CS270664B1 - Způsob řízení biosyntézy fungicidinu - Google Patents

Způsob řízení biosyntézy fungicidinu Download PDF

Info

Publication number
CS270664B1
CS270664B1 CS87192A CS19287A CS270664B1 CS 270664 B1 CS270664 B1 CS 270664B1 CS 87192 A CS87192 A CS 87192A CS 19287 A CS19287 A CS 19287A CS 270664 B1 CS270664 B1 CS 270664B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
production
cultivation
biosynthesis
inoculation
inoculum
Prior art date
Application number
CS87192A
Other languages
English (en)
Other versions
CS19287A1 (en
Inventor
Petr Ing Csc Ettler
Petr Ing Csc Pilat
Eva Ing Kindlova
Dana Ing Kucerova
Vaclav Kozel
Petr Triska
Original Assignee
Ettler Petr
Pilat Petr
Eva Ing Kindlova
Dana Ing Kucerova
Vaclav Kozel
Petr Triska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ettler Petr, Pilat Petr, Eva Ing Kindlova, Dana Ing Kucerova, Vaclav Kozel, Petr Triska filed Critical Ettler Petr
Priority to CS87192A priority Critical patent/CS270664B1/cs
Publication of CS19287A1 publication Critical patent/CS19287A1/cs
Publication of CS270664B1 publication Critical patent/CS270664B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Navrženým postupem řízení biosyntézy se při přípravě inokulačního materiálu Streptomyces noursei odstraní nestandartnost způsobená nepřesným a subjektivním hodnocením růstu kultury. Při zavedení Teologického řízení kultivace očkovacích tanků bude možno srovnáním s modelovým průběhem viskosity přesně naplánovat inokulaci produkčního fermentoru podle aktuální dosahované fyziologické zralosti mycelia. Návazně s využíváním exponenciální růstové fáze dojde ke zkrácení kultivace, snížení rizika kontaminací, urychlení startu produkce a celkovému zvýšení tvorby účinné látky o cca 10 .

Description

Vynález se týká způsobu řízení biosyntézy funglcidinu kultivací Streptomyces noursei s využitím znalostí fyziologická aktivity kultury počínaje způsobem přípravy inokulačního materiálu podle tokových vlastností biosuspenze.
Při biosyntetické přípravě fungicidinu se v průmyslovém měřítku suspendují v očkovacích tancích zdroje asimilovatelného uhlíku, dusíku, fosforu, minerální živné sole ve vodě s odpěňovacími prostředky. Aerobní kultivace Streptomyces noursei probíhá za stálého intensivního míchání a vzdušnění. Při přípravě inokula produkčního mikroorganismu je využíván jednostupňový inokulační postup podle schématu:
DT —— ----------------=> FT očkovací fermentor produkční fermentor
Po inokulaci očkovacího termentoru suspenzi spor produkčního mikroorganismu probíhá při kultivační teplotě 28 °C klíčení spor a fáze zrychleného růstu podle běžných zákonitostí kinetiky růstu mycelárních mikroorganismů. Kultivace v očkovacím fermentoru je ukončena po dosažení tzv. dobrého nárůstu, což je podle výrobního reglementu zpravidla za 45 až 60 h. Je-li nárůst delší než 60 h, svědčí to o nevhodnosti použitých konserv. Během růstu inokulačního materiálu dochází k poklesu hodnoty pH z původních 6,8 až 7,0 na hodnoty 6,0 až 6,2, popřípadě i nižší 5,8 až 6,0. Tento pokles pH, mikroskopický obraz a sterilita jsou podle reglementu kriterií určujícími vhodnost použití očkovacího materiálu k inokulaci produkčního fermentoru. '
Přípravou inokula a podmínkami, za jakých probíhá kultivace produkčních mikroorganismů v produkčních stupních se zabývá řada autorů. Bylo zjištěno, že způsob vedení procesu, počínaje prvními přípravnými pracemi hraje spolu s historií kultury velmi významnou úlohu při standardizaci biosyntézy v produkčním stupni a ovlivňuje také výši dosahované produkce účinné látky. Propracovali jsme například podmínky kultivace Streptomyces erythreus v očkovacím stupni při blosyntéze erythromycinu (J. Páca, P. Ettler, V. Grégr: J.Ferm. Technol., 56, 2, 144, 1978). Japonští autoři používají pro optimalisaci očkovacího stupně model.ového mikroorganismu Saccharomyces cerevisiae (T. Nagamune, I. Endo, I. Inoue: J.of Chem.Eng., 15, 6, 481, 1982). Z těchto literárních citací vyplývá, že kinetika tvorby primárních i sekundárních metabolitů je v inokulačním stupni studována i z chemickoinženýrského hlediska. Práce Lopatněvy a kol. (Antibiotiki, 20, 1, 31, 1975 a Antibiotiki, 18, 7, 608, 1973) popisují biosyntézu fungicidinu jako náročnou z pohledu zajištění odpovídající dodávky kyslíku k rostoucím buňkám. Přesto však tato hlediska bývají ve výrobních aparaturách přehlížena. Potřeba pojímat celý biosyntetický proces jako interakci mezi danou geometrií míchání a vzdušnění a fyziologií produkčního kmene se začíná prosazovat až v poslední době.
Dosavadní způsob řízení biosyntézy fungicidinu kultivací Streptomyces noursei v očkovacích fermentorech lze považovat za zastaralý z několika pohledů. Nestandardnost dodávek surovin, zvláště komplexních zdrojů (sušené kvasnice, kukuřičný výluh ap.) způsobuje, že podmínky pH uváděné ve výrobním reglementu nejsou buď dodržitelné, nebo pokles pH je tak plynulý a nevýrazně rozložen do 20 h intervalu, že umožňuje subjektivní interpretaci pro určení přesného času k inokulaci produkčního stupně. Dále jsme zjistili, že tento údaj není obrazem obsahu biomasy produkčního kmene, natož jeho aktivity. Při hodnocení vitálních nebo fixovaných preparátů produkčního kmene se není možno vystříhat subjektivity z důvodů lidského faktoru. Objektivní hodnocení větvení hyf pomocí automatisovaného systému není k dispozici.
Uvedené nevýhody odstraňuje způsob řízení biosyntézy fungicidinu a přípravy inokulačního materiálu kultury Streptomyces noursei podle Teologických charakteristik s využitím živného média, obsahujícího snadno asimilovatelné zdroje uhlíku, dusíku, anorganické živné sole a odpěňovací prostředky, podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že se řízení biosyntézy provádí kontrolou Teologických charakteristik fermentační půdy
CS 270064 Ol a přesným definováním tukových podmínek po inokulaci produkčního fermentoru při zdánlivé viskositě půdy nad 6 in l'as za slřekové rychlosti 698 s' . lo odpuvídá zvýSeuí obsahu volného sedimentu nad 35 % obj. v období mezi 32 a 40 h kultivace.
Cílem vynálezu bylo nalezení objektivnějšího způsobu hodnocení optimální doby pro inokulaci produkčního fermentoru. Byl proveden komplexní rozbor inokulačního stupně zmapováním průběhu jeho metabolismu s využitím mikrobiologických, biochemických a fyzikálně-chemických metodik. Dále byla ve 4 h intervalech prováděna inokulace produkční půdy v laboratorním měřítku ze sterilních vzorků biosuspenze odebrané z výrobní aparatury. Tímto způsobem bylo možno stanovit maximální produkci účinné látky v daném časovém úseku a korelovat ji s ostatními parametry.
Ukázalo se, že parametrem, který nejvýstižnějsím způsobem popisuje průběh kultivace produkčního kmene Streptomyces noursei a přitom zahrnuje jak katabolické, tak anabolické metabolické dráhy, úbytek substrátů i přírůstek biomasy, její vitalitu z pohledu rigidity vláken, obsahu vakuolap. je zjištění teologické charakteristiky vzorku biosuspenze. Pokrok biotechniky nám dosud neumožňuje tato měření provádět in situ, přímo ve fermentoru, při zachování skutečných podmínek míchání, zádrže plynu a ostatních parametrů, které ovlivňují tvar buněk, pevnost hyf a jejich fyziologický stav. Proto je nutno pro optimální řízení celého procesu pomocí zjištování tokové charakteristiky odebírat ze vsádky reaktoru representativní vzorky a ihned je bez jakékoliv časové prodlevy analyzovat při kultivační teplotě na rotačním viskosimetru. Podle zjištěné závislosti mezi smykovým napětím a střihovou rychlostí je možno usoudit na jednotlivá stadia růstu kultury. Z Teologického pohledu je při kultivaci inokulačního materiálu chování fermentační půdy určeno především morfologií a koncentrací vláken mycelia. Ostatní složky média jak suspensního, tak nesuspensního charakteru se v tomto případě uplatňují z hlediska fyzikálně-chemických vlastností biosuspenze v zanedbatelné míře. Výchozí fermentační půda je kapalinou s tokovým chováním blížícím se newtonskému typu. Po ukončení období klíčení spor se objevují vlákna mycelia, která se intensivně prodlužují a větví. Reologicky se tento jev projevuje vzrůstem viskosity s postupným přechodem k newtonskému chování. U Streptomyces noursei byla na daném médiu nalezena dobrá korelace mezi vzrůstem viskosity a hladinou volného sedimentu. Zatímco například při biosyntéze penicilinu informuje sediment v převážné míře o koncentraci buněk a viskosita kromě koncentrace buněk i o jejich morfologii, při biosyntéze fungicidinu je zjištování obsahu volného sedimentu bez centrifugace podpůrnou metodikou k Teologickému měření. V průběhu kultivace očkovacího tanku dochází ke změně newtonského chování na binghamské až pseudoplastické. Podle srovnávacích měření je možno stanovit dostatečnou zralost očkovacího materiálu k inokulaci produkčního fermentoru při zdánlivé viskositě mezi 6 a 8 m Pas při smykové rychlosti 0 = 698 3-^. Zdánlivá viskosita výchozího média měřená za stejných podmínek se pohybuje mezi 2 a 3 m Pas. V případě, že není s okamžitou platností k disposici rotační viskosimetr, byla stanovena pomocná kriteria sledováním průběhu kultivace. Zralost očkovacího materiálu pro inokulaci produkčního stupně je určena těmito hodnotami:
Koncentrace redukujících látek (dle Janíčka) 20 až 30 mg.ml koncentrace amonných iontů (dle Parnas-Wagnera) 0,5 až 0,7 mg.ml'' obsah volného sedimentu minimálně 35 ‘-í na daném médiu. Těchto hodnot je možno dosáhnout za daných vnějších podmínek určených geometrií míchání, velikostí inokulace a složením média za 32 až 40 h.
Řízení kultivace inokulačního materiálu Streptomyces noursei podle Teologické charakteristiky podle vynálezu má ve srovnání s dosavadními způsoby vedení procesu řadu významných výhod. Vylučuje subjektivitu posuzování zralosti očkovacího stupně, standardizuje průběh celého fecmentačního cyklu, využívá optimální fyziologické zralosti mycelia před jeho částečnou autolýzou, zrychluje start tvorby sekundárního metabolitu v produkčním fermentoru, a tím zvyšuje i celkovou produktivitu způsobu přípravy fungicidinu. Zkrácením doby kultivace očkovacího fermentoru se snižuje i riziko jeho zkontaminování. Pokud se jedná o vlastní měřicí teologickou metodu, poskytuje ve velmi krátkém čase, tj. do 5
CS 279664 Bl 3 minut po odebrání vzorku objektivní informaci o koncentraci a morfologii produkčního kmene, což u ostatních metod není možné.
Následující příklady provedení způsob podle vynálezu pouze dokládají, ale neomezují.
Příklad 1
Suroviny pro kultivaci Streptomyces noursei jsou suspendovány ve vodě, po úpravě pH a přídavku odpěňovacích prostředků je provedena sterilizace média. Po zchlazení média na 29 °C je fermentor naočkován suspensí spor a vsádka je míchána a vzdušněna po celou dobu kultivace. Pro určení optimální zralosti inokula není využíván údaj o hodnotě pH, jehož pokles je nevýrazný a plynule rozložen do 20 h intervalu. Je vyloučeno také subjektivní posouzení růstu a nahrazeno exaktním řízením kultivace podle Teologických vlastností vsádky. Po adaptačním období klíčení spor na počátku kultivace, dochází ke zrychlení metabolismu, zvýšení obsahu volného sedimentu na minimálně 35 % obj., poklesu koncentrace redukujících látek na 20 až 30 mg.ml’1, poklesu koncentrace amonných iontů na 0,5 až 0,7 mg.ml1· a vzrůstu zdánlivé viskosity na 6 až 8 m Pas při střikové rychlosti 698 s1. Tento údaj zahrnuje mikrobiologické, biochemické a bioinženýrské vlastnosti vsádky a je užit pro rozhodnutí o optimální době inokulace produkčního fermentoru.
Příklad 2
Suroviny pro kultivaci Streptomyces noursei jsou suspendovány ve vodě, po úpravě pH a přídavku odpěňovacích prostředků je provedena sterilizace média. Po zchlazení média na 29 °C je fermentor naočkován suspensí spor a vsádka je míchána a vzdušněna po celou dobu kultivace. Pro určení optimální zralosti inokula není využíván údaj o hodnotě pH, jehož pokles je nevýrazný a plynule rozložen do 20 h intervalu. Je vyloučeno také subjektivní posouzení růstu a nahrazeno exaktním řízením kultivace podle Teologických vlastností vsádky. Po adaptačním období klíčení spor na počátku kultivace, dochází ke zrychlení metabolismu, zvýšení obsahu volného sedimentu na minimálně 35 % obj., poklesu koncentrace redukujících látek na 20 až 30 mg.ml1, poklesu koncentrace amonných iontů na 0,5 až 0,7 mg.ml’1 a vzrůstu zdánlivé viskosity na 6 až 8 m Pas při střikové rychlosti 698 s'1. Tento údaj zahrnuje mikrobiologické, biochemické a bioinženýrské vlastnosti vsádky a je užit pro rozhodnutí o optimální době inokulace produkčního fermentoru.
Byl vypracován modelový průběh zdárflivé .viskosity, ke kterému jsou porovnávány všechny naměřené výsledky z rotačního viskosimetru z odebraných vzorků biosuspenze. Komparace s nomogramem umožňuje řešiteli provést okamžité rozhodnutí a řídit tak standardním způsobem biosyntézu fungicidinu.

Claims (1)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    Způsob řízení biosyntézy fungicidinu a přípravy inokulačního materiálu kultury Streptomyces noursei podle Teologických charakteristik s využitím živného média obsahujícího snadno asimilovatelné zdroje uhlíku, dusíku, anorganické živné sole a odpěňovací prostředky, vyznačující se tím, že řízení biosyntézy se provádí kontrolou Teologických charakteristik fermentační půdy a přesným definováním tokových podmínek po inokulaci produkčního fermentoru při zdánlivé viskositě půdy nad 6 m Pas za střikové rychlosti 698 s'1, odpovídající zvýšení obsahu volného sedimentu nad 35 % obj. v období mezi 32. až 40. h kultivace.
CS87192A 1987-01-12 1987-01-12 Způsob řízení biosyntézy fungicidinu CS270664B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS87192A CS270664B1 (cs) 1987-01-12 1987-01-12 Způsob řízení biosyntézy fungicidinu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS87192A CS270664B1 (cs) 1987-01-12 1987-01-12 Způsob řízení biosyntézy fungicidinu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS19287A1 CS19287A1 (en) 1989-12-13
CS270664B1 true CS270664B1 (cs) 1990-07-12

Family

ID=5333643

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS87192A CS270664B1 (cs) 1987-01-12 1987-01-12 Způsob řízení biosyntézy fungicidinu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS270664B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS19287A1 (en) 1989-12-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Nielsen et al. Hyphal growth and fragmentation of Penicillium chrysogenum in submerged cultures
Belmar‐Beiny et al. Morphology and clavulanic acid production of Streptomyces clavuligerus: Effect of stirrer speed in batch fermentations
de Koning et al. A method for the determination of changes of glycolytic metabolites in yeast on a subsecond time scale using extraction at neutral pH
Wipf et al. Production of (+)‐(S)‐Ethyl 3‐Hydroxybutyrate and (‐)‐(R)‐Ethyl 3‐Hydroxybutyrate by Microbial Reduction of Ethyl Acetoacetate
Larsson et al. Rapid sampling, cell inactivation and evaluation of low extracellular glucose concentrations during fed-batch cultivation
Toma et al. Inhibition of microbial growth and metabolism by excess turbulence
Elmahdi et al. pH control in microwell fermentations of S. erythraea CA340: influence on biomass growth kinetics and erythromycin biosynthesis
Konstantinov et al. On‐line monitoring of hybridoma cell growth using a laser turbidity sensor
Sheree Lin et al. Conventional and rapid methods for yeast identification
Horvath et al. In situ fluorescence cell mass measurements of Saccharomyces cerevisiae using cellular tryptophan
Petersen et al. Shear sensitivity of hybridoma cells in batch, fed‐batch, and continuous cultures
Finn et al. A note on the stability of clostridia when held in continuous culture
MAssouTIER et al. Isolation and characterization of cryotolerant Saccharomyces strains
CS270664B1 (cs) Způsob řízení biosyntézy fungicidinu
Christensen et al. Semi‐on‐line analysis for fast and precise monitoring of bioreaction processes
BR112012019814B1 (pt) método de determinação de um indicador da taxa metabólica de uma população celular
Maxon Aeration‐agitation studies on the novobiocin fermentation
US11525115B2 (en) Process for the isolation and analysis of microorganisms contained in a sample
CN219752329U (zh) 一种快速检测用干细胞培养装置
Thomas et al. A microprocessor‐controlled photometer for monitoring microbial growth in multi‐welled plates
Ghaly et al. Dehydrogenase activity measurement in yeast fermentation
Reichl et al. Effect of temperature and medium composition on mycelial growth of Streptomyces tendae in submerged culture
WO1990003441A1 (en) Accelerated microdilution determination of bacteria susceptibility to antibiotics
Dahlmann et al. Online monitoring of the cell-specific oxygen uptake rate with an in situ combi-sensor
SU1433981A1 (ru) Способ получени ферментного препарата L-лизиндекарбоксилазы