CS263606B1 - Enzymový elektrochemický senzor na stanovení alkoholů a způsob jeho přípravy - Google Patents

Enzymový elektrochemický senzor na stanovení alkoholů a způsob jeho přípravy Download PDF

Info

Publication number
CS263606B1
CS263606B1 CS861637A CS163786A CS263606B1 CS 263606 B1 CS263606 B1 CS 263606B1 CS 861637 A CS861637 A CS 861637A CS 163786 A CS163786 A CS 163786A CS 263606 B1 CS263606 B1 CS 263606B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
groups
enzyme
immobilized
isonitrile
membrane
Prior art date
Application number
CS861637A
Other languages
English (en)
Other versions
CS163786A1 (en
Inventor
Miroslav Doc Ing Csc Marek
Bohuslav Doc Ing Csc Dolezal
Zdenek Ing Csc Pavlicek
Radko Ing Csc Volf
Miloslav Ing Csc Stastny
Jiri Ing Csc Nepozitek
Oldrich Ing Csc Gilar
Original Assignee
Marek Miroslav
Dolezal Bohuslav
Pavlicek Zdenek
Volf Radko
Stastny Miloslav
Nepozitek Jiri
Gilar Oldrich
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Marek Miroslav, Dolezal Bohuslav, Pavlicek Zdenek, Volf Radko, Stastny Miloslav, Nepozitek Jiri, Gilar Oldrich filed Critical Marek Miroslav
Priority to CS861637A priority Critical patent/CS263606B1/cs
Priority to CS88476A priority patent/CS268357B1/cs
Publication of CS163786A1 publication Critical patent/CS163786A1/cs
Publication of CS263606B1 publication Critical patent/CS263606B1/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Řešení se týká enzymového elektrochemického senzoru na stanovení alkoholů, především ethylalkoholu, obsahujícího detektor kyslíku, na jehož povrchu je fixována vrstva s imobilizovaným enzymem alkoholoxidázou a způsobu jeho přípravy. Stanovení alkoholu se provádí na principu enzymové exidace katalyzované imobilizovanou alkoxidázou v kombinaci s elektrochemickou detekcí ekvivalentní spotřeby kyslíku. Obsahuje-li fixovaná vrstva aldehydové skupiny, imobilizuje se alkoholoxidáza reakcí svých karboxylových skupin nebo aminoskupin a přidanými složkami obsahujícími izonitrilové a karboxylové skupiny a/nebo aminoskupiny, v případě, že obsahuje aminoskupiny, imobilizuje se enzym alkohol- -oxidáza reakcí svých karboxylových skupin aminoskupinami a přidanými složkami obsahujícími izonitrilové a aldehydové skupiny. Obdobný způsob přípravy je i tehdy, když fixovaná vrstva obsahuje bud karboxylové skupiny nebo izonitrilové skupiny. Enzymový elektrochemický senzor umožňuje rychle a spolehlivě měřit koncentraci alkoholu v technologických vzorcích bez předchozí úpravy analyzované směsi, ve fyziologických roztocích, i v dechu intoxikovaných probantú.

Description

Vynález se týká enzymového elektrotechnického senzoru na stanovení alkoholů na principu jejich enzymové reakce - oxidace katalyzované imobilizovanou alkoholoxidázou v kombinaci s elektrotechnickou detekcí ekvivalentní spotřeby kyslíku a způsobu provedení tohoto enzymového senzoru.
Stanovení primárních alkoholů, především metanolu a etanolu, ale i například n-propanolu, n-butanolu a allylalkoholu je velmi důležité v řadě technologií chemického průmyslu a zvláště v moderních biotechnologiích. V mnoha případech je významné stanovení těchto alkoholů i v surovinách nebo produktech potravinářského průmyslu. Stanovení etanolu je zvlášt potřebné a velmi časté i v soudních a klinických toxikologickýoh laboratořích především z důvodu legislativní kontroly při zajištování bezpečnosti dopravy.
Z uvedených důvodů byla pro stanovení titulních alkoholů vypracována řada postupů chemických, většinou s fotometrickou detekcí, i fyzikálně chemických, z nichž největšího uplatnění doznala plynová chromatografie.
V souvislosti s rozvojem enzymových analytických postupů vyznačujících se vysokou citlivostí, jednoduchostí a speoifitou danou vlastní podstatou enzymové katalýzy, byla věnována pozornost též enzymovému stanovení především etanolu. Při tomto stanovení se využívá katalytického účinku alkoholdehydrogenázy (E.C.1.1.1.1), přičemž je nejběžněji množství oxidovaného etylalkoholu sledováno fotometrioky na základě ekvivalentní tvorby redukované formy koenzymu nikotinamidadenindinukleotidu (NADH).
K enzymovému stanovení etanolu je možno použít též alkoholoxidázu, která katalyzuje oxidaci alkoholu přímo kyslíkem, aniž by byla nutná přítomnosti koenzymu NAD+. Substrátová specifita alkoholoxidázy je však širší, zahrnuje i některé další primární alifatické alkoholy, i když jejich relativní rychlost oxidace je ve srovnání s etanolem výrazně nižší. Této skutečnosti může být na jedné straně využito pro stanoveni těchto jednotlivých alkoholů, na druhé straně však může být v některých případech zkreslen výsledek analýzy přítomností kontaminujících alkoholů. Z tohoto hlediska je největší nebezpečí ovlivnění výsledků analýzy přítomností etanolu jako kontaminující složky při stanovení jiných alkoholů. Naopak při stanovení etanolu zvláště ve fyziologických tekutinách, nebo jiných vzorcích fyziologického původu, toto nebezpečí prakticky nepřichází v úvahu.
Průběh enzymové reakce je možno sledovat přímo na základě tvorby nebo spotřeby určité substance, nebo pomoci následných chemických nebo enzymových reakcí vzniklých reakčních produktů. Vedle velmi často používané fotometrie má velký význam spojeni enzymové reakce s elektrochemickými čidly detekujícími substráty, produkty nebo jiné látky ovlivňující průběh enzymové reakce.
Použití volných enzymů je spojeno v některých případech s technickými nebo ekonomickými problémy jejich získáváni. Z tohoto důvodu je velmi atraktivní jejich fixace v blízkosti elektrochemického čidla, čímž je vytvořen senzor - enzymová elektroda, opakovaně použitelný při stovkách analýz bez jakékoliv spotřeby chemikálii, v některých případech pouze pufru.
Pro stanoveni alkoholů byla vypracována příprava enzymové elektrody spočívající v imobilizaci enzymu alkoholoxidázy ve spojení bud s elektrochemickou detekcí vznikajícího peroxidu vodíku, nebo s elektrochemickým stanovením spotřeby kyslíku kyslíkovým článkem Clarkova typu.
S ohledem na stabilitu vytvořeni enzymové elektrody je výhodná imobilizace enzymu kovalentní vazbou. Pro přípravu enzymových elektrod je nejčastěji používanou technikou imobilizace prokříženi molekul, případně v kombinaci s jinými enzymy či přidanou bílkovinou pomocí·; glutaraldehydu.
Tento: problém je řešen enzymovým elektrochemickým senzorem na stanovení alkoholů a způ3 sobem jeho přípravy podle vynálezu. Senzor obsahuje detektor kyslíku, na němž je fixována vrstva nebo membrána s imobilizovaným enzymem alkoholoxidázou. Podstatou vynálezu je, že vrstva nebo membrána je tvořena polymerem obsahujícím reaktivní zbytek organické sloučeniny vybraný ze skupiny obsahující aldehydové skupiny, aminoskupiny, karboxylové skupiny nebo izonitrilové skupiny, přes které je na polymer enzym vázán kovalentní vazbou. Způsob přípravy spočívá v tom, že na polymerni vrstvu obsahující aldehydové skupiny se enzym alkoholoxidáza imobllizuje reakcí svých karboxylových skupin nebo aminoskupin a přidanými složkami obsahujícími izonitrilové a karboxylové skupiny a/nebo aminoskupiny, případně v tom, že na polymerni vrstvu obsahující aminoskupiny se enzym alkoholoxidáza imobilizuje reakcí svých karboxylových skupin s aminoskupinaml obsaženými v polymerni vrstvě a přidanými složkami obsahujícími izonitrilové a aldehydové skupiny. Dále na polymerni vrstvu se enzym alkoholoxidáza imobilizuje reakcí svých aminoskupin s karboxylovýmí skupinami obsaženými v této vrstvě a přidanými složkami obsahujícími izonitrilové a aldehydové skupiny, nebo na polymerni vrstvu obsahující izonitrilové skupiny se enzym alkoholoxidáza imobilizuje reakcí svých karboxylových skupin nebo aminoskupin a přidanými složkami obsahujícími aldehydové skupiny a/nebo aminoskupiny.
Výhodou enzymového elektrochemického senzoru a způsobu jeho přípravy podle vynálezu je zvýšení jeho stability. Pro některé aplikace senzoru s ohledem na další zvýšení jeho stability je výhodné překrýt vrstvu s imobilizovaným enzymem další membránou propustnou pouze pro nízkomolekulární látky.
Enzymový elektrochemický senzor na stanoveni alkoholu podle vynálezu umožňuje rychle a spolehlivě měřit koncentraci alkoholů v technologických vzorcích bez předchozí úpravy analyzované směsi, zvláště výhodný je pro stanovení ethylalkoholu ve fyziologických tekutinách, především plasmě a v dechu intoxikovaných probantů, v rozsahu desetin až stovek promile.
Předmět vynálezu je dokumentován dále uvedenými příklady použití, aniž by se jimi omezoval.
Příklad 1 o
Na terčík z karboxymethylcelulózy byly aplikovány 2 jul ethylaminu 0,5 mol/dm , 1 ul 3 ' cyklohexylisokyanidu a 150 jul alkoholoxidázy v 0,1 mol/dm fosfátového pufru pH 7,5. Po z 3 šesti hodinách byl terčík s navázanou alkoholoxidázou důkladně promyt 0,1 mol/dm fosfátovým pufrem pH 7,5 a poté byl fixován na detektor kyslíku. Pomocí takto připraveného enzymového elektrochemického senzoru byl stanoven n-butanol s lineární odezvou v koncentračním rozsahu 10 ® až 10 3 mol v dm3.
Příklad 2
Na terčík z modifikovaného bopolymeru styrenu s glycidylmethakrylátem obsahující izo3 nitrilové skupiny byly aplikovány 2 yul glutaraldehydu - 0,5 mol/dm a 150^ul alkoholoxidázy v 0,1 mol/dm3 fosfátovém pufru pH 7,5. Po šesti hodinách byl terčík s navázanou alkoholoxio dázou důkladně promyt 0,1 mol/dm fosfátovým pufrem pH 7,5 a poté byl fixován na detektor kyslíku. Pomocí takto připraveného enzymového elektrochemického senzoru byl stanoven n-buta“6 -3 3 nol s lineární odezvou v koncentračním rozsahu 10 až 10 mol v dm-.
Příklad 3
Na terčík z modifikovaného bopolymeru styrenu s glycidalmethakrylátem obsahující alde3 hydové skupiny byly aplikovány 2 /il kyseliny octové - 0,5 mol/dm , 1/il cyklohexylisokyanidu a 150yul alkoholoxidázy v 0,1 mol/dm3 fosfátového pufru pH 7,5. Po šesti hodinách byl terčík s navázanou alkoholoxidázou fixován na detektor kyslíku a dále překryt membránou z acetátu celulózy propouštějící pouze nízkomolekulární látky. Pomocí takto, připraveného enzymového elektrochemického senzoru byl stanoven ethylalkohol na základě úbytku kyslíku v reakční -7 -4 3 směsi s lineární odezvou v rozsahu 5.10 až 5.10 mol ethylalkoholu v dm .
Příklad 4
Na terčík z porézního skla modifikovaného gama-aminopropyltriethoxysilanem byly apliko3 vány 2/il kyseliny octové - 0,5 mol/dm , 1/il cyklohexylinkyanidu a 150 /il alkoholoxidázy ' 3 v 0,1 mol/dm fosfátového pufru pH 7,5. Terčík byl fixován na detektor kyslíku a dále překryt membránou z acetátu celulózy propouštějící pouze nízkomolekulární látky. Pomocí takto připraveného enzymového elektrochemického senzoru byl stanoven methylalkohol ve vodných roztocích
-7 -4 3 s lineární odezvou v rozsahu koncentrací 5.10 až 4.10 mol v dm .

Claims (5)

1. Enzymový elektrochemický senzor na stanovení alkoholů obsahující detektor kyslíku, na jehož povrchu je fixována vrstva nebo membrána s imobilizovaným enzymem alkoholoxidázou, vyznačující se tím, že vrstva nebo membrána je tvořena polymerem obsahujícím reaktivní zbytek organické sloučeniny vybraný ze skupiny obsahující aldehydové skupiny, aminoskupiny, karboxylové skupiny nebo izonitrilové skupiny, přes které je na tento polymer enzym vázán kovalentni vazbou.
2. Způsob přípravy enzymového elektrochemického senzoru podle bodu 1, vyznačující se tím, že na polymerní vrstvu nebo membránu obsahující aldehydové skupiny se enzym alkoholoxidáza imobilizuje reakcí svých karboxylových skupin nebo aminoskupin a přidanými složkami obsahujícími izonitrilové a karboxylové skupiny a/nebo aminoskupiny.
3. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že na polymerní vrstvu nebo membránu obsahující aminoskupiny se enzym alkoholoxidáza imobilizuje reakcí svých karboxylových skupin s aminoskupinami obsaženými v polymerní vrstvě nebo membráně a přidanými složkami obsahujícími izonitrilové a aldehydové skupiny.
4. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím,-že na polymerní vrstvu nebo membránu obsahující karboxylové skupiny se enzym alkoholoxidáza imobilizuje reakci svých aminoskupin s karboxylovými skupinami obsaženými v polymerní vrstvě nebo membráně a přidanými složkami obsahujícími izonitrilové a aldehydové skupiny.
5. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že na polymerní vrstvu nebo membránu obsahující izonitrilové skupiny se enzym alkoholoxidáza imobilizuje reakcí svých karboxylových skupin nebo aminoskupina přidanými složkami obsahujícími aldehydové skupiny a/nebo aminosku-- . piny.
CS861637A 1986-03-11 1986-03-11 Enzymový elektrochemický senzor na stanovení alkoholů a způsob jeho přípravy CS263606B1 (cs)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS861637A CS263606B1 (cs) 1986-03-11 1986-03-11 Enzymový elektrochemický senzor na stanovení alkoholů a způsob jeho přípravy
CS88476A CS268357B1 (cs) 1986-03-11 1988-01-26 Způsob přípravy elektrochemického senzoru na stanoveni alkoholů

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS861637A CS263606B1 (cs) 1986-03-11 1986-03-11 Enzymový elektrochemický senzor na stanovení alkoholů a způsob jeho přípravy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS163786A1 CS163786A1 (en) 1988-09-16
CS263606B1 true CS263606B1 (cs) 1989-04-14

Family

ID=5351216

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS861637A CS263606B1 (cs) 1986-03-11 1986-03-11 Enzymový elektrochemický senzor na stanovení alkoholů a způsob jeho přípravy
CS88476A CS268357B1 (cs) 1986-03-11 1988-01-26 Způsob přípravy elektrochemického senzoru na stanoveni alkoholů

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS88476A CS268357B1 (cs) 1986-03-11 1988-01-26 Způsob přípravy elektrochemického senzoru na stanoveni alkoholů

Country Status (1)

Country Link
CS (2) CS263606B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS47688A1 (en) 1989-08-14
CS163786A1 (en) 1988-09-16
CS268357B1 (cs) 1990-03-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6051389A (en) Enzyme sensor
Marazuela et al. Free cholesterol fiber-optic biosensor for serum samples with simplex optimization
KR101990301B1 (ko) 광학 바이오센서
US4234681A (en) Immobolized light emitting systems
Barlikova et al. Hybrid biosensor for the determination of sucrose
Sundaram et al. Routine glucose determination in serum by use of an immobilized glucose dehydrogenase nylon-tube reactor.
US5147781A (en) Enzyme electrode and assay for determining LDH5
CA1094477A (en) Assays utilizing localized electromagnetic radiation sources
GB2265718A (en) Assay system employing enzymes and electrochemical detection
Yao et al. Amperometric flow-injection determination of glucose, urate and cholesterol and blood serum by using some immobilized enzyme reactors and a poly (1, 2-diaminobenzene)-coated platinum electrode
Schelp et al. Two fibre-optic sensors with confined enzymes and coenzymes: development and application
Chirillo et al. The use of immobilized enzyme reactors in continuous-flow analyzers for the determination of glucose, urea, and uric acid.
Marquette et al. Fiberoptic biosensors based on chemiluminescent reactions
CS263606B1 (cs) Enzymový elektrochemický senzor na stanovení alkoholů a způsob jeho přípravy
US7585400B2 (en) Chip for electrochemical immunoassay
Kiba et al. Chemiluminometric determination of uric acid in plasma by closed-loop FIA with a coimmobilized enzyme flow cell
JPS63101743A (ja) 機能性電極
JP3710166B2 (ja) D−ソルビトールの測定方法およびその測定用キット
Matuszewski et al. Elimination of interferences in flow‐injection amperometric determination of glucose in blood serum using immobilized glucose oxidase
Murachi et al. [23] Use of immobilized enzyme column reactors in clinical analysis
Botrè et al. Determination of L-glutamate and L-glutamine in pharmaceutical formulations by amperometric L-glutamate oxidase based enzyme sensors
Male et al. A flow-injection (FI) mediated biosensor for on-line monitoring of lactate in mammalian cell culture
Iida et al. Spectrophotometric microdetermination of urea in a rice wine by using an immobilized acid urease column· FIA system
Berezin et al. Enzyme Electrodes
JPH09257742A (ja) アルコールセンサ