CS264992B1 - Spdsob přípravy siefovanóho proteinu - Google Patents

Spdsob přípravy siefovanóho proteinu Download PDF

Info

Publication number
CS264992B1
CS264992B1 CS881072A CS107288A CS264992B1 CS 264992 B1 CS264992 B1 CS 264992B1 CS 881072 A CS881072 A CS 881072A CS 107288 A CS107288 A CS 107288A CS 264992 B1 CS264992 B1 CS 264992B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
protein
cross
weight
linked
preparing
Prior art date
Application number
CS881072A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS107288A1 (en
Inventor
Jiri Ing Csc Zemek
Oubomir Ing Csc Floch
Maria Ing Bejdova
Original Assignee
Zemek Jiri
Oubomir Ing Csc Floch
Bejdova Maria
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zemek Jiri, Oubomir Ing Csc Floch, Bejdova Maria filed Critical Zemek Jiri
Priority to CS881072A priority Critical patent/CS264992B1/cs
Publication of CS107288A1 publication Critical patent/CS107288A1/cs
Publication of CS264992B1 publication Critical patent/CS264992B1/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Riešenie sa týká přípravy sletovaného proteinu pre účely přípravy štandardných chromolytických substrátov. Podstata riešenia spočívá v tom, že protein sa sieťuje za použitia homobifunkčného činidla odvodeného od L-aminokyselinových zložiek primárnéj štruktúry proteinu, akým je L-etylester kyseliny 2,6-diizotiokyanátohexánovej v množstve 0,5 až 10 % hmot. vztiahnuté na hmotnost suchého proteinu, pri pH 7 až 12 upraveném pomocou roztokov zriedených lúhov alebo kyselin alebo tlmivých roztokov 1 až 50 mmol.l-^, s výhodou fosfátových alebo borátových, pri teplote 10 až 50 °C po dobu 10 až 120 min.

Description

264992 2
Vynález sa týká spdsobu přípravy sletovaných proteinov a to tak pre účely přípravyštandardných chromolytických substrátov, afinantov proteolytických enzýmov obecného typu,hydrogélov proteinového typu, alebo nosičov k imobilizácii enzýmov a buniek.
Doteraz známe spósoby sietovania proteinov využívajú prevažne homobifunkčné látkytypu glutaraldehydu (S. Avrameas, Immunochemistry, 6/1969/43) , alebo heterobifunkčně látkytypu 2-chlormetyloxiránu (AO 194 592; AO 218 709). Zatial čo v príprave sietovania glutaral-dehydom vznikajú nedefinované oligomérne a polymérne štruktúry, obsahujúce alfa-nenasýtenéaldehydy, ktoré taktiež sa zúčastňujú reakcie sietovania (F. M. Richards, J. R. Knowles, J. Mol. Biol. 37/1968) (231) Schiffove bázy, ktoré v priebehu sietovania vznikajú, nezaru- čujú stabilitu výsledného produktu. V případe sietovania 2-chlorometyl-oxiránom je potřebnápoměrně vysoká alkalita (pH 14) na premenu intermediárneho chlorohydrínu na oxiránovú skupinu,čo je sprevádzané degradačnými reakciami v primárnej štruktúre proteinu. Navýše uvedenáreakcia sietovania je sprevádzaná vysokou tvorbou solí, čo negativné ovplyvňuje hydrodynamickévlastnosti připravovaného proteinového gélu. Pri príprave váčších množstiev sletovanéhoproteinu za použitia 2-chlorometyloxiránu vznikajú technologické problémy s homogénnoudistribúciou lúhu v priereze reakčnej zmesi, čo má za následok nerovnoměrnost zosietovaniagélu na jednej straně a lokálnu degradáciu proteinu na vodorozpustné fragmenty v dósledkuvysokej alkality na straně druhej.
Uvedené nedostatky odstraňuje postup podlá vynálezu, ktorého podstata spočívá v tom,že v prvom stupni sa protein sieťuje za použitia homobifunkčného činidla odvodeného odL-aminokyselinových zložiek primárnej štruktúry proteinu akým je L-etylester kyseliny 2,6--diizotiokyanátohexánovej, v množstve 0,5 až 10 % hmot. vztiahnuté na hmotnost suchéhoproteinu, v prostředí roztoku o pH 7 až 12, s výhodou borátového alebo fosfátového pufru,pri teplote 10 až 50 °C po dobu 10 až 120 minút. V druhom stupni sa sletovaný protein vyperieod zložiek tlmivého roztoku a adjustuje pre Salšie použitie. Hydrogél sletovaného proteinumožno použit ako selekěnú pódu k sledovaniu mikr.obiálnych producentov enzýmov proteolytické-ho typu alebo v suchom stave po defibrácii v rýchlootáčkovom mixéri a následnom vysušenía vysitovaní ako afinant k izolácii proteolytických enzýmov zo zmesi enzýmov, alebo akonerozpustný protein k príprave štandardných chromolytických substrátov k stanoveniu aktivitproteolytických enzýmov v chemickej úpravě so zlúčeninami obsahujúcimi chromofórové skupiny. Výhodou uvedeného postupu je skutočnosť, že v priebehu reakcie nedochádza k tvorběvedlajších produktov, reakcia sietovania prebieha kontrolované v jednom smere bez tvorbysprievodných solí, umožňuje přípravu nových proteinových gélov v širokom rozsahu fyzikálnycha chemických vlastností pre Specifické potřeby ich využívania. Vysušený sletovaný proteinsa dobré skladuje. Podlá reakčných podmienok možno reakciu sietovania viesť tak, aby před-nostně reagovali len tiolové skupiny proteinu, alebo tak tiolové, ako aj primárné amino--skupiny proteinu. Příklad 1
Lyofilizovaný albumin hovSzieho séra (5 g) sa rozpúšta za miešania na elektromagnetickéjmiešačke v 100 ml borátového pufru (10 mmol.l ; pH 12) za přídavku 0,01 ml n-oktanolu. K rozpustnému proteinu sa přidá 0,5 g etylesteru 2,6-diizokyanátu lyzinu za rýchleho premieša-nia a reakčná zmes sa vyleje do formy (40x40 cm) o.výške 0,5 cm. Reakcia sietovania saukončí po 10 minútach pri 50 °C. Vzniknutý hydrogél sletovaného proteinu sa vyperie v desti-lovanej vodě od zvyškov borátového pufru. Získaný produkt po vymytí a Salšom napučaní vovodě má suchú hmotnost 1,1 % a modul elasticity penetrometricky 26 mm.
Príklad2
Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom, že ako protein sa použije ovalbumín. Získaný produkt má suchú hmotnost 1,8 ta modul elasticity penetrometricky 24 mm.

Claims (1)

  1. 3 264992 Příklad 3 Postup podlá příkladu 1, s tým rozdielom, že ako protein sa použije kazeín. Reakciasieťovania sa uskotoční v prostředí fosfátového pufru (40 mmol.l-1; pH 7) a za přídavku25 mg etylesteru 2,6-diizotiokyanátu L-lyzínu. Reakcia sieťovania sa ukončí po 10 minútachpri 10 °C. Získaný produkt sa za mokra defibruje vo vysokootáčkovom mixéri, premýva destilo-vanou vodou a etanolom a suší za izbovej teploty (20 °C). Získaný suchý gél sa sítujena velkost častíc 0,06 až 0,3 mm napučací objem 33 ml.g 1 a použije ako afinant proteolytickýchenzýmov (pepsín, trypsin, chymotrypsín) obecného typu. Vynález má široké uplatnenie predovšetkým v enzýmovom inžinierstve, potravinárstvea v obecnej aplikovanéj mikrobiologii. PREDMET VYNÁLEZU Spósob přípravy sieťovaného proteinu vyznačený tým, že protein sa sieťuje za použitiahomobifunkčného činidla odvodeného od L-aminokyselinových zložiek primárnej štruktúryproteinu akým je L-etylester kyseliny 2,6-diizotiokynátohexánovej v množstve 0,5 až 10 %hmot. vztiahnuté na hmotnost suchého proteinu, pri pH 7 až 12 upraveném pomocou roztokovzriedených lúhov alebo kyselin, alebo pomocou tlmivých roztokov 1 až 50 mmol.l 1, s výhodoufosfátových alebo borátových, pri teplote 10 až 50 °C po dobu 10 až 120 minút.
CS881072A 1988-02-19 1988-02-19 Spdsob přípravy siefovanóho proteinu CS264992B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS881072A CS264992B1 (cs) 1988-02-19 1988-02-19 Spdsob přípravy siefovanóho proteinu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS881072A CS264992B1 (cs) 1988-02-19 1988-02-19 Spdsob přípravy siefovanóho proteinu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS107288A1 CS107288A1 (en) 1988-10-14
CS264992B1 true CS264992B1 (cs) 1989-09-12

Family

ID=5344156

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS881072A CS264992B1 (cs) 1988-02-19 1988-02-19 Spdsob přípravy siefovanóho proteinu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS264992B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS107288A1 (en) 1988-10-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3711574A (en) Copolymers of acrylamide gas
US5514572A (en) Method to maintain the activity in polyethylene glycol-modified proteolytic enzymes
HoRIUCHI et al. γ‐Glutamyl Transpeptidase: Sidedness of Its Active Site on Renal Brush‐Border Membrane
Axéan et al. Chemical fixation of enzymes to cyanogen halide activated polysaccharide carriers
US3619371A (en) Production of a polymeric matrix having a biologically active substance bound thereto
US4592998A (en) Process for coupling biological substances by covalent bonds
Fuchsbauer et al. Influence of gelatin matrices cross-linked with transglutaminase on the properties of an enclosed bioactive material using β-galactosidase as model system
CA1040561A (en) Cyanogen halide activation of carbohydrates and protein binding thereto
US5976527A (en) High surface area support having bound latex particles containing oxirane groups for immobilization of substances
DE1944048C3 (de) Verfahren zur Herstellung eines wasserlöslichen Enzymsystems
US3843446A (en) Preparation of enzymatically active membranes
Kosakowski et al. The Subunit Structure of Phenylalanyl‐tRNA Synthetase of Escherichia coli
Silman et al. Some water‐insoluble papain derivatives
US4245064A (en) Activated solid carrier and a method of its preparation
JPH05501499A (ja) 固定化酵素調製品、その製法および使用
Berger et al. Cocoonase: III. Purification, preliminary characterization, and activation of the zymogen of an insect protease
US3977941A (en) Protein-enzyme complex membranes
US3846306A (en) Bonding of enzymes,enzyme derivatives and other biologically active molecules to polymeric materials
US3985620A (en) Substrate for determining proteinase
EP0302284B1 (en) Stabilized enzymes
Kennedy et al. Preparation of a water-insoluble trans-2, 3-cyclic carbonate derivative of macroporous cellulose and its use as a matrix for enzyme immobilisation
CS264992B1 (cs) Spdsob přípravy siefovanóho proteinu
US5053225A (en) Functional organic thin film chemically bonded to biologically active agent
Friess et al. Insoluble collagen matrices for prolonged delivery of proteins
CA2154013A1 (en) Analytical element, composition and method using modified apo-horseradish peroxidase