CZ309424B6 - Způsob přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, magnetický kompozit a jeho použití - Google Patents

Způsob přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, magnetický kompozit a jeho použití Download PDF

Info

Publication number
CZ309424B6
CZ309424B6 CZ2015-288A CZ2015288A CZ309424B6 CZ 309424 B6 CZ309424 B6 CZ 309424B6 CZ 2015288 A CZ2015288 A CZ 2015288A CZ 309424 B6 CZ309424 B6 CZ 309424B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
gold
silver
particles
composite
magnetic core
Prior art date
Application number
CZ2015-288A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ2015288A3 (cs
Inventor
Robert Prucek
Prucek Robert doc. RNDr., Ph.D.
Klára Černá
Klára Bc. Černá
Aleš Panáček
Panáček Aleš doc. RNDr., Ph.D.
Libor KvĂ­tek
CSc. Kvítek Libor doc. RNDr.
Radek ZBOŘIL
Zbořil Radek prof. RNDr., Ph.D.
Original Assignee
Univerzita Palackého v Olomouci
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univerzita Palackého v Olomouci filed Critical Univerzita Palackého v Olomouci
Priority to CZ2015-288A priority Critical patent/CZ309424B6/cs
Publication of CZ2015288A3 publication Critical patent/CZ2015288A3/cs
Publication of CZ309424B6 publication Critical patent/CZ309424B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/36Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Actinomyces; from Streptomyces (G)
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/65Raman scattering
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/544Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being organic
    • G01N33/549Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being organic with antigen or antibody entrapped within the carrier

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Hard Magnetic Materials (AREA)

Abstract

Řešení se týká způsobu přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, kdy se k vodné disperzi polystyrenových mikročástic s magnetickým jádrem přidá stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl a/nebo částice stříbra a/nebo zlata, a nakonec se případně přidá roztok redukčního činidla, přičemž magnetický kompozit případně dále obsahuje streptavidin. Předmětem řešení je rovněž magnetický kompozit pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie připravitelný způsobem podle předkládaného řešení, který obsahuje kompozit polystyrenových mikročástic s magnetickým jádrem a částic zlata a/nebo stříbra. Dále je předmětem řešení použití magnetického kompozitu pro povrchem zesílenou Ramanovu spektroskopii.

Description

Oblast techniky
Vynález se týká způsobu přípravy magnetického kompozitu za účelem použití v oblasti povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, magnetického kompozitu a jeho použití.
Dosavadní stav techniky
Vývoj rychlých, citlivých a specifických metod identifikace různorodých látek, pokud možno vyžadujících minimální množství analyzovaného vzorku, je velmi žádoucí a potřebný. Tento požadavek se týká zcela jistě řady oblastí lidské činnosti. Například pro efektivní léčbu bakteriálních infekcí je nezbytné použití rychlých a specifických metod identifikace konkrétního patogenu. V praxi zavedené a využívané postupy či techniky jsou většinou náročné jak z hlediska ekonomického, časového a také z hlediska nutnosti dostatečného proškolení odborného personálu. Konvenční imuno- či histochemické metody zahrnují časově náročné kultivace patogenů ve vhodném růstovém médiu, tak aby bylo možné specifikovat konkrétní bakteriální kmen.
Spektroskopické metody jako například infračervená, fluorescenční či luminiscenční spektroskopie představují slibný nástroj pro tyto účely. Ve srovnání s fluorescenčními či luminiscenčními metodami umožňuje infračervená spektroskopie poskytnout detailnější a specifičtější informace o analyzované látce. Problematické je však použití této techniky ve vodných roztocích, a to kvůli značné absorpci infračerveného záření molekulami vody, což je možné překonat za využití Ramanovy spektroskopie, která umožňuje měření ve vodném (tedy fyziologickém) prostředí. Použití klasické Ramanovy spektroskopie je bohužel limitováno značně nízkou účinností Ramanova rozptylu, kdy pro analýzu je nutné použití excitačního laseru o značném výkonu, dlouhé doby záznamu spekter, a to navíc jen pro analýzu vzorků s poměrně velkou koncentrací sledovaného analytu. Zmíněný nedostatek lze překonat využitím povrchově zesílené Ramanovy spektroskopie (SERS). Fleischmannův objev povrchem zesíleného Ramanova rozptylu (SERS) v roce 1974 na stříbrné elektrodě a zejména jeho znovuobjevení na koloidních částicích stříbra v roce 1977 Creightonem znamenal vznik nové velmi citlivé analytické metody, umožňující detekci molekul v oblasti piko až femtomolů (Doeming W. E. and Nie S. M., J Phys Chem B, 106, 2002). Vysoké zesílení, dosahujících hodnot až 1015 umožnilo dokonce detekci jediné molekuly adsorbované na jediné stříbrné nanočástici (Michaels M. et al., J Am Chem Soc, 121, 1999; Nie S. and Emory S. R., Science, 275, 1997). Nejpoužívanějšími materiály pro použití v oblasti povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie jsou substráty na bázi stříbra a zlata. Částice stříbra pro aplikaci v oblasti SERS jsou nejčastěji připravovány redukcí stříbrné soli tetrahydridoboritanem (Creighton J. A. et al., J Chem Soc Faraday Trans 2, 75, 1979), citrátem sodným (Lee P. C. and Meisel D., J Phys Chem 86, 1982) či hydroxylaminem (Leopold N. and Lendl B., J Phys Chem B 107, 2003). Jako redukční činidlo pro redukci stříbrných iontů a vznik částic stříbra lze použít redukujících cukrů (Kvítek L. et al., J Mater Chem, 2005). Výše zmíněná redukční činidla jsou často také využívána pro přípravu zlatých koloidních částic aplikovatelných v oblasti SERS (Creighton J. A. et al., J Chem Soc Faraday Trans 2, 75, 1979; Lee P. C. and Meisel D., J Phys Chem 86, 1982; Yuan H., J Phys Chem C, 115, 2011). Tyto koloidní částice připravené výše uvedenými postupy však samy o sobě, zejména v případě nanočástic stříbra, neposkytují výrazné zesílení Ramanova signálu a za tímto účelem musejí být upraveny, k čemuž se hojně využívá přídavku roztoku anorganických iontů, zejména chloridů (Leopold, N. and Lendl, B. J Phys Chem B 107,2003; Michaels A. et al., J Am Chem Soc 121,1999; Leng W. N. et al., J Raman Spectrosc 37, 2006; Zhang P. X. et al., J Raman Spectrosc 21, 1990; Campbell M. et al., J Raman Spectrosc 30, 1999; Doering W. E. and Nie S. M., J Phys Chem B 106, 2002). Mechanismus působení těchto iontů na aktivaci nanočástic stříbra nebyl zcela vysvětlen, jedno z pravděpodobných vysvětlení tohoto efektu spočívá v částečné agregaci nanočástic stříbra
- 1 CZ 309424 B6 způsobené uvedenými ionty. Nedávno bylo prokázáno, že v oblasti kontaktu dvou či více částic dochází k velmi výraznému povrchovému zesílení Ramanova signálu (Dadosh T. et al., ACS Nano 3, 2009; Li. W. Y. et al., Nano Lett 9, 2009; Brus L., Acc Chem Res 41, 2008). Velmi výrazná hodnota zesílení Ramanova signálu je také dosahována na nepravidelných částicích obsahujících množství nerovností a zakřivení na svém povrchu, například na částicích hvězdicovitého tvaru či částicích obsahujících na svém povrchu velké množství tmovitých výstupků (Yuan H. et al, Chem Mater 19, 2007; Yuan H. et al., J Phys Chem C 115, 2011; Li S. et al., ACS Appl Mater Interfaces 5, 2013; Chen K. et al., Analyst 137, 2012).
Substráty na bázi stříbra či zlata byly využity pro studium a detekci či stanovení řady významných či nebezpečných látek, jako například persistentních organických polutantů (Guermni L., et al., Anal Chim Acta 624, 2008), bisfenolu A (Xue L, et al., Anal Chim Acta 777, 2013), polychlorovaných bifenylů (Bantz K. C., et al, Vib Spectrosc 50, 2009), antibiotik (He L., et al., J Raman Spectrosc 41, 2010), póly cyklických aromatických uhlovodíků (Guerrini L, et al., Anal Chem 81, 2009; Jones C. L., et al. Anal Bioanal Chem 394, 2009), trinitrotoluenu (Dasary S. S. R., et al, J Am Chem Soc 131, 2009; Mahmoud K. H.and Zourob M., Analyst 138, 2013), ricinu (He L., et al., J Food Sci 76,2011), bakterií či kvasinek (Walter A, et al., Lab Chip 11,2011; Culha M., et al., Surf Interface Anal 42, 2010; Fan C., et al., Appl Microbiol Biotechnol 92, 2011;), markérů bakterií (Cheng H-W., et al, Anal Chem 81, 2009; Cowcher D. P., et al., Anal Chem 85, 2013).
Značná řada publikovaných prací však využívá nespecifické a neselektivní interakce s částicemi stříbra či zlata, které slouží jakožto zesilovače Ramanova signálu. Zajímavou a slibnou metodu pro selektivní interakci či separaci látek (zejména organických, např. různých markérů) nabízí systém avidin-biotin. Avidin byl objeven již ve 40. letech minulého století, jedná se o protein o molekulové hmotnosti 67 kDa sestávající ze čtyř stejných podjednotek. Tento glykoprotein je značně stabilní a odolává řadě extrémních podmínek (teplota, denaturační činidla, pH). Význačná je pro avidin velmi silná interakce s biotinem (vitamín B7 či vitamín H). Tato interakce s asociační konstantou 1015 M1 představuje jednu z nej silnějších nekovalentních interakcí. Avidin kromě interakce s biotinem je však schopen i řady nespecifických interakcí s jinými látkami. Tento fakt byl překonán prostřednictvím snížení obsahu sacharidů ve struktuře proteinu bez ovlivnění jeho interakce s biotinem. Tato látka je na trhu k dispozici od řady výrobců pod názvy NeutrAvidin (Thermo Scientific Pierce), NeutraLite (Bélovo) či ExtrA vidin (Sigma-Aldrich). Další alternativu představuje protein streptavidin izolovaný z bakterie Streptomyces avidinii. Jedná se o homolog avidinu, také se čtyřmi podjednotkami, vykazující podobnou afinitu k biotinu, tak jako avidin. Jelikož je na trhu k dispozici velká řada biotinylovaných protilátek (případně lze provést biotinylaci protilátky za použití známých postupů), tak lze tohoto systému biotinylovaná protilátkastreptavidin využít pro řadu aplikací zabývajících se studiem či detekcí rozmanitých látek (Dundas Ch. M. et al., Appl Microbiol Biotechnol 97, 2013; Sapsford K. E. et al., Chem Rev 113, 2013).
Výhodným krokem je nanesení žádané protilátky na magnetický nosič, umožňující selektivní zachycení žádaného antigenu a následně pak i jeho separaci, přečištění a případné zakoncentrování pro následnou analýzu. Tímto přístupem byla např. provedena detekce a separace patogenů (Wang Y. et al., Anal Bioanal Chem 399, 2011) či imunoglobulinu IgG (Chen S. et al., Chem Comm 47, 2011). V těchto případech však byla separace provedena na magnetických částicích pokrytých vhodnou protilátkou a poté byly teprve přidány modifikované koloidní částice zlata, jež slouží jako zesilovače Ramanova signálu daného analytu. Tyto postupy jsou však experimentálně náročné a zdlouhavé z hlediska měření povrchem zesílených Ramanových spekter.
Ještě výhodnější oproti předešlým postupům je nanesení částic stříbra přímo na magnetický nosič modifikovaný protilátkou případně modifikovaný streptavidinem. Předmětem publikace Balzerová A. et al., Anal Chem 86, 2014 je nanesení částic stříbra na částice magnetitu. Tento kompozit je následně modifikován polyethylenglykolem a karboxymethylcelulózou s následným navázáním streptavidinu. Nedostatkem tohoto postupu je, že probíhá v pěti reakčních krocích, což značně zvyšuje riziko nereprodukovatelnosti přípravy uvedeného substrátu a vyžaduje pečlivé promývání vzorku mezi jednotlivými reakčními kroky. Celý proces navíc vyžaduje několik hodin. Taktéž
-2CZ 309424 B6 vlivem magnetických sil dochází k agregaci částic uvedeného kompozitu. Podobný vícekrokový postup přípravy byl použit v publikaci Hongrong J. et al., J Biomed Nanotechnol 9, 2013 pro přípravu streptavidinem modifikovaného třívrstvého core-shell kompozitu Fe3O4@SiO2@Au.
Podstata vynálezu
Předkládaný vynález řeší nevýhody stavu techniky přípravou magnetického kompozitu pro účely selektivní a specifické detekce či studia látek pomocí povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie (SERS), jejíž podstata spočívá vtom, že se k polystyrénovým mikročásticím obsahujícím magnetické jádro přidají stříbrné, zlatité či zlatné ionty a provede se jejich redukce, nebo se přidají částice stříbra a/nebo zlata, přičemž polystyrénové mikročástice a/nebo částice stříbra a/nebo zlata mohou s výhodou obsahovat streptavidin. Částice zlata či stříbra (přidané ve formě částic nebo vzniklé in situ redukcí) se naváží na polystyrénové mikročástice s magnetickým jádrem a fungují jako zesilovač Ramanova signálu daného analytu.
Polystyrénové mikročástice mohou být modifikovány streptavidinem (tj. obsahovat streptavidin), například mohou být pokryty streptavidinem. Polystyrénové mikročástice pokryté streptavidinem jsou výhodné pro selektivní a specifickou separaci a přečištění žádaného biotinylovaného analytu od ostatních balastních látek přítomných v analyzovaném vzorku.
Předkládaný vynález připraví magnetický kompozit efektivně zesilující Ramanův signál v jednom kroku, což výrazně snižuje problémy stavu techniky se zdlouhavostí, náročností a nereprodukovatelností přípravy. Pomocí předkládaného vynálezu lze reprodukovatelně připravit magnetický kompozit efektivně zesilující Ramanův signál biotinylovaného analytu, či případně daného antigenu po jeho specifické reakci s biotinylovanou protilátkou, kterou je možné navázat skrze biotin na streptavidin, jenž je případně ukotvený na povrchu polystyrénových částic s magnetickým jádrem. Předkládaný vynález tak umožňuje rychlou, selektivní a specifickou metodu detekce pomocí povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie.
Oproti substrátům využívajícím magnetické oxidy železa ze stavu techniky má magnetický kompozit podle předkládaného vynálezu nižší specifickou hustotu (např. přibližně čtyřnásobně nižší v případě komerčně dostupných polystyrénových částic s magnetickým jádrem SigmaAldrich, katalogové číslo 49532, velikost částic 1 pm ±0,1 pm; Sigma-Aldrich, katalogové číslo 08014, velikost částic 10 pm ±0,5 pm), což výrazně snižuje náchylnost polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem k jejich sedimentaci a tedy výrazně zvyšuje reprodukovatelnost a stabilitu měření povrchem zesílených Ramanových spekter. Oproti magnetickým částicím na bázi oxidů železa mají polystyrénové mikročástice s magnetickým jádrem podle vynálezu také výrazně menší náchylnost k vlastní agregaci vlivem magnetických přitažlivých sil.
Předmětem předkládaného vynálezu je tedy způsob přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, kdy se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem, s výhodou o velikosti 1 pm až 10 pm, výhodněji o velikosti 1 pm, přidá stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl a/nebo částice stříbra a/nebo zlata, s výhodou o velikosti v rozmezí od 10 nm do 500 nm, a nakonec se případně přidá roztok redukčního činidla, přičemž polystyrénové mikročástice a/nebo částice stříbra a/nebo zlata s výhodou obsahují streptavidin. V jednom provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 100 nm do 500 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 20 nm do 500 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 20 nm do 40 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 200 nm do 400 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 10 nm do 100 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 300 nm do 500 nm.
Ve vodě rozpustná stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl je solí anorganické nebo organické kyseliny, s výhodou vybrané ze skupiny zahrnující etylendiamintetraoctovou kyselinu, HC1, HF,
-3 CZ 309424 B6
HI, HBr HCN, H2SO4, HNO3, HCIO4 a soli obsahující zlato v aniontu, například zlatitany alkalických kovů. Nejvýhodněji je stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl solí HC1, HNO3 a HCIO4.
V jednom provedení se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá spojovací molekula, stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl, a nakonec se, popřípadě přidá roztok redukčního činidla.
Spojovací molekulou je dopamin nebo fenylbutylamin. Dopamin, který obsahuje ve své struktuře aromatické jádro schopné interakce s polystyrénovými částicemi a také obsahuje aminoskupinu, která má velmi velkou afinitu vůči iontům, atomům nebo částicím zlata a/nebo stříbra, také ovlivňuje morfologii generovaných částic stříbra a/nebo zlata, které následně umožňují velmi výrazné zesílení Ramanova signálu daného analytu.
V jiném provedení se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá spojovací molekula, stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl, a nakonec se, popřípadě přidá roztok redukčního činidla, přičemž polystyrénové mikročástice s magnetickým jádrem jsou pokryté streptavidinem.
V jiném provedení se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá spojovací molekula, a následně částice stříbra a/nebo zlata pokryté streptavidinem.
V jiném provedení se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl, a nakonec se přidá roztok redukčního činidla. Polystyrénové mikročástice s magnetickým jádrem jsou případně pokryté streptavidinem.
Redukční činidlo je s výhodou vybráno ze skupiny zahrnující kyselinu askorbovou, hydrochinon, pyrokatechol, pyrogalol, aminofenol, kovy, hydridy, hydridoboritany, hydroxylamin, hydrazin, dopamin a redukující cukry (xylózu, maltózu, laktózu, glukózu, galaktózu). V případě iontů zlata jsou výhodnými redukčními činidly dopamin, hydrochinon, pyrokatechol a jejich deriváty, které ovlivňují morfologii generovaných částic zlata, což následně umožňuje intenzivnější zesílení Ramano va signálu.
pH reakční směsi je s výhodou v rozmezí od 2,5 do 12.
V jiném provedení vynálezu se k reakční směsi před přídavkem redukčního činidla přidá amoniak.
Předmětem předkládaného vynálezu je rovněž magnetický kompozit pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie připravitelný způsobem podle předkládaného vynálezu, který obsahuje kompozit polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem a koloidních částic zlata a/nebo stříbra o velikosti v rozmezí od 10 nm do 500 nm, přičemž výsledný magnetický kompozit případně dále obsahuje streptavidin. V jednom provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 100 nm do 500 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 20 nm do 500 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 20 nm do 40 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 200 nm do 400 nm. V jiném provedení mají částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 10 nm do 100 nm. V j iném provedení maj í částice stříbra a/nebo zlata velikost v rozmezí od 3 00 nm do 500 nm.
Ve výhodném provedení obsahuje magnetický kompozit polystyrénové mikročástice s magnetickým jádrem pokryté streptavidinem.
V jiném výhodném provedení obsahuje magnetický kompozit částice zlata a/nebo stříbra, které jsou pokryty streptavidinem.
-4CZ 309424 B6
Předmětem vynálezu je dále použití magnetického kompozitu podle vynálezu pro selektivní a specifické detekce a/nebo studia látek pomocí povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie. S výhodou je excitační vlnová délka použitého laseru v rozmezí 488 nm až 1064 nm, výhodněji 514 nm až 830 nm, nejvýhodněji 532 nm nebo 785 nm.
Objasnění výkresů
Obr. 1 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic pokrytých streptavidinem připravených podle příkladu 1.
Obr. 2 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic pokrytých streptavidinem připravených podle příkladu 2.
Obr. 3 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic pokrytých streptavidinem připravených podle příkladu 3.
Obr. 4 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic pokrytých streptavidinem připravených podle příkladu 4.
Obr. 5 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic pokrytých streptavidinem připravených podle příkladu 5.
Obr. 6 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic připravených podle příkladu 6.
Obr. 7 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic připravených podle příkladu 7.
Obr. 8 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic připravených podle příkladu 8.
Obr. 9 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic připravených podle příkladu 9.
Obr. 10 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic připravených podle příkladu 10.
Obr. 11 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic pokrytých streptavidinem připravených podle příkladu 11.
Obr. 12 zobrazuje transmisní elektronové snímky kompozitu částic zlata pokrytých streptavidinem a polystyrénových mikročástic připravených podle příkladu 11.
Obr. 13 zobrazuje povrchem zesílená Ramanova spektra za použití kompozitu připraveného podle příkladu 2 a za použití excitačního laseru s vlnovou délkou 532 nm. (A) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2. (B) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu A (marker bakterie Staphylococcus aureus). (C) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu A a přídavku bakterie Staphylococcus aureus. (D) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle
-5CZ 309424 B6 příkladu 2 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu A a přídavku klinického materiálu (kloubní punktát) následně mimotělně infikovaného bakterií Staphylococcus aureus.
Obr. 14 zobrazuje povrchem zesílená Ramanova spektra za použití kompozitu připraveného podle příkladu 1 a za použití excitačního laseru s vlnovou délkou 785 nm. (A) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2. (B) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 1 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu Tau (marker pro Alzheimerovu nemoc). (C) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 1 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu Tau a po přídavku Tau proteinu.
Příklady uskutečnění vynálezu
Jako prekurzor pro přípravu kompozitu s magnetickým jádrem pro účely studia a detekce látek za využití povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, byly použity komerčně dostupné polystyrénové mikročástice s magnetickým jádrem a se streptavidinem navázaným na povrchu částic (Sigma-Aldrich, katalogové číslo 49532, velikost částic 1 pm ±0,1 pm, vazebná aktivita vůči biotinu >600 pmol/mg, obsah oxidu železa >20 %, teplota skladování 2 až 8 °C), Sigma-Aldrich, katalogové číslo 08014, velikost částic 10 pm ±0,5 pm, vazebná aktivita vůči biotinu >1000 pmol/mg, obsah oxidu železa >20 %, teplota skladování 2 až 8 °C). Kompozity uvedených polystyrénových částic s nanočásticemi stříbra a/nebo zlata byly připravovány redukcí zlatitých a/nebo zlatných iontů či případně redukcí amoniakálního komplexu stříbrných iontů redukčním činidlem kyselinou askorbovou, dopaminem anebo redukujícími cukry (např. maltózou, glukózou atd.). Uvedené látky byly získány od firmy Sigma-Aldrich.
Velikost a morfologie částic zlata a stříbra byly pozorovány pomocí metody transmisní elektronové mikroskopie (TEM) na přístroji JEM2010 (Jeol, Japonsko) za využití urychlovacího napětí 160 kV.
Povrchem zesílená Ramanova spektra byla měřena pomocí DXR Raman Microscope (Thermo Scientific, USA) vybaveného termoelektricky chlazeným (-50 °C) CCD detektorem a za využití laseru s vlnovou délkou 532 nebo 785 nm. Doba záznamu spekter činila 10 s, počet akumulací byl 10, výkon laseru 10 mW. Měření povrchem zesílených Ramanových spekter bylo prováděno po nanesení 20 pl výše zmíněného vzorku kompozitu na podložní materiál na vrstvy oxidu hlinitého případně na sklo či křemen.
Příklad 1
Způsob přípravy kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem provedený za použití dopaminu jako redukčního činidla při hodnotě pH 2,83
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,2 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 1 % v disperzi). Poté bylo přidáno 9,1 ml deionizované vody a poté 0,2 ml 1% (w/w) roztoku dopaminu. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku hydrátu chloridu zlatitého o koncentraci zásobního roztoku 5-10“3 mobdrn-3 a reakční směs byla následně promíchávána 5 minuty. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 1.
-6CZ 309424 B6
Příklad 2
Způsob přípravy kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem provedený za použití kyseliny askorbové jako redukčního činidla při hodnotě pH 10,57 a za přítomnosti dopaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,2 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace části 1 % v disperzi). Poté bylo přidáno 7,1 ml deionizované vody a poté 0,2 ml 1% (w/w) roztoku dopaminu. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku hydrátu chloridu zlatitého (molámí hmotnost 339,79 g/mol) o koncentraci zásobního roztoku 5-10“3 mohdm-3. Hodnota pH reakční směsi byla upravena pomocí cca 1 ml roztoku NaOH o koncentraci 0,25 mol-dm-3, tak aby pH činilo cca 10,5 a směs byla poté ještě promíchána 3 minuty. Následně byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku kyseliny askorbové o koncentraci 5-10-2 mol-dm-3 a reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 2.
Příklad 3
Způsob přípravy kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem provedený za použití kyseliny askorbové jako redukčního činidla při hodnotě pH 2,53 a bez přítomnosti dopaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,2 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 1 % v disperzi). Poté bylo přidáno 8,3 ml deionizované vody. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku chloridu zlatného o koncentraci zásobního roztoku 5-10-3 mol-dm-3. Reakční směs byla následně promíchána 3 minuty. Poté byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku kyseliny askorbové o koncentraci 5-10-2 mol-dm-3 a reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 3.
Příklad 4
Způsob přípravy kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem provedený za použití kyseliny askorbové jako redukčního činidla při hodnotě pH 10,54 a za přítomnosti dopaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,2 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 1 % v disperzi). Poté bylo přidáno 7,75 ml deionizované vody a poté 0,2 ml 1% (w/w) roztoku dopaminu. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku dusičnanu stříbrného o koncentraci zásobního roztoku 5-10-3 mol-dm-3 s následným přídavkem 0,15 ml roztoku amoniaku o koncentraci 0,1 mol-dm-3. Hodnota pH reakční směsi byla upravena pomocí cca 0,2 ml roztoku NaOH o koncentraci 0,25 mol-dm-3, tak aby pH činilo cca 10,5 a směs byla poté ještě promíchána 3 minuty. Poté byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku kyseliny askorbové o koncentraci 5T0-2 mol-dm-3. Reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 4.
-7 CZ 309424 B6
Příklad 5
Způsob přípravy kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem provedený za použití kyseliny askorbové při hodnotě pH 10,46 a bez přítomnosti dopaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,2 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 1 % v disperzi). Poté bylo přidáno 7,95 ml deionizované vody. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku dusičnanu stříbrného o koncentraci zásobního roztoku 5· 10“3 mol-dm’3. s následným přídavkem 0,15 ml roztoku amoniaku o koncentraci 0,1 mol-dm’3. Hodnota pH reakční směsi byla upravena pomocí cca 0,2 ml roztoku NaOH o koncentraci 0,25 mol-dm’3, tak aby pH činilo cca 10,5 a směs byla poté ještě promíchána 3 minuty. Poté byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku kyseliny askorbové o koncentraci 5-10’2 mol-dm’3. Reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 5.
Příklad 6
Způsob přípravy kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem provedený za použití glukózy jako redukčního činidla při hodnotě pH 11,52 a za přítomnosti dopaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,04 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 5 % v disperzi). Poté bylo přidáno 7,26 ml deionizované vody a poté 0,2 ml 1% (w/w) roztoku dopaminu. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku chloridu zlatitého (molámí hmotnost 303,33 g/mol) o koncentraci zásobního roztoku 5-10’3 mol-dm’3. Hodnota pH reakční směsi byla upravena pomocí cca 1 ml roztoku NaOH o koncentraci 0,25 mol-dm’3, tak aby pH činilo cca 11,5 a směs byla poté ještě promíchána 3 minuty. Následně byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku glukózy o koncentraci 5-10’2 mol-dm’3. Reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 6.
Příklad 7
Způsob přípravy kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem provedený za použití glukózy jako redukčního činidla při hodnotě pH 11,96 a bez přítomnosti dopaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,04 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace části 5 % v disperzi). Poté bylo přidáno 7,46 ml deionizované vody. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku draselné soli kyseliny zlatité o koncentraci zásobního roztoku 5T0’3 mol-dm’3. Hodnota pH reakční směsi byla upravena pomocí cca 1 ml roztoku NaOH o koncentraci 0,25 mol-dm’3, tak aby pH činilo cca 11,5 a směs byla poté ještě promíchána 3 minuty. Následně byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku glukózy o koncentraci 5-10’2 mol-dm’3. Reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 7.
-8CZ 309424 B6
Příklad 8
Způsob přípravy kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem provedený za použití glukózy jako redukčního činidla při hodnotě pH 11,58 a za přítomnosti dopaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,04 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 5 % v disperzi). Poté bylo přidáno 7,90 ml deionizované vody a poté 0,2 ml 1 % (w/w) roztoku dopaminu. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku chloristanu stříbrného o koncentraci zásobního roztoku 5-10“3 mobdrn-3 s následným přídavkem 0,15 ml roztoku amoniaku o koncentraci 0,1 mobdrn-3. Hodnota pH reakční směsi byla upravena pomocí cca 0,2 ml roztoku NaOH o koncentraci 0,25 mobdrn-3, tak aby pH činilo cca 11,5 a směs byla poté ještě promíchána 3 minuty. Poté byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku glukózy o koncentraci 5· 10-2 mobdrn-3. Reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 8.
Příklad 9
Způsob přípravy kompozitu částic stříbra a polystyrénových mikročástic provedený za použití glukózy jako redukčního činidla při hodnotě pH 11,52 a bez přítomnosti dopaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,04 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 5 % v disperzi). Poté bylo přidáno 7,95 ml deionizované vody. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku dusičnanu stříbrného o koncentraci zásobního roztoku 5 -10-3 mobdrn-3 s následným přídavkem 0,15 ml roztoku amoniaku o koncentraci 0,1 mobdrn-3. Hodnota pH reakční směsi byla upravena pomocí cca 0,2 ml roztoku NaOH o koncentraci 0,25 mobdrn-3, tak aby pH činilo cca 11,5 a směs byla poté ještě promíchána 3 minuty. Poté byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku glukózy o koncentraci 5-10-2 mobdrn-3. Reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 9.
Příklad 10
Způsob přípravy kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem provedený za použití kyseliny askorbové jako redukčního činidla při hodnotě pH 2,92 a za přítomnosti fenylbutylaminu
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 0,2 ml ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 1 pm s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace části 1 % v disperzi). Poté bylo přidáno 7,1 ml deionizované vody a poté 0,2 ml 1% (w/w) roztoku fenylbutylaminu. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku hydrátu chloridu zlatitého o koncentraci zásobního roztoku 5· 10-3 mobdrn-3. Hodnota pH reakční směsi byla upravena pomocí cca 1 ml roztoku NaOH o koncentraci 0,25 mobdrn-3, tak aby pH činilo cca 10,5 a směs byla poté ještě promíchána 3 minuty. Následně byl do reakčního systému vpraven 1 ml roztoku kyseliny askorbové o koncentraci 5-10-2 mobdrn-3. Reakční směs se poté nechala promíchávat 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 10.
-9CZ 309424 B6
Příklad 11
Způsob přípravy kompozitu částic zlata a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem provedený za použití dopaminu jako redukčního činidla při hodnotě pH 2,87
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 200 μΐ ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic o velikosti 10 pm s magnetickým jádrem pokrytých streptavidinem (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 1 % v disperzi). Poté bylo přidáno 9,1 ml deionizované vody a poté 200 μΐ 1 % (w/w) roztoku dopaminu. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,5 ml roztoku hydrátu chloridu zlatitého o koncentraci zásobního roztoku 5-10“3 mobdrn-3 a reakční směs byla následně promíchávána 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 11.
Příklad 12
Způsob přípravy kompozitu částic zlata pokrytých streptavidinem a polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem provedený za použití dopaminu jako redukčního činidla při hodnotě pH 2,87
Do kádinky o objemu 25 ml bylo vpraveno 200 μΐ ze zásobní disperze polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem o velikosti 1 pm (Sigma-Aldrich, hmotnostní koncentrace částic 1 % v disperzi). Poté bylo přidáno 9,3 ml deionizované vody a poté 200 pl 1% (w/w) roztoku dopaminu. Reakční směs byla promíchána 5 minut na elektromagnetické míchačce při otáčkách cca 500 rpm. Poté bylo přidáno 0,2 ml roztoku disperze nanočástic zlata o velikosti 20 nm pokrytých streptavidinem a směs byla následně promíchávána 5 minut. TEM snímky připraveného kompozitu jsou uvedeny v obr. 12.
Příklad 13
Detekce přítomnosti bakterie Staphylococcus aureus v klinickém materiálu
Byla provedena detekce přítomnosti bakterie Staphylococcus aureus v klinickém materiálu (kloubním punktátu) za využití povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie a magnetického kompozitu umožňujícího selektivní separaci, přečištění a detekci markéru (Protein A) typického pro bakterii Staphylococcus aureus.
V experimentech byl používán sterilní punktát z kolene od neznámého pacienta. Sterilita punktátu byla ověřena naočkováním na krevní agar a do Mueller-Hintonova bujónu. Z punktátu byly připraveny čtyři typy vzorků: punktát, do kterého byl přimíchán bakteriální lyzát (ad A), punktát homogenizovaný s živou bakteriální kulturou (ad B), dále punktát s bakteriální suspenzí v MuellerHintonově bujónu (ad C) a punktát s bakteriální suspenzí ve fýziologickém roztoku (ad D).
A) K přípravě bakteriálního lyzátu byla použita dvacetičtyřhodinová kultura Staphylococcus aureus CCM 3953. Dobře izolované kolonie byly přeneseny do 5 ml Mueller-Hintonova bujónu, aby výsledný zákal odpovídal zákalovému standardu 1 podle McFarlanda. Bakteriální supsenze byla kultivována při 37 °C po dobu 24 hodin. Po inkubaci byl bujón centrifugován (2000 otáček/10 minut), supernatant slit a k sedimentu přidán 1 ml destilované vody. Promíchaná suspenze byla střídavě zmrazována při teplotě -72 °C po dobu 10 minut a rozmrazována ve vodní lázni při teplotě 37 °C, celkem desetkrát. Takto připravený lyzát byl smíchán s punktátem v poměru 1:1.
B) Do 1 ml punktátu byla přidána 1 středně velká kolonie dvacetičtyřhodinové kultury Staphylococcus aureus CCM 3953 a vzorek byl následně homogenizován v minitřepačce.
-10 CZ 309424 B6
C) Dobře izolované kolonie dvacetičtyřhodinové kultury Staphylococcus aureus CCM 3953 byly přeneseny do 2 ml Mueller-Hintonova bujónu, aby výsledný zákal odpovídal zákalovému standardu 0,5 podle McFarlanda. Bakteriální suspenze byla homogenizována v minitřepačce a následně smíchána s punktátem v poměru 1:1.
D) Dobře izolované kolonie dvacetičtyřhodinové kultury Staphylococcus aureus CCM 3953 byly přeneseny do 2 ml fýziologického roztoku, aby výsledný zákal odpovídal zákalovému standardu 0,5 podle McFarlanda. Bakteriální suspenze byla homogenizována v třepačce a následně smíchána s punktátem v poměru 1:1.
Výsledná detekce přítomnosti bakterie Staphylococcus aureus v kloubním punktátu byla provedena za použití excitačního laseru s vlnovou délkou 532 nm.
Na obrázku 13 jsou znázorněna povrchem zesílená Ramanova spektra za použití kompozitu připraveného podle příkladu 2 a za použití excitačního laseru s vlnovou délkou 532 nm.
(A) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2.
(B) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu A (marker bakterie Staphylococcus aureus).
(C) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu A a přídavku bakterie Staphylococcus aureus.
(D) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu A a přídavku klinického materiálu (kloubní punktát) následně mimotělně infikovaného bakterií Staphylococcus aureus.
Rozdílné spektrální pásy ve výše uvedených spektrech je možné využít k detekci infekce bakterií Staphylococcus aureus v biologickém materiálu.
Příklad 14
Detekce přítomnosti Tau proteinu
Tau protein (τ-protein) je bílkovinná komponenta, která se vyskytuje v neuronech mozkové tkáně. Za normálních okolností stabilizuje mikrotubulámí struktury axonů. U Alzheimerovy choroby dochází k abnormální fosforylaci tohoto proteinu a ke zvýšenému vylučování do mozkomíšního moku. Fyziologická, normální hodnota, tau proteinu se v případě populace pod 60 let pohybuje v rozsahu 17,3 ±4,4 pg/l a v případě populace nad 60 let 24,8 ±15,2 pg/l. Patologická hodnota tau proteinu v mozkomíšním moku, tedy příznak Alzheimerovy choroby, se v případě populace pod 60 let pohybuje v rozsahu 33,3 ±12,3 pg/l a v případě populace nad 60 let 61,7 ±35,4 pg/l.
Byla provedena detekce Tau proteinu (Sigma-Aldrich, T7951) za využití kompozitu připraveného podle příkladu 1 a za použití anti Tau protilátky (Sigma-Aldrich, SAB 4501821).
Anti Tau protilátka byla biotinylována za použití Biotin /V-hydroxysukciimidu (sigma-Aldrich, H1759). Pro experimenty bylo vždy použito 10 pl od disperze kompozitu, 10 pl od roztoku anti Tau protilátky a 10 pl roztoku Tau proteinu. Ve všech případech byly reakční směsi doplněny
-11 CZ 309424 B6 fyziologickým roztokem, tak aby výsledné objemy činily 30 μΐ. Výsledná koncentrace Tau proteinu činila ve vzorku (spektrum C, obr. 14) činila 100 pg/l.
Obr. 14 zobrazuje povrchem zesílená Ramanova spektra za použití kompozitu připraveného podle 5 příkladu 1 a za použití excitačního laseru s vlnovou délkou 785 nm. (A) Povrchem zesílené
Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 2. (B) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 1 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu Tau. (C) Povrchem zesílené Ramanovo spektrum kompozitu ίο částic zlata a polystyrénových částic pokrytých streptavidinem připraveného podle příkladu 1 a po přídavku biotinylované protilátky vůči proteinu Tau a po přídavku Tau proteinu.
Rozdílné spektrální pásy ve výše uvedených spektrech je možné využít k detekci Tau proteinu.

Claims (11)

1. Způsob přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, vyznačený tím, že se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl a/nebo částice stříbra a/nebo zlata a nakonec se případně přidá roztok redukčního činidla, přičemž polystyrénové mikročástice a/nebo částice stříbra a/nebo zlata s výhodou obsahují streptavidin.
2. Způsob podle nároku 1, vyznačený tím, že se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá spojovací molekula dopamin nebo fenylbutylamin, stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl a nakonec se popřípadě přidá roztok redukčního činidla.
3. Způsob podle nároku 1, vyznačený tím, že se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá spojovací molekula dopamin nebo fenylbutylamin, stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl a nakonec se popřípadě přidá roztok redukčního činidla, přičemž polystyrénové mikročástice s magnetickým jádrem jsou pokryté streptavidinem.
4. Způsob podle nároku 1, vyznačený tím, že se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá spojovací molekula dopamin nebo fenylbutylamin, a následně částice stříbra a/nebo zlata pokryté streptavidinem.
5. Způsob podle nároku 1, vyznačený tím, že se k vodné disperzi polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem přidá stříbrná a/nebo zlatitá a/nebo zlatná sůl a nakonec se přidá roztok redukčního činidla, přičemž polystyrénové částice s magnetickým jádrem jsou případně pokryté streptavidinem.
6. Způsob podle kteréhokoliv z nároků 1 až 3 a 5, vyznačený tím, že redukční činidlo je vybráno ze skupiny zahrnující kyselinu askorbovou, hydrochinon, pyrokatechol, pyrogalol, aminofenol, kovy, hydridy, hydridoboritany, hydroxylamin, hydrazin, dopamin a redukující cukry.
7. Způsob podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, vyznačený tím, že pH reakční směsi je v rozmezí od 2,5 do 12.
8. Způsob podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, vyznačený tím, že se k reakční směsi před přídavkem redukčního činidla přidá amoniak.
9. Magnetický kompozit pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie připravitelný způsobem podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, který obsahuje kompozit polystyrénových mikročástic s magnetickým jádrem a částic zlata a/nebo stříbra.
10. Magnetický kompozit podle nároku 9, kde polystyrénové mikročástice s magnetickým jádrem a/nebo částice zlata a/nebo stříbra jsou pokryty streptavidinem.
11. Použití magnetického kompozitu podle nároků 9 a 10 pro detekce a/nebo studia látek povrchem zesílenou Ramanovou spektroskopií s výhodou při excitační vlnové délce použitého laseru v rozmezí 488 nm až 1064 nm.
CZ2015-288A 2015-04-29 2015-04-29 Způsob přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, magnetický kompozit a jeho použití CZ309424B6 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2015-288A CZ309424B6 (cs) 2015-04-29 2015-04-29 Způsob přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, magnetický kompozit a jeho použití

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2015-288A CZ309424B6 (cs) 2015-04-29 2015-04-29 Způsob přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, magnetický kompozit a jeho použití

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ2015288A3 CZ2015288A3 (cs) 2016-11-09
CZ309424B6 true CZ309424B6 (cs) 2022-12-28

Family

ID=57353874

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2015-288A CZ309424B6 (cs) 2015-04-29 2015-04-29 Způsob přípravy magnetického kompozitu pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie, magnetický kompozit a jeho použití

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ309424B6 (cs)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5552086A (en) * 1992-01-29 1996-09-03 Coulter Corporation Immobilized metal colloids on dispersed polymer microspheres
CZ303502B6 (cs) * 2011-09-02 2012-10-24 Univerzita Palackého v Olomouci Zpusob imobilizace nanocástic stríbra na pevné substráty
CZ304231B6 (cs) * 2010-09-29 2014-01-15 Univerzita Palackého v Olomouci prof. RNDr., CSc. Miroslav Mašláň Způsob aktivace vodných disperzí nanočástic stříbra pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5552086A (en) * 1992-01-29 1996-09-03 Coulter Corporation Immobilized metal colloids on dispersed polymer microspheres
CZ304231B6 (cs) * 2010-09-29 2014-01-15 Univerzita Palackého v Olomouci prof. RNDr., CSc. Miroslav Mašláň Způsob aktivace vodných disperzí nanočástic stříbra pro účely povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie
CZ303502B6 (cs) * 2011-09-02 2012-10-24 Univerzita Palackého v Olomouci Zpusob imobilizace nanocástic stríbra na pevné substráty

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
(Protein separation and identification using magnetic beads encoded with surface-enhanced Raman spectroscopy), June 2009, str. 24- 30 *
(Surface-Enhanced Raman Scattering from Individual Au Nanoparticles and Nanoparticle Dimer Substrates), June 2005, str. 1569- 1574 *
(Surface-enhanced Raman spectroscopy substrate composed of chemically modified gold colloid particles immobilized on magnetic microparticles), 2005, 1032- 1037 *

Also Published As

Publication number Publication date
CZ2015288A3 (cs) 2016-11-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Tian et al. Highly sensitive detection of exosomes by SERS using gold nanostar@ Raman reporter@ nanoshell structures modified with a bivalent cholesterol-labeled DNA anchor
Lai et al. Recent progress on graphene-based substrates for surface-enhanced Raman scattering applications
Zhou et al. Bacteria detection: from powerful SERS to its advanced compatible techniques
Xu et al. Aptamer based SERS detection of Salmonella typhimurium using DNA-assembled gold nanodimers
Zhang et al. Multifunctional magnetic–plasmonic nanoparticles for fast concentration and sensitive detection of bacteria using SERS
US10537106B2 (en) Direct detection of disease biomarkers in clinical specimens using cationic nanoparticle-based assays and versatile and green methods for synthesis of anisotropic silver nanostructures
Wang et al. Magnetically assisted surface-enhanced Raman spectroscopy for the detection of Staphylococcus aureus based on aptamer recognition
Ma et al. A bright carbon-dot-based fluorescent probe for selective and sensitive detection of mercury ions
Dogan et al. Rapid detection of bacteria based on homogenous immunoassay using chitosan modified quantum dots
US9671347B2 (en) Method of diagnosing malaria infection in a patient by surface enhanced resonance raman spectroscopy
Wang et al. Magnetic plasmonic particles for SERS-based bacteria sensing: A review
TWI360657B (en) External modification of cmoposite organic inorgan
Cheng et al. An efficient SERS platform for the ultrasensitive detection of Staphylococcus aureus and Listeria monocytogenes via wheat germ agglutinin-modified magnetic SERS substrate and streptavidin/aptamer co-functionalized SERS tags
Xu et al. Dual-mode of magnetic assisted Au@ Ag SERS tags and cationic conjugated UCNPs for qualitative and quantitative analysis of multiple foodborne pathogens
Wu et al. A dual signal-on biosensor based on dual-gated locked mesoporous silica nanoparticles for the detection of Aflatoxin B1
Zhang et al. Multiplexed imaging of trace residues in a single latent fingerprint
Kowalska et al. Novel highly sensitive Cu‐based SERS platforms for biosensing applications
JP2014062920A (ja) 表面増強ラマン分光法(sers)活性粒子を使用するアッセイ
CN110618123B (zh) 一种高效表面增强拉曼散射基底材料及制备方法
Zhao et al. Ultrasensitive dual-enhanced sandwich strategy for simultaneous detection of Escherichia coli and Staphylococcus aureus based on optimized aptamers-functionalized magnetic capture probes and graphene oxide-Au nanostars SERS tags
CN109813701A (zh) 一种快速无标签表面增强拉曼散射检测金黄色葡萄球菌和大肠埃希菌的方法
Liang et al. Fluorescence polarization gene assay for HIV-DNA based on the use of dendrite-modified gold nanoparticles acting as signal amplifiers
Peng et al. Gold nanoparticle-based detection of dopamine based on fluorescence resonance energy transfer between a 4-(4-dialkylaminostyryl) pyridinium derived fluorophore and citrate-capped gold nanoparticles
Yue et al. Bull serum albumin coated Au@ Agnanorods as SERS probes for ultrasensitive osteosarcoma cell detection
Zhu et al. Digital immunoassay of a prostate-specific antigen using gold nanorods and magnetic nanoparticles