CS260913B1 - Biosenzor pro stanoveni laktátu - Google Patents

Biosenzor pro stanoveni laktátu Download PDF

Info

Publication number
CS260913B1
CS260913B1 CS854194A CS419485A CS260913B1 CS 260913 B1 CS260913 B1 CS 260913B1 CS 854194 A CS854194 A CS 854194A CS 419485 A CS419485 A CS 419485A CS 260913 B1 CS260913 B1 CS 260913B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
biosensor
cavity
lactate
yeast cells
enzyme
Prior art date
Application number
CS854194A
Other languages
English (en)
Other versions
CS419485A1 (en
Inventor
Jan Musil
Jaroslav Racek
Original Assignee
Jan Musil
Jaroslav Racek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jan Musil, Jaroslav Racek filed Critical Jan Musil
Priority to CS854194A priority Critical patent/CS260913B1/cs
Publication of CS419485A1 publication Critical patent/CS419485A1/cs
Publication of CS260913B1 publication Critical patent/CS260913B1/cs

Links

Landscapes

  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Biosenzor pro stanovení laktátu typu Clarkovy elektrody spočívá v tom, že reakční plocha platinové elektrody je zanořena do dutiny těla biosenzoru, která je překryta semipermeabilní membránou, v dutině těla biosenzoru o objemu 20 až 50 ,ul jsou umístěny imobilizované kvasničné buňky.

Description

Vynález se týká biosenzoru typu Clarkovy elektrody pro stanovení laktátu v biologických tekutinách, například v krvi a krevním séru pro potřeby medicíny a v potravinářských výrobcích.
Dosavadní způsob stanovení laktátu v biologických tekutinách je založen na stanovení účinku laktátdehydrogenasy-c-oxidoreduktasy, E.c.1.1.2.3 - označované též jako - cytochrom Bj podle rovnice
L - laktát + 2{Fe(CN) J3' laktátdehydrogenág pyruvát + + 2|_Fe(CN)6j’- + 2H
Měří se bud fotometricky úbytek ferrikyanidu anebo ampérometricky z velikosti elektrického proudu nutného k reoxidaci reakčního produktu ferrokyanidu vzniklého ve shora uvedené reakci. Anodou je Pt-elektroda Clarkova typu spojená v článek s referenční Ag/AgCl elektrodou. Na Pt-elektrodě probíhá děj podle rovnice:
2[Fe (CN) 634~ -> 2[Fe(CN)633- + 2 e~ a měřený proud je úměrný koncentraci laktátu.
Dosud známé laktátové senzory založené na Clarkově elektrodě, jejíž povrch je překryt semipermeabilní membránou mají v prostoru mezi povrchem elektrody a semipermeabilni membránou umístěn enzym cytochromu B. Jejich hlavní nevýhoda spočívá v tom, že použitý enzym má pro daný účel jen omezeně vhodné vlastnosti. Dá se připravit izolaci z přirozeného materiálu. Výsledkem je však nestandardní preparát, závislý extrémně na druhu použitých buněk a podmínkách kultivace. Enzym sám je oligomer, skládá se ze 4 podjednotek, který v roztoku velmi snadno tvoří dvě enzymově aktivní frakce. To značně omezuje způsob purifikace enzymu, například gelovou filtrací. Kromě toho je enzym v roztoku velmi nestálý. Odaje se rozcházejí, zřejmě podle stupně specifické aktivity výchozího preparátu od méně než 24 hodin do několika dni. Ze všech těchto důvodů jsou senzory tohoto typu omezené jen na laboratorní výzkum a ne-jsou vyráběny pro praktické použití.
Uvedené nevýhody odstraňuje biosenzor typu Clarkovy elektrody podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že reakční plocha platinové elektrody je zanořena do dutiny těla biosenzoru, která je překryta semipermeabilní membránou. V dutině těla senzoru o objemu 20 až 50 fil jsou umístěny zmobilizované kvasničné buňky, které mohou být imobilizovány v hydrofilním gelu na bázi umělých nebo přirozených látek, například na bázi pólyethylenglykolů nebo agaru a carrageenanu. V dutině těla biosenzoru mohou být umístěny lyofilizované kvasničné buňky. V dutině těla biosenzoru může být umístěn dále enzym urikaza.
Umístěním živých buněk do dutiny těla senzoru je možno dosáhnout reprodukovatelného použití po dobu nejméně jednoho měsíce. Toho je dosaženo schopností kvasničních buněk udržet si aktivitu enzymu cytochromu B^ po dlouhou dobu, případně si ho v průběhu používání obnovovat a to i za podmínek používaných pro stanovení laktátu. Množství enzymu v suspenzi buněk přítomné, je vždy. nadbytečné a není tedy limitujícím faktorem pro měření.
Takto uspořádaný buněčný laktátový senzor má zcela srovnatelné vlastnosti jako senzor enzymový. Výsledky s ním dosažené jsou naprosto stejné jako výsledky dosažené standardním spektrofotometrickým postupem a senzorem enzymovým. Suspenzi vhodných kvasničných buněk lze připravit poměrně jednoduchým způsobem z domácích zdrojů.
Biosenzor podle vynálezu je znázorněn na přiloženém výkresu. Je na bázi Clarkovy elektrody, která sestává z platinové elektrody 2 s reakční plochou 1. a referenční elektrody 5 Ag/AgCl umístěné v prostoru 6 vytvořeném v těle senzoru obsahujícím fosfátový pufr s chloridem draselným.
Reakční plocha 1. platinové elektrody 2 je zanořena do dutiny 2 těla senzoru, která je překryta semipermeabilní membránou 4_. V dutině 3 těla senzoru o objemu 20 až 50 /ll jsou umístěny imobilizované kvasničné buňky.
Na platinové elektrodě probíhá reoxidace ferrokyanidu vzniklého reakcí L-laktátu a ferrikyanidu za přítomnosti laktátdehydrogenázy obsažené v imobilizovaných kvasinkách.
Biosenzor lze připravit následovně:
1. Postup s prostou suspenzí buněk.
Suspenze krvinek typu Hansenula anomala byla pomnožena na Sabouraudově agaru a za přítomnosti laktátu za aerobních podmínek po dobu 48 hodin tak, aby absorbance buněčné suspenze činila při 740 nm v 1-cm vrstvě A = 2,1. Suspenze buněk byla zahuštěna odstředěním (10 minut při 1 000 g). Sediment byl resuspendován v kultivačním médiu. K přípravě biosenzoru bylo použito 20 ^ul této suspenze, které byly vneseny do vybrání v povrchu platinové elektrody a překryty fólií z acetylcelulózy tak, aby pod fólií nebyla bublinka vzduchu.
• Takto připravený biosenzor je uchováván v roztoku 2 mmol.l ferrikyanidu draselného rozpuštěném ve fosfátovém pufru (0,2 mmol.l 1; pH = 7,2) při teplotě 4 °C. Vlastní stanovení laktátu v krevním séru se provádí takto: 0,3 ml séra krevního se vnese do komůrky naplněné.
ml fosfátového pufru (0,2 mmol.l H pH = 7,2) s obsahem ferrikyanidu draselného (2 mmol.l-!). Obsah komůrky je promícháván magnetickým míchadlem a teplota udržována na 25 °C vodou protékající pláštěm komůrky.
Během jedné minuty se mění intenzita proudu na citlivém ampérometru. Koncentrace laktátu 1 mmol.l odpovídá proudu 0,55 jUA.
2. Postup se suspenzí kvasničnýoh buněk imobilizovaných agarem
Příprava kvasinek se provádí jak uvedeno v postupu 1. Po zahuštění se k suspenzi přidá za tepla roztok agaru tak, aby jeho konečná koncentrace nepřekročila 1 %. Po zhomogenizování se směs nechá ztuhnout. Pro přípravu senzoru se použije část gelu o tvaru, odpovídajícím vybrání v platinové elektrodě.
Za jinak nezměněných pracovních podmínek se stanovení laktátu provádí v plné žilní krvi, která byla odebrána za přidání kapky roztoku fluoridu sodného (2 mg/ml).
3. Postup se suspenzí živých kvasničných buněk s přidaným enzymem urikazou.
Příprava kvasinek se provádí jak je uvedeno v postupu 1. Po zahuštění se k buněčné suspenzi přidá enzym urikaza. Po rovnoměrném rozptýlení enzymu se k vlastní přípravě senzoru používá takto modifikované suspenze v množství 20 ^ul.
Biosenzor podle vynálezu lze použit při stanovení laktátu v krvi. Vzestup koncentrace laktátu v krvi je včasným příznakem rozvoje šoku u osob s rozsáhlými popáleninami, polytraumaty a s těžkou infekcí. Včasné rozpoznání nástupu šoku dovoluje přijmout potřebná opatření k jeho zástavě.
Vzestup koncentrace laktátu v krvi nad hranici 4,5 až 8,9 mmol.l 1 přežívá jen 33 % nemocných (vzestup koncentrace nad 9 až 10 mmol.l přežívá již jen méně než 15 %). Proto je tento senzor vhodný k rychlému zjištění koncentrace laktátu v krvi u hromadně se vyskytnuvších úrazů (shora uvedeného typu) jaké mohou nastat za míru, ale zejména při použití prostředků hromadného ničení ve válečném konfliktu. Použití senzoru umožní rychlé třídění nemocných s cílem poskytnout pomoc těm, kteří mají naději na přežití.
U špičkových sportovců stanovení laktátu slouží pro zjištění jejich trénovanosti, případně jejich výběr pro určité disciplíny. U dostihových koní pro zjištění jejich trénovanosti. Biosenzor podle vynálezu lze použít při stanovení laktátu v biologických tekutinách, například potravinářského průmyslu, při produkci výrobků založených na bázi mléčného kvašeni.

Claims (4)

  1. předmEt vynálezu
    1. Biosenzor pro stanovení laktátu typu Clarkovy elektrody, vyznačující se tím, že reakční plocha (1) platinové elektrody (2) je zanořena do dutiny (3) těla biosenzoru, která je překryta semipermeabilni membránou (4), v dutině (3) těla biosenzoru o objemu 20 až 50 <«1 jsou umístěny imobilizované kvasničné buňky.
  2. 2. Biosenzor podle bodu 1 vyznačující se tím, že v dutině (3) těla biosenzoru jsou umístěny kvasničné buňky imobilizované v hydrofilním gelu na bázi přirozených gelotvorných látek typu agaru, carrageenanu, nebo umělých látek na bázi polyethylenglykolů.
  3. 3. Biosenzor podle bodu 1 a 2, vyznačující se tím, že v dutině (3) těla biosenzoru jsou umístěny lyofilizované kvasničné buňky.
  4. 4. Biosenzor podle bodu 1 až 3 vyznačující se tím, že v dutině (3) těla senzoru je umístěn enzym urikaza.
CS854194A 1985-06-11 1985-06-11 Biosenzor pro stanoveni laktátu CS260913B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS854194A CS260913B1 (cs) 1985-06-11 1985-06-11 Biosenzor pro stanoveni laktátu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS854194A CS260913B1 (cs) 1985-06-11 1985-06-11 Biosenzor pro stanoveni laktátu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS419485A1 CS419485A1 (en) 1988-06-15
CS260913B1 true CS260913B1 (cs) 1989-01-12

Family

ID=5384133

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS854194A CS260913B1 (cs) 1985-06-11 1985-06-11 Biosenzor pro stanoveni laktátu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS260913B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS419485A1 (en) 1988-06-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Updike et al. The enzyme electrode
EP0552223B1 (en) Use of benzene derivatives as charge transfer mediators
Gough The implantable glucose sensor: An example of bioengineering design
O'Brien et al. The α-glycerophosphate cycle in Drosophila melanogaster. I. Biochemical and developmental aspects
JP2006501802A (ja) 一つ以上の所望の特性を有するグルコースオキシダーゼ酵素の調製方法および所望の特性を有するグルコースオキシダーゼ酵素
EP2573171B1 (en) Mutant lactate oxidase with increased stability and product, methods and uses involving the same
Cota-Robles et al. Submicroscopic particles in extracts of Azotobacter agilis
EP0321558A4 (en) L-glutamine sensor
Riedel et al. An electrochemical method for determination of cell respiration
WATANABE et al. Microbial sensors for the detection of fish freshness
Niu et al. Bulk-modified amperometric biosensors for hypoxanthine based on sol–gel technique
Garg et al. Fibre-optic biosensor for the detection of xanthine for the evaluation of meat freshness
Galindo et al. Microbial sensor for penicillins using a recombinant strain of Escherichia coli
Liu et al. Quantitation of glucose concentration using a glucoseoxidase-catalase electrode by potentiometric measurement
Wingard Jr et al. Potentiometric measurement of glucose concentration with an immobilized glucose oxidase/catalase electrode
CS260913B1 (cs) Biosenzor pro stanoveni laktátu
WO2005003750A1 (ja) ピロリン酸検出センサ、核酸の検出方法、および塩基種判別方法
Mizutani et al. Use of Polydimethylsiloxane for Constructing Amperometric Glucose‐Sensing Enzyme Electrode with Low Interference Level
Campanella et al. Determination of inorganic phosphate in drug formulations and biological fluids using a plant tissue electrode
Campanella et al. Enzyme-entrapping membranes for enzyme sensors
Cheillan et al. Molecular characteristics of the cholesterol oxidase and factors influencing its activity
Yeh et al. Electrophoretic separation of enzymes of individual flour beetles, Tribolium castaneum, on polyacrylamide gel
CN105628700B (zh) 基于铋-牛血清白蛋白-纳米铂的过氧化氢检测试剂盒
Malik et al. Purification and characterization of myosin from calf brain
McCollester et al. Membrane isolation and cytoskeletal breakdown: II. Enzyme studies revealing cytoskeletal stabilization by FAD