DE2638657A1 - Radioaktiv markiertes orgotein - Google Patents
Radioaktiv markiertes orgoteinInfo
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Description
Radioaktiv markiertes Orgotein Die Erfindung betrifft radioaktiv markiertes Orgotein.
Orgotein ist der offizielle Name, den das United States Adopted Name council einer Familie von artgleichen
wasserlöslichen Proteinen in weitgehend reiner, injizier-, "barer Form, d. h. weitgehend frei von anderen Proteinen,
mit denen es zusammen vorzukommen pflegt oder vermischt ist, verliehen hat. Die US-PS 3.758.682 beschreibt
Orgotein enthaltende pharmazeutische Präparate. Verschiedene Verwendungen von Orgotein sind in den US-PS 3.637.441,
3.773.928, 3.773.929 und 3.781.4H beschrieben. Die Orgotein-Metallproteine sind Mitglieder einer Familie von
Proteinen-Artgenossen, die sämtlich eine charakteristische Kombination von physikalischen, chemischen, biologischen
und pharmakotynamischen Eigenschaften aufweisen. Jeder dieser Artgenossen ist nach seinen physikalischen Kennzeichen
die isolierte, weitgehend reine Form eines globularen, in Pufferlösung und Wasser löslichen Proteins
mit einer sehr kompakten nativen Konformation, die zwar hitzeempfindlich, jedoch gegen Erwärmen auf 65° C bei
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einem pH-".7ert von 4-10 beständig ist« In chemischer Hinsicht
ist jedes dieser Proteine dadurch gekennzeichnet, daß es alle bis auf o-2 der Protein-Aminosäuren,
einen geringen Prozentgehalt an Kohlehydraten, keine lipide, 0,1 bis 1,0 $ Metallgehalt, der aus 1 bis 5
Grammatomen je Mol eines oder mehrerer chelatgebundener,
divalenter Metalle mit einem Ionenradius von 0,6 bis 1,0 A. herrührt, und im wesentlichen keine chelatgebundenen,
monovalenten Metalle oder solche, die Zellgifte darstellen,
in Molekülen aufweist.
Tabelle I zeigt die Verteilung der Aminosäure-Reste, berechnet für ein Molekulargewicht von 32.500, verschiedener
Orgotein-Artgenossen.
811/10
AninosSuren-Zusammensetzung Terschiedener Orgotein-Artgenossen
(Reste pro Mol; HQ * 32 500)
Rind | 53 | Rind | Schaf Pferd Schwein Hund Kaninchen Hatte | 18 | 18 | 16 | - 19 | 22 | Heerschw | . Huhn | Mensch | Bereich | |
Alanin | η | IS | 19 | 18 | C | 8 | 8 | 8 | 7 | 22 | 23 | 22 | 16-23 |
Arginin | 8 | 18 | :8 | 10 | 35 | 31 | 29 | 3« | 30 | 8 | β | 8 | 6-10 |
Asparagin. | 37 | 17 | 36 | 35 | 3* | 36 | 37 | 29-37 | |||||
■Zur· | 22 | β | 6 | 6 | 6 | 6 | S | ||||||
Cystin-1/2 | 6 | 2 | 6 | .6 | 30 | 28 | 30 | 25 | 38 | « | 10 | 8 | M-IO |
Glutaminsäure 21 | 8 | 23 | 22 | 51 | 52 | 53 | 5* | 5« | 29 | 26 | 28 | 21-38 | |
Glycin' | 32 | 52 | 52. | 20 | 16 | 15 | 17 | 20 | 53 | 56 | 51 | 51-56 | |
Histidin | 17 | 16 | 1* | 1* | 16 | 18 | 16 | 16 | 15 | 17 | It | l*-20 | |
Isoleucin | 26 | 18 | 18 | 18 | 16 | 16 | 19 | 12 | 18 | 15 | 17 | 1«-18 | |
Leucin | HiI | 17 | 17 | 2« | 23 | 20 | 21 | 18 | 17 | 15 | 20 | 12-2Ο | |
Lysin | 2 | 21 | 23 | 2 | 2 | 6 | 3 | > | 20 | 21 | 23 | 18-26 | |
Hethionin | 33 | 2 ■ | 2 | 9 | . 8 | 8 | 9 | S | 2 | 3 | 1 | 1-6 | |
Phenylalanin' | 317 | 8 | T | 10 | 10 | 10 | 13 | 10 | 8 | 8 | 8 | 6-9 | |
Prolin | 13 | 15 | 1« | 13 | 20 | 18 | 18 | 12 | 13 | 12 | 10-15 | ||
Serin | 17 | 1* | 16 | 27 | 20 | 21 | 17 | 18 | 15 | 19 | 13-20 | ||
Threonin | 25 | 20 | Nil | Nil | Nil | Nil | Nil | 17 | 18 | 18 | 16-27 | ||
Tryptophan1 | Nil | KiI | Nil | « | 2 | Nil | 2 | Nil | 1. | 2 | 0- 2 | ||
Tyrosin | 2 | 2 | 29 | 29 | 3* | 31 | 35 | Nil | 2 | Nil | 0- · | ||
Talin | 32 | 31 | 304 | 307 | 311 | 315 | 315 | 32 | 30 | 30 | 2-9-35 | ||
Gesamtzahl | 315 | 306 | 309 | 317 | 318 | 3OH-318 |
CD CO OO CO
Im Jahr 1969 wur.de der Rinder-Artgenosse des Orgotein-Proteins
als ein Enzym festgestellt, das die Fähigkeit besitzt, den Abbau von Superoxid-Radikalen in einer Disproportionierungsreaktion
in molekularen Sauerstoff und ,Vasserstoffperoxid zu katalysieren. Der Name "Superoxid
Dismutase" (SOD) wurde dem Protein hinsichtlich dieser enzymatischen Aktivität verliehen; vgl. McOord, J.M. und
Fridovich, I., J.Biol. Chem. Bd. 244·. 1969 S. 6049-6055»
Radioaktiv markierte Verbindungen sind als Diagnosemittel von großem Interesse. Zahlreiche radioaktive
Diagnosemittel enthalten ein radioaktives Halogen, ins-
131 besondere Jod. Beispielsweise werden Thyroxin-J für
131 die Schilddrüse-Diagnose, Natriumdiatrizoat -J zum
Test der Nierenfunktion, das Natriumsalz von Tetrachlor-
131
tetrajodfluorescein-J zum Test der leberfunktion,
tetrajodfluorescein-J zum Test der leberfunktion,
Λ'ΖΛ
Bromthalein-J zum Überprüfen der Gallenblase (N,N'-Hydroxydiacetylbis-(3-methylamino-2,4,6-tri
jodbenzoesäure)-J ^ und N,N'-Adipoylbis-(3-amino-2,4,6-tri3od-
111
benzoesäure)-J ^ ) zum Überprüfen der Leber und der Gallenblase
verwendet. Die Verwendung von radioaktiv markierten Verbindungen in Verbindung mit verschiedenen biochemischen
Verfahren ist ebenfalls bekannt.
131 131
Tetrachlortetrajodfluorescein-J J , Bromthalein-J und
1 QR
Goldkolloid Au ^ wurden zum Test der Leberfunktion verwendet.
Die Verabreichung von mit Tritium markierten Steroiden an Menschen ist bekannt; vgl. Chem. Abstracts Bd, 76
1972, 335 g.
Hinsichtlich einer Diskussion der Verwendung von radioaktiven Spurenelementen in der Medizin siehe Winchell,
H.S., Hospital Practice, Oktober 1971 S. 49 - 60.
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Es wurde jetzt festgestellt, daß radioaktiv markiertes ' Orgotein zur Scintigraphy, insbesondere zur Sichtbarmachung
der Nieren einsetzbar ist, da das Orgotein,rasch in den nieren nach Parenteralverabreichung angereichert
wird.
QQM Gegenstand der Erfindung ist somit ein teilweise mit J^ Tc
chelatgebundenes Orgotein. Ebenfalls Gegenstand der Erfindung ist ein Orgotein, das mit einem radioaktiven
-] 1Z-I
Isotop von Jod, vorzugsweise J, jodiert ist.
Die Erfindung betrifft ebenso pharmazeutische Mittel für die parenterale Verabreichung, bestehend aus einem radioaktiv
markierten Orgotein der Erfindung .im Gemisch mit
einem pharmakologisch verträglichen Träger.
Gegenstand der Erfindung sind ebenfalls Verfahren zur Herstellung der neuen Verbindungen der Erfindung und Verfahren
zu ihrer Verwendung, insbesondere in der Scintigraphie.
Die kompakte native Konformation des Orgotein-Proteins wird, wie es üblicherweise in Tieren vorkommt, durch etwa
2 Grammatome je Mol (gapm) von jeweils chelatgebundenem
Kupfer und Zink aufrechterhalten, wenn das Protein in seinem natürlichen Zustand vorliegt. Diese chelatgebundenen
Metalle können teilweise oder sogar vollständig durch eine Chelataustauschreaktion mit anderen divalenten Metallen
ersetzt sein. Rinder-Orgotein und weitere Orgotein-Artgenossen, die Tyrosin-Reste enthalten, können mit radioaktivem
Jod durch Jodierung der Benzolringe der Tyrosine markiert werden. Es ist deshalb möglich, Orgotein mit
einem radioaktiven Metall durch eine Ohelatreaktion oder Orgotein-Artgenossen mit Tyrosin-Resten mit einem Radioaktiven
Jod-Isotop durch Jodierung zu markieren.
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"Tc ist ein künstlich hergestelltes Isotop mit einer
Halbwertszeit von 5 Stunden und nur mit einer Gammastrahlung von inneren Übergängen. Es klingt zum yy Tc
mit einer Halbwertszeit von 200.000 Jahren ab. Dabei klingen mehrere Millicuries des metastabilen " Tc in
QQM einigen Tagen zu einem geringen Mikrocurieanteil von Tc
ab. Es ist deshalb ein ideales Isotop für die nukleare Medizin und das bevorzugte radioaktive Metall für die
Chelatreaktion mit dem Orgotein.
Kationisches Tc wird durch das Orgotein stark chelatge- :
bunden. Bei dem zum Markieren von Orgotein angewandten Verfahren werden Pertechnetat - Ionen durch metallisches
Zinn zu zweiwertigem Technetium reduziert, die durch das Orgotein chelatgebunden werden können. Die Reaktion wird
zur Verhinderung der Bildung von Zinnkolloiden, die ebenso kationisches Technetium binden können, bei einem sauren
pH-Wert durchgeführt. Wenn das Technetium durch das Orgotein chelatgebunden ist, kann das Reaktionsgemisch ohne
signifikantes Markieren des Zinnkolloids neutralisiert werden.
Zu einem zweckmäßigen Verfahren zum Markieren von Proteinen
mit einem radioaktiven Jod-Isotop gehört das kalte Umsetzen des Proteins mit einem trägerfreien radioaktiven Isotop,
beispielsweise J oder J, und Chloramin-T bei einem leicht alkalischen pH-Wert, beispielsweise etwa 7»5.
Ein mild ablaufendes Verfahren zum Markieren von Proteinen mit '2^J zu hochspezifischen Radioaktivitäten mit
^J-N-Succinimidyl-3-(4-hydroxyphenyl)-propionat ist von
Bolton und Hunder, Biochem. J. Bd. 133 1973 8. 529 beschrieben
worden; vgl. ebenso Lou Dilts, Radioassay Symposium, Hartford, Connecticut, Mai 1974. Hinsichtlich
der Verfahren zum Radiojodieren von Peptiden und Proteinen
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mit Rinderlactoperoxidase vgl. Witte, A. et al, Proc. Nat. Acad. Sol., Bd. 70 (1973) S. 36; Miyachi, Y. et al.,
Endocrinology, Bd. 92 (1973) S. 1725; David, G. et al., Biochem., Bd. 13(1974) S. 1oH; Mollhinney, J. et al*, ·
Endocrinology, Bd. 94, (1974) S. 1259 und Taurog, A. et al., Ibid., S. 1286.
Das radioaktive Orgotein wird vorzugsweise mit einer bestimmten Menge "To markiert, die eine Radioaktivitätsmenge
von etwa 0,1 bis 100, vorzugsweise 5 bis 10 mCi/mg Orgotein aufweist, die etwa 6 σ 10" bis 5 x 10*" , vorzugsweise
10 Grammatome radioaktives Isotop/Mol Orgotein (gapm) entspricht.
ir
Der ^Zn-.Austausch in Orgotein-Protein (Cytocuprein) bis
zu einem gewissen Überschuß wurde von Funakoshi, S. et al.,"
J. Biol. Chem. Bd. 243 (1968) S. 6474 beobachtet und
von Carrico, R. J. et al., J. Biol. Ghem. Bd. 245 (1970) S.
723 besprochen. Es wurde ebenso berichtet, daß zu Menschenblut zugesetztes ^Cu im Orgotein-Protein
(Erythrocuprein) austauscht; (Schieids, G.S. et al,,
J. Clin. Invest., Bd. 40 (1961) S. 2007).
125 131 In ähnlicher Weise hat Orgotein, das mit J oder J
markiert ist vorzugsweise einen Radioaktivitätswert von 0,1 bis 20, insbesondere 10 mOi/ mg Orgotein, was etwa
10"^ bis 10" , vorzugsweise 2 χ 10"2 (J1^1') oder 15 x. - ' '
λ IOC
10 (J ) gapm des radioaktiven Isotops entspricht.
J-markiertes Orgotein hat eine Halbwertszeit von
QQM
8 Tagen, verglichen mit 5 Stunden, die das v Tc-markierte
Orgotein besitzt. Weniger als 1 fo der injizierten Dosis
des radioaktiven .Jods wandert zur Schilddrüse, wenn
■4 nc A "Z 4
das J- oder ^ J-markierte Orgotein injiziert wird, verglichen mit 30 bis 40 $, wenn radioaktives Jod selbst,
injiziert wird. ■
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QQM
In Betracht zu ziehende Äquivalente der JZ> Tc-markierten
64 Orgoteine der Erfindung sind die entsprechenden Cu-,
^Zn- und Co-markierten Orgoteine, die durch Austausch
eines Teils des chelatgebundenen Cu und/oder Zn des nativen Orgoteins in einer '/eise hergestellt v/erden, die
den vorstehend beschriebenen Verfahren zur Herstellung
QQ
von *^Tc-markiertem Orgotein analog ist.
von *^Tc-markiertem Orgotein analog ist.
Die pharmazeutischen Präparate gemäß der Erfindung bestehen aus einem radioaktiv markierten Orgotein der Erfindung
und einem pharmazeutisch akzeptablen Träger. Die Art und die Natur dieses Trägers werden vom Verabreichungsmodus bestimmt.
Die bevorzugten pharmazeutischen Produkte sind sterile, injizierbare Präparate, zum Beispiel sterile injizierbare,
wässrige Lösungen. Solche Lösungen können in bekannter Weise unter Verwendung üblicher Träger zubereitet werden.
Das sterile injizierbare Präparat kann auch eine Lösung oder Suspension in einem nichttoxischen, parenteral
akzeptablen Verdünnungs- oder Lösungsmittel, wie 1,3-Butandiol, sein.
Die erfindungsgemäßen Präparate'enthalten eine wirksame
Einheitsdosismenge eines Orgoteins der Erfindung; d.h.
das markierte Orgotein liegt in einer Konzentration vorj
die die gewünschte Sichtbarmachung in der Scintigraphic zeigt, wenn eine Einheitsdosis des Produkts auf dem für
den speziellen Träger anwendbaren Weg verabreicht wird.
Beispielsweise enthalten flüssige injizierbare Produkte üblicherweise etwa 0,5 bis 20 mg Orgotein je 0,25 bis 10 ml,
vorzugsweise etwa 0,5 bis 5 ml. Es ist einzusehen, daß die zur Sichtbarmachung benötigte Minimaldosis vom Radioaktivitätswert
der speziellen Probe des verabreichten
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Orgoteins abhängt. Da der Teil des verabreichten Orgoteins, der sich in den Nieren sammelt, und sein
Radioaktivitätswert vorher bestimmt werden können, kann die Menge Orgotein, die zur ausreichenden Sichtbarmachung
benötigt wird, leicht berechnet werden.
Das markierte Orgotein wird üblicherweise intravenös . ',.
oder intermuskulär, üblicherweise in einer1 Einzeldosis :'
von etwa 0,5'bis 20 mg, vorzugsweise etwa 0,5 bis 8 mg, ' ;
an Menschen verabreicht. Es ist einzusehen, daß zusätzlich·
zur Sichtbarmachung in der Scintigraphie das markierte.
Orgotein ebenso wirksam ist wie das unmarkierte Orgotein, beispielsweise wie es in der TJS-PS 3.758.682 beschrieben
ist.
Das markierte Orgotein der Erfindung ist besonders zur Sichtbarmachung der Nieren in der Scintigraphie brauchbar,
wo das Orgotein rasch nach intravenöser Verabreichung innerhalb weniger Minuten angereichert wird. Das Orgotein
hat den Vorteil, einen nichttoxischen Träger für das radioaktive Element zur Verfugung zu stellen und in den
Nieren lange genug zu verweilen, wobei eine vorteilhaft lange Zeitdauer von mehreren Stunden, innerhalb der die
scintigraphische Überprüfung abgeschlossen sein muß, von dem Zeitpunkt an bereit steht, wo das markierte Orgotein
verabreicht wird.
Die Beispiele erläutern die Erfindung.
70 9811/108 4
3J Tc-markiertes Orgotein
Eine wasserfreie Probe Orgotein (1-10 mg) wird mit 2
glänzenden Zinn-Schrot-Pellets, 1,0 ml 0,2n Salzsäure und 0,5 ml Pertechnetat-Lösung versetzt. Es wird zehn
Minuten bei Raumtemperatur inkubiert. Die erhaltene Lösung wird als solche verwendet oder vor Gebrauch mit 0,2 η
Natriumcarbonat-Lcsung neutralisiert.
125
125 Die Jodierung von Orgotein mit trägerfreiem J-markiertem
Jod wird mit Chloramin-T ausgeführt. Es wird folgende
Jodierungsmethode (NEN) verwendet:
125 ein Gemisch von 10 mg Orgotein, 10 mOi trägerfreiem J ,
und 50 meg 0hloramin-T wird in 2,5 ml, 0,05m Phosphatpuffer
vom pH-Wert 7,5 30 Minuten bei 9° C gehalten. Anschließend werden 75 meg Batriummetabisulfit zum Stoppen
der Reaktion zugesetzt. Gemäß der Sephadex G-25-Chromatographie werden 83 i* des J ^ in das Org-otein-Molekül einverleibt.
Das markierte Orgotein hat eine spezifische Aktivität von 0,5 mCi/mg und eine radiometrische Reinheit
von 99$ι wobei es zu weniger als 2B/o durch anorganisches
Jod nach dem Reinigen auf einer mit Sephadex-25 gefüllten Säule verunreinigt ist. Die Lösung (ungefähr 10 mg Orgotein
in 4,8 ml)wirä gefroren. Das elektrophoretische Verhalten und die Superoxiddismutase-Aktivität des Orgoteins hat
sich durch das Jodierungsverfahren nicht verändert.
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Gemäß dem "Verfahren von Beispiel 2, jedoch unter Einsetzen
von J^ anstelle von J wird J -markiertes Orgotein mit etwa derselben Radioaktivität wie dae
Produkt von Beispiel 2 hergestellt.
η ητ,/r
yy Tc-markiertes Orgotein wird dadurch erhalten, daß man
1-10 mg wasserfreie Proben von Orgotein mit 2 Zinn-Schrot-Pellets
(glänzend), 1,0 ml 0,2n Salzsäure und 0,5 ml Pertechnetat-Lösung (5-20 mCi) versetzt und anschließend
10 Minuten bei Raumtemperatur inkubiert. Gegebenenfalls wird vor der Injektion mit 1ml 0,2n Natriumcarbonat-Lösung
neutralisiert. Dieses Orgotein wird in den Untersuchungen verwendet.
An Hunden wird eine intravenöse Injizierung von 0,4-1 ml einer 2 bis 5 mCi " Tc-markiertes Orgotein enthaltenden
Lösung zur Abbildung der Nieren verwendet.
QQM
Die Όv Tc-Verteilungen werden auf einem Polaroid-Film abgebildet, der den Oscilloscop-Schirmen von Lochkameras (Hersteller: Picker Nuclear, Inc. und Nuclear Chicago Corporation) ausgesetzt wurde. Quantitative Daten werden unter Verwendung der digitalen Integrierung mit den gleichen Instrumenten erhalten. Die Zellgeometrie ist innerhalb jedes Experiments konstant.
Die Όv Tc-Verteilungen werden auf einem Polaroid-Film abgebildet, der den Oscilloscop-Schirmen von Lochkameras (Hersteller: Picker Nuclear, Inc. und Nuclear Chicago Corporation) ausgesetzt wurde. Quantitative Daten werden unter Verwendung der digitalen Integrierung mit den gleichen Instrumenten erhalten. Die Zellgeometrie ist innerhalb jedes Experiments konstant.
Ratten werden mit Pentabarbital entweder vor der Injektion mit markiertem Orgotein oder kurz vor dem Abtöten betäubt.
Die Organe werden herausgeschnitten und unter die
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Lochkamera gelegt. Das Zentrieren wird mit Hilfe des Oscilloscops-Ausschlags geprüft. Der Hintergrund wird
subtrahiert, wenn er mehr als 1 fa der Zählrate darstellt.
Blutproben werden dadurch erhalten, daß man die Aorta der betäubten Ratten xvährend des Heraus schneidens aufschneidet.
Urinproben werden aus den Blasen sezierter Ratten mit einer Kanüle (27 ga) und einer Spritze ( 3 ml)
entnommen.
Die Radioaktivität an den Stellen der subkutanen Injektion wird dadurch gemessen, daß man über den Teil des
durch die Injektionsstelle gebildeten Feldes mit einer Picker-Kamera integriert. Die Integration wird zu den angezeigten
Zeiten wiederholt.
Ratten werden zur Abbildung der ^y Tc-Yerteilungen innerhalb
2 Minuten nach der Injektion von markiertem Orgotein in die Schwanzvene in Stellung gebracht. Die Nieren erscheinen
bereits fast so markiert wie die Leber und das Herz, die die Blutgefäße darstellen. Anschließend Inst
sich die Radioaktivität· vom Blutgefäßsystem und konzentriert
sich immer mehr in den Fieren, so daß nach 15 Minuten die Hieran die Bilder beherrschen. Eine Spur von Aktivität
erscheint nach 15 Minuten im Urin, die sich sogar nach 4 Stunden nicht viel verstärkt. Die Radioaktivität in den
Heren bleibt bestehen. Die Neutralisierung der zu injizierenden
Lösung beeinflußt nicht die beobachteten Muster.
Nach subkutaner, intraperitonealer oder intramuskulärer
QQM
Verabreichung von ^7 Tc-Örgotein an betäubte Ratten verbleibt
nahezu die gesamte Radioaktivität an der Injektions-
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stelle; über den intraperitonealen Weg füllt es die Bauchhülle und "bleibt dort. Bei nicht betäubten Ratten
verläßt die Markierung langsam die Injektionsstelle und taucht in den liieren auf. Etwa die gleichen Bildintensitäten
für die Injektionsstelle und die Nieren werden nach 2 Stunden erhalten. Das Abziehen nach 3 Stunden
zeigte eine diffuse Radioaktivitätsverteilung über den gesamten Rumpf und das Fell mit heißen Stellen an den
Injektionsstellen. Eine ähnlich rasche Aufnahme von
Ic-Orgotein durch die Nieren wird an 2 Hunden nach
intravenöser Verabreichung beobachtet.
Nahaufnahmen von Nieren von unversehrten Hunden zeigen, daß die Markierung in den Nieren im wesentlichen in der ■
Cortex lokalisiert ist. Ein Markieren der Nebenniere ist nicht sichtbar.
Zählungen von Organen von sezierten Ratten bestätigten'
die Rolle der Nieren beim Lösen von ^" Tc-Orgotein.vom
Serum. Blutproben, die etwa 1/3 bis 1/4 des berechneten Blutvolumens der Tiere darstellen, enthalten 30 Minuten
nach intravenöser Injektion höchstens 2 fo der gesamten
Radioaktivität, Zu dieser Zeit liegen 1/3 bis 2/3 der gesamten Radioaktivität in den Nieren vor. Es wi£d eine
geringe Doaisabhängigkeit hinsichtlich der Anreicherung in der Niere beobachtet, wobei ein höherer Anteil der
injizierten Dosis in den Nieren bei höheren Orgotein-Dosen erscheint.
Zwischen 30 Minuten und 24 Stunden nach der Injektion löst sich das Orgotein fortwährend von der leber, Lunge,
Milz und Magen, was einen Anstieg des Radioaktivitätsanteils in der -Niere und dem Rumpf zur Folge hat. Während
der gesamten Untersuchungszeit enthält der Urin nur * wenige Hundertstel der Gesamtradioaktivität«
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QQM
Nach subkutaner Injektion von ΌΖ> Tc-Orgotein an betäubten Ratten findet keine signifikante Fortbewegung der Markierung von der Injektionastelle statt. Wenn der
gleiche Vorgang an nicht betäubten Ratten durchgeführt wird, findet jedoch eine Fortbewegung statt. Dabei erscheint
1/3 der Markierung in den Nieren nach 2 Stunden. Eine Radioaktivität im Blut ist nicht feststellbar, was
sehr niedrige Aktivitäten in der Leber, Lunge, Milz und Magen zur Folge hat. Die diffuse Markierung des Rumpfes
und der Haut ist dabei für etwa die Hälfte der Gesamtaktivität verantwortlich.
Nach intraperitonealer Injektion an betäubten Ratten liegt das Verhalten von y^ Tc-Orgotein etwa zwischen
dem, was an betäubten Tieren, mit subkutanen und intravenösen Dosen behandelten Tieren beobachtet wird.
Es ist etwas Anreicherung in der Niere nach 30 Minuten meßbar. Zu dieser Zeit enthält das Blut und die Leber
mehrere Hundertstel der Markierung.
125 Verabreichung von J-Orgotein
jeder Hund wird eine 'Joche vor dem Experiment an den vorgesehenen Stofffiechsel-Käfig gewöhnt. Hund 1 wird
125
intravenös in das Vorderbein 0,4 ml J-Orgotein-Lösung
injiziert. Es werden Blutproben sowohl von der Vene des Vorderbeins als auch der Jugularvene in 15-Minuten-Ab- ·
ständen bis zur Tötung 3 Stunden nach der Injektion entnommen. Hund 2 werden subkutan an der Rückseite des ·
125
Halses 0,8 ml J-Orgotein-Lösung injiziert. Es werden Blutproben in 30 Minuten-Abständen bis zum Töten 6 Stunden
Halses 0,8 ml J-Orgotein-Lösung injiziert. Es werden Blutproben in 30 Minuten-Abständen bis zum Töten 6 Stunden
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nach der Injektion entnommen. Hund 3 werden ebenfalls
subkutan 1,2 ml . ^J-Orgotein-Lösung injiziert. Die Hunde sind während des gesamten Experiments nicht betäubt.
Es werden tägliche Urin- und Kotproben bis zum Töten 12 Tage nach der Injektion gesammelt.
Nach dem Töten werden die größeren inneren Organe entfernt. Das Gesamtgewicht jedes Organs wird aufgezeichnet,
charakteristische Proben jedes Organs, beispielsweise Teile der Lunge oder der Leber aus jedem Lappen oder
verschiedene Bereiche der Gedärme, werden der Radioaktivitätsbestimmung unterzogen, Gewebeproben werden nach
dem Homogenisieren mit 3 Teilen V/asser (Gcwicht/Yolumen)
gezählt. Gewebeteile, die nicht vollständig wegen der
Zähigkeit homogenisiert wurden, werden sowohl als Homogenate als auch als Rückstände zur Bestimmung der
Gesamtzählrate gezählt. Sämtliche Proben (0,1 - 1 ml) werden doppelt mit einem automatischen Gammazähler
(Nuclear-Chicago, Modell 4224·) gezählt.
Eine Reihe von Standards, die zu Beginn des Experiments hergestellt wurden, wird jeweils gezählt, wenn die Proben
gezählt werden. Die Radioaktivitätsabnahme als Ergebnis
125
des natürlichen Zerfalls von J- wird dadurch korrigiert, daß die täglichen Standardzählraten zu den Anfangszählraten der Standards zurückbezogen werden. Die Zählergebnisse werden zur Berechnung der spezifischen Aktivität (cpm/ml oder -g) eines Gewebes und des Prozentsatzes der verabreichten Dosis verwendet, die im jeweiligen Gewebe festgestellt wird. Hinsichtlich der letzteren Berechnung wird eine Annahme gemacht, daß das Blut, die Muskeln und das Fett 9»4, 40 bzw. 15 '?<> des Körpergewichts ausmachen.
des natürlichen Zerfalls von J- wird dadurch korrigiert, daß die täglichen Standardzählraten zu den Anfangszählraten der Standards zurückbezogen werden. Die Zählergebnisse werden zur Berechnung der spezifischen Aktivität (cpm/ml oder -g) eines Gewebes und des Prozentsatzes der verabreichten Dosis verwendet, die im jeweiligen Gewebe festgestellt wird. Hinsichtlich der letzteren Berechnung wird eine Annahme gemacht, daß das Blut, die Muskeln und das Fett 9»4, 40 bzw. 15 '?<> des Körpergewichts ausmachen.
Nach intravenöser Verabreichung von 0,4 ml einer Lösung
125 von etwa 0,8 mg frisch hergestelltem ^J-markiertem
Orgotein (insgesamt 6 χ 10 cpm) an Hund 1 vop Gewicht
709811/1064
8,9 kg nimmt die Radioaktivität im Plasma mit einer anfänglichen
biologischen Halbwertszeit von weniger als 15 Minuten (2,7 x 10 cpm/ml Blut) ab. Der Radioaktivitäts-wert
im Blut änderte sich nur wenig zwischen 45 Minuten und 3 Stunden nach der Injektion. ITach 3 Stunden ist
die spezifische Aktivität (cpm/g) der Radioaktivität im
Genebe der Schild drüfse (6,4 x 10 cpm/g) am höchsten.
Die Niere (1,3 x 10 cpm/g), der Blaseninhalt (6,6 χ 10 cpm/ g) und der Magen (5,6 χ 10 cpm/g zeigten höhere spezifische
Aktivitäten als das Blut. Auf Grund der niedrigen spezifischen Aktivität der Galle und des Dünndarms wird
die Gallenabscheidung nicht als größere Ausscheidungs-
125
route für ^J-Orgotein angesehen.
route für ^J-Orgotein angesehen.
ITach subkutaner Verabreichung von 0,8 ml einer Lösung von
-JpC Q
etwa 1,6 mg J-Orgotein (insgesamt 1,2 χ 10 cpm) an
Hund 2 vom Gewicht 8,8 kg wird kein ,Spitzenwert von
J im Blut beobachtet. Die Radioaktivität·steigt allmählich
über 6 Stunden an. Die Radioaktivitätsverteilung im Gewebe nach subkutaner Verabreichung gleicht der
am Ende des intravenösen Experiments. Schilddrüse, Niere, Blaseninhalt und Magen besitzen höhere spezifische Aktivitäten
als Blut.
Einem Hund vom Gewicht 9,3 kg (Hund 3) werden subkutan
125
etwa 2,4 mg J-Örgotein verabreicht. Die Radioaktivitätsausscheidung
wird 12 Tage lang verfolgt. Der Hund scheidet nahezu quantitativ die radioaktive Dosis im Urin mit
dem vierten Tag aus. Die Kotausscheidung ist nur für V/o der Dosis verantwortlich. Nach 12 Tagen hält die
Schilddrüse noch 2,3 $ der verabreichten Dosis zurück. Die spezifische Aktivität in der Schilddrüse, Niete, Leber,
subkutanem Fett und Lunge ist größer als im Blut.
Die Radioaktivität im gesamten Blut de3 Hundes 1 nach intravenöser Injektion des Orgoteins nimmt zu Beginn mit
709811/1064
einer Halbwertszeit von weniger als 15 Minuten ab. Wach einer langsamen Gleichgewichtsperiode von 45
Minuten bleibt die Radioaktivität im Blut im wesentlichen bis zum Abtöten 3 Stunden nach der Injektion
unverändert. Die Schilddrüse zeigt die höchste spezifische Aktivität. Diese Feststellung kann jedoch nicht
125 als Beweis einer umfassenden Dejodierung des J-Orgoteins angesehen werden, da die gesamte, in der Drüse
vorliegende Radioaktivität weniger als 1 bis 2 c/o der
125 Orgotein-Yerunreinigung mit anorganischem J ausmacht. In der Niere, dem Blaseninhalt und Magen werden höhere
Radioaktivitätskonzentrationen beobachtet als im ge-
1 25 samten Blut. Diese Mengen stellen anorganisches J5
125
oder orgoteingebundenes J auf dem Ausscheidungsweg
oder orgoteingebundenes J auf dem Ausscheidungsweg
125
dar. J3 wird nahezu ausschließlich über die Niere ausgeschieden.
Die Ursache für die hohe Radioaktivitätskonzentration in den Magenzellen ist nicht ersichtlich. Es
kann einen Versuch der Magenzellen darstellen, entweder
125 freies oder die gebundene Form von J auszuscheiden.
Wegen der niedrigen spezifischen Aktivität'-der Galle
kommt der Gallenabscheidung keine signifikante führende
125 Rolle bei der Ausscheidung von J-Orgotein zu.
125
Nach der subkutanen Verabreichung von J-Orgotein an Hund 2 steigt der Radioaktivitätswert im Blut allmählibh
innerhalb 6 Stunden, jedoch ohne Bildung eines Spitzenwerts an. Ein Vergleich der Verte im Blut zwischen Hund
und Hund 2 zeigt, daß etwa die Hälfte der subkutanen Dosis möglicherweise den Zugang zum Blut nach 3 Stunden
gefunden hat und daß diese Menge für weitere 3 Stunden im Steigen gehalten -.vird. Die Radioaktivitätsverteilung im
Gewebe nach subkutaner Injektion ähnelt der im intravenösen Experiment. Die Schilddrüse, Niere, der Blaseninhalt und
Magen besitzen höhere spezifische Aktivitäten als das Blut von Hund 2. Gewebsuntersuchungen an der Injektions-
709811/1064
stelle zeigten, daß weniger als 1 $ der injizierten Dosis an der Stelle "blieben. Me gesamte zählbare
Radioaktivität (39,6 $) an Hund 2 ist/niedrig verglichen
mit.59,1 "ß>i die im intravenösen Experiment an Hund
erhalten wurden.
125 Nach subkutaner Injektion von etwa 2,4 mg J-Orgotein
an Hund 3 wird die Ausscheidung der Radioaktivität täglich 12 Tage aufgenommen. Hund 3 scheidet die Radioaktivität
nahezu vollständig am vierten Tag aus, wobei sehr wenig Abscheidung im Kot stattfindet. An Hund 3 zeigt
die Schilddrüse bei '.veitem die höchste spezifische Aktivität
unter sämtlichen Geweben und hält noch über 1 cß>
der verabreichten Dosis zurück.
Niere, Leber und Lunge zeigten spezifische Aktivitäten, die gleich oder größer als die von Blut sind. Die Nebenniere,
Milz und die Verdaungstrakte zeigen dazwischenliegende TiVerte von spezifischer Aktivität.
Gemäß dem Verfahren von Beispiel B wird die Sichtbar-
131
machung der Niere mit ^ J-markiertem Orgotein erreicht, das den gleichen Radioaktivitätswert pro Gramm wie das
machung der Niere mit ^ J-markiertem Orgotein erreicht, das den gleichen Radioaktivitätswert pro Gramm wie das
J-markierte Orgotein besitzt.
Die vorstehenden Beispiele können mit ähnlichem Erfolg unter Einsetzen der allgemeinen oder speziell beschriebenen
reaktanten und/oder Betriebsbedingungen der Erfindung anstelle derjenigen wiederholt werden, die in
den vorstehenden Beispielen verwendet wurden.
70981 1 /1064
Aus der vorstehenden Beschreibung kann der Fachmann leicht die Haupteigenschaften der Erfindung erkennen
und ohne vom Gegenstand der Erfindung abzuweichen, verschiedene Änderungen und Modifizierungen der Erfindung
vornehmen, um sie an verschiedene Verwendungen und Bedingungen anzupassen.
709811/1064
Claims (19)
- Patentans prHch eDurch chelatgebundenes 9 Tc radioaktiv markiertes Orgotein.
- 2. Orgotein nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß es mit 10" bis 10 mCi/mg chelatgebundenem 991Tc markiert ist.
- 3. Orgotein nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Orgotein das Rinder-Orgotein ist.
- 4. Orgotein nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet,es mit 10" bis 10 mCi/mg chelatgebundenem Tc markiert ist.
- 5. Durch ein radioaktives Jodisotop kodiertes, Tyrosinhaltiges Orgotein.
- 6. Orgotein nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet,125
daß es mit J jodiert ist. - 7* Orgotein nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß es eine Radioaktivität von 0,1 bis 20 mCi/mg 125J besitzt.
- 8. Orgotein nach Anspruch 7» dadurch gekennzeichnet, daß der Orgotein-Artgenoese das Rinder-Orgotein ist,
- 9. Verfahren zum Sichtbarmachen der Nieren durch Scintigraphic, dadurch gekennzeichnet, daß man intravenös eine die Nieren sichtbar machende Menge einer Verbindung nach Anspruch 1 verabreicht .70981 1 /1064
- 10. Verfahren zum Sichtbarmachen der Fieren durch
Scintigraphie, dadurch gekennzeichnet, daß man
intravenös eine die Nieren sichtbar machende Menge
einer Verbindung nach Anspruch 5 verabreicht. - 11. Orgotein, das entwedera. durch chelatgebundenes yy Tc, ^Cu, Zu oder
60Go oderb, durch Jodieren der Tyrosinreste mit einem radioaktiven Jodisotop radioaktiv markiert ist. - 12. Verfahren zur Herstellung eines radioaktiven Orgoteins nach Anspruch 11, daduroh gekennzeichnet, daß man
entwedera. Pertechnetat-Ionen in einer Orgoteinlösung bei
einem sauren pH-Wert reduziert und anschließend
das Eeaktionsgemisch neutralisiert,oderb. eine kalte Orgoteinlösung mit einem trägerfreien radioaktiven Jodisotop bei einem leicht alkalischen pH-'fert in Berührung bringt. - 13. Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet,QQM
daß man das Orgotein mit J* Tc radioaktiv markiert. - 14· Verfahren nach Anspruch 13» dadurch gekennzeichnet, daß man das Orgotein mit 10 bis 10 mOi/mg chelatQQM gebundenem ^v Tc radioaktiv markiert.
- 15. Verfahren nach Anspruch 13» dadurch gekennzeichnet, daß man als Orgotein das Rinder-Orgotein verwendet.
- 16. Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, daß man einen Tyrosin enthaltenden Rinder-Artgenossen mit einem radioaktiven Jodisotop jodiert.709811/1064
- 17. Verfahren nach Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet,125 daß man als radioaktives Isotop J einsetzt.
- 18. Verfahren nach Anspruch 17» dadurch gekennzeichnet, daß man den Orgotein-Artgenossen mit einer Radioaktivität von 0,1 bis 20 mCi/mg 125J jodiert.
- 19. Verfahren nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, daß man als Orgotein-Artgenossen Rinder-Orgotein
einsetzt.709811/1064
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US05/611,656 US4022877A (en) | 1975-09-09 | 1975-09-09 | Radioactive labeled orgotein |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
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ID=24449906
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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Country | Link |
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JP (1) | JPS5238008A (de) |
BE (1) | BE845636A (de) |
CA (1) | CA1077419A (de) |
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FR (1) | FR2323398A1 (de) |
GB (1) | GB1561048A (de) |
NL (1) | NL7609877A (de) |
SE (2) | SE7609977L (de) |
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JPS54126597A (en) * | 1978-03-02 | 1979-10-01 | Radiochemical Centre Ltd | Method of and device for fabricating diagnostic scan agent |
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US4584187A (en) * | 1981-04-01 | 1986-04-22 | Wieland Donald M | Imaging agent and method of use |
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-
1976
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- 1976-09-06 NL NL7609877A patent/NL7609877A/xx not_active Application Discontinuation
- 1976-09-07 CA CA260,686A patent/CA1077419A/en not_active Expired
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- 1976-09-09 GB GB37429/76A patent/GB1561048A/en not_active Expired
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1980
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Also Published As
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US4022877A (en) | 1977-05-10 |
SE7609977L (sv) | 1977-03-10 |
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GB1561048A (en) | 1980-02-13 |
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---|---|---|---|
8139 | Disposal/non-payment of the annual fee |