CS269204B1 - Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity - Google Patents

Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity Download PDF

Info

Publication number
CS269204B1
CS269204B1 CS881123A CS112388A CS269204B1 CS 269204 B1 CS269204 B1 CS 269204B1 CS 881123 A CS881123 A CS 881123A CS 112388 A CS112388 A CS 112388A CS 269204 B1 CS269204 B1 CS 269204B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
proteolytic activity
labeled
labeled substrates
determining proteolytic
preparing insoluble
Prior art date
Application number
CS881123A
Other languages
English (en)
Other versions
CS112388A1 (en
Inventor
Ivo Ing Csc Safarik
Original Assignee
Safarik Ivo
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Safarik Ivo filed Critical Safarik Ivo
Priority to CS881123A priority Critical patent/CS269204B1/cs
Publication of CS112388A1 publication Critical patent/CS112388A1/cs
Publication of CS269204B1 publication Critical patent/CS269204B1/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Příprava nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity podle řeSení se provádí zapolymerováním značených bílkovin do struktury polyakrylamidu.

Description

Vynález se týká způsobu přípravy nerozpustných značených substrátů pro lytické aktivity.
stanovení proteoPro stanovení aktivity proteolytlckých enzymů je možno použít celou řadu substrátů. Mezi nimi významné místo zaujímají nerozpustné bílkovinné značené substráty. Mezi ne' patří například kožní práéek s navázanou Remazolovou brilantní modří, elastin s navázanou kongo červení, fibrin obarvený indigokarmínem, želatina zesítěná glutaraldehydem v přítomnosti nlgroslnu, želatina značená fluoresceinem a navázaná na Sepharosu 4B, kolagen značený nebo sítované bílkoviny s kovalentně navázaným reaktivním barvivém.
Dosud používané způsoby přípravy nerozpustných značených bílkovinných substrátů pro stanovení proteolytické aktivity spočívají v tom, že ae na přirozenou nerozpustnou bílkovinu (například kolagen, keratin, elastin, fibrin) kovalentné nebo adsorbcí naváže vhodná značka, nebo se běžné rozpustné bílkoviny v roztoku zesítí bifunkčním činidlem, přičemž se vytvoří nerozpustné sítované bílkoviny, na které se v druhém Stupni kovalentné nebo absorbcí naváže vhodná značka. Dalěí možností je, že se v roztoku bílkoviny suspenduje nebo rozpustí vhodná značka a potom se provede zesítění bílkoviny vhodným bifunkčním činidlem; značka je zabudována do struktury nerozpustné bílkoviny. Je také možné značenou rozpustnou bílkovinu navázat na vhodnou matrici. Deriváty kaseinu je možné tepelným zásahem převést na nerozpustnou formu.
Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity podle vynálezu spočívá v tom, že se značená bílkovina zabuduje do struktury polyakrylamldu. Vzniklý produkt se převede na jemné částice, která se důkladně promyjí vodou a organickými rozpouštědly a potom se usuSÍ. Působením proteolytlckých enzymů se ze zabudované bílkoviny odStěpují značené peptidy, jejichž množství je úměrné aktivitě proteinasy, a je možné je stanovit například spektrofotometrlcky, fluorimetricky nebo radiometricky, po odfiltrování nebo odstředění nerozloženého nerozpustného substrátu.
Vynález je dokumentován příklady.
Příklad 1
Na kaseln se kovalentně naváže reaktivní barvivo dlchlorotrlazlnového nebo monochlorotrlazinového typu (například Ostažinová červeň S-5B, Ostazinová modř S-2G nebo Ostazinová modř H-5R) podle standardního postupu. 5 g značeného kaseinu se rozpustí v 70 ml 10% Na2HPO^.12 HjO. Po rozpuštění se přidá 28,8 g akrylamldu a 1,2 g N,N'-methylen-bis-akrylamldu. Po rozpuštění se objem roztoku upraví na 100 ml, roztok se odvzduSní a přidá se 1,5 ml 10% persíranu amonného a 150 ul N,N,N' ,N '-tetramethylenethylendiamlnu (TEMED) . Po promíchání se směs ponechá polymerovat. Po 24 hodinách se vzniklý gel rozkrájí na malé kousky a homogenizuje se v nožovém mixeru. Jemná částice gelu se zabudovanou značenou bílkovinou se na fritě promyjí důkladně vodou a etanolem a usuSÍ se při laboratorní teplotě.
Příklad 2
Do zkumavek se naváží po 70 mg substrátu, připraveného podle bodu 1. Přidají se 3 ml vhodného pufru a substrát se ponechá bobtnat při pracovní teplotě po dobu 20 min. Potom se do zkumavek přidá po 1 ml roztoku obsahujícího proteinasy a směs ae protřepe. Po vhodně dlouhé inkubaci (například 30 min při 37 až 50 °C) se substrát odfiltruje nebo odstředí a filtrát nebo supernatant se proměří při vhodné vlnové délce (520 nm pro Ostazinovou červeň S-5B, 590 nm pro Ostazinovou modř H-5R nebo 620 nm pro Ostazinovou modř S-2G). Trypsin bylo možno úspěšně stanovit v rozsahu koncentrací 0,1 až 10 ug/ ml. '

Claims (1)

  1. Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity, vyznačující se tím, že se značená bílkovina zapolymeruje do struktury polyakrylamidu.
CS881123A 1988-02-23 1988-02-23 Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity CS269204B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS881123A CS269204B1 (cs) 1988-02-23 1988-02-23 Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS881123A CS269204B1 (cs) 1988-02-23 1988-02-23 Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS112388A1 CS112388A1 (en) 1989-09-12
CS269204B1 true CS269204B1 (cs) 1990-04-11

Family

ID=5344799

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS881123A CS269204B1 (cs) 1988-02-23 1988-02-23 Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS269204B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS112388A1 (en) 1989-09-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cheung et al. Mechanism of crosslinking of proteins by glutaraldehyde II. Reaction with monomeric and polymeric collagen
Jacq et al. Cytochrome b2 from Bakers' Yeast (L‐Lactate Dehydrogenase) A Double‐Headed Enzyme
Straub Isolation and properties of a flavoprotein from heart muscle tissue
Pollister et al. The nucleoprotamine of trout sperm
US5030697A (en) Polymer-bound dyes, process for their production and use
CA1077394A (en) Tanned thrombocytes
JPH0740932B2 (ja) 細胞培養組成物およびその用途
JPS62500720A (ja) 眼科用組成物
Kitamura et al. Mating-reactive membrane vesicles from cilia of Paramecium caudatum.
Maxfield et al. Binding, surface mobility, internalization, and degradation of rhodamine-labeled. alpha. 2-macroglobulin
Sheffield et al. Studies on plasma membranes: XVI. Tissue specific antigens in the liver cell surface
JPS60232098A (ja) エステル分解酵素及び/又は蛋白質分解酵素の検出用試薬
US3985620A (en) Substrate for determining proteinase
CS269204B1 (cs) Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity
Tuhy et al. Decarboxylation of bovine prothrombin fragment 1 and prothrombin
EP0106495A2 (en) Method and reagent for detecting antivirus antibody
CA1203153A (en) Process for measuring the activity of the plasma factor xiii
HIRABAYASHI et al. Studies on muscle differentiation. I. Isolation and purification of structural proteins from leg muscles of the frog, Rana nigromaculata.
LASCH et al. Method of Visualization of Matrix‐Bound Proteins: Leucine Aminopeptidase Bound to Sepharose and Sephadex Beads
JPH0322590B2 (cs)
Szabolcs et al. In vitro cross-linking of gluten into high-molecular-weight polymers with transglutaminase
Liu et al. Gold labeling of thrombin and ultrastructural studies of thrombin-gold conjugate binding by fibrin
CA2420149C (en) Dry powder formulation for protein labeling
Mihalyi et al. Iodination of fibrinogen
Lääne et al. Activation of poly [N‐(2‐hydroxypropyl) methacrylamide] for the binding of bioactive molecules, 1. Activation with 4‐nitrophenyl chloroformate