CS269204B1 - Method of insoluble labelled substrates preparation for proteolytic activity determination - Google Patents

Method of insoluble labelled substrates preparation for proteolytic activity determination Download PDF

Info

Publication number
CS269204B1
CS269204B1 CS881123A CS112388A CS269204B1 CS 269204 B1 CS269204 B1 CS 269204B1 CS 881123 A CS881123 A CS 881123A CS 112388 A CS112388 A CS 112388A CS 269204 B1 CS269204 B1 CS 269204B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
insoluble
proteolytic activity
labeled
activity determination
labelled substrates
Prior art date
Application number
CS881123A
Other languages
Czech (cs)
Other versions
CS112388A1 (en
Inventor
Ivo Ing Csc Safarik
Original Assignee
Safarik Ivo
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Safarik Ivo filed Critical Safarik Ivo
Priority to CS881123A priority Critical patent/CS269204B1/en
Publication of CS112388A1 publication Critical patent/CS112388A1/en
Publication of CS269204B1 publication Critical patent/CS269204B1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Příprava nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity podle řeSení se provádí zapolymerováním značených bílkovin do struktury polyakrylamidu.Preparation of insoluble labeled substrates for proteolytic determination the activity according to the invention is carried out by polymerization labeled protein to polyacrylamide structure.

Description

CS 269204 BlCS 269204 Bl

Vynález se týká způsobu přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytické aktivity.The present invention relates to a process for preparing insoluble labeled substrates for the determination of proteolytic activity.

Pro stanovení aktivity proteolytických enzymů je možno použít celou řadu substrá-tů. Mezi nimi významná místo zaujímají nerozpustná bílkovinná značená substráty. Mezine’ patří například kožní práSek s navázanou Remazolovou brilantní modří, elastin s na-vázanou kongo červení, fibrin obarvený indigokaraínem, želatina zeeítíná glutaraldehy-dem v přítomnosti nigrosinu, želatina značená fluoresceinem a navázaná na Sepharosu 4B,kolagen značený nebo sítovaná bílkoviny s kovalentně navázaným reaktivním barvivém.A variety of substrates can be used to determine the activity of proteolytic enzymes. Among them, the insoluble protein-labeled substrates occupy an important place. The mesine includes, for example, a powder powder with bound Remazol brilliant blue, elastin with bound congo red, fibrin stained with indigocaraine, gelatin crosslinks with glutaraldehyde in the presence of nigrosin, gelatin labeled with fluorescein and bound to Sepharose 4B, collagen labeled or crosslinked proteins with covalently bound reactive dye.

Dosud používaná způsoby přípravy nerozpustných značených bílkovinných substrátůpro stanovení proteolytická aktivity spočívají v tom, že se na přirozenou nerozpust-nou bílkovinu (například kolagen, keratin, elastin, fibrin) kovalentnS nebo adsorbcínaváže vhodná značka, nebo se běžná rozpustná bílkoviny v roztoku zesítí bifunkčnímčinidlem, přičemž se vytvoří nerozpustná sítovaná bílkoviny, na která se v druhámStupni kovalentnS nebo absorbcí naváže vhodná značka. DalSÍ možností je, že se v roz-toku bílkoviny suspenduje nebo rozpustí vhodná značka a potom se provede zesítSní bíl-koviny vhodným bifunkčním činidlem; značka je zabudována do struktury nerozpustná bíl-koviny. Je taká možná značenou rozpustnou bílkovinu navázat na vhodnou matrici. Deri-váty kaseinu je možná tepelným zásahem převást na nerozpustnou formu.The methods used to prepare insoluble labeled proteinaceous substrates for the determination of proteolytic activity have hitherto been such that a suitable label is applied to the natural insoluble protein (e.g., collagen, keratin, elastin, fibrin), or the conventional soluble protein in the solution is crosslinked with a bifunctional agent, to form insoluble crosslinked proteins to which a suitable label binds in the second stage or by absorption. Another possibility is that a suitable label is suspended or dissolved in the protein solution and then the crosslinking protein is carried out with a suitable bifunctional agent; the label is incorporated into the insoluble protein structure. It is also possible to bind the labeled soluble protein to a suitable matrix. The casein derivatives may be converted to an insoluble form by heat treatment.

Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytickáaktivity podle vynálezu spočívá v tom, že se značená bílkovina zabuduje do strukturypolyakrylamldu. Vzniklý produkt se převede na jemná částice, která se důkladně promy-jí vodou a organickými rozpouštědly a potom se usuSÍ. Působením proteolytických enzy-mů se ze zabudovaná bílkoviny odStěpují značená peptidy, jejichž množství je úměrnáaktivitě proteinasy, a je možná je stanovit například spektrofotometricky, fluorlmet-ricky nebo radiometricky, po odfiltrování nebo odstředění nerozloženého nerozpustnéhosubstrátu.The process of preparing insoluble labeled substrates for the determination of proteolytic activity according to the invention consists in incorporating the labeled protein into the polyacrylamide structure. The resulting product is converted into fine particles which are thoroughly washed with water and organic solvents and then dried. The action of proteolytic enzymes involves the incorporation of labeled peptides by the incorporated proteins, the amount of which is proportional to the activity of the proteinase, and may be determined, for example, spectrophotometrically, fluorometrically or radiometrically, after filtering off or centrifuging the undissolved insoluble substrate.

Vynález je dokumentován příklady. Příklad 1The invention is illustrated by examples. Example 1

Na kasein se kovalentnS naváže reaktivní barvivo dichlorotriazinového nebo mono-chlorotriazinového typu (například 0sta2inová červeň S-53, Ostazinová modř S-2G neboOstazinová modř H-5R) podle standardního postupu. 5 g značeného kaseinu se rozpustív 70 ml 10% Na2HPO^.12 HjO. Po rozpuštění se přidá 28,8 g akrylamidu a 1,2 g N,N'--methylen-bis-akrylamidu. Po rozpuětění se objem roztoku upraví na 100 ml, roztokse odvzduění a přidá se 1,5 ml 10% persíranu amonného a 150 ul N,N,N' ,N'-tetramet-hylenethylendiaminu (TEMED) . Po promíchání se směs ponechá polymerovat. Po 24 hodi-nách se vzniklý gel rozkrájí na malá kousky a homogenizuje se v nožovém mixeru. Jem-ná částice gelu se zabudovanou značenou bílkovinou se na fritě promyjí důkladně vo-dou a etanolem a usuěí se při laboratorní teplotě. Příklad 2The reactive dye of the dichlorotriazine or mono-chlorotriazine type (e.g. 0sta2in red S-53, Ostazin blue S-2G or Ostazin blue H-5R) is coupled to casein by standard procedure. 5 g of labeled casein is dissolved in 70 ml of 10% Na2HPO4 · 12 H2O. After dissolution, 28.8 g of acrylamide and 1.2 g of N, N '-methylene-bis-acrylamide are added. After dissolution, the volume of the solution is adjusted to 100 ml, the solution is vented and 1.5 ml of 10% ammonium persulfate and 150 µl of N, N, N ', N'-tetramethylene ethylenediamine (TEMED) are added. After mixing, the mixture is allowed to polymerize. After 24 hours, the resulting gel is cut into small pieces and homogenized in a knife mixer. The fine gel particles with embedded labeled protein are washed thoroughly on the frit with water and ethanol and dried at room temperature. Example 2

Do zkumavek se naváží po 70 mg substrátu, připraveného podle bodu 1. Přidají se3 ml vhodného pufru a substrát 3e ponechá bobtnat při pracovní teplotě po dobu 20min. Potom se do zkumavek přidá po 1 ml roztoku obsahujícího proteinasy a směs aeprotřepe. Po vhodně dlouhé Inkubaci (například 30 min při 37 až 50 °C) se substrátodfiltruje nebo odstředí a filtrát nebo supernatant se proměří při vhodné vlnovédélce (520 nm pro Ostazinovou červeň S-5B, 590 nm pro Ostazinovou modř H-5R nebo620 nm pro Ostazinovou modř S-20). Trypsin bylo možno dspěěně stanovit v rozsahukoncentrací 0,1 až 10 ug/ ml.Weigh 70 mg of the substrate prepared according to step 1 into the tubes. Add 3 ml of the appropriate buffer and allow substrate 3e to swell at room temperature for 20 min. Thereafter, 1 ml of a solution containing proteinases and a shake mixture is added to the tubes. After a suitably long incubation (for example, 30 min at 37 to 50 ° C), the substrate is filtered or centrifuged and the filtrate or supernatant is measured at an appropriate wavelength (520 nm for Ostazine red S-5B, 590 nm for Ostazin blue H-5R or 620 nm for Ostazin blue S-20). Trypsin was successfully determined in a concentration range of 0.1 to 10 µg / ml.

Claims (1)

2 CS 269204 B1 PŘEDMĚT VYNÁLEZU Způsob přípravy nerozpustných značených substrátů pro stanovení proteolytlcké aktivity,vyznačující se tím, že se značená bílkovina zapolymeruje do struktury polyakrylamidu.OBJECT OF THE INVENTION A process for preparing insoluble labeled substrates for determining proteolytic activity, characterized in that the labeled protein is polymerized into a polyacrylamide structure.
CS881123A 1988-02-23 1988-02-23 Method of insoluble labelled substrates preparation for proteolytic activity determination CS269204B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS881123A CS269204B1 (en) 1988-02-23 1988-02-23 Method of insoluble labelled substrates preparation for proteolytic activity determination

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS881123A CS269204B1 (en) 1988-02-23 1988-02-23 Method of insoluble labelled substrates preparation for proteolytic activity determination

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS112388A1 CS112388A1 (en) 1989-09-12
CS269204B1 true CS269204B1 (en) 1990-04-11

Family

ID=5344799

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS881123A CS269204B1 (en) 1988-02-23 1988-02-23 Method of insoluble labelled substrates preparation for proteolytic activity determination

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS269204B1 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
CS112388A1 (en) 1989-09-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Jacq et al. Cytochrome b2 from Bakers' Yeast (L‐Lactate Dehydrogenase) A Double‐Headed Enzyme
CA1077394A (en) Tanned thrombocytes
Cheung et al. Mechanism of crosslinking of proteins by glutaraldehyde II. Reaction with monomeric and polymeric collagen
Bernardin et al. Preparation and characterization of α-gliadin
Barnhart Cellular site for prothrombin synthesis
JPH0740932B2 (en) Cell culture composition and use thereof
SE453947B (en) PROCEDURE FOR DIAGNOSTICATION OF CANCER WITH LECTOR-BINDING TUMOR MARKETS (TAG = TUMOR-ASSOCIATED GYCLE BINDING)
Chan Changes in the composition of plasma membrane proteins during differentiation of embryonic chick erythroid cell.
Kitamura et al. Mating-reactive membrane vesicles from cilia of Paramecium caudatum.
McCormick et al. Direct visualization of collagens and procollagens in polyacrylamide gels
US4066509A (en) Detection of hydrolyzing enzymes
US3985620A (en) Substrate for determining proteinase
CA1203153A (en) Process for measuring the activity of the plasma factor xiii
CS269204B1 (en) Method of insoluble labelled substrates preparation for proteolytic activity determination
CN111426827A (en) Long-afterglow material-based labeling solution, immunochromatography test paper and application thereof
CA1191771A (en) Reagent for the determination of ristocetin cofactor (v. willebrand factor)
Zemanova et al. Effect of the nature of proteins on their coupling to different epoxide-containing supports
LASCH et al. Method of Visualization of Matrix‐Bound Proteins: Leucine Aminopeptidase Bound to Sepharose and Sephadex Beads
Gallop et al. The solubility and properties of a purified ichthyocol in salt solutions of neutral pH
GB1579102A (en) Synthetic substitute stool material
AU2001278141B2 (en) Dry powder formulation for protein labeling
Goldring et al. Solubilization of protein–dye complexes on nitrocellulose to quantify proteins spectrophotometrically
JPH0827283B2 (en) Composition for immunoaggregation reaction
Cantrell et al. Chemical inactivation of Escherichia coli 30 S ribosomes with maleic anhydride: identification of the proteins involved in polyuridylic acid binding
Inada et al. Fibrin membrane endowed with biological function: II. Chloroplast adenosine triphosphatase embedded in fibrin membrane