heidelberg.com/ abgelegten Prädiktionalgorithmus ermittelt. Als Peptidlänge wurden 8, 9 und lOmere vorgegeben und ein Cutoff bei einem Score von 15 gesetzt. Ergab die Suche weniger als 10 Peptide für die jeweilige Länge, wurden alternativ die 10 besten Peptide ausgewählt.

Beispiel 1: Identifizierung von LDH C als neues Tumorantigen

LDH C (SEQ ID NO:l) und sein Translationsprodukt (SEQ ID NO:6) wurden als Testis- spezifisches Isoenzym der Laktatdehydrogenase-Familie beschrieben. Die Sequenz ist in GenBank unter der Zugangsnummer NM_017448 veröffentlicht. Das Enzym bildet ein Homotetramer mit einem Molekulargewicht von 140 kDa (Goldberg, E. et al, Contraception 64(2):93-8, 2001; Cooker et al, Biol. Reprod. 48(6):1309-19, 1993; Gupta, G.S., Grit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 34(6):361-85, 1999).

RT-PCR Untersuchungen zur Expressionsanalyse mit einem Primeφaar (5'- TGCCGTAGGCATGGCTTGTGC-3\ S^{^}-CAACATCTGAGACACCATTCC-S , das die verwandten und ubiquitär exprimierten Isoenzyme LDH A und LDH B nicht kreuzamplifiziert und auf der LDH C Prototypsequenz NM_017448, die als Testis-spezifisch vorbeschrieben ist, basiert, bestätigten erfindungsgemäß das Fehlen von Expression in allen getesteten Normalgeweben, zeigten jedoch, dass die stringente transkriptionelle Repression dieses Antigenes in somatischen Zellen bei Tumoren aufgehoben ist; vgl. Tabelle 1. Wie klassischerweise für CT-Gene beschrieben, wird LDH C in einer Reihe von Tumorentitäten exprimiert.

Tabelle 1. Expression von LDHC in Tumoren

Die erwartete Größe des Amphfikationsproduktes mit vorstehend genannten PCR-Primern beträgt 824 bp. Erfindungsgemäß wurde allerdings in Tumoren, jedoch nicht in Testis, die Amplifikation von multiplen zusätzlichen Banden beobachtet. Da dies indikativ für das Vorhandensein alternativer Splice- Varianten ist, wurde mit LDH-C spezifischen Primern (5'- TAGCGCCTCAACTGTCGTTGG-3', 5'-CAACATCTGAGACACCATTCC-3') das gesamte offene Leseraster amplifiziert und unabhängige Vollänge-Klone sequenziert. Abgleiche mit dem Prototyp-ORF der beschriebenen Sequenz von LDH C (SEQ ID NO:l) und der genomischen Sequenz auf Chromosom 11 bestätigen zusätzliche Splice- Varianten (SEQ ID NO:2-5). Die alternativen Splicingereignisse führen zum Fehlen von Exon 3 (SEQ ID NO:2), der beiden Exons 3 und 4 (SEQ ID NO:3), der Exons 3, 6 und 7 (SEQ ID NO:4) bzw. von Exon 7 (SEQ ID NO:5) (vgl. Abb. 2).

Diese neuen Splicevarianten werden ausschließlich in Tumoren aber nicht im Testis generiert. Das alternative Splicing führt zu Veränderungen im Leseraster und resultiert in neuen möglichen ORF, die die in SEQ ID NO:7-13 gezeigten Aminosäuresequenzen kodieren (ORF für SEQ ID NO:7: Nukleotidposition 59-214 von SEQ ID NO:2 bzw. SEQ ID NO:4; ORF für SEQ ID NO:8: Nukleotidposition 289-939 von SEQ ID NO:2; ORF für SEQ ID NO:9: Nukleotidposition 59-196 von SEQ ID NO:3; ORF für SEQ ID NO:10: Nukleotidposition 535-765 von SEQ ID NO:3; ORF für SEQ ID NO:l l: Nukleotidposition 289-618 von SEQ ID NO:4; ORF für SEQ ID NO: 12: Nukleotidposition 497-697 von SEQ ID NO:4; ORF für SEQ ID NO:13: Nukleotidposition 59-784 von SEQ ID NO:5) (Abb. 2, 3). Neben einer vorzeitigen Termination ist auch die Nutzung von alternativen Startcodons möglich, so dass die kodierten Proteine N- wie auch C-terminal verkürzt sein können.

Während SEQ ID NO:8 und SEQ ID NO: 10 frankierte Anteile des Prototyp-Proteins darstellen, sind die Proteinsequenz von SEQ ID NO:7, SEQ ID NO:9, SEQ ID NO:l l, SEQ ID NO:12 und SEQ ID NO:13 zusätzlich verändert und beinhalten ausschließlich Tumor- spezifische Epitope (fett gedruckt in Abb. 3). Peptidregionen, die zu Tumor-spezifischen Epitopen führen könnten sind wie folgt (der streng Tumor-spezifische Anteil, der durch Leserasterverschiebungen entsteht ist unterstrichen):

SEQ ID NO: 14: GAVGMACAISILLKITVYLQTPE faus SEQ ID NO:7) SEQ ID NO:15: GAVGMACAISILLKWJF (aus SEQ ID NO:9)

SEQ ID NO: 16: GWIIGEHGDSSGIIWNKRRTLSQYPLCLGAEWCLRCCEN Taus SEQ

ID NO:l l)

SEQ ID NO:17: MVGLLENMVILVGLYGIKEELFL (aus SEQ ID NO:12)

SEQ ID NO: 18: EHWKNIHKOVIORDYME Taus SEQ ID NO: 13)

Diese Regionen können potentiell Epitope enthalten, die auf MHC I bzw. MHC II Molekülen von T-Lymphozyten erkannt werden können und zu einer strikt Tumor-spezifischen Antwort führen.

Nicht alle der prädizierten Proteine weisen die katalytische Laktatdehydrogenase-Domäne für die NADH-abhängige Metabolisierung von Pyruvat zu Laktat auf, die den letzten Schritt der anaeroben Glycolyse darstellt. Diese Domäne wäre für die enzymatische Funktion als Lactatdehydrogenase notwendig (gerahmt in Abb. 3). Weiterführende Analysen z.B. mit Algorithmen wie TMpred und pSORT (Nakai & Kanehisa, 1992) prädizieren unterschiedliche subzelluläre Lokalisationen für die putativen Proteine.

Erfmdungsgemäß wurde durch Real-Time-PCR mit einem spezifischen Primer-Probe-Set Expressionslevel quantifiziert. Das Amplicon liegt im Übergang zwischen Exon 1 and 2 und detektiert damit alle Varianten (SEQ ID NO: 1-5). Auch diese Untersuchungen detektieren keine Transkripte in Normalgeweben außer Testis. Sie bestätigen signifikante Expressionslevel in Tumoren (Abb. 4).

Es wurden Antiköφer durch Immunisierung von Kaninchen mit Peptiden hergestellt, die jeweils verschiedene der oben genannten Varianten abdecken: SEQ ID NO:80: MSTVKEQLIEKLIEDDENSQ (aa 1-19) SEQ ID NO: 101: RNGVSDVVKINLNSE (C-terminus) SEQ ID NO:102: GIIWNKRRTLSQYPL (Variante 5.3 spezifisch)

Beispielhaft sollen die Daten dargestellt werden für Antikörper, die gegen SEQ ID NO: 80 gerichtet sind. Diese erkennen in der Westernblot Untersuchung LDHC Protein in Testis- Gewebe aber nicht in anderen Normalgeweben (Abb. 15) und bestätigen somit die RT-PCR Daten auf Transkriptebene. Der spezifische Antiköφer lässt sich auch unter verschiedenen Fixationsbedigungen für Immunfluoreszenz-Untersuchungen nutzen. So ergaben RT-PCR Untersuchungen, dass die Kolonkarzinom Zellinie HCT 116 P kein LDHC exprimiert. Ihre DNA Methyltransferase deletierte Variante HCT 116 DKO allerdings positiv für LDHC ist. Vergleichende Färbungen beider Zellinien mit dem oben genannten Antiköφer delektierten das entsprechende Protein in gut nachweisbarer Menge spezifisch in den als positiv typisierten Zellinien (Abb. 16). Entsprechend qualifiziert sich dieser Antiköφer auch zu immunhistochemischen Färbung von Normal- und Tumorgewebsschnitten durch den kundigen Fachmann. Die Färbung von Testisgewebe z.B. zeigt eine klare Positivität von Keimzellen (Abb. 16).

Laktatdehydrogenasen katalysieren die Interkonversion von Pyravat und Laktat in der Glykolyse. Unter aeroben Bedingungen wird Pyruvat als Endprodukt der Glykolyse in die Mitochondrien transportiert, wo es als Substrat für den Zitratzyklus zur Verfügung steht. Der Krebs-Zyklus dient der Generierung von Reduktionsäquivalenten in Form von NADH, die für die ATP-Gewinnung im Rahmen der Atmungskette (oxydative Phosphorylierung) verbraucht werden. Unter anaeroben Bedingungen kann ATP nicht über die Atmungskette generiert werden. Die Zelle reguliert ihren Energiehaushalt unter diesen Bedingungen fast ausschliesslich über die Glykolyse. Pyruvat, das unter diesen Bedingungen nicht verstoffwechselt werden kann, wird durch Laktatdehydrogenasen zu Laktat reduziert. Die verschiedene Laktatdehydrogenase-Isoformen unterscheiden sich in erster Linie durch ihre Gewebsverteilung und unterschiedliche Substratspezifitäten und -affmitäten. Die keimzell-spezifische LDHC katalysiert bevorzugt die Oxidation von Laktat zu Pyruvat und wird auch durch hohe Konzentrationen von Laktat nicht in ihrer Aktivität gehemmt (Goldberg E. Exp. Clin. Immunogenet. 2:120-4, 1985). Diese Eigenschaften sind physiologisch sinnvoll da sich die Spermatiden in einem Milieu entwickeln das durch hohe Laktatkonzentrationen gekennzeichnet ist. Spermatiden bevorzugen Laktat als Energiequelle vor Glucose, Fructose oder Pyruvat (Mita M. Biol. Reprod. 26:445-55, 1982). Die Oxidation von Laktat durch die LDHC stellt Pyruvat als Ausgangssubstrat für den Zitratzyklus zur Verfügung. Demgemäss nutzen Spermatiden bevorzugt den Zitratzyklus als Hauptquelle zur Energiegewinnung (Storey B.T. Biol. Reprod. 16:549-556, 1977). Es ist lange bekannt dass Tumorzellen häufig ihren Energiebedarf über die anaerobe Glykolyse decken, d.h. vermehrt Laktat bilden, und den Zitratzyklus und die Atmungskette auch unter aeroben Bedingungen nicht nutzen. Die molekulare Grundlagen dieses als Warburg-Effekt beschriebenen Phänomens sind bis heute nicht aufgeklärt, ursächlich werden Enzymdefekte in den Mitochondrien und die Überexpression von Schlüsselenzymen der Glykolyse dikutiert. In diesem Zusammenhang könnte die Expression von LDHC, die durch hohe Konzentrationen von Laktat in ihrer Funktion nicht gehemmt wird von Vorteil für den Energiehaushalt der Tumorzelle sein, indem Laktat zur Gewinnung von ATP genutzt werden kann. Mitochondriendefekte, insbesondere Enzymdefekte des Zitratzyklus sind bekannte Alterationen in Tumorzellen. Durch einen Ausfall des Zitratzyklus können keine Reduktionsäquivalente für die Atmungskette generiert werden. Eine mitochondriale Laktatdehydro genäse mit hoher Affinität für Lactat wie die LDHC könnte eine Umgehung für einen defekten Zitratzyklus darstellen. Lactat das über Monocarboxylate-Transporter (MCT) in Mitochondrien transportiert wird könnte intramitochondrial zu Pyruvat oxidiert werden und somit der Generierung von Reduktionsäquivalenten dienen die in der Atmungskette zur ATP- Gewinnnung verbraucht werden. Zur Analyse der subzellulären Lokalisation von von LDHC transfizierten wir die LDHC negative Brusttumorzellinie MCF-7 mit einem Fusionskonstrukt aus LDHC und Green-Fluorescent-Protein und färbten diese Transfektante mit einem Antiköφer gegen den mitochondrialen Marker Cytochrom C. Die Ko-Lolokalisation der beiden Signale in der konfokalen Lasermikroskopie (Abb. 17) beweist die Präsenz von LDHC in Mitochondrien. Somit wäre denkbar dass die Expression LDHC in Tumorzellen tatsächlich einen benefitären Effekt für den Energiehaushalt der Zelle darstellt und eine spezifische Hemmung der LDHC-Aktivität in Tumoren zur Therapie von Tumorerkrankungen genutzt werden könnte. Beispiel 2: Identifizierung von TPTE als neues Tumorantigen

Die Sequenzen des Transkripts von TPTE (SEQ ID NO: 19) und seines Translationsprodukt (SEQ ID NO:22) sind in GenBank unter der Zugangsnummer NM_013315 veröffentlicht (Walker, S.M. et al., Biochem. J. 360(Pt 2):277-83, 2001; Guipponi M. et al., Hum. Genet. 107(2): 127-31, 2000; Chen H. et al, Hum. Genet. 105(5):399-409, 1999). TPTE wurde als Gen, das für eine mögliche transmembrane Tyrosinphosphatase kodiert, mit Testis- spezifischer Expression beschrieben, die in der perizentromeren Region der Chromosomen 21, 13, 15, 22, and Y liegt (Chen, H. et al., Hum. Genet. 105:399-409, 1999). Erfindungsgemäße Abgleichuntersuchungen zeigen zusätzlich homologe genomische Sequenzen auf den Chromosomen 3 und 7.

Die Membranlokalisation, die z.B. für die Erreichbarkeit von therapeutischen Antiköφern Voraussetzung ist, konnte zweifelsfrei nachgewiesen werden durch Transfektion von TPTE- negativen Zellen mit einem Fusionskonstrukt aus TPTE und Green-Fluorescent-Protein (Abb. 18, rechts). Dieses reichert sich an der Membranoberfläche an und lässt sich dort als kolokalisierend mit anderen bekannten Membranmarkern wie HLA-Molekülen nachweisen.

Basierend auf der Sequenz von TPTE (SEQ ID NO: 19) wurden erfindungsgemäß PCR- Primer generiert (5*-TGGATGTCACTCTCATCCTTG-3' and 5'-

CCATAGTTCCTGTTCTATCTG3*-) und für RT-PCR-Analysen (95° 15min; 94° 1 min; 63° 1 min; 72° 1 min; 35 Zyklen) in einer Reihe von humanen Geweben eingesetzt. Es zeigte sich, dass die Expression in Normalgeweben auf Testis beschränkt ist. Wie für die anderen eCT beschrieben, konnte erfindungsgemäß gezeigt werden, dass TPTE-Varianten ektop in einer Reihe von Tumorgeweben aktiviert werden; vgl. Tabelle 2.

Tabelle 2. Expression von TPTE in Tumoren

Es wurde eine quantitative Realtime-PCR (40 Zyklen, initiale Denaturierang 15 min 95°C, 30 sek 94°C, 30 sek 62°C, und 30 sek 72°C) mit den spezifischen Primern (sense GAGTCTACAATCTATGCAGTG; antisense CCATAGTTCCTGTTCTATCTG) durchgeführt (Abb. 19). Diese bestätigt nicht nur das Fehlen von TPTE in nicht-testikulärem Normalgewebe und die ektope Expession in Tumoren, sondern deckt hohe Transkriptmengen in den Tumoren auf, die mit der physiologischen expression in Testisgewebe durchaus vergleichbar sind. Die ektope Expression vieler bekannter CT-Gene in Tumoren wird durch Promotordemethylierung induziert. Zur Untersuchung ob dieser Mechanismus auch für die ektope Aktivierung von TPTE effektiv ist, wurden die nicht-exprimierenden Zellinien BT549 (Mamma-Ca) und HCTl 16 (Kolon-Ca) mit 5-Aza-2'-deoxycytidin, einem pharmakologischen Inhibitor der DNA-Methylierung, kultiviert. In beiden Fällen resultierte die Demethylierung der DNA in einer starken Induktion der TPTE-Expression (Abb. 33). Der gleiche Effekt zeigt sich auch in DNA-Methyltransferase DNMT1 und DNMT3b defizienten HCTl 16 Zellen, die durch fast vollständigen Verlust der DNA-Methylierung charakterisiert sind. Diese Ergebnisse belegen dass die Promoterdemethylierung des Genlokus auch für die ektope Induktion der TPTE-Expression effektiv ist. Zum Nachweis von TPTE Protein wurden Antiköφer durch Immunisieren von Kaninchen hergestellt. Folgende Peptide bzw. ein rekombinant in E. coli exprimiertes und gereinigtes Protein wurden zur Propagierung dieser Antiköφer genutzt: SEQ ID NO:103: FTDSKLYIPLEYRSC (aa 116 - 128) SEQ ID NO:104: CFDIKLLRNIPRWT (aa 179 - 191)

SEQ ID NO:105: MNESPDPTDLAGVIIELGPNDSPQTSEFKGATEEAPAKESPHTS EFKGAARVSP (rek.Prot. aa 1-54)

Beispielhaft sollen die Daten dargestellt werden für Antikörper, die gegen SEQ ID NO: 105 gerichtet sind. Der spezifische Antiköφer lässt sich unter verschiedenen Fixationsbedigungen für Immunfluoreszenz-Untersuchungen nutzen. Bei vergleichenden Färbungen von RT-PCR positiven wie auch negativen Zellinien ist das entsprechende Protein in gut nachweisbarer Menge spezifisch in den als positiv typisierten Zellinien detektierbar (Abb. 18, rechts). Das endogene Protein ist membranlokalisiert. Dieser Antiköφer wurde des weiteren eingesetzt zur immunhistochemischen Färbung von Gewebsschnitten. Wie erwartet färbt der Antiköφer Testisgewebe spezifisch an. Insbesondere sind es Keimzellen, die angefärbt werden (Abb. 20). Auch Gewebeschnitte von Lungenkarzinomen lassen sich anfärben. TPTE Protein lässt sich dabei homogen und in grosser Menge in allen Zellen eines Tumors detektieren. Auch hier bestätigt sich die Lokalisation des Proteins an der Membran der Zellen (Abb. 21). Die Spezifität der Färbung wurde durch Kompetitionsexperimente bestätigt. Der spezifische Antiköφer wurde zunächst mit rekombinantem TPTE Protein vor-inkubiert und danach auf die Gewebeschnitte (z.B. Testis als Positivkontrolle, Abb. 20) verbracht. Hierdurch lässt sich die Reaktivität erfolgreich blockieren. Mit diesem Antiköφer lassen sich viele verschiedene primäre Tumortypen (auch Brusttumoren, Melanome etc.) aber nicht das dazugehörige Normalgewebe erfolgreich anfärben. Beispielhaft ist auch dargestellt eine Färbung von Prostatagewebe. Normales Prostatagewebe ist negativ, während invasive wie auch noch nicht invadierte Prostatatumoren positiv für dieses Molekül sind. Auch eine einfache Hypertrophie von Prostata-Epithel färbt sich nicht an, allerdings innerhalb dieser gutartigen Veränderung bereits vorliegende premaligne Bereiche, die in der Folge transformieren werden sind TPTE positiv. Entsprechend kann ein solcher spezifischer Antiköφer gegen TPTE dazu dienen, diagnostisch eine bestehende Anlage für Prosatakarzinome früh zu detektieren. Des weiteren wurde der Antiköφer zum Expressionsnachweis von TPTE im Western-Blot eingesetzt. Proteinexpression konnte in Lysaten aus Testisgewebe und spontan exprimierenden Zellinien nachgewiesen werden, Normalgewebe zeigten wie erwartet keine Expression (Abb. 34). Erfindungsgemäß wurden für TPTE weitere Splicevarianten identifiziert (SEQ ID NO:20, SEQ ID NO:21, SEQ ID NO:54, SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56, SEQ ID NO:57), die in testikulärem Gewebe und Tumoren exprimiert werden und Leserasterverschiebungen und somit veränderte Sequenzbereiche aufweisen (Abb. 5).

Die genomische Sequenz von TPTE besteht aus 24 Exons (Zugangsnummer NT_029430). Das in SEQ ID NO: 19 gezeigte Transkript enthält alle diese Exons. Die in SEQ ID NO:20 gezeigte Splicevariante entsteht durch heraussplicen von Exon 7. Die in SEQ ID NO:21 gezeigte Splicevariante zeigt eine partielle Inkoφoration eines Introns, das auf Exon 15 folgt. Wie aus den Varianten SEQ ID NO:54, SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56, SEQ ID NO:57 ersichtlich, können alternativ auch Exons 18, 19, 20 und 21 herausgesplict werden. Diese alternativen Splicing-Ereignisse resultieren in Veränderungen des kodierten Proteins, wobei das Leseraster grundsätzlich erhalten bleibt (Abb. 6). Beispielsweise weist das Translationsprodukt, das von der in SEQ ID NO:20 gezeigten Sequenz kodiert wird (SEQ ID NO:23) eine Deletion von 13 Aminosäuren im Vergleich zu der in SEQ ID NO:22 gezeigten Sequenz auf. Das Translationsprodukt, das von der in SEQ ID NO:21 gezeigten Sequenz kodiert wird (SEQ ID 24) trägt eine zusätzliche Insertion im zentralen Bereich des Moleküls und unterscheidet sich dadurch um 14 Aminosäuren von den anderen Varianten. Die Translationsprodukte der Varianten SEQ ID NO:54, SEQ ID NO:55, SEQ ID NO:56, SEQ ID NO:57 nämlich die Proteine SEQ ID NO:58, SEQ ID NO:59, SEQ ID NO:60, SEQ ID NO:61 sind ebenfalls verändert.

Analysen zur Prädiktion funktioneller Domänen ergeben für SEQ ID NO:22, SEQ ID NO:23, SEQ ID NO:24, SEQ ID NO:58, SEQ ID NO:60, aber nicht für SEQ ID NO:59, SEQ ID NO:61, das Vorhandensein einer Tyrosinphosphatase-Domäne. Für alle Varianten werden 3-4 Transmembrandomänen prädiziert (Abb. 6).

Die Analyse der TPTE-Antigen-Expression mit spezifischen Antiköφern bestätigte die selektive Expression in Testis sowie in einer Reihe von unterschiedlichen Tumoren. Durch Kolokalisationsuntersuchungen zeigte sich zudem, dass TPTE erfindungsgemäß mit Klasse I Histokompatibilitätsantigenen an der Zelloberfläche von Tumorzellen lokalisiert ist. Bisher war TPTE lediglich als Golgi-assoziiertes Protein beschrieben worden. Aufgrund der Expression von TPTE auf der Zelloberfläche von Tumorzellen eignet sich dieses Tumorantigen erfindungsgemäß als hervorragendes Target für die Entwicklung diagnostischer und therapeutischer monoklonaler Antiköφer. Aufgrund der prädizierten Membrantopologie von TPTE eignen sich für diesen Zweck erfindungsgemäß insbesondere die extrazellulär exponierten Bereiche. Dies umfasst erfindungsgemäß die Peptide FTDSKLYIPLEYRS (SEQ ID NO:81) und FDIKLLRNIPRWT (SEQ ID NO:82). Darüber hinaus konnte gezeigt werden, dass TPTE die Migration von Tumorzellen fördert. Zellen die für mehrere Stunden in Minimalmedium ohne FCS kultiviert werden neigen zur spontanen Ausbildung von Pseudopodien und Membranprotrusionen. Sowohl in heterolog exprimierenden Zellen (TPTE-eGFP) als auch in spontan exprimierenden Zellinien (AK- Färbung) konnte eine ausgeprägte Anreicherung des Proteins an der Membran dieser Struktur nachgewiesen werden. Ferner ergab eine Ko-Färbung mit Rhodamine-Phalloidin eine eindeutige Ko-Lokalisation von TPTE mit F-Aktin in diesen Bereichen. Die durch Second Messenger wie Phosphoinisitide und Kalzium vermittelte Aktin-Polymerisierung ist ein kritischer Faktor für die Initiierung der Zellmigration in Reaktion auf extrazelluläre Gradienten von Chemotaktika. Die Signaltransduktion über diese Second Messenger wird hauptsächlich durch Rezeptor-Tyrosinkinasen (RTK) initiiert. Einer der wichtigsten Faktoren in der Regulation des Second Messenger Signalling über Phosphoinositide und der daraus folgenden Modulation des Aktin-Zytoskeletts ist die RTK c-erbB-2 (HER2), die in verschiedenen Tumortypen frequent überexprimiert wird. Diese Ergebnisse führten zur Überlegung dass TPTE als zellmembranständige Lipidphosphatase mit Substratspezifität für PιP_3,4,5 eine regulierende Funktion auf die RTK- vermittelte Signaltransduktion hat und somit modulierende Effekt auf die Membrandynamik in Tumorzellen ausübt. Für eine detaiherte Analyse wurde TPTE-eGFP in NIH3T3 Fibroblasten exprimiert die durch Transformation mit c-erbB-2 ein konstitutiv aktiviertes PI-3 Kinase Signalling und somit eine Übeφroduktion des Second Messengers PIP_3,4>5 aufweisen. Time-Lapse Mikroskopie dieser Zellen nach mehrstündiger Kultivierung in Minimalmedium zeigte, dass die Lokalisation von TPTE an der Membran von Pseudopodien und Protrusionen unverzüglich zur Refraktion des entsprechenden Memranbereichs führt. Eine Erklärung für diese Beobachtung bietet der PI-3 Kinase antagonistische Effekt der TPTE der durch die Termination der RTK-vermittelten Signaltransduktion die Aktin-Polimerisation unter dem betroffene Membranbereich beendet. Diese PI-3K antagonistischen Effekte von TPTE werden durch Dephosphorylierung des Second Messengers PIP3, _j5 zu PIP₄,₅ vermittelt. PIP_4js reguliert die kortikale Aktinpolymerisation und vermittelt die Adhäsion des Zytoskeletts an die Plasmamembran. Zum Nachweis der Kolokalisation von TPTE und PIP_4>5 and wurden TPTE transfizierte NIH3T3/c-erbB2 Zellen mit der eGFP gekoppelten PH-Domäne von Phospholipase C-δl (PLC-δl) kotransfiziert. Die PH-Domäne vermittelt die spezifische Bindung von PLC-δl an ihr physiologisches Substrat PIP _;5, daher ist sie für die Darstellung der PIP _>5 Verteilung and der Plasmamembran hervorragend geeignet. Erwartungsgemäss zeigte sich in den kotransfizierten Zellen eine eindeutige Kolokalisation von TPTE und PIP _>5 an der Plasmamembran (Abb. 35). Dies konnte in weiteren Untersuchungen durch Kofärbung mit einem PIP _j5-spezifischen Antiköφer nochmals bestätigt werden. Kürzlich wurde gezeigt, dass das zu TPTE homologe PTEN das migratorische Potential von Zellen positiv reguliert. Zellmigration ist ein direktionaler Prozess für den die Wahrnehmung extrazellulärer Gradienten von Chemotaktika von essentieller Bedeutung ist. Gerichtete Zellmigration bedingt, dass die Zelle nach Detektion des Chemotaktikums in Richtung des Gradienten polarisiert. PTEN vermittelt die Polarisation der Zelle durch Ausbildung eines intrazellulären Gradienten von Second Messenger PIP₃,_4,5 in Richtung des extrazellulären Gradienten und somit eine gerichtete Aktin-Polimerisation und Migration. Zur Untersuchung, ob TPTE ähnliche promigratorische Eigenschaften besitzt wurde ein Transwell-Migrationsassay durchgeführt. TPTE transfizierte NIH3T3/c-erbB-2 Zellen und entsprechende Kontrollzellen (nicht-transfizierte NIH3T3/c-erbB-2 Zellen und mit Leer-peGFP- Vektor transfizierte NIH3T3/c-erbB-2 Zellen) wurden mit verschiedenen Mengen an chemischen Lockstoffen getestet. Zellen, die TPTE exprimierten, zeigten eine signifikant erhöhte Migrationsrate von mehr als vierfach im Vergleich zu den Kontrollzellen in Reaktion auf 10% FCS (Abb. 23). Durch den Einsatz von RNA-Interferenz (RNAi) konnte der Nachweis erbracht werden dass auch die spontane Expression von TPTE in Tumorzellinien die Chemotaxis dieser Zellen verstärkt. Hierzu wurden TPTE-positive PC-3 Prostatakarzinomzellen mit TPTE-spezifischen doppelsträngigen RNA-Oligos (sense 5'-CCCUGCCACAUGUUCAUAUdTdT-3' und antisense 5'-AUAUGAACAUGUGGCAGGGdTdT-3') elektroporiert. Nach 24 Stunden konnte mittels quantitativer Real-Time RT-PCR eine Abnahme der TPTE-Expression um 70% nachgewiesen werden (Abb. 36). Im Transwell-Migrationsassay zeigte sich eine deutliche Reduktion der Migrationsrate (70%) im Vergleich zu den entsprechenden Kontrollen (unbehandelte PC-3 Zellen und PC-3 Zellen die mit irrelevanter siRNA elektroporiert wurden) (Abb. 37). Während PTEN ein cytoplasmatisches Protein ist, das mittels PH-Domänen-rekrutierenden Second Messengern wie PIP_3,4,5 zu der Plasmamembran gelenkt werden kann, könnte TPTE im Gegensatz dazu eine Wahrnehmung von chemotaktischen Gradienten direkt an der Membran durch eine Blockierung der Signaltransduktion von aktivierten RTKs modulieren, die häufig in Krebszellen überexprimiert sind, und dadurch eine Wahrnehmung eines räumlichen Gradienten vermitteln. Phosphatasen sind oft bei der Zellmotilität und Migration involviert. Um die Bedeutung der TPTE bei Zellbewegung zu prüfen, wurde TPTE als Fusionsprotein mit Green-Fluorescence Protein in eine TPTE-negative Zellinie eingebracht und die Verteilung dieses Proteins in vivo mittels Real-time Mikroskopie beobachtet. Zellen bilden Membranausläufer (Protrusionen) als Vorstufe zur Migration. Nach Ausbildung einer solchen Protrusion sammelt sich TPTE an diesem Membranbereich an (Abb. 22). Bei beginnender Abflachung der Protrusion wird TPTE von der Membran zurückgezogen und internalisiert und ist offensichtlich in den Ablauf von Motilitätsereignissen der Zelle involviert. Gleichsam ergibt der Vergleich der Wandereigenschaften der mit TPTE- versus Kontrollplasmid-transfizierten Zellen in der Migrationskammer (BOYDEN Chamber), dass TPTE zu einer signifikanten Erhöhung der Migration entlang chemotaktischer Gradienten von Wachstumsfaktoren (hier z.B. PDGF=Platelet-derived Growth Factor, oder FCSHFetales Kalbsserum) führt (Abb. 23).

Da TPTE einer Zelle offensichtlich promigratorische Eigenschaften vermittelt, wurden Brast- bzw. Lungentumoren von insgesamt 58 Patienten auf Expression von TPTE untersucht und statistisch mit derm Krankheitsverlauf der Patienten verglichen. Diejenigen Tumoren, die TPTE exprimieren, neigen signifikant häufiger zu Lymphknoten- aber auch zu Fernmetastasen als die TPTE-negativen (Abb. 24).

Diese funktionellen Daten deuten daraufhin, dass TPTE bei der Metastasierung von Tumoren eine wesentliche Rolle spielt. Entsprechend kann TPTE als Marker für prognostisch schlechteren Verlauf und Metastasenneigung gelten. Ferner können Verfahren, die erfindungsgemäß die endogene Aktivität von TPTE in Tumorzellen inhibieren, z.B. durch den Einsatz von Antisene RNA, unterschiedlicher Methoden der RNA-Interferenz (RNAi) mittels Expressionsvektoren oder Retroviren, sowie durch den Einsatz von kleinen Moleküle, zu einer reduzierten Meatstasierung führen und somit therapeutisch sehr bedeutsam sein.

Beispiel 3: Identifizierung von TSBP als neues Tumorantigen

Das erfindungsgemäß eingesetzte elektronische Klonierungsverfahren ergab TSBP (SEQ ID NO:29) und das davon abgeleitete Protein (SEQ ID NO:30). Das Gen ist als Testis-spezifisch reguliert vorbeschrieben (Zugangsnummer NM_006781). Es wurde prädiziert, dass das Gen ein basisches Protein kodiert und auf Chromosom 6 in der Nähe einer für einen MHC- Komplex kodierenden Sequenz (C6orfl0) lokalisiert ist (Stammers M. et al., Immuno genetics 51(4-5):373-82, 2000). Erfindungsgemäß wurde gezeigt, dass die vorbeschriebene Sequenz fehlerhaft ist. Die erfindungsgemäße Sequenz weist signifikante Sequenzunterschiede zu der bekannten Sequenz auf. Erfindungsgemäß wurden 3 verschiedene Splicingvarianten kloniert. Die Unterschiede in den Nukleotidsequenzen der erfindungsgemäß aufgefundenen TSBP- Varianten (SEQ ID NO:31, SEQ ID NO:32, SEQ ID NO:33) zu der bekannten Sequenz (NM 006781, SEQ ID NO:29) sind in Abb. 7 gezeigt (Unterschiede fett dargestellt). Sie führen zu Leserasterverschiebungen, so dass sich die Proteine, die durch die erfindungsgemäß aufgefundenen TSBP-Varianten kodiert werden (SEQ ID NO:34, SEQ ID NO:35, SEQ ID NO:36) substantiell von dem vorbeschriebenen Protein (SEQ ID NO:30) unterscheiden (Abb. 8).

Für dieses Antigen wurde erfindungsgemäß eine strikte transkriptionale Repression in Normalgeweben bestätigt (PCR-primer 5'-TCTAGCACTGTCTCGATCAAG-3' und 5'- TGTCCTCTTGGTACATCTGAC-3'). Allerdings wurde in 25 untersuchten Normalgeweben außer in Testis auch in normalem Lymphknotengewebe TSBP exprimiert. Erfindungsgemäß wurde auch für TSBP eine ektope Aktivierung in Tumoren nachgewiesen, weshalb es sich als Tumormarker bzw. Tumor-assoziiertes Antigen qualifiziert (Tabelle 3). TSBP-Expression findet sich zwar in primärem Tumorgewebe aber nicht in permanenten Zellinien aus entsprechenden Tumorentitäten. Außerdem liegt das Gen in direkter Nachbarschaft zu Notch 4, das eine spezifische Expression in Arterien aufweißt und in die vaskuläre Moφhogenese involviert ist. Dies sind signifikante Hinweise dafür, dass es sich hier um einen Marker für spezifische Endothelzellen handelt. TSBP kann daher als potentieller Marker für Tumorendothelien und für neovaskuläres Targeting dienen. Mithin kann der Promotor von TSBP an ein anderes Genprodukt kloniert werden, dessen selektive Expression im Lymphknoten erwünscht ist. Die Analyse der TSBP-Antigen-Expression mit spezifischen Antiköφern bestätigte die selektive Lokalisation des Proteins in Testis und Lymphknoten sowie in Melanomen und Bronchialkarzinomen. Darüber hinaus zeigten immunhistologische Untersuchungen mit GFP- getaggtem TSBP eine ausgeprägte perinukleäre Akkumulation. Tabelle 3. Expression von TSBP in Tumoren

Zum Nachweis von TSBP Protein wurden Antiköφer durch Immunisieren von Kaninchen hergestellt. Folgende Peptide bzw. ein rekombinant in E. coli exprimiertes und gereinigtes Protein wurden zur Propagierung dieser Antiköφer genutzt: SEQ ID NO: 106: CYQHKVTLHMITERDP (aa 60 - 74) SEQ ID NO:107: CRIPQVHTMDSSGKI (aa 191 - 204) SEQ ID NO:108:

RRKQSEMHISRYSSEQSARLLDYEDGRGSRHAYSTQSDTSCDNRERSKRDYTPSTNSL ALSRSSIALPQGSMSSIKCLQTTEELPSRTAGAMMQFTAPIPGATGPIKLSQKTIVQTPG PΓVQYPGPNVRSHPHTITGPPSAPRGPPMAPIIISQRTASQLAAPIIISQRTARIPQVHTM DSSGKTTLTPVVILTGYMDEELAKKSCSKIQILKCGGTARSQNSREENKEALKNDIIFT NSVESLKSAHIKEPEREGKGTDLEKDKIGMEVKVDSDAGIPKRQETQLKISEMSIPQG QGAQIKKSVSDVPRGQESQVKKSESGVPKGQEAQVTKSGLVVLKGQEAQVEKSEMG VPRRQESQVKKSQSGVSKGQEAQVKKRESVVLKGQEAQVEKSELKVPKGQEGQVE KTEADVPKEQEVQEKKSEAGVLKGPESQVKNTEVSVPETLESQVKKSESGVLKGQEA QEKKESFEDKGNNDKEKERDAEKDPNKKEKGDKNTKGDKGKDKVKGKRESEINGE KSKGSKRAKANTGRKYNKKVEE (rek.Prot. 29 - 569) Beispielhaft sollen die Daten dargestellt werden für Antiköφer, die gegen SEQ ID NO: 108 gerichtet sind. Der spezifische Antiköφer lässt sich unter verschiedenen Fixationsbedigungen für Immunfluoreszenz-Untersuchungen nutzen. So ergaben RT-PCR Untersuchungen, dass die Kolonkarzinom Zellinie HCT 116 P kein TSBP exprimiert. Ihre DNA Methyltransferase deletierte Variante HCT 116 DKO allerdings positiv für TSBP ist. Vergleichende Färbungen beider Zellinien mit dem oben genannten Antikörper detektierten das entsprechende Protein in gut nachweisbarer Menge spezifisch in den als positiv typisierten Zellinien (Abb. 25). Das endogene Protein ist in erster Linie an der Kern- und ER-Membran lokalisiert mit einer leichten Anfärbung der Plasmamembran.

Dieser Antiköφer wurde des weiteren eingesetzt zur immunhistochemischen Färbung von Gewebsschnitten. Wie erwartet färbt der Antikörper Testisgewebe spezifisch an. Insbesondere sind es Keimzellen, die angefärbt werden (Abb. 25). In der bioinformatischen Analyse zeigt sich dass TSBP ein stark basisches Protein mit nuklearem Lokahsationssignal ist. Dementsprechend wird die subzelluläre Lokalisation des Proteins eindeutig nuklear prädiziert, während das endogen exprimierte Protein wie oben beschrieben an der Kernmembran lokalisiert ist. Der N-Terminus enthält eine Transmembrandomäne gefolgt von einer proteolytischen Spaltstelle, was darauf schliessen lässt dass die Transmembrandomäne im Verlauf der Proteinprozessierung durch Proteasen abgespalten wird. Diese Kombination von nuklearen Lokalisationssignalen, Lokalisation des Proteins an Kern-, ER- oder Plasma-Membranen und Transmembrandomänen gefolgt von proteolytischen Spaltstellen findet sich bei einer distinkten Klasse von Transkriptionsfaktoren von denen Mitglieder der NOTCH-Familie und SREBP am besten charakterisiert sind (Weinmaster G. Curr. Opin. Genet. Dev. 10(4):363-9, 2000; Hoppe T. et al. Curr. Opin. Cell Biol. 13(3):344-8, 2001)). Die biologische Aktivität dieser Faktoren wird durch den Mechanismus der Regulierten Intramembran Proteolyse (RIP) reguliert. Nach der Translation werden die Proteine über die Transmembrandomäne in die Kern-, ER- oder Plasmamembran integriert. Im Falle von NOTCH induziert die Bindung eines spezifischen Liganden die proteolytische Abspaltung unterhalb der Membrandomäne so dass das Protein an den Ort der Wirkung gelangt. Transkriptionsprozesse können auf diese Weise z.B. im Laufe der Organentwicklung milieuabhängig reguliert werden. Aufgrund seiner strukturellen Merkmale und der membranständigen Lokalisation könnte TSBP in diese Klasse eingeordnet werden. Zwar enthält die TSBP-Sequenz keine spezifischen DNA-bindenden Strukturelemente, doch macht die hohe Basizität des Proteins eine Bindung an DNA wahrscheinlich, so dass es sich bei TSBP um einen Transkriptionsfaktor bzw. transkriptionsmodulierenden Faktor handeln könnte.

Beispiel 4: Identifizierung von MS4A12 als neues Tumorantigen

MS4A12 (SEQ ID NO:37, Zugangsnummer NM ) 17716) und sein Translationsprodukt (SEQ ID NO:38) sind als Mitglieder einer Multigen-Familie mit Verwandschaft zum B-Zell spezifischen Antigen CD20, dem hämatopoesezell-spezifischen Protein HTm4, und der ß- Kette des high-affmity IgE-Rezeptors vorbeschrieben. Als Charakteristikum besitzen alle Familienmitglieder mindestens vier potentielle Transmembrandomänen, sowohl der C- als auch der N-Terminus sind cytoplasmatisch (Liang Y. et al., Immunogenetics 53(5):357-68, 2001; Liang Y. & Tedder, Genomics 72(2): 119-27, 2001). Erfindungsgemäß wurden RT-PCR Untersuchungen für MS4A12 durchgeführt. Die Primer wurden basierend auf der veröffentlichten MS4A12-Sequenz (NM_017716) ausgewählt (sense: CTGTGTCAGCATCCAAGGAGC, antisense: TTCACCTTTGCCAGCATGTAG). In den getesteten Geweben konnte eine Expression nur in Testis, Kolon (6/8) und kolorektalen Karzinomen (Kolon-Ca's) (16/20) sowie in Kolon-Metastasen nachgewiesen (12/15) werden (Abb. 9). Die hohe Inzidenz in Kolon-Metastasen machen TSBP zu einem attraktiven diagnostischen und therapeutischen Target. Für die Herstellung von monoklonalen Antiköφern und kleiner chemischer Inhibitoren eignet sich erfindungsgemäß besonders der pädizierte extrazelluläre Bereich der die Proteinsequenz GVAGQDYWAVLSGKG (SEQ ID NO:83) umfasst. Die intrazelluläre Lokalisation des MS4A12-Proteins an der Zellmembran wurde erfindungsgemäß auch durch Fluoreszenzüberlagerung mit Plasmamembranmarkern in der konfokalen Immunfluoreszenz bestätigt.

Tabelle 4. Expression von MS4A12 in Normalgeweben und kolorektalen Karzinomen und Metastasen

Somit ist MS4A12 ein zellrnembranständiges Differenzierungsantigen für normales Kolon- Epithel, das auch in kolorektalen Tumoren und Metastasen exprimiert wird. Es wurde eine quantitative Realtime-PCR (40 Zyklen, initiale Denaturierung 15 min 95°C, 30 sek 94°C, 30 sek 62°C, und 30 sek 72°C) mit den spezifischen Primern (CTGTGTCAGCATCCAAGGAGC und TTCACCTTTGCCAGCATGTAG) durchgeführt (Abb. 26). Diese bestätigt nicht nur das Fehlen von MS4A12 in der Mehrheit der Normalgewebe ausser Testis und colorektalen Normalgeweben. Sondern sie deckt hohe Transkriptmengen in z.B. primären Darmtumoren und ihren Metastasen auf. Zum Nachweis von MS4A12 Protein wurden Antiköφer durch Immunisieren von Kaninchen hergestellt. Folgende Peptide bzw. ein rekombinant in E.Coli exprimiertes und gereinigtes Protein wurden zur Propagierung dieser Antiköφer genutzt: SEQ ID NO: 109: MMSSKPTSHAEVNETC (aa 1 - 15) SEQ ID NO: 110: CGVAGQDYWAVLSGKG (aa 64 - 73) SEQ ID NO:l l l :

MMSSKPTSHAEVNETIPNPYPPGSFMAPGFQQPLGSINLENQAQGAQRAQPYGITSPGI FASS (rek.Prot. aa 1-63)

Beispielhaft sollen die Daten dargestellt werden für Antiköφer, die gegen SEQ ID NO:l l l gerichtet sind. Im Westernblot ist auf erwarteter Höhe in normalem Darm, in Kolonkarzinomen aber nicht in anderen Normalgeweben eine spezifischen Bande nachweisbar (Abb. 27). Der spezifische Antiköφer lässt sich unter verschiedenen Fixationsbedigungen für Immunfluoreszenz-Untersuchungen nutzen. Bei Färbungen von RT- PCR positiven wie auch negativen Zellinien ist das entsprechende Protein in gut nachweisbarer Menge spezifisch in den als positiv typisierten Zellinien detektierbar und auch eukaryontisch rekombinant exprimiertes MS4A12 wird spezifisch erkannt (Abb. 28). Auch diese Experimente bestätigen die Membranlokalisation. Dieser Antikörper wurde des weiteren eingesetzt zur immunhistochemischen Färbung von Gewebsschnitten. Wie erwartet färbt der

Antiköφer gesundes Darmgewebe. Allerdings sind es lediglich die apikalen Epithelzellen der Kolonmukosa (Abb. 29, links). Tumorzellen von Darmtumoren werden homogen und ebenfalls an der Membran angefärbt (Abb. 29, rechts).

Beispiel 5: Identifizierung von BRCOl als neues Tumorantigen

BRCOl und sein Translationsprodukt sind nicht vorbeschrieben. Das erfindungs gemäße Datamining-Verfahren ergab das EST (expressed sequence tag) AI668620. Mit spezifischen Primern (sense: CTTGCTCTGAGTCATCAGATG, antisense: CACAGAATATGAGCCATACAG) wurden RT-PCR Studien zur Expressionsanalyse durchgeführt. Erfindungsgemäß wurde spezifische Expression in testikulärem Gewebe, sowie zusätzlich in normaler Brustdrüse gefunden (Tabelle 5). In allen anderen Geweben ist dieses Antigen transkriptioneil reprimiert. In Brastdrüsentumoren wird es ebenfalls (20 von 20) nachgewiesen. In Brasttumoren ist BRCOl im Vergleich zu der Expression in normalem Brastdrüsengewebe deutlich überexprimiert (Abb. 10).

Durch elektronische Vollängeklonierung unter Nutzung von EST-contigs (folgende EST wurden inkoφoriert AW137203, BF327792, BF327797, BE069044, BF330665) gelang erfindungsgemäß die Klonierung von mehr als 1500 bp dieses Transkriptes (SEQ ID NO:39). Die Sequenz kartiert auf Chromosom lOpl 1-12. In der gleichen Region in unmittelbarer Nähe ist bereits das Gen für ein Mamma-DifferenzierungsAntigen NY-BR-1 beschrieben worden (NM_052997; Jager, D. et al, Cancer Res. 61(5):2055-61, 2001).

Tabelle 5. Expression von BRCOl in Normalgeweben und Brusttumoren

In matched pair (Mama-Karzinom und benachbartes Normalgewebe) Untersuchungen zeigte sich erfindungsgemäß in 70 % der Mama-Karzinome eine BRCOl Überexpression im Vergleich zum Normagewebe.

Somit ist BRCOl ein neues DifferenzierungsAntigen für normales Brastdrüsenepithel, das in Brusttumoren überexprimiert wird.

Dies bestätigt auch die quantitative Realtime-PCR (40 Zyklen, initiale Denaturierung 15 min 95°C, 30 sek 94°C, 30 sek 60°C, und 30 sek 72°C) mit spezifischen Primern (5'- CTTGCTCTGAGTCATCAGATG-3'; 5'-CACAGAATATGAGCCATACAG-3') (Abb. 30 & 31). Diese bestätigte nicht nur das Fehlen von BRCOl in der Mehrheit der Normalgewebe außer Testis und Brust-Normalgeweben, sondern deckte auch eine Überexpression in Brasttumoren auf.

Zum Nachweis von BRCOl Protein wurden Antiköφer durch Immunisieren von Kaninchen hergestellt. Folgende Peptide wurden zur Propagierung dieser Antiköφer genutzt: SEQ ID NO:115: IAPNTRGQQTIVL SEQ ID NO:116: VWKSNGKSILKMPF

Beispiel 6: Identifizierung von TPX1 als neues Tumorantigen

Die Sequenz von TPX1 (Acc-Nr NM_003296; SEQ ID NO:40) und seines Translationsprodukts (SEQ ID NO:41) sind bekannt. Das Antigen ist bisher als lediglich Testis-spezifisch beschrieben worden und zwar als Element der äußeren Fibern und des Akrsosoms von Spermien. Ihm wurde bisher eine Rolle als Adhäsionsmolekül bei der Anheftung von Spermien an Sertoli-Zellen zugeschrieben (O'Bryan, M.K. et al., Mol. Reprod. Dev. 58(l):116-25, 2001; Maeda, T. et al., Dev. Growth Differ. 41(6):715-22, 1999). Erfindungsgemäß wurde erstmals die aberrante Expression von TPX1 in soliden Tumoren gezeigt (Tabelle 6). Aufgrund der ausgeprägten Aminosäure Homologie zwischen TPX1 und dem Neutrophilen-spezifischen Matrix -Glykoprotein SGP 28 (Kjeldsen et al., FEBS Lett 380:246-259, 1996) eignen sich für die Herstellung diagnostischer und therapeutischer Moleküle erfindungsgemäß TPX1 -spezifische Proteinsequenzen, die das Peptid SREVTTNAQR (SEQ ID NO:84) umfassen.

Tabelle 6. Expression von TPX1 in Tumoren

Beispiel 7: Identifizierung von BRCO2 als neues Tumor-Genprodukt

BRCO2 und sein Translationsprodukt sind nicht vorbeschrieben. Das erfindungsgemäße Verfahren ergab die ESTs (expressed sequence tag) BE069341, BF330573 und AA601511. Mit spezifischen Primern (sense: AGACATGGCTCAGATGTGCAG, antisense: GGAAATTAGCAAGGCTCTCGC) wurden RT-PCR Studien zur Expressionsanalyse durchgeführt. Erfindungsgemäß wurde spezifische Expression in testikulärem Gewebe, sowie zusätzlich in normaler Brustdrüse gefunden (Tabelle 7). In allen anderen Geweben ist dieses Genprodukt transkriptionell reprimiert. In Brustdrüsentumoren wird es ebenfalls nachgewiesen. Durch elektronische Vollängeklonierung unter Nutzung von EST-contigs (folgende EST wurden inkoφoriert BF330573, AL 044891 und AA601511) gelang erfindungsgemäß die Klonierung von 1300 bp dieses Transkriptes (SEQ ID 62). Die Sequenz kartiert auf Chromosom 10pl l-12. In der gleichen Region in unmittelbarer Nähe ist bereits das Gen für ein Mamma-DifferenzierangsGenprodukt NY-BR-1 beschrieben worden (NM_052997; Jager, D. et al., Cancer Res. 61(5):2055-61, 2001) und hier liegt das unter Beispiel 6 vorbeschriebene BRCOl. Weiterführende genetische Analysen zeigten erfindungsgemäß, dass die unter SEQ ID NO: 62 aufgeführte Sequenz den bisher nicht beschriebenen 3' untranslatierten Bereich des NY-BR-1 Gens repräsentiert.

Tabelle 7. Expression von BRCO2 in Normalgeweben und Brusttumoren

BRCO2 ist ein neues Differenzierungs-Genprodukt für normales Brastdrüsenepithel, das auch in Brusttumoren exprimiert wird.

Beispiel 8: Identifizierung von PCSC als neues Tumor-Genprodukt

PCSC (SEQ_ID_63) und sein Translationsprodukt sind nicht vorbeschrieben. Das erfindungsgemäße Datamining- Verfahren ergab das EST (expressed sequence tag) BF064073. Mit spezifischen Primern (sense: TCAGGTATTCCCTGCTCTTAC, antisense: TGGGCAATTCTCTCAGGCTTG) wurden RT-PCR Studien zur Expressionsanalyse durchgeführt. Erfindungsgemäß wurde spezifische Expression in normalem Kolon, sowie zusätzlich in Kolonkarzinomen gefunden (Tabelle 5). In allen anderen Geweben ist dieses Genprodukt transkriptionell reprimiert. PCSC kodiert für drei putative ORFs (SEQ_ID_64, SEQ_ID_65 und SEQ_ID_117). Sequenzanalyse von SEQ_ID_64 ergab eine strukturelle Homologie zu CXC-Cytokinen. Darüber hinaus wurden 4 alternative PCSC- cDNA- Fragmente kloniert (SEQ ID NO:85-88). Dabei enthält erfindungsgemäß jede cDNA 3 putative ORFs, die für die in SEQ ID NO: 89- 100 gezeigten Polypeptide kodieren.

Tabelle 8. Expression von PCSC in Normalgeweben und kolorektalen Karzinomen

Somit ist PCSC ein Differenzierungsantigen für normales Kolon-Epithel, das auch in kolorektalen Tumoren sowie in allen untersuchten Kolon-Metastasen exprimiert wird. Die erfindungsgemäß in allen kolorektalen Metastasen nachgewiesene PCSC-Expression machen dieses Tumorantigen zu einem sehr interessanten Target für die Prophylaxe und Behandlung von metastasiernden Kolon- Tumoren.

Es wurde eine quantitative Realtime-PCR (40 Zyklen, initiale Denaturierung 15 min 95°C, 30 sek 94°C, 30 sek 59°C, und 30 sek 72°C) mit den spezifischen Primern (5'- AGAATAGAATGTGGCCTCTAG-3 ' ; 5 ' -TGCTCTTACTCCAAAAAGATG-3 ') durchgeführt (Abb. 32). Diese bestätigt nicht nur das Fehlen von PCSC in der Mehrheit der Normalgewebe außer Testis und kolorektalen Normalgeweben. Sondern es deckt hohe Transkriptmengen in z.B. Darmtumoren auf. Dabei haben Metastasen von Darmtumoren eine signifikant höhere Expression als Primärtumoren. Dies und der Umstand, dass PCSC Homologien mit der Familie der Chemokine untermauern eine Rolle bei erhöhter Zellmotilität und Metastasierungsvorgängen.

Zum Nachweis von PCSC Protein wurden Antiköφer durch Immunisieren von Kaninchen hergestellt. Folgende Peptide wurden zur Propagierung dieser Antiköφer genutzt: SEQ ID NO: 112: GHGPGHPPPGPHH SEQ ID NO : 113 : KPERIAQLTWNEA SEQ ID NO: 114: PRSPTPWSTSLRK Beispiel 9: Identifizierung von SGY-1 als neues Tumorantigen

Die Sequenzen des Transkripts von SGY-1 (SEQ ID NO:70) und seines Translationsprodukt (SEQ ID NO:71) sind in GenBank unter der Zugangsnummer AF177398 veröffentlicht (Krupnik et al., Gene 238, 301-313, 1999). Soggy-1 ist vorbeschrieben als Mitglied der Dickkopf-Protein Familie, welche als Inhibitoren und Antagonisten der Wnt-Familie von Proteinen wirken. Die Wnt-Proteine wiederum haben wichtige Funktionen bei der Embryonalentwicklung. Basierend auf der Sequenz von SGY-1 (SEQ ID NO:70) wurden erfindungsgemäß PCR-Primer generiert (5'-CTCCTATCCATGATGCTGACG-3' und 5'- CCTGAGGATGTACAGTAAGTG-3*) und für RT-PCR- Analysen (95° 15min; 94° 1 min; 63° 1 min; 72° 1 min; 35 Zyklen) in einer Reihe von humanen Geweben eingesetzt. Es zeigte sich, dass die Expression in Normalgeweben auf Testis beschränkt ist. Wie für die anderen eCT beschrieben, konnte erfmdungs gemäß gezeigt werden, dass SGY-1 ektop in einer Reihe von Tumorgeweben aktiviert wird; vgl. Tabelle 9.

Tabelle 9. Expression von SGY-1 in Tumoren

Beispiel 10: Identifizierung von MORC als neues Tumorantigen

Die Sequenzen des Transkripts von MORC (SEQ ID NO:74) und seines Translationsprodukt (SEQ ID NO:75) sind in GenBank unter der Zugangsnummer XM_037008 veröffentlicht (Inoue et al., Hum Mol Genet. Jul;8(7):1201-7, 1999). MORC ist ursprünglich beschrieben als involviert in die Spermatogenese. Mutation dieses Proteins im Maussystem führt zur Gonadenunterentwicklung. Basierend auf der Sequenz von MORC (SEQ ID NO: 74) wurden erfindungsgemäß PCR- Primer generiert (5'-CTGAGTATCAGCTACCATCAG-3' und 5'- TCTGTAGTCCTTCACATATCG-3') und für RT-PCR-Analysen (95° 15min; 94° 1 min; 63° 1 min; 72° 1 min; 35 Zyklen) in einer Reihe von humanen Geweben eingesetzt. Es zeigte sich, dass die Expression in Normalgeweben auf Testis beschränkt ist. Wie für die anderen eCT beschrieben, konnte erfindungsgemäß gezeigt werden, dass MORC ektop in einer Reihe von Tumorgeweben aktiviert wird; vgl. Tabelle 10.

Tabelle 10. Expression von MORC in Tumoren

Claims

Patentansprüche

1. Pharmazeutische Zusammensetzung, umfassend ein Mittel, das die Expression oder Aktivität eines Tumor-assoziierten Antigens hemmt, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus:

(a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, 54-57, 1-5, 29, 31-33, 37, 39, 40, 62, 63, 70, 74, 85-88 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist, (b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert,

(c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und

(d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist.

2. Pharmazeutische Zusammensetzung, umfassend ein Mittel mit tumorhemmender Aktivität, das selektiv ist für Zellen, die eine Expression oder abnormale Expression eines tumorassoziierten Antigens aufweisen, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus

(a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, 54-57, 1-5, 29, 31-33, 37, 39, 40, 62, 63, 70, 74, 85-88, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist,

(b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert,

3. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Ansprach 2, wobei das Mittel die Induktion des Zelltods, die Reduktion des Zellwachstums, eine Schädigung der Zellmembran oder eine Sekretion von Zytokinen bewirkt.

4. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 1 oder 2, wobei das Mittel eine Antisense-Nukleinsäure ist, die selektiv mit der Nukleinsäure hybridisiert, die für das Tumorassoziierte Antigen kodiert.

5. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 1 oder 2, wobei das Mittel ein Antiköφer ist, der selektiv an das Tumor-assoziierte Antigen bindet.

6. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 2, wobei das Mittel ein komplementaktivierender Antiköφer ist, der selektiv an das Tumor-assoziierter Antigen bindet.

7. Pharmazeutische Zusammensetzung, umfassend ein Mittel, das bei einer Verabreichung selektiv die Menge an Komplexen zwischen einem HLA-Molekül und einem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon erhöht, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Grappe ausgewählt ist, bestehend aus:

(a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, 54-57, 1-5, 29, 31-33, 37, 39, 40, 62, 63, 70, 74, 85-88, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist, (b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert,

8. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 7, wobei das Mittel einen oder mehrere Bestandteile umfasst, die aus der Gruppe ausgewählt sind, bestehend aus:

(i) dem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon,

(ii) einer Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon kodiert, (iii) einer Wirtszelle, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon exprimiert, und

(iv) isolierten Komplexen zwischen dem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon und einem HLA-Molekül.

9. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 1, 2 oder 7, wobei das Mittel mehrere Mittel umfasst, die jeweils selektiv die Expression oder Aktivität verschiedener Tumor-assoziierter Antigene hemmen, jeweils selektiv für Zellen sind, die verschiedene Tumor-assoziierte Antigene exprimieren oder die Menge an Komplexen zwischen HLA- Molekülen und verschiedenen Tumor-assoziierten Antigenen oder Teilen davon erhöhen, wobei mindestens eines der Tumor-assoziierten Antigene eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Grappe ausgewählt ist, bestehend aus:

(a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Grappe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, 54-57, 1-5, 29, 31-33, 37, 39, 40, 62, 63, 70, 74, 85-88, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist,

(c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und (d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist.

10. Pharmazeutische Zusammensetzung umfassend einen oder mehrer Bestandteile, die aus der Grappe ausgewählt sind, bestehend aus:

(i) einem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon, (ii) einer Nukleinsäure, die für ein Tumor-assoziiertes Antigen oder einen Teil davon kodiert, (iii) einem Antiköφer, der an ein Tumor-assoziiertes Antigen oder einen Teil davon bindet, (iv) einer Antisense-Nukleinsäure, die spezifisch mit einer Nukleinsäure, die für ein Tumorassoziiertes Antigen kodiert, hybridisiert, (v) einer Wirtszelle, die ein Tumor-assoziiertes Antigen oder einen Teil davon exprimiert, und (vi) isolierten Komplexen zwischen einem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon und einem HLA-Molekül, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus:

(b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert, (c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und

11. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Ansprach 8 oder 10, wobei die Nukleinsäure unter (ii) in einem Expressionsvektor vorliegt.

12. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 8 oder 10, wobei die Nukleinsäure unter (ii) funktionell mit einem Promotor verbunden ist.

13. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 8 oder 10, wobei die Wirtszelle das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon sekretiert.

14. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 8 oder 10, wobei die Wirtszelle zusätzlich ein HLA-Molekül exprimiert, das an das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon bindet.

15. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 14, wobei die Wirtszelle das HLA-Molekül und/oder das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon rekombinant exprimiert.

16. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 14, wobei die Wirtszelle das HLA-Molekül endogen exprimiert.

17. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 8, 10, 14 oder 16, wobei die Wirtszelle eine Antigen-präsentierende Zelle ist.

18. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 17, wobei die Antigen- präsentierende Zelle eine dendritische Zelle oder ein Makrophage ist.

19. Pharmazeutische Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 8, 10 und 13-18, wobei die Wirtszelle nicht-proliferativ ist.

20. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 5 oder 10, wobei der Antiköφer ein monoklonaler Antiköφer ist.

21. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 5 oder 10, wobei der Antiköφer ein chimärer oder humanisierter Antiköφer ist.

22. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 5 oder 10, wobei der Antiköφer ein Fragment eines natürlichen Antiköφers ist.

23. Pharmazeutische Zusammensetzimg nach Ansprach 5 oder 10, wobei der Antiköφer mit einem therapeutischen oder diagnostischen Mittel gekoppelt ist.

24. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 4 oder 10, wobei die Antisense- Nukleinsäure eine Sequenz von 6-50 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, umfasst.

25. Pharmazeutische Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 8 und 10-13, wobei das durch die pharmazeutische Zusammensetzung bereitgestellte Tumor-assoziierte Antigen oder der Teil davon an MHC-Moleküle auf der Oberfläche von Zellen bindet, die eine abnormale Menge des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Teils davon exprimieren.

26. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 25, wobei die Bindung eine cytolytische Reaktion hervorruft und/ oder eine Cytokinausschüttung induziert

27. Pharmazeutische Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1-26, ferner umfassend einen pharmazeutisch verträglichen Träger und/oder ein Adjuvans.

28. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 27, wobei das Adjuvans Saponin, GM-CSF, CpG, Zytokin oder ein Chemokin ist.

29. Pharmazeutische Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1-28, die zur Behandlung einer Erkrankung eingesetzt werden kann, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet.

30. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 29, wobei die Erkrankung Krebs ist.

31. Pharmazeutische Zusammensetzung nach Anspruch 29, wobei die Erkrankung ein Lungentumor, ein Brusttumor, ein Prostatatumor, ein Melanom, ein Colontumor, eine

Metastase eines Colontumors, ein Nierenzellkarzinom oder ein Zervixkarzinom, ein Coloncarcinom oder ein Mammacarcinom ist.

32. Pharmazeutische Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1-31, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Aminosäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 22-24, 58-61, 81, 82, 103-105, 6-13, 14-18, 30, 34-36, 38, 41, 64, 65, 71, 75, 80, 83, 84, 89-100, 101, 102, 106-117 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist.

33. Verfahren zur Diagnose einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend

(i) den Nachweis einer Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder eines Teils davon, und/oder

(ii) den Nachweis des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Teils davon, und/oder (iii) den Nachweis eines Antiköφers gegen das Tumor-assoziierte Antigen oder eines Teils davon und/oder

(iv) den Nachweis von cytotoxischen oder Helfer-T-Lymphozyten, die für das Tumorassoziierte Antigen oder einen Teil davon spezifisch sind in einer aus einem Patienten isolierten biologischen Probe, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus:

34. Verfahren nach Anspruch 33, wobei der Nachweis

(i) die Kontaktierung der biologischen Probe mit einem Mittel, das spezifisch an die Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder den Teil davon, an das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon, an den Antiköφer oder an die cytotoxischen oder Helfer-T-Lymphozyten bindet, und

(ii) den Nachweis der Komplexbildung zwischen dem Mittel und der Nukleinsäure oder dem Teil davon, dem Tumor-assoziierten Antigen oder dem Teil davon, dem Antiköφer oder den cytotoxischen oder Helfer-T-Lymphozyten umfasst.

35. Verfahren nach Anspruch 33 oder 34, wobei der Nachweis mit dem Nachweis in einer vergleichbaren normalen biologischen Probe verglichen wird.

36. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-35, wobei sich die Erkrankung durch die Expression oder abnormale Expression mehrerer verschiedener Tumor-assoziierter Antigene auszeichnet und der Nachweis einen Nachweis mehrerer Nukleinsäuren, die für die mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene kodieren, oder von Teilen davon, den Nachweis der mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene oder von Teilen davon, den Nachweis mehrerer Antiköφer, die an die mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene oder an Teile davon binden, oder den Nachweis mehrerer cytotoxischer oder Helfer- T-Lymphozyten, die für die mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene spezifisch sind, umfasst.

37. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-36, wobei der Nachweis der Nukleinsäure oder des Teils davon mit einer Polynukleotid- Sonde erfolgt, die spezifisch mit der Nukleinsäure oder dem Teil davon hybridisiert.

38. Verfahren nach Anspruch 37, wobei die Polynukleotid-Sonde eine Sequenz von 6-50 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, umfasst.

39. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-36, wobei der Nachweis der Nukleinsäure oder des Teils davon durch selektive Amplifikation der Nukleinsäure oder des Teils davon erfolgt.

40. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-36, wobei das nachzuweisende Tumorassoziierte Antigen oder der Teil davon in einem Komplex mit einem MHC-Molekül vorliegt.

41. Verfahren nach Anspruch 40, wobei das MHC-Molekül ein HLA-Molekül ist.

42. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-36 und 40-41, wobei der Nachweis des Tumor-assoziierten Antigens oder des Teils davon mit einem Antiköφer erfolgt, der spezifisch an das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon bindet.

43. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-36, wobei der Nachweis des Antiköφers mit einem Protein oder Peptid erfolgt, das spezifisch an den Antiköφer bindet.

44. Verfahren zur Bestimmung der Regression, des Verlaufs oder des Ausbruchs einer

Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor- assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend die Überwachung einer Probe aus einem

Patienten, der die Erkrankung aufweist oder in Verdacht steht, an der Erkrankung zu erkranken in Bezug auf einen oder mehrere Parameter, ausgewählt aus der Grappe, bestehend aus:

(i) der Menge der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder eines Teil davon,

(ii) der Menge des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Teils davon,

(iii) der Menge an Antiköφern, die an das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon binden, und

(iv) der Menge an cytolytischen oder Cytokin-ausschüttenden T-Zellen, die für einen Komplex zwischen dem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon und einem MHC-

Molekül spezifisch sind, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus:

45. Verfahren nach Anspruch 44, wobei das Verfahren die Bestimmung des oder der Parameter zu einem ersten Zeitpunkt in einer ersten Probe und zu einem zweiten Zeitpunkt in einer weiteren Probe umfasst und durch einen Vergleich der beiden Proben der Verlauf der Erkrankung ermittelt wird.

46. Verfahren nach Anspruch 44 oder 45, wobei die Erkrankung sich durch die Expression oder abnormale Expression mehrerer verschiedener Tumor-assoziierter Antigene auszeichnet und die Überwachung eine Überwachung

(i) der Menge mehrerer Nukleinsäuren, die für die mehreren verschiedenen Tumorassoziierten Antigene kodieren, oder von Teilen davon,

(ii) der Menge der mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene oder von Teilen davon, (iii) der Menge mehrerer Antiköφer, die an die mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigene oder an Teile davon binden, und/oder

(iv) der Menge mehrerer cytolytischer oder Cytokine-ausschüttender T-Zellen, die für Komplexe zwischen den mehreren verschiedenen Tumor-assoziierten Antigenen oder von Teilen davon und MHC-Molekülen spezifisch sind, umfasst.

47. Verfahren nach einem der Ansprüche 44-46, wobei die Überwachung der Menge der Nukleinsäure oder des Teils davon mit einer Polynukleotid-Sonde erfolgt, die spezifisch mit der Nukleinsäure oder dem Teil davon hybridisiert.

48. Verfahren nach Ansprach 47, wobei die Polynukleotid-Sonde eine Sequenz von 6-50 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, umfasst.

49. Verfahren nach einem der Ansprüche 44-46, wobei die Überwachung der Menge der Nukleinsäure oder des Teils davon durch selektive Amplifikation der Nukleinsäure oder des Teils davon erfolgt.

50. Verfahren nach einem der Ansprüche 44-46, wobei die Überwachung der Menge des Tumor-assoziierten Antigens oder des Teils davon mit einem Antiköφer erfolgt, der spezifisch an das Tumor-assoziierte Antigen oder den Teil davon bindet.

51. Verfahren nach einem der Ansprüche 44-46, wobei die Überwachung der Menge an Antiköφern mit einem Protein oder Peptid erfolgt, das spezifisch an den Antiköφer bindet.

52. Verfahren nach einem der Ansprüche 44-46, wobei die Überwachung der Menge an cytolytischen oder Cytokin-aussschüttenden T-Zellen mit einer Zelle erfolgt, die den Komplex zwischen dem Tumor-assoziierten Antigen oder dem Teil davon und einem MHC- Molekül präsentiert.

53. Verfahren nach einem der Ansprüche 37-38, 42-43, 47-48 und 50-52, wobei die Polynukleotid-Sonde, der Antiköφer, das Protein oder Peptid oder die Zelle nachweisbar markiert sind.

54. Verfahren nach Ansprach 53, wobei der nachweisbare Marker ein radioaktiver Marker oder ein Enzymmarker ist.

55. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-54, wobei die Probe Köφerflüssigkeit und/oder Köφergewebe umfasst.

56. Verfahren zur Behandlung einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend die Verabreichung einer pharmazeutischen Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1-32, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Grappe ausgewählt ist, bestehend aus:

57. Verfahren zur Behandlung, Diagnose oder Überwachung einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend die Verabreichung eines Antiköφers, der an das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon bindet und mit einem therapeutischen oder diagnostischen Mittel gekoppelt ist, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Grappe ausgewählt ist, bestehend aus:

58. Verfahren nach Ansprach 42, 50 oder 57, wobei der Antiköφer ein monoklonaler Antiköφer ist.

59. Verfahren nach Anspruch 42, 50 oder 57, wobei der Antiköφer ein chimärer oder humanisierter Antiköφer ist.

60. Verfahren nach Anspruch 42, 50 oder 57, wobei der Antiköφer ein Fragment eines natürlichen Antiköφers ist.

61. Verfahren zur Behandlung eines Patienten mit einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend: (i) die Entfernung einer Probe mit immunreaktiver Zellen aus dem Patienten,

(ii) die Kontaktierung der Probe mit einer Wirtszelle, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon exprimiert, unter Bedingungen, die eine Produktion cytolytischer oder Cytokine-ausschüttender T-Zellen gegen das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon begünstigen, und (iii) das Einbringen der cytolytischen oder Cytokine-ausschüttenden T-Zellen in den Patienten in einer Menge, die geeignet ist, Zellen zu lysieren, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon exprimieren, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus: (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, 54-57, 1-5, 29, 31-33, 37, 39, 40, 62, 63, 70, 74, 85-88, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist,

(b) einer Nukleinsäure, die imter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert, (c) einer Nukleinsäure, die in Bezug auf die Nukleinsäure unter (a) oder (b) degeneriert ist und (d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist.

62. Verfahren nach Anspruch 61, wobei die Wirtszelle ein HLA-Molekül rekombinant exprimiert, das an das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon bindet.

63. Verfahren nach Ansprach 62, wobei die Wirtszelle ein HLA-Molekül endogen exprimiert, das an das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon bindet.

64. Verfahren zur Behandlung eines Patienten mit einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend:

(i) die Identifizierung einer Nukleinsäure, die von Zellen exprimiert wird, die mit der Erkrankung assoziiert sind, wobei die Nukleinsäure aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus:

(d) einer Nukleinsäure, die zu der Nukleinsäure unter (a), (b) oder (c) komplementär ist, (ii) die Transfektion einer Wirtszelle mit der Nukleinsäure oder einem Teil davon, (iii) die Kultivierung der transfizierten Wirtszelle für eine Expression der Nukleinsäure, und (iv) das Einbringen der Wirtszellen oder eines Extrakts davon in den Patienten in einer Menge, die geeignet ist, die Immunreaktion gegen die Zellen des Patienten, die mit der Erkrankung assoziiert sind, zu erhöhen.

65. Verfahren nach Ansprach 64, ferner umfassend die Identifizierung eines MHC- Moleküls, das das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon präsentiert, wobei die Wirtszelle das identifizierte MHC-Molekül exprimiert und das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon präsentiert.

66. Verfahren nach Anspruch 64 oder 65, wobei die Immunreaktion eine B-Zellen- Reaktion oder eine T-Zellen-Reaktion umfasst.

67. Verfahren nach Ansprach 66, wobei die Immunreaktion eine T-Zellen-Reaktion ist, umfassend die Produktion cytolytischer oder Cytokine-ausschüttenden T-Zellen, die spezifisch für die Wirtszellen sind, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon präsentieren oder spezifisch für Zellen des Patienten sind, die das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon exprimieren.

68. Verfahren nach einem der Ansprüche 61-67, wobei die Wirtszellen nicht-proliferativ sind.

69. Verfahren zur Behandlung einer Erkrankung, die sich durch die Expression oder abnormale Expression eines Tumor-assoziierten Antigens auszeichnet, umfassend: (i) die Identifikation von Zellen aus dem Patienten, die abnormale Mengen des Tumorassoziierten Antigens exprimieren, (ii) die Isolierung einer Probe der Zellen, (iii) die Kultivierung der Zellen, und (iv) das Einbringen der Zellen in den Patienten in einer Menge, die geeignet ist, eine Immunreaktion gegen die Zellen auszulösen, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus: (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Grappe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, 54-57, 1-5, 29, 31-33, 37, 39, 40, 62, 63, 70, 74, 85-88, einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist,

70. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-69, wobei die Erkrankung Krebs ist.

71. Verfahren zur Hemmung der Entwicklung von Krebs bei einem Patienten, umfassend die Verabreichung einer wirksamen Menge einer pharmazeutischen Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1-32.

72. Verfahren nach einem der Ansprüche 33-71, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Aminosäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 22-24, 58- 61, 81, 82, 103-105, 6-13, 14-18, 30, 34-36, 38, 41, 64, 65, 71, 75, 80, 83, 84, 89-100, 101, 102, 106-117 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist.

73. Nukleinsäure, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus: (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 20-21, 54-57, 2-5, 31-33, 37, 39, 62, 63, 85-88 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist, (b) einer Nukleinsäure, die unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäure unter (a) hybridisiert,

74. Nukleinsäure, die für ein Protein oder Polypeptid kodiert, das eine Aminosäuresequenz umfasst, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 23-24, 58-61, 81, 82, 103-105, 7-13, 14-18, 34-36, 64, 65, 80, 83, 84, 89-100, 101, 102, 106-117 einem Teil oder Derivat davon.

75. Rekombinantes DNA- oder RNA-Molekül, das eine Nukleinsäure nach Ansprach 73 oder 74 umfasst.

76. Rekombinantes DNA-Molekül nach Anspruch 75, wobei das rekombinante DNA- Molekül ein Vektor ist.

77. Rekombinantes DNA-Molekül nach Ansprach 76, wobei der Vektor ein viraler Vektor oder ein Bakteriophage ist.

78. Rekombinantes DNA-Molekül nach einem der Ansprüche 75-77, das ferner Expressionskontrollsequenzen umfasst, die die Expression der Nukleinsäure steuern.

79. Rekombinantes DNA-Molekül nach Anspruch 78, wobei die Expressionskontrollsequenzen homo- oder heterolog zu der Nukleinsäure sind.

80. Wirtszelle, die eine Nukleinsäure nach Anspruch 73 oder 74 oder ein rekombinantes DNA-Molekül nach einem der Ansprüche 75-79 umfasst.

81. Wirtszelle nach Anspruch 80, die ferner eine Nukleinsäure umfasst, die für ein HLA- Molekül kodiert.

82. Protein oder Polypeptid, das von einer Nukleinsäure nach Ansprach 73 kodiert wird.

83. Protein oder Polypeptid, das eine Aminosäuresequenz umfasst, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 23-24, 58-61, 81, 82, 103-105, 7-13, 14-18, 34-36, 64, 65, 80, 83, 84, 89-100, 101, 102, 106-117 einem Teil oder Derivat davon.

84. Immunogenes Fragment des Proteins oder Polypeptids nach Anspruch 82 oder 83.

85. Fragment des Proteins oder Polypeptids nach Anspruch 82 oder 83, das an menschlichen HLA-Rezeptor oder menschlichen Antikörper bindet.

86. Mittel, das spezifisch an ein Protein oder Polypeptid oder an einen Teil davon bindet, wobei das Protein oder Polypeptid von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus:

87. Mittel nach Anspruch 86, wobei das Protein oder Polypeptid eine Aminosäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus SEQ ID NOs: 22-24, 58-61, 81, 82, 103-105, 6-13, 14-18, 30, 34-36, 38, 41, 64, 65, 71, 75, 80, 83, 84, 89-100, 101, 102, 106-117 einem Teil oder Derivat davon.

88. Mittel nach Anspruch 86 oder 87, wobei das Mittel ein Antiköφer ist.

89. Mittel nach Anspruch 88, wobei der Antiköφer ein monoklonaler, chimärer oder humanisierter Antiköφer oder ein Fragment eines Antikörpers ist.

90. Antiköφer, der selektiv an einen Komplex aus: (i) einem Protein oder Polypeptid oder einem Teil davon und (ii) einem MHC-Molekül bindet, an das das Protein oder Polypeptid oder der Teil davon bindet, wobei der Antiköper nicht alleine an (i) oder (ii) bindet und das Protein oder Polypeptid von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus:

91. Antiköφer nach Anspruch 90, wobei das Protein oder Polypeptid eine Aminosäuresequenz umfasst, die aus der Grappe ausgewählt ist, bestehend aus SEQ ID NOs: 22-24, 58-61, 81, 82, 103-105, 6-13, 14-18, 30, 34-36, 38, 41, 64, 65, 71, 75, 80, 83, 84, 89- 100, 101, 102, 106-117 einem Teil oder Derivat davon.

92. Antiköφer nach Anspruch 90 oder 91, wobei der Antiköφer ein monoklonaler, chimärer oder humanisierter Antiköφer oder ein Fragment eines Antiköφers ist.

93. Konjugat zwischen einem Mittel nach einem der Ansprüche 86-89 oder einem Antiköφer nach einem der Ansprüche 90-92 und einem therapeutischen oder diagnostischen Mittel.

94. Konjugat nach Anspruch 93, wobei das therapeutische oder diagnostische Mittel ein Toxin ist.

95. Kit zum Nachweis der Expression oder abnormalen Expression eines Tumorassoziierten Antigens, umfassend Mittel zum Nachweis

(i) der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder eines Teils davon, (ii) des Tumor-assoziierten Antigens oder eines Teils davon, (iii) von Antiköφern, die an das Tumor-assoziierte Antigen oder einen Teil davon binden, und/oder

(iv) von T-Zellen, die für einen Komplex zwischen dem Tumor-assoziierten Antigen oder einem Teil davon und einem MHC-Molekül spezifisch sind, wobei das Tumor-assoziierte Antigen eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird, die aus der Gruppe ausgewählt ist, bestehend aus: (a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die aus der Gruppe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, 54-57, 1-5, 29, 31-33, 37, 39, 40, 62, 63, 70, 74, 85-88 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist,

96. Kit nach Anspruch 95, wobei die Mittel zum Nachweis der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, oder eines Teils davon Nukleinsäuremoleküle für die selektive Amplifikation der Nukleinsäure sind.

97. Kit nach Ansprach 96, wobei die Nukleinsäuremoleküle für die selektive Amplifikation der Nukleinsäure eine Sequenz von 6-50 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure, die für das Tumor-assoziierte Antigen kodiert, umfassen.

98. Rekombinantes DNA-Molekül, umfassend eine Promotorregion, die von einer Nukleinsäuresequenz abgeleitet ist, die aus der Grappe bestehend aus SEQ ID NOs: 19-21, 54-57, 1-5, 29, 31-33, 37, 39, 40, 62, 63, 70, 74, 85-88 ausgewählt ist.

99. Pharmazeutische Zusammensetzung, umfassend ein Mittel, das die Expression oder Aktivität des Tumorantigens TPTE SEQ ID NOs: 19, 22 hemmt.

100. Pharmazeutische Zusammensetzung, umfassend ein Mittel, das die Migrations- und Metastasierungsaktivität von TPTE hemmt.

101. Mittel nach Anspruch 99 oder 100, wobei das Mittel ein Antiköφer ist.

102. Mittel nach Anspruch 101, wobei der Antikörper ein monoklonaler, chimärer oder humanisierter Antiköφer oder ein Fragment eines Antiköφers ist.

103. Antiköφer, der an die extrazellulären Proteinbereiche umfassend die Sequenzen SEQ ID NOs: 81-82 bindet.

104. Mittel nach Anspruch 99 oder 100, wobei das Mittel eine Antisense-Nukleinsäure ist, die selektiv mit der Nukleinsäure hybridisiert, die für TPTE kodiert.

105. Mittel nach Anspruch 104, wobei die Antisense-Nukleinsäure eine Sequenz von 6-50 zusammenhängenden Nukleotiden aus der Nukleinsäure, die für TPTE kodiert, umfasst.

106. Mittel nach Anspruch 99 oder 100, wobei das Mittel RNA Interferenz (RNAi) ist.

107. Mittel nach Anspruch 106, wobei RNAi eine sog. short haiφin Struktur (shRNA) enthält.

108. Mittel nach Anspruch 107, wobei shRNA durch Transkription nach Transfektion mit Expressionsvektoren entstehen.

109. Mittel nach Anspruch 107, wobei shRNA durch Transkription von Retroviren entsteht

110. Mittel nach Anspruch 107, wobei shRNA durch lentivirale Systeme vermittelt wird.

111. Mittel nach Anspruch 99 oder 100, wobei das Mittel ein kleines chemisches Molekül ist.

112. Mittel nach Anspruch 111, wobei die kleinen chemischen Moleküle an TPTE binden

113. Mittel nach Anspruch 112, wobei die kleinen chemischen Moleküle an die extrazellulären Bereiche umfassend SEQ ID NO:81-82 binden.

114. Verfahren zur Behandlung Diagnose oder Überwachung eines metastasierenden Tumors, der sich durch die Expression oder abnormaler Expression von TPTE auszeichnet, umfassend die Verabreichung eines Antiköφers, der an TPTE oder einen Teil davon bindet und mit einem therapeutischen oder diagnostischen Mittel gekoppelt ist, wobei das TPTE eine Sequenz aufweist, die von einer Nukleinsäure kodiert wird bestehend aus:

(a) einer Nukleinsäure, die eine Nukleinsäuresequenz umfassend die SEQ ID NO: 19 einem Teil oder Derivat davon ausgewählt ist,

115. Verfahren nach Ansprach 114, wobei der Antikörper ein monoklonaler Antiköφer ist.

116. Verfahren nach Anspruch 114, wobei der Antiköφer ein chimärer oder humanisierter Antiköφer ist.

117. Verfahren nach Anspruch 114, wobei der Antiköφer ein Fragment eines natürlichen Antiköφers ist.