DE19919121A1 - Multimeres CMV-Antigen - Google Patents
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Abstract
Die vorliegende Erfindung betrifft ein zum analytischen Nachweis des humanen Cytomegalovirus (CMV) geeignetes Antigen sowie Nachweisverfahren.
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft ein zum analytischen Nachweis von
Antikörpern gegen humanen Cytomegalovirus (CMV) geeignetes Antigen
sowie Nachweisverfahren.
Das Cytomegalovirus (CMV) gehört zur Unterfamilie β-Herpesviridae der
Herpesviren. Die lineare doppelsträngige DNA hat eine Länge von ca. 230
kbp. Das CMV ist der Erreger der Cytomegalie, einer generalisierten
Infektionskrankheit von Kindern. Kongenitale CMV-Infektionen können zu
Mißbildungen und Entwicklungsstörungen insbesondere bei Kindern führen.
Das Virus erzeugt gewöhnlich latente Infektionen. Eine Reaktivierung oder
eine Erstinfektion kann z. B. bei Patienten erfolgen, die nach einer
Organtransplantation unter immunsuppressiver Therapie stehen oder sich im
Endstadium einer HIV-Infektion befinden. CMV-Infektionen können durch
Blutkontakte oder andere Körperflüssigkeiten wie Speichel, Urin und
Muttermilch übertragen werden.
Es besteht daher ein großes Bedürfnis, Verfahren zum zuverlässigen
Nachweis von CMV bereitzustellen.
WO 96/01321 beschreibt die Verwendung rekombinanter CMV-Antigene, bei
denen es sich um Fusionsproteine handelt, die Bereiche aus
unterschiedlichen CMV-Polypeptiden wie etwa pp52 und pp150, pp65 oder
pp38 enthalten. Diese Fusionsproteine werden vorzugsweise als Gemisch
rekombinanter Antigene in einem Verfahren zur Bestimmung von CMV-
Antikörpern eingesetzt.
WO 98/02746 offenbart rekombinante Polypeptide zum Nachweis von CMV-
Antikörpern, die ein aus dem CMV-Protein pp150 (UL32) stammendes
Peptid und ein oder mehrere Peptide ausgewählt aus den CMV-Proteinen
pp52 (UL44), pp28 (UL99) oder gB (UL55) enthalten. Ein bevorzugtes pp52-
Peptid enthält mindestens einen Teil der Aminosäuresequenz zwischen
Position 266 und 293. Auf Seite 12, ff, wird auf die Möglichkeit verwiesen,
CMV-Antigene mittels rekombinanter DNA-Techniken auch in Form von
Tandemsequenzen herzustellen. Es findet sich jedoch keinerlei Hinweis auf
CMV-pp52-(UL44)-Antigene in multimerer Form.
Ein Nachteil bekannter CMV-IgM-Testformate besteht darin, daß die für ein
zuverlässiges Nachweisverfahren notwendige Kombination von hoher
Sensitivität (richtige Erkennung positiver Proben) und ausreichender
Spezifität (keine irrtümliche Einstufung negativer Proben als positiv) nur
schwer zu erreichen ist. Überraschenderweise wurde festgestellt, daß die
Verwendung eines CMV-Antigens, das mindestens zwei Einheiten eines
mindestens 15 Aminosäuren langen Abschnitts zwischen Position 264 und
293 des CMV p52 (pp52; UL44)-Antigens enthält und eine Länge von
maximal 60 Aminosäuren aufweist, die Bereitstellung eines Testverfahrens
ermöglicht, welches sowohl eine hohe Sensitivität als auch eine hohe
Spezifität besitzt. Hingegen zeigt weder die Verwendung des Peptids in
monomerer Form noch die Verwendung einer längeren Peptidsequenz
(Aminosäuren 202 bis 293) des CMV p52-Antigens in multimerer Form
zufriedenstellende Resultate.
Ein erster Aspekt der Erfindung ist somit ein CMV-Antigen umfassend
mindestens zwei Einheiten von bis zu 60 Aminosäuren langen
Peptidsequenzen aus dem CMV p52-Antigen, wobei jede der
Peptidsequenzen einen mindestens 15 Aminosäuren langen Abschnitt
zwischen Position 264 und 293 des CMV p52-Antigens enthält. Die
Nummerierung bezieht sich auf die bei Chee et al. (Curr. Top. Microbiol.
Immunol. 154 (1990), 125) angegebene Sequenz des CMV p52-Antigens,
die in SEQ ID NO 1 und 2 dargestellt ist. Das CMV-Antigen enthält
vorzugsweise mindestens drei Einheiten von CMV-Peptidsequenzen und
besonders bevorzugt 4 bis 8, insbesondere 4, 5 oder 6 Einheiten von CMV-
Peptidsequenzen. Die CMV-Peptidsequenzen können jeweils gleich oder
verschieden sein, wobei das Vorhandensein von gleichen Peptidsequenzen
im allgemeinen bevorzugt ist.
Eine CMV-Peptideinheit des multimeren Antigens enthält 15 bis 60 aus dem
CMV p52-Antigen stammende Aminosäurereste und ist vorzugsweise frei
von weiteren Aminosäuresequenzen aus dem CMV p52-Antigen. Der N-
Terminus der CMV-Peptideinheiten liegt vorzugsweise jeweils im Bereich
zwischen Position 244 und 275, besonders bevorzugt im Bereich von
Position 254 und 275 und am meisten bevorzugt im Bereich von Position
259 und 270 des CMV p52-Antigens. Der C-Terminus liegt vorzugsweise
jeweils im Bereich zwischen Position 290 und 303 und besonders bevorzugt
zwischen Position 290 und 298 des CMV p52-Antigens.
Eine Peptideinheit des CMV-Antigens weist eine Länge von 15 bis 40,
insbesondere von 20 bis 35 Aminosäuren auf. Gute Ergebnisse wurden mit
einem multimeren Antigen zusammengesetzt aus 30 Aminosäuren langen
Peptideinheiten jeweils von Position 264 bis 293 des CMVp52-Antigens
erhalten. Die Lokalisierung von immunologisch reaktiven Teilbereichen, die
sich innerhalb des Bereichs zwischen Position 264 und 293 befinden, kann
nach bekannten Methoden des Epitopmapping (Geysen et al., Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 81 (1984), 3998-4002; Wilcheck und Bayer, Annal.
Biochem. 74 (1988), 1; Wienhues et al., Clin. Biochem. 26 (1993), 295 und
DE-A-41 22 160) ermittelt werden.
Die Sequenz der Peptideinheiten des erfindungsgemäßen multimeren CMV-
Antigens basiert vorzugsweise auf der Sequenz des CMV-Virusstammes
AD 169 und Varianten davon, wie sie bei Chee et al. (Curr. Top. Microbiol.
Immunol. 154 (1990), 125-169; WO 96/01321 und Dargan et al., J. Virol.
71 (1997), 9833 ff) angegeben sind. Weiterhin kann die
Aminosäuresequenz auch auf Basis der p52-Sequenzen anderer CMV-Isolate
wie sie beispielsweise bei Martin et al. (Am. J. Pathol. 145 (1994) 440 bis
451) beschrieben sind, konstruiert werden. Vorzugsweise hat die
Aminosäuresequenz der einzelnen CMV-Peptideinheiten jedoch mindestens
95% Identität zu der in SEQ ID NO. 1/2 angegebenen Sequenz des p52
Antigens aus dem CMV-Stamm AD169.
In einer bevorzugten Ausführungsform ist das erfindungsgemäße CMV-
Antigen ein genetisch kodiertes lineares Fusionspolypeptid, d. h. ein
Fusionspolypeptid welches von einer rekombinanten Nukleinsäure kodiert
ist und in einer geeigneten Wirtszelle exprimiert werden kann. In solchen
rekombinanten Fusionspolypeptiden können einzelne CMV-Peptideinheiten
gegebenenfalls durch heterologe Peptidsequenzen getrennt sein, die eine
Länge von beispielsweise bis zu 10 Aminosäuren, insbesondere 2 bis 5
Aminosäuren aufweisen. Weiterhin können am N- oder/und am C-Terminus
zusätzliche heterologe, d. h. CMV-fremde Peptidsequenzen vorhanden sein.
Diese heterologen Sequenzen können als Spacer-Sequenzen (insbesondere
zwischen den einzelnen Peptideinheiten), expressionsverstärkende
Sequenzen (insbesondere am N-Terminus), Aufreinigungs-Hilfssequenzen,
sog. Tag-Sequenzen, z. B. Poly-His-Sequenzen (insbesondere am N- oder/und
C-Terminus), proteolytische Spaltsequenzen (am N- oder/und C-Terminus)
oder/und Sequenzen zur Kopplung von Markierungsgruppen, z. B. Lys- oder
Cys-Reste, dienen.
Beispiele solcher genetisch kodierten Fusionsproteine sind das dimere und
das tetramere Fusionsprotein, die in Fig. 2 und 3 gezeigt sind. Am N-
Terminus befindet sich eine die Expression in E.coli verbessernde Sequenz
(Met-Asp-Ala) gefolgt von einer Enterokinase-Erkennungsstelle (Asp-Asp-
Asp-Asp-Lys), einer hydrophilen Tag-Sequenz. Anschließend folgt eine
Sequenz von insgesamt vier monomeren Peptideinheiten (Glu-Asn-Phe. . .
Gly-Gly) die jeweils durch zwei Aminosäuren lange Spacer-Sequenzen (Arg-
Ser) getrennt sind. Am C-Terminus befindet sich eine 8 Histidinreste
umfassende His-Tag-Sequenz, die die Aufreinigung des Proteins durch
Affinitätschromatographie über ein Metallchelat ermöglicht.
Darüber hinaus kann das erfindungsgemäße CMV-Antigen jedoch auch ein
durch chemische Peptidsynthese oder/und Kopplung an einen Träger
hergestelltes multimeres Antigen sein, wie es z. B. in WO 96/03652
beschrieben ist. Ein bevorzugtes derartiges multimeres Antigen weist eine
Struktur der allgemeinen Formel (I) auf:
T(-P)n
wobei T einen Träger bedeutet, P eine Peptid- oder Polypeptidsequenz
bedeutet, die mindestens eine CMV-Peptideinheit wie zuvor definiert enthält
und kovalent an den Träger gekoppelt ist und n eine Zahl von ≧ 2 ist,
wobei n keine ganze Zahl bedeuten muß, da die Belegung des Trägers mit
Epitopen in einem Reaktionsansatz statistisch erfolgen kann.
Die an den Träger gekoppelten CMV-Antigensequenzen umfassen
vorzugsweise synthetische Peptidsequenzen mit einer Länge von 15 bis 60
Aminosäuren, die gegebenenfalls neben dem eigentlichen Epitopbereich
noch eine Spacerbereich mit einer Länge von vorzugsweise 1-10
Aminosäuren enthalten können. Die Peptidepitope können über den N-
Terminus, den C-Terminus oder über reaktive Gruppen in der Seitenkette an
den Träger gekoppelt werden. Eine Möglichkeit der Kopplung besteht darin,
die Trägermoleküle durch Reaktion mit bekannten Linkersubstanzen an einer
NH2-Gruppe zu aktivieren und ein SH-aktiviertes Peptid-Derivat kovalent an
den Träger zu koppeln. Beispiele für geeignete Träger sind Peptide,
Polypeptide oder synthetische Träger wie etwa Dextrane, Goldpartikel oder
synthetische Polymere. Beispiele für Polypeptide sind Albumine,
unspezifische Immunglobuline, Immunglobulinfragmente, β-Galactosidase,
Polylysin etc. Vorzugsweise wird der Träger derart gewählt, daß er keine
störende Kreuzreaktivität mit CMV-Antikörpern oder anderen in humanen
Proben vorkommenden Substanzen zeigt.
Weiterhin kann das CMV-Antigen eine Struktur der allgemeinen Formel (II)
aufweisen:
P1{P2[P3(P4)t]s}r
wobei P1, P2, P3 und P4 Peptidsequenzen mit einer Länge bis zu 60
Aminosäuren bedeuten und mindestens zwei dieser Peptidsequenzen eine
CMV-Peptideinheit wie zuvor definiert enthalten, r 1 oder 2 ist, s eine ganze
Zahl von 0 bis 4 ist und t eine ganze Zahl von 0 bis 8 ist, wobei das
Antigen mindestens eine Verzweigungsstelle enthält.
Das Antigen der Formel (II) bildet eine baumartige Struktur mit maximal 7
Verzweigungsstellen, wenn P1, P2, P3 und P4 lineare Peptidsequenzen sind
und enthält vorzugsweise 2 bis 8 immunologisch reaktive CMV-
Epitopbereiche. Diese Epitopbereiche sind vorzugsweise nicht direkt,
sondern über Spacerbereiche wie zuvor definiert miteinander verknüpft. Die
Verzweigungen in der Struktur werden durch Verwendung trifunktioneller
Linkermoleküle, insbesondere trifunktioneller Aminosäuren, z. B. Lysin oder
Ornithin in die Struktur eingebaut.
Für die Anwendung in einem Testverfahren ist es oft zweckmäßig, ein CMV-
Antigen zu verwenden, welches mindestens eine Markierungsgruppe
oder/und mindestens eine Festphasenbindegruppe enthält. Bevorzugt sind
nichtradioaktive Markierungsgruppen, die indirekt oder/und indirekt an das
Antigen gekoppelt werden können. Bei einer direkten Markierung ist die ein
nachweisbares Meßsignal erzeugende Gruppe direkt auf dem Antigen
lokalisiert. Beispiele für solche direkt signalerzeugenden Gruppen sind
Chromogene (fluoreszierende oder lumineszierende Gruppen, Farbstoffe),
Enzyme, Elektrochemilumineszenzgruppen oder Metallpartikel, die auf
bekannte Weise an das Antigen gekoppelt werden können. Eine andere Art
der Markierung ist die indirekte Markierung, bei der das CMV-Antigen mit
einer indirekt nachweisbaren Gruppe gekoppelt ist, mit einer Biotin- oder
Haptengruppe, die durch Reaktion mit einem geeigneten Bindepartner
(Streptavidin, Avidin bzw. Anti-Hapten-Antikörper), der wiederum eine
signalerzeugende Gruppe trägt, nachweisbar ist. Beispiele für
Festphasenbindegurppen sind Biotin oder Haptene, die mit einer
Streptavidin- oder Anti-Hapten-Antikörper-beschichteten Festphasen
oberfläche bindefähig sind.
Ein weiterer Aspekt der Erfindung ist eine rekombinante Nukleinsäure, die
für ein multimeres CMV-Antigen, wie zuvor definiert, kodiert. Die für
einzelne CMV-Peptideinheiten kodierende Nukleotidsequenz kann aus CMV-
Virusisolaten gewonnen werden, gegebenenfalls entsprechend der
Kodonnutzung in der für die rekombinante Expression verwendeten
Wirtszelle modifiziert und durch bekannte Techniken wie Amplifikation,
Restriktionsspaltung oder/und Subklonierung in eine multimere Form
überführt werden. Besonders bevorzugt ist eine hinsichtlich der
Kodonnutzung in E.coli optimierte Nukleinsäuresequenz. Weiterhin betrifft
die Erfindung einen rekombinanten Vektor, der mindestens eine Kopie einer
Nukleinsäure wie zuvor definiert in operativer Verknüpfung mit einer
Expressionskontrollsequenz enthält. Beispiele für geeignete Vektoren sind
bei Sambrook et al. (Molecular Cloning, A Laboratory Manual (1989), Cold
Spring Harbor, Laboratory Press) angegeben. Neben der für das Antigen
kodierenden Sequenz und der Expressionskontrollsequenz enthalten die
rekombinanten Vektoren vorzugsweise ein Selektionsmarkergen und einen
Replikationsursprung. Bevorzugte Vektoren sind Plasmide, insbesondere
prokaryontische Plasmide.
Noch ein weiterer Aspekt der Erfindung ist eine rekombinante Zelle, die
mindestens eine erfindungsgemäße Nukleinsäure oder einen
erfindungsgemäßen Vektor enthält. Vorzugsweise ist die rekombinante Zelle
eine prokaryontische Zelle, insbesondere eine E.coli Zelle.
Die erfindungsgemäßen multimeren CMV-Antigene können als
Nachweisreagenz in einem Verfahren zur Bestimmung von CMV-Antikörpern
oder CMV-Antigenen in einer zu testenden Probe, insbesondere einer
humanen Probe wie etwa einer Körperflüssigkeit, z. B. Serum, Plasma,
Speichel etc. verwendet werden. Besonders bevorzugt eignen sich die
multimeren CMV-Antigene in Verfahren zum Nachweis von CMV-IgM-
Antikörpern, wie sie zur Früherkennung von CMV-Primärinfektionen, CMV-
Sekundärinfektionen und einer Reaktivierung von CMV nach einer
Latenzphase eingesetzt werden. Der Nachweis von CMV-Antigenen kann
durch kompetitive Verfahren erfolgen, wobei die erfindungsgemäßen
multimeren Antigene vorzugsweise in markierter Form eingesetzt werden.
Noch ein weiterer Aspekt der Erfindung ist ein Verfahren zum
immunologischen Nachweis eines Analyten ausgewählt aus CMV-
Antikörpern und CMV-Antigenen in einer Probe, wobei man die Probe mit
einem Nachweisreagenz, das ein erfindungsgemäßes CMV-Antigen enthält,
und gegebenenfalls weiteren Reagenzien in Kontakt bringt und das
Vorhandensein oder/und die Menge des Analyten in der Probe bestimmt.
Vorzugsweise verwendet man ein heterogenes Testverfahren und bestimmt
den Analyten über Bindung an eine Festphase, z. B. an die Wände eines
Reaktionsgefäßes oder einer Mikrotiterplatte, an einen Biochip oder an eine
partikuläre Festphase. Besonders bevorzugt verwendet man partikuläre
Festphasen wie etwa Kunststoffbeads oder magnetische Beads.
Für den Nachweis von CMV-IgM-Antikörper wird vorzugsweise ein Test
nach dem µ-Capture-Prinzip verwendet, welcher folgende Schritte umfaßt:
- a) Inkontaktbringen einer zu testenden Probe mit einer Festphase und einem IgM-spezifischen Reagenz, z. B. einem monoklonalen oder polyklonalen gegen humanes IgM gerichteten Antikörper, das (a) an der Festphase immobilisiert ist oder (b) an der Festphase immobilisiert werden kann, und Immobilisieren von IgM-Antikörpern aus der Probe an der Festphase,
- b) Abtrennen von nichtgebundenen Probenbestandteilen, um störende Antikörper anderer Klassen, insbesondere IgG zu entfernen, oder/und Zugeben eines Entstörungsreagenz, welches gegen Antikörper einer von IgM verschiedenen Klasse gerichtet ist,
- c) Zugeben eines für CMV-Antikörper spezifischen Nachweisreagenz enthaltend ein erfindungsgemäßes Antigen, das (a) eine Markierungsgruppe trägt oder (b) mit einer Markierungsgruppe bindefähig ist, und
- d) Bestimmen des Vorhandenseins oder/und der Menge von CMV-IgM- Antikörpern in der Probe durch Bestimmung der an die Festphase gebundenen Markierungsgruppen.
Das erfindungsgemäße Verfahren ist jedoch nicht auf das µ-Capture-Format
beschränkt, sondern es können auch andere Testformate eingesetzt werden
wie etwa der Doppelantigenbrückentest, bei dem ein festphasenseitiges und
ein markiertes lösliches Antigen zur Bildung von immobilisierten
Immunkomplexen mit den nachzuweisenden CMV-Antikörpern verwendet
werden oder ein sog. indirekter Test, bei dem ein festphasenseitiges
Antigen zur Immobilisierung von CMV-Antikörpern verwendet wird und
anschließend ein Nachweis der gebundenen Antikörper durch Verwendung
eines gegen die konstante Region des gebundenen Antikörpers gerichteten
Reagenz durchgeführt wird. Ebenso können die erfindungsgemäßen
multimeren Antigene auch in kompetitiven Verfahren zum Nachweis von
CMV-Antigenen eingesetzt werden.
Bei dem bevorzugten µ-Capture-Testprinzip und auch bei anderen
Testformaten wird oftmals ein Nachweisreagenz verwendet, das neben dem
erfindungsgemäßen Antigen noch weitere CMV-Antigene enthält. Diese
weiteren CMV-Antigene können beispielsweise aus angereicherten nativen
CMV-Antigenen oder/und rekombinanten CMV-Antigenen, insbesondere
Mischungen solcher rekombinanter CMV-Antigene ausgewählt werden.
Besonders bevorzugt ist die Verwendung einer Kombination des
erfindungsgemäßen multimeren CMV-Antigens mit angereicherten nativen
CMV-Antigenen.
Darüber hinaus kann während des Testverfahrens ein Entstörungsreagenz
zugesetzt werden, um unerwünschte Wechselwirkungen von Komponenten
des Nachweisreagenz mit Probenbestandteilen zu vermeiden. Insbesondere
beim klassenspezifischen Nachweis von CMV-Antikörpern, z. B. CMV-IgM-
Antikörpern, kann ein Entstörungsreagenz eingesetzt werden, welches
gegen Antikörper einer von IgM verschiedenen Immunglobulinklasse,
insbesondere gegen IgG gerichtet ist. Ein Beispiel für ein solches
Entstörungsreagenz ist in WO 96/14337 beschrieben und besteht aus einer
Antikörperzusammensetzung, die gegen die Fd-Region der schweren Kette
einer spezifischen Immunglobulinklasse, z. B. gegen die Fd-Gamma-Region
gerichtet ist. Ein weiteres Beispiel für ein Entstörungsreagenz ist der in WO
98/23955 beschriebene Zusatz von Bindepartnern der nachzuweisenden
Antikörper in monomerer Form, die bevorzugt an IgG-Antikörper, nicht aber
an IgM-Antikörper binden.
Schließlich betrifft die Erfindung auch noch einen Reagenzienkit zum
Nachweis von CMV in einer Probe, welcher ein erfindungsgemäßes
multimeres CMV-Antigen sowie gegebenenfalls andere Testkomponenten,
z. B. eine Festphase, ein Anti-IgM-Reagenz sowie übliche Puffer und
Verdünnungsmittel enthält.
Weiterhin wird die Erfindung durch die nachfolgenden Beispiele und
Abbildungen erläutert. Es zeigen:
Abb. 1: Die Nukleotidsequenz eines monomeren synthetischen
CMV-Gens und die Aminosäuresequenz des
korrespondierenden monomeren CMV-Antigens.
Abb. 2: Die Nukleotidsequenz eines dimeren synthetischen
CMV-Gens und die Aminosäuresequenz des
korrespondierenden dimeren CMV-Antigens.
Abb. 3: Die Nukleotidsequenz eines tetrameren synthetischen
CMV-Gens und die Aminosäuresequenz des
korrespondierenden tetrameren CMV-Antigens.
SEQ ID NO. 1/2: Die Nukleotidsequenz des CMV-p52-Antigens und die
korrespondierende Aminosäuresequenz.
Die für die Aminosäuren 264 bis 293 des CMV-Antigens p52 (UL44)
kodierende Nukleotidsequenz wurde in das von Qiagen bezogene
Expressionsplasmid pQE 60 kloniert.
Diese Aminosäuresequenz wurde mit dem Programm Backtranslat von
Genetic Computer Group Inc. unter Verwendung der für häufige E.coli
Proteine spezifischen Codons revers transkribiert. Die DNA wurde am 5'-
Ende mit einer für Met-Asp-Ala kodierenden Sequenz gefolgt von einer für
eine Enterokinase-Erkennungsstelle (Asp-Asp-Asp-Asp-Lys), einer
hydrophilen Tag-Sequenz, kodierenden Nukleotidsequenz verlängert. Am 3'-
Ende der CMV-Sequenz wurde eine BgIII-Erkennungsstelle angefügt, die für
die anschließende Multimerisierung der Nukleotidsequenz benötigt wird.
Weiterhin wurde am 3'-Ende eine für ein Histidin-Tag mit 8 Histidinresten
kodierende Nukleinsäuresequenz angefügt. Zusätzlich wurden die Codons
für zwei Lysinreste in die Histidin-Tag-Sequenz eingefügt, um eine bessere
chemische Derivatisierung des rekombinanten Proteins über die
Aminoseitengruppen von Lysin zu ermöglichen. Die Nukleotidsequenz des
rekombinanten Gens und die korrespondierende Aminosäuresequenz ist in
Fig. 1 gezeigt. Alle Prozeduren erfolgten nach Vorschriften gemäß "Current
Protocols in Molecular Biology", Wiley Interscience, sofern nicht anders
angegeben.
Vier Oligonukleotide wurden chemisch synthetisiert wie folgt (die
Nummerierung der Basenpaare bezieht sich auf die in Fig. 1 gezeigte
Sequenz):
- 1. Oligonukleotid HE-1 forward: Base 1 bis 60 (oberer Strang)
- 2. Oligonukleotid HE-2 reverse: Base 100 bis 40 (unterer Strang)
- 3. Oligonukleotid HE-3 forward: Base 80 bis 140 (oberer Strang)
- 4. Oligonukleotid HE-4 reverse: Base 185 bis 121 (unterer Strang)
Die Synthese des monomeren Gens erfolgte durch PCR in zwei Schritten.
Zunächst wurden zwei Teile mit den Oligonukleotiden 1 bis 2 oder 3 bis 4
synthetisiert. Hierzu wurden zwei Reaktionsansätze mit 5 µl 10 × Taq-PCR-
Puffer (Pharmacia), 5 µl dNTP (jeweils 1 mM), Oligo HE-1 und HE-2 bzw.
HE-3 und HE-4 (jeweils 0,1 nmol) und Wasser auf 45 µl angesetzt. Nach
Zugabe von 50 µ1 Öl wurden Reaktionen in einem Perkin Eimer Cycler 9600
mit folgendem Programm durchgeführt:
- a) Zyklus 1
98°C für 2 min
50°C für 7 min
72°C für 40 s - b) Zyklen 2 und 3
95°C für 40 s
50°C für 40 s
72°C für 40 s - c) Zyklen 4 bis 12
95°C für 40 s
65°C für 40 s
72°G für 40 s
Die Amplifikationsreaktion wurde 5 min nach Erreichen von 50°C im ersten
Zyklus durch Zugabe von 5 µl Polymerasemix (5 U Taq-Polymerase
(Pharmacia) und 2,5 U Pfu-Polymerase (Stratagene) in 5 µl 1 × Taq Puffer)
gestartet. Die Synthese der PCR-Produkte wurde durch Analyse von 5 µl der
Reaktion auf einem 2% Agarosegel nachgewiesen.
Zur Synthese des vollständigen monomeren Gens wurden vier identische
Reaktionen angesetzt, die jeweils 5 µl 10 × PCR-Puffer, 5 µl 1 mM dNTP,
20 pmol oligo HE-1 und HE-4, 5 µl DNA (Produkt der Reaktionsstufe I
gereinigt mit dem Qiagen PCR Reinigungskit) und Wasser auf 45 µl
enthielten. Die Amplifikation wurde wie in Schritt 1 gestartet. Das
Amplifikationsprogramm war wie für Reaktion 1 aber mit 12 anstelle von 9
Zyklen in, Schritt (c)
Das resultierende PCR-Produkt wurde mit den Restriktionsenzymen Ncol und
HindIII geschnitten und über Agarosegelelektrophorese gereinigt. Dieses
Fragment wurde dann in dem mit Ncol und HindIII geschnittenen
Expressionsvektor pQE60 (Qiagen) ligiert und in kompetente E.coli XL1-
Bakterien (Stratagene) kloniert. Ein Klon wurde zur Expression und
Sequenzierung ausgewählt. Dieser Klon, der die Aminosäuren 264 bis 293
des CMV-Antigens UL44 in monomerer Form enthielt und die erwartete
Sequenz wie in Fig. 1 gezeigt aufwies, wurde pQE60-HEUL44/3
bezeichnet.
Ein rekombinantes Gen, welches zwei Einheiten der CMV-Peptidsequenzen
enthält, wurde wie folgt kontruiert: Eine die monomere Sequenz enthaltende
DNA Insertion aus dem Plasmid pQE60-HEUL44/3 wurde mit dem
Restriktionsenzym EcoRI (singuläre Restriktionsstelle 15 bp stromaufwärts
der Ncol-Stelle) und BgIII herausgeschnitten. Das Fragment wurde durch
Elektrophorese über ein Agarosegel gereinigt und dann in das mit den
Restriktionsenzymen EcoRI und BamHI geschnittene und mit Phosphatase
aus Garnelen behandelte Plasmid pQE60-HEUL44/3 ligiert. Der
Ligationsansatz wurde in E.coli XL1 transformiert. Ein Klon mit einem
Plasmid, das bei Restriktionsspaltung bei BamHI und BgIII ein DNA-Fragment
mit der erwarteten Größe von 200 bp ergab, wurde pQE60-HEUL-D1
bezeichnet (Sequenz in Fig. 2 gezeigt).
Aus dem in Beispiel 2 hergestellten Plasmid pQE60-HEUL-D1 wurde eine
DNA-Insertion, die das dimerisierte Gen enthielt, mit den
Restriktionsenzymen EcoRI und BgIII herausgeschnitten. Nach Reingung
über ein Agarosegel wurde das 205 bp lange DNA-Fragment in den mit den
Restriktionsenzymen EcoRI und BamHI geschnittenen und mit Phosphatase
aus Garnelen behandelten Vektor pQE60-HEUL-D1 ligiert. Der
Ligationsansatz wurde zur Transformation kompetenter E.coli XL1 Bakterien
verwendet. Ein Klon mit einem Plasmid, der bei Restriktionsschnitt mit
BamHI und BgIII ein DNA-Fragment mit der erwarteten Größe von 385 pb
ergab, wurde pQE60-HEULTetra 3 bezeichnet. Die Sequenz dieses Plasmids
ist in Fig. 3 gezeigt.
Zur Expression wurde der E.coli Stamm XL2 (Stratagene) mit den Plasmiden
pQE60-HEULTetra 3 und pREP4 (Kanamycin-resistentes Repressorplasmid
bezogen von Qiagen) cotransformiert. Die Synthese des rekombinanten
Proteins wurde bei einer optischen Dichte von 1,2 (600 nm) durch IPTG für
3 h bei 37°C in TB-Medium induziert. Es wurde in hoher Ausbeute ein
Protein mit dem erwarteten Molekulargewicht von 8 kD (SDS-
Polyacrylamidgelektrophorese) erhalten. Die Reinigung über eine Nickel-
NTA-Säule ergab eine Ausbeute von 100 mg/l Kultur.
Polystyrolbeads mit Durchmessern von 7 mm wurden mit einem
monoklonalen Anti-IgM-Antikörper beschichtet. 10 µl Probe (CMV-IgM
negative Seren und CMV-IgM positive Seren) wurden mit 250 µl Puffer
(60 mM Citrat, 0,4% Tween, 0,4% Casein pH 7,7) und einem
beschichteten Bead 15 min lang bei 37°C inkubiert und anschließend
gewaschen. Dann wurden 10 µl monomeres oder tetrameres p52 Antigen-
Peroxidase-Konjugat (ca. 100 mUABTS/ml) und 200 µl Puffer (50 mM
Glycinamid, 50 mM KCl, Detergenz und Stabilisatoren pH 8,5) zugegeben
und 1 h lang bei 37°C inkubiert. Nach Waschen wurde die an das
Polystyrolbead gebundene Peroxidaseaktivität mit dem Peroxidasesubstrat
3,3',5,5'-Tetramethylbenzidin (TMB) und Messung der Extinktion bei
650 nm bestimmt.
Tabelle 1 zeigt einen Vergleich des Tests von CMV-IgM negativen Seren mit
p52 Tetramer und p52 Monomer. Es ist zu erkennen, daß die Reaktivität mit
p52 Tetramer in allen Fällen erheblich geringer als die Reaktivität mit p52
Monomer ist.
Tabelle 2 zeigt die Ergebnisse mit CMV-IgM positiven Seren. Die Spalte S/M
gibt das jeweilige Verhältnis der Extinktion einer positiven Serumprobe zu
dem Mittelwert bei negativen Serumproben gemäß Tabelle 1 an. Es ist
ersichtlich, daß das Verhältnis der Extinktion bei positiven Seren zur
Extinktion bei negativen Seren im Falle des p52 Tetramer signifikant höher
als beim p52 Monomer ist. Dies bedeutet eine höhere Testspezifität und
Sensitivität.
Besonders gute Resultate werden bei Verwendung einer Kombination des
erfindungsgemäßen p52 Tetramers mit angereicherten nativen CMV-Antigen
erhalten. Das native CMV-Antigen wird dabei vorzugsweise in indirekt
markierter Form zusammen mit einem monoklonalen Anti-pp65-Antikörper-
Peroxidase-Konjugat eingesetzt.
Die Tetramerisierung eines größeren Bereichs des p52 Proteins
(Aminosäuren 202 bis 293) ergab keine zufriedenstellenden Resultate.
Claims (27)
1. CMV-Antigen umfassend mindestens 2 Einheiten von bis zu 60
Aminosäuren langen Peptidsequenzen aus dem CMV p52-Antigen,
wobei jede der Peptidsequenzen einen mindestens 15 Aminosäuren
langen Abschnitt zwischen Position 264 und 293 des CMVp52-
Antigens enthält.
2. CMV-Antigen nach Anspruch 1
dadurch gekennzeichnet,
daß es mindestens 3 Einheiten von CMV-Peptidsequenzen enthält.
3. CMV-Antigen nach Anspruch 2,
dadurch gekennzeichnet,
daß es 4 bis 8 Einheiten von CMV-Peptidsequenzen enthält.
4. CMV-Antigen nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß der N-Terminus der CMV-Peptideinheiten jeweils im Bereich
zwischen Position 244 und 275 des CMV p52-Antigens liegt.
5. CMV-Antigen nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß der C-Terminus der CMV-Peptideinheiten jeweils im Bereich
zwischen Position 290 und 303 des CMV p52 Antigens liegt.
6. CMV-Antigen nach einem der Ansprüche 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet,
daß es ein genetisch kodiertes lineares Fusionspolypeptid ist.
7. CMV-Antigen nach Anspruch 6,
dadurch gekennzeichnet,
daß die CMV-Peptideinheiten durch heterologe Peptidsequenzen von
bis zu 10 Aminosäuren Länge voneinander getrennt sind.
8. CMV-Antigen nach Anspruch 6 oder 7,
dadurch gekennzeichnet,
daß zusätzlich am N- oder/und C-Terminus heterologe
Peptidsequenzen vorhanden sind.
9. CMV-Antigen nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß es die in Fig. 2 oder Fig. 3 gezeigte Aminosäuresequenz
aufweist.
10. CMV-Antigen nach einem der Ansprüche 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet,
daß es eine Struktur der allgemeinen Formel (I) aufweist:
T(-P)n
wobei T einen Träger bedeutet, P eine Peptid- oder Polypeptidsequenz bedeutet, die mindestens eine CMV-Peptideinheit wie Anspruch 1 definiert enthält und kovalent an den Träger gekoppelt ist und n eine Zahl von ≧ 2 bedeutet.
T(-P)n
wobei T einen Träger bedeutet, P eine Peptid- oder Polypeptidsequenz bedeutet, die mindestens eine CMV-Peptideinheit wie Anspruch 1 definiert enthält und kovalent an den Träger gekoppelt ist und n eine Zahl von ≧ 2 bedeutet.
11. CMV-Antigen nach einem der Ansprüche 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet,
daß er eine Struktur der allgemeinen Formel (II) bedeutet:
P1{P2[P3(P4)t]s}r
wobei P1, P2, P3 und P4 Peptidsequenzen mit einer Länge bis zu 60 Aminosäuren bedeuten und mindestens zwei dieser Peptidsequenzen eine CMV-Peptideinheit wie in Anspruch 1 definiert enthalten, r 1 oder 2 ist, s eine ganze Zahl von 0 bis 4 ist und t eine ganze Zahl von 0 bis 8 ist und wobei das Antigen mindestens eine Verzweigungsstelle enthält.
P1{P2[P3(P4)t]s}r
wobei P1, P2, P3 und P4 Peptidsequenzen mit einer Länge bis zu 60 Aminosäuren bedeuten und mindestens zwei dieser Peptidsequenzen eine CMV-Peptideinheit wie in Anspruch 1 definiert enthalten, r 1 oder 2 ist, s eine ganze Zahl von 0 bis 4 ist und t eine ganze Zahl von 0 bis 8 ist und wobei das Antigen mindestens eine Verzweigungsstelle enthält.
12. CMV-Antigen nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß es mindestens eine Markierungsgruppe oder/und mindestens eine
Festphasenbindegruppe enthält.
13. CMV-Antigen nach Anspruch 12,
dadurch gekennzeichnet,
daß es eine Markierungsgruppe ausgewählt aus Enzymen,
Fluoreszenzgruppen, Lumineszenzgruppen und Elektrochemi
lumineszenzgruppen enthält.
14. Rekombinante Nukleinsäure,
dadurch gekennzeichnet,
daß sie für ein CMV-Antigen nach einem der Ansprüche 1 bis 9
kodiert.
15. Rekombinanter Vektor,
dadurch gekennzeichnet,
daß er mindestens eine Kopie eine Nukleinsäure nach Anspruch 14
in operativer Verknüpfung mit einer Expressionskontrollsequenz
enthält.
16. Rekombinante Zelle,
dadurch gekennzeichnet,
daß sie mindestens eine Nukleinsäure nach Anspruch 14 oder einem
Vektor nach Anspruch 15 enthält.
17. Verwendung eines CMV-Antigens nach einem der Ansprüche 1 bis
13 als Nachweisreagenz in einem Verfahren zur Bestimmung eines
Analyten ausgewählt aus CMV-Antikörpern und CMV-Antigenen in
einer Probe.
18. Verwendung nach Anspruch 17,
dadurch gekennzeichnet,
daß die Probe eine humane Probe ist.
19. Verwendung nach Anspruch 17 oder 18 zum Nachweis von CMV-
IgM-Antikörpern.
20. Verwendung nach einem der Ansprüche 17 bis 19 zur Erkennung von
CMV-Primärinfektionen, CMV-Sekundärinfektionen und einer
Reaktivierung von CMV nach einer Latenzphase.
21. Verfahren zum immunologischen Nachweis eines Analyten
ausgewählt aus CMV-Antikörpern und CMV-Antigenen in eine Probe,
dadurch gekennzeichnet,
daß man die Probe mit einem Nachweisreagenz, das ein CMV-
Antigen nach einem der Ansprüche 1 bis 13 enthält, und
gegebenenfalls weiteren Reagenzien in Kontakt bringt und das
Vorhandensein oder/und die Menge des Analyten in der Probe
bestimmt.
22. Verfahren nach Anspruch 21,
dadurch gekennzeichnet,
daß man den Analyten über Bindung an eine Festphase bestimmt.
23. Verfahren nach Anspruch 22,
dadurch gekennzeichnet,
daß man eine partikuläre Festphase verwendet.
24. Verfahren nach einem der Ansprüche 21 bis 23 zum Nachweis von
CMV-IgM-Antikörpern umfassend die Schritte:
- a) Inkontaktbringen einer zu testenden Probe mit einer Festphase und einem IgM-spezifischen Reagenz, das (a) an der Festphase immobilisiert ist oder (b) an der Festphase immobilisiert werden kann, und Immobilisieren von IgM-Antikörpern aus der Probe an der Festphase,
- b) Abtrennen von nichtgebundenen Probebestandteilen oder/und Zugeben eines Entstörungsreagenz, welches gegen Antikörper einer von IgM verschiedenen Klassen gerichtet ist,
- c) Zugeben eines für CMV-Antikörper spezifischen Nachweisreagenz enthaltend ein Antigen nach einem der Ansprüche 1 bis 13, das (a) eine Markierungsgruppe trägt oder (b) mit einer Markierungsgruppe bindefähig ist, und
- d) Bestimmen des Vorhandenseins oder/und der Menge von CMV-IgM-Antikörpern in der Probe durch Bestimmung der an die Festphasen gebundenen Markierungsgruppen.
25. Verfahren nach einem der Ansprüche 21 bis 24,
dadurch gekennzeichnet,
daß man ein Nachweisreagenz verwendet, das weitere CMV-
Antigene enthält.
26. Verfahren nach Anspruch 25,
dadurch gekennzeichnet,
daß die weiteren CMV-Antigene aus angereicherten nativen CMV-
Antigenen und Mischungen rekombinanter CMV-Antigene ausgewählt
werden.
27. Reagenzienkit zum Nachweis eines Analyten ausgewählt aus CMV-
Antikörpern und CMV-Antigenen,
dadurch gekennzeichnet,
daß er neben anderen Testkomponenten ein multimeres CMV-Antigen
nach einem der Ansprüche 1 bis 13 enthält.
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DE1999119121 DE19919121B4 (de) | 1999-04-27 | 1999-04-27 | Multimeres CMV-Antigen |
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8181 | Inventor (new situation) |
Inventor name: BOLLHAGEN, RALF, DR., 82377 PENZBERG, DE Inventor name: BURCKHARDT, JEAN, DR., MAGDEN, CH |
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R016 | Response to examination communication | ||
R018 | Grant decision by examination section/examining division | ||
R020 | Patent grant now final |
Effective date: 20121103 |
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R119 | Application deemed withdrawn, or ip right lapsed, due to non-payment of renewal fee |