CS259884B2 - Method of blood division - Google Patents

Method of blood division Download PDF

Info

Publication number
CS259884B2
CS259884B2 CS858019A CS801985A CS259884B2 CS 259884 B2 CS259884 B2 CS 259884B2 CS 858019 A CS858019 A CS 858019A CS 801985 A CS801985 A CS 801985A CS 259884 B2 CS259884 B2 CS 259884B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
matrix
blood
sample
impregnated
lectin
Prior art date
Application number
CS858019A
Other languages
English (en)
Other versions
CS801985A2 (en
Inventor
Berthold Limbach
Roland Helger
Original Assignee
Merck Patent Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Merck Patent Gmbh filed Critical Merck Patent Gmbh
Publication of CS801985A2 publication Critical patent/CS801985A2/cs
Publication of CS259884B2 publication Critical patent/CS259884B2/cs

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5002Partitioning blood components
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/52Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
    • G01N33/521Single-layer analytical elements

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • External Artificial Organs (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Vzorek krve se nanese na matrici impregnovanou lektinem a oddělí se plazma nebo sérum, přičemž se matrice sestávající ze savého· materiálu s relativním, odporem, proudění až 40 °/o a napuštěná vzorkem krve 2 až 10 X propláchne isotoníckým roztokem pufru o pH v rozmezí 5,0 až 10,5 jako ředidlem. Matrice se výhodně propláchne ředidlem protiběžně. Jako, matrice se použije savý materiál z bavlněné tkaniny, smíšené tkaniny obsahující bavlnu, celulózy, viskózy nebo materiálu obsahujícího tyto složky. Bavlněná tkanina se použije o hustotě nití 10 až 25 (osnova) a 10 až 20 (útek) nití/cm a plošné hmotnosti 100 až 400 g/m2. Matrice může sestávat z více vrstev, přičemž se vrstva nejvzdálenější od naneseného vzorku může hydrofobovat. Při dělení se stanovená látka reprodukovatelně vypláchne, aniž by nastala analýzu rušící hemolýza. Způsob umožňuje dělení krve s malým množstvím vzorku a v krátké době.
Vynález se týká způsobu dělení krve a způsobu jednoduchého oddělení plazmy nebo séra z krve při současném zředění ředidlem.
Kvantitativní analýza biologických látek přítomných v krvi má pro klinickou chemii rozhodující význam. Jako protiklad analýzy jiných tělesných tekutin, jako moči, je však přímé stanovení těchto látek v krvi možné pouze v určitých případech. Obvykle se musí před vlastní analýzou oddělit rušivé části, především erythrocyty. Přitom se musí obzvláště dbát na to, aby nenastalo žádné ovlivnění výsledku analýzy hemolýzou. Nejčastěji používaný způsob dělení je odstředění analyzovaných vzorků krve. Nevýhodou jsou však přitom náklady na aparaturu a nezbytné velké objemy vzorků. Kromě toho pro provádění nezbytný kvalifikovaný personál a pro manipulaci a dopravu vzorků séra jsou nutná rozsáhlá bezpečnostní opatření. Kromě toho jsou spojeny s oddělením přípravy vzorků a vlastní analýzy prblémy s identifikací vzorků.
Podle stavu techniky jsou známé způsoby к dělení krve, které spočívají ňa aglutinaci erythrocytů přídavkem lektinů. Přitom se přidají ke vzorku krve ve vhodné nádobě příslušné látky a po určité době se odebere sérum nebo plazma. Jako nádoba se přitom použije v nejednodušším případě samotná trubice na odběr krve (DE-OS 2038722) nebo má nádoba tvar podložního sklíčka (DE-AS 1498577) nebo má jiný libovolný tvar. Lektiny se nanesou do příslušné nádoby buď jako pevná látka, nebo se imobilizují na látkách obsažených v nádobě (EP — OS 57110). Všem těmto systémům je společné to, že se sérum nebo plazma uvolněná z krve odstraní po určité době z dělicího rozsahu, aby se přivedla do jiného rozsahu další analýzy. Přitom zůstanou oddělené erythrocyty a část séra nebo plazmy v dělicí zóně. Toto neúplné převedení vytvořeného séra nebo plazmy vyžaduje pro další analýzu buď odměření použitého množství vzorku ve srovnání к celkovému reakčnímu roztoku, nebo práci bez zředění roztoku vzorku. Tento způsob vykazuje proto rovněž řadu nevýhod.
Úkolem vynálezu je vyvinout způsob dělení Krve, Který se jednak provádí jednoduše a bez problémů a jednak se může spojit jednoduchým způsobem s vlastní reakcí a integrovat na společný analytický systém.
Neočekávaně bylo zjištěno, že se může na základě matrice impregnované lektinem vytvořit způsob dělení krve, při kterém se může dělicí zóna po přidání vzorku krve několikrát propláchnout ředicím pufrem, přičemž se stanovená látka reprodukovatelně vypláchne, aniž by nastala analýzu rušící hemolýza.
Obzvláště neočekávané je to, že se lektiny použité к oddělení nemusí imobilizovat na matrici jako ve způsobu popsaném v· EP — — OS 57110 a dělicí reakce je kratší než 30 sekund oproti 0,5 až 3 hodinám při způsobu popsaném v DE — OS 2038722.
Úkol se vyřeší tak, že se dělený vzorek krve nanese na vrstvu matrice se speciálními vlastnostmi impregnovanou lektinem nebo směsí lektinů a potom se vrstva matrice nasáklá krví několikrát propláchne ředidlem.
Předmětem vynálezu je způsob dělení krve nanesením vzorku krve na matrici impregnovanou lektinem a oddělením plazmy nebo séra, který se vyznačuje tím, že se matrice sestávající ze savého materiálu s relativním odporem při proudění až 40 % a napuštěná vzorkem krve 2 až 10 X propláchne isotonickým roztokem pufru o pH v rozmezí 5,0 až 10,5 jako ředidlem.
Matrice se s výhodou propláchne ředidlem protiběžně.
Jako matrice ve způsobu podle vynálezu se použijí všechny savé materiály se strukturou tkaniny nebo vlákna, které mají pokud možno nepatrný relativní odpor proudění. Jako relativní odpor proudění se přitom rozumí odpor, který vykazuje určitý materiál protékajícímu roztoku.
Zjistí se z procentuálního zvýšení doby průtoku roztoku sloupcem a dodatečně matricí. Obecně nenastane při hodnotách <30% žádné rušení, při hodnotách >40% silné rušení klinicko-chemického zkušebního postupu. Obzvláštní význam má přitom také nasáklivost použitého materiálu; materiál má potom například dostatečně velkou nasáklivost, když zcela pohltí objem tekutiny ležící v rozmezí maximálně pohltitelného množství tekutiny, maximálně během 10 až 15 sekund. Jako výhodné matricové materiály se osvědčily materiály z bavlněné a viskózové tkaniny a směsné tkaniny, obsahující tyto materiály a celulózové materiály. Materiály mohou mít například v případě bavlny hustotu nití 10 až 25 (osnova] a 10 až 20 (útek) nití/cm při plošné hmotnosti 100 až 400 g/m2.
Matrice použitá ve způsobu podle vynálezu může sestávat z více vrstev uvedených materiálů. Přitom se může počet materiálových vrstev použitých к dělení značně měnit: na jedné straně je závislý na sací a dělicí kapacitě tkaniny a na objemu děleného vzorku krve, na druhé straně omezuje počet vrstev zvýšení dporu proudění. Obecně jsou dostatečné к dělení normální krve podle vynálezu 1 až 4 vrstvy; u obzvláště tenkých materiálů se může případně také použít více vrstev. Při použití více vrstev se může vrstva nejvíce vzdálená od naneseného· vzorku ještě hydrofobovat. Hydrofobizace se provádí například nanesením roztoku dichlormethanu parafinem při teplotě místnosti na matricový kotouč a následujícím vysušením.
Jako lektin (aglutinin) jsou vhodné všechny látky, které projevují silnou aglutinaci erythrocytů. Vhodným lektinem je například lektin ze Solanum tuberosum, Tritium vulga ris, Ricinus communis, sójových bobů, Phaseolus vulgaris, Lentil, pšeničných klíčků, Phytolacca americana. Případně je možný přídavek látek zesilujících aglutinaci, například kationtových polymerů jako hexadimethrinbromidu,'polymeru N,N,N‘,N‘-tetramethylhexamethylendiaminu a trimethylenbromiidu, N,N,N‘,N‘-tetramethyl-l,6-hexandiaminového polymeru s 1,3-dibrompropanem, poly(N,NX,N‘-tetramethyl-N-trimethylenhexamethylendia.n-omiumdi-bromidu.
Jako obzvláště vhodné se osvědčily směsi ]ekti.nů s malým podílem kationtových polymeru, například lektinové směsi ze sójových bobů a Solanum tuberosum v poměru 2 :1 s 2 % katiointového polymeru nebo lektinová směs z pšeničných klíčků, sójových bobů, Phaseolus vulgaris v poměru 1 : 2 :8 rovněž s 2 % kationtového polymeru.
Několikanásobné propláchnutí dělicí vrstvy nasáklé krví umožňuje fotometrickou analýzu důležitých parametrů pro klinickou diagnostiku. Přitom jsou možné na základě zředění také obzvláště к rušení náchylné tzv. koncové způsoby pro· substráty obsažené v krvi ve vyšší koncentraci. Způsob podle vynálezu umožňuje na jedné straně několikanásobným průtokem ředidla zónou dosažení dostatečně reprodukovatelného vypláchnutí stanovovaných látek, takže není zapotřebí dalšího pipetování, na druhé straně umožňuje výběrem zbývajícího parametru zabránit rušení analyzovaného roztoku produkty dělení krve, aniž by se musely zařadit komplikované přípravné úseky, například imobilizace lektinů nebo další reakční doba. Postup vícenásobného průtoku se může provádět libovolným způsobem, s výhodou v protiběžné formě provedení, při které ředidlo protéká střídavě matricí ze strany nanesení vzorku a potom ze strany odvrácené nanesenému vzorku, protože se může provádět s nepatrnými náklady na aparaturu. Tento postup je v nejjednodušším případě proveditelný pomocí jednocestné stříkačky ponořené do kyvety. Samozřejmě jsou možné také jiné protiběžné a nikoliv protiběžné formy provedení a také sloučeniny dělení krve a následující klinicko-chemické analýzy v celkovém reakčnlm úseku.
Jako· vzorek se může použít jak kapilární, tak také venózní krev. Vzorek se může nanést na dělicí úsek buď ihned po získání, nebo teprve později za přídavku látek bránicích srážení jako kyseliny ethylendiamintetraoctové (EDTA) nebo citranu.
Jako ředidlo se mohou použít isotonické pufrové roztoky, přičemž se mohou použít všechny dostupné pufrové látky jako fosforečnan, glycin, citran, tris (hydroxymethyl)aminomethan(tris), triethanolamin, piperazin-N,N‘-bis (2-ethansulfonová kyselina(pipes), atd. Hodnota pH použitého pufro vého roztoku se může zvolit v rozmezí 5,0 •až 10,5, s výhodou jsou fosforečnanové, triethanolaminové a glycinové pufry v rozmezí pH 6,5 až 10.
Zásadně jsou všechna stanovení substrátu po dělení vzorku krve obvyklá v klinické chemii proveditelná způsobem podle vynálezu. Volným výběrem poměru ředění vzorku až celkového roztoku se mohou bez obtíží stanovit jak substráty obsažené ve vysoké koncentraci v krvi, tak také nepatrná aktivita proteinů.
Vynález bude blíže objasněn v následujících příkladech.
Příklad 1
Stanovení relativního odporu proudění.
Kotouče (0 10 mm) různých matric se napustí 50 jul roztoku.»0,1)3 molu (1 fosforečnanového pufru, 0,1 molu/l chloridu sodného, 1 % katiointového polymeru, 13 /ig lektinu z pšeničných klíčků a 25 lektinu ze sójových bobů a suší se. К takto impregnovaným kotoučům se přidá 30 μΐ krve s přídavkem EDTA, a upnou se do sloupce (0 10 milimetrů) nad výstupním otvorem (0 1 milimetr). Při uzavřeném výtokovém otvoru se naplní 20 ml isotonického roztoku chloridu sodného a po· otevření uzávěru se zjistí čas až do úplného výtoku daného objemu tekutiny. Srovnáním s dobou výtoku u sloupce bez matrice se stanoví relativní odpor proudění jako procentuální zvýšení doby průtoku.
Příklad 2
Stanovení vlastností dělení krve u různých matric
Matricové kotouče impregnované podle příkladu 1 se upevní v jednocestné stříkačce (průměr 10 mm) pomocí krycího kotouče uprostřed otevřeného a napustí se 30 μΐ krve s přídavkem EDTA. Po 30 sekundách se ponoří špička stříkačky do kyvety s 1 ml roztoku obsahujícího 0,03 molu/1 fosforečnanového pufru o pH 7,25 a 0,1 molu/1 chloridu sodného. Roztok se stříká nasátím a vyt-ačením několikrát protiběžné matricovým kotoučem. Přitom se zjistí po každém vypláchnutí na základě extinkce měřené při 4Ό5 nm podíl hemolýzy a posoudí se kvalitativně. Získané výsledky jsou shromážděny v následující tabulce. Přitom znamená 4-4-1- velice dobře, 4-4- dobře, 4- dostatečně, — nedostatečně,--zcela nedostatečně. Pro dobré dělení krve je proto zapotřebí co nejmenšího odporu proudění a dobré nasáklivosti matrice.
до
оо
ОТ rH CO LO CM CO CO CO + +
4CM ОТ СО
CM CM
см о oo о ш
гЧ гЧ ю гЧ
CM r4 СП СО
Tt<
гЧ гЧ О
М< СО СО со 4-4-4-4- 4- +
со
О со со ю СМ СМ гЧ ю гЧ гЧ СО
I оо т-ч от ___I --,I —J 1 о см гЧ СМ
со со , гЧ т-Ч гН гЧ 1
со со 00 см
от г-Г см см*
00 гЧ со см см
СООТ^СО^ от~ со ОТл
LD Ь? СО со см гЧ 1гГ 4*
СМ гЧ г-Ч Ьч γΗ СО см см
Příklad 3
Vhodnost různých pufrových roztoků jako ředidlo
Při třech provedeních pokusů se matricový kotouč z bavlněné tkaniny (0 10 mm) impregnuje nanesením 100 μΐ roztoku dichlormethanu nasyceného při teplotě místnosti parafinem a následujícím vysušením a na něj se položí další kotouč impregnova ný lektinem uvedeným v následující tabulce. Po nanesení 30 μΐ krve s přídavkem EDTA na takto preparovatiou dělicí zónu se tato ještě třikrát protiběžně propláchne 1 ml pufrového roztoku o různé hodnotě pH. Pomocí extinkce při 405 nm se kvalitativně zjistí výsledky dělení krve. Jak vyplývá z tabulky, jsou jako ředidlo velice dobře vhodné pufrové roztoky o pH v rozmezí 5,5 až 10,5. Zhodnocení odpovídá příkladu 2.
Hodnota pH pufrového roztoku
Příklad 4
Stanovení glukózy v krvi
Matricový kotouč (0 10 .mm) z bavlněné tkaniny (matrice 1 z příkladu 2) se hydrofobuje podle příkladu 3, další se napustí 50 /li roztoku «obsahujícího 0,01 molu/1 fosforečnanového pufru o pH 7,25, 2!% kationtového polymeru, 16 μ% lektinu ze sójových bobů a 8 (Ug lektinu z Solanum tuberosum a suší se. Oba kotouče se položí na sebe (hydrofóbní jako spodní) do jednocestné stříkačky (0 10 mm). Na horní kotouč se potom nanese při různých pokusech 20 μΐ vzorku krve s přídavkem EDTA, který obsahoval různou koncentraci glukózy. Obsah glukózy se zjistí dodatečně stanovením v séru. Potom se zóny dělení v oddělených po kusech jednou a třikrát protiběžně propláchnou 1 ml roztoku 0,03 molu/1 fosforečnanového pufru o pH 7,25 a 0,3 molu/1 chloridu sodného a změří se extinkce získaného roztoku při 365 nm. Potom se přidá 50 μ\ reakčního roztoku obsahujícího 100 kU/1 (kU = 1 000 mezinárodních enzymových jednotek) glukózodehydrogenázy, 2 kU mutarotázy a 21 mmolu/1 nikotinamidadenindinukleotidu (NAD+) v 0,1 molu/1 fosforečnanového pufru o pH 7,6 a po 10 minutách se znova změří extinkce celkového roztoku při 365 nm. Z rozdílu extinkce se získá vynásobením faktorem 630 obsah glukózy výchozího vzorku; příslušné výsledky jsou uvedeny v následující tabulce. Celkově z tabulky vyplývá, že při vícenásobném propláchnutí se získají lepší výsledky než při jednom propláchnutí.
Stanovení glukózy
v séru mg/dl podle způsobu dle vynálezu při několikanásobném propláchnutí mg/dl
při jednom propláchnutí mg/dl standardní odchylka ze 6 hodnot %
59 21,0 61
78 86 12,9 74
120 131 4,9 114
139 144 9,0 135
179 189 4,9 171
235 233 8,6 240
310 293 21,0 318
520 ' 540 18,0 543
istandardní odchylka ze 6 hodnot %
Ίμ
3,0
3.5
3,9
2.3
3,9
4.6
2.4
Příklad 5
Stanovení močoviny v krvi
Do jednocestné stříkačky (0 10 mm) se vloží matricový kotouč z hydrofóbní bavlněné tkaniny (matrice 1 podle příkladu 2) a na ni další matricový kotouč, který byl napuštěn roztokem 0,025 molu/1 fosforečnanového pufru o pH 8,0, 0,1 molu/1 chloridu sodného obsahujícího 2,5 % kationtového polymeru a 19 4ug lektinu z Ricinus communis a potom vysušený. Na horní kotouč se dá 15 μΐ vzorku krve s přídavkem EDTA, který obsahoval různé koncentrace močoviny. Obsah močoviny se zjistil dodatečně v séru. Potom se dělicí zóny krve propláchnou jednou a třikrát protiběžně roztokem 0,03 molu/1 triethanolaminového pufru o pH 8 a 0,3 molu/1 chloridu sodného v oddělených pokusech. Potom se přidá 50 μ reakčního roztoku obsahujícího 25 kU/Ι glutamát-dehydrogenázy, 0,2 molu/1 ketoglutarátu, 4,6 mmolu/l redukovaného nikotinamidenindimulkleotidu (NADH) a 30 mmolu/1 aidenosindifosfátu (ADP) v- 0,3 mmolu/1 triethanolaminového pufru o pH 8 a měří se po 10 minutách ektinkce Ei při 334 nm. Potom se přidá 20 μΐ roztoku 450 kU/Ι ureázy v 0,1 molu/1 triethanolaminového pufru o pH 8 a po' další 10 minutové reakční době se měří při teplotě místnosti extinkce Ez při 334 nm. Z Ei— —Ež se stanoví po vynásobení faktorem 165 obsah močoviny výchozího vzorku; příslušné výsledky jsou uvedeny v následující tabulce. Z ní vyplývá, že obzvláště při několikanásobném protiběžném proplachování se získají velice dobré výsledky.
ч
Stanovení močoviny
v séru podle způsobu dle vynálezu při více- standardní
při jednom standardní násobném odchylka
propláchnutí odchylka ze 6 hodnot propláchnutí ze 6 hodnot
mg/dl mg/dl '% mg/dl %'
32 31 17,4 31 3,9
40 39 6,8 41 3,1
49 46 7,6 12,1 48 2,0
52 51 53 2,8
61 56 9,1 62 3,2
72 68 5,9 74 3,3
88 89 7,2 91 2,4
93 88 6,1 90 3,5
99 99 11,0 108 2,4
125 122 10,5 121 3,8
Příklad 6
Stanovení y-glutamyltranspeptidázy v krvi
Do jednocestné stříkačky se vloží nad matricový kotouč hydrofóbní bavlněné tkaniny (matrice 1 podle příkladu 2] 4 matricové kotouče z celulózové tkaniny (matrice 10 podle příkladu 2), které byly napuštěny 100 μΐ roztoku 0,015 molu/1 fosforěčnanového pufru o pH 6,5, 0,3 molu/1 chloridu sodného obsahujícího 2 % kationtového polymeru, 25 μξ lektinu ze sójových bobů a 13 μ£ lektinu z pšeničných klíčků. Na takto předem připravené kotouče se nanese 70 μ\ vzorku krve s přídavkem EDTA, který obsahoval různé aktivity y-glutaimyltranspeptidázy. Pro kontrolu byla provedena stanovení séra. Potom se dělicí zóny krve propláchStanovení v-glutamyltranspeptidázy nou jednou a třikrát protiběžně 1 ml roztoku 0,015 molu/1 fosforečnanového pufru o pH 6,5 a 0,3 molu/1 chloridu sodného v oddělených pokusech. К oběma badám pokusů se připipetuje 100 μΐ roztoku 1 molu/1 glycylglycinu v 0,3 molu/1 tris-pufru o pH 8,25 a roztok se dá při 25 °C do termostatu. Po 4 minutách se přidá 100 ^1 roztoku 30 mmolu/1 L- y-glutamyl-3-karboxy-4-nitroanilidu v 0,3 .molu/1 tris-pufru o pH 8,25. Potom se zaznamená po 7 minut zvýšení extinkce při 405 nm a ze zjištěného rozdílu extinkce za minutu se stanoví vynásobením faktorem 3 600 aktivita výchozího vzorku. Jak ukazují výsledky v následující tabulce, dosáhnou se při metodě s několikanásobným proplachováním lepší výsledky než při jednom propláchnutí.
v séru podle způsobu dle vynálezu při více- standardní
při jednom standardní násobném odchylka
propláchnutí odchylka ze 6 hodnot propláchnutí ze 6 hodnot
mg/dl mg/dl 1% mg/dl %
13 14 24,0 14 8,9
19 18 13,0 18 5,7
31 30 16,0 30 4,8
56 56 7,5 52 .4,3
66 63 15,0 70 0,8
84 84 13,0 85 4,5
87 88 9,3 92 4,9
106 108 6,2 105 3,3
115 112 7,1 116 4,1
140 139 6,Q 138 4,7
215 209 8,1 195| 5,2

Claims (5)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    1. Způsob dělení krve nanesením vzorku krve na matrici impregnovanou lektinem a oddělením plazmy nebo séra, vyznačený tím, že se matrice sestávající ze savého- materiálu s relativním odporem proudění až 40 °/o a napuštěná vzorkem krve 2 až 10.X propláchne isotonickým roztokem pufru o pH v rozmezí 5,0 až 10,5 jako ředidlem.
  2. 2. Způsob podle bodu 1, vyznačený tím, že se matrice propláchne 2 až 10 X protiběžně ředidlem.
  3. 3. Způsob podle bodů 1 a 2, vyznačený tím, že se jako matrice použije savý materiál z bavlněné tkaniny, smíšené tkaniny obsahující bavlnu, celulózy, viskózy nebo materiálu obsahujícího tyto složky.
  4. 4. Způsob podle bodu 3, vyznačený tím, že se použije bavlněná tkanina o hustotě nití 10 až 25 nití/cm a 10 až 20 nití/cm a plošné hmotnosti 100 až 400 g/m2.
  5. 5. Způsob podle bodů 1 až 4, vyznačený tím, že se použije matrice sestávající z více vrstev, přičemž se vrstva nejvzdálenější od naneseného vzorku může hydrofobovat.
CS858019A 1984-11-10 1985-11-07 Method of blood division CS259884B2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19843441149 DE3441149A1 (de) 1984-11-10 1984-11-10 Verfahren zur vollblutauftrennung

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS801985A2 CS801985A2 (en) 1988-03-15
CS259884B2 true CS259884B2 (en) 1988-11-15

Family

ID=6250006

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS858019A CS259884B2 (en) 1984-11-10 1985-11-07 Method of blood division

Country Status (6)

Country Link
EP (1) EP0183991B1 (cs)
JP (1) JPS61118661A (cs)
CS (1) CS259884B2 (cs)
DE (2) DE3441149A1 (cs)
IL (1) IL76962A (cs)
ZA (1) ZA858618B (cs)

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3508427A1 (de) * 1985-03-09 1986-09-11 Merck Patent Gmbh, 6100 Darmstadt Mittel und verfahren zur abtrennung von plasma oder serum aus vollblut
CA1310905C (en) * 1987-06-19 1992-12-01 Marvin A. Genshaw Process and device for separating and testing whole blood
DE3729001A1 (de) * 1987-08-31 1989-03-09 Behringwerke Ag Vorrichtung und verfahren zur abtrennung von blutzellen aus koerperfluessigkeiten, die erythrozyten enthalten, und deren verwendung
FR2637687B1 (fr) * 1988-10-11 1991-01-11 Inst Textile De France Dispositif a usage unique pour tests biologiques
US5435970A (en) * 1989-12-18 1995-07-25 Environmental Diagnostics, Inc. Device for analysis for constituents in biological fluids
CA2031975A1 (en) * 1990-01-12 1991-07-13 Brian R. Barkes Device and method of separating and assaying whole blood
DE4015589A1 (de) * 1990-05-15 1991-11-21 Boehringer Mannheim Gmbh Vorrichtung und deren verwendung zur abtrennung von plasma aus vollblut
EP0535485B1 (en) 1991-10-03 1997-07-16 Bayer Corporation Device and method of separating and assaying whole blood
CA2104976A1 (en) * 1992-09-02 1994-03-03 Stephan D. Daubney Separation of plasma or serum from whole blood using a red blood cell binding component and a polymer containing multiple cationic sites
WO2003073095A1 (en) 2002-02-27 2003-09-04 Sanko Junyaku Co., Ltd. Instrument for separating plasma or serum, method of collecting plasma or serum, method of separating plasma or serum, test carrier and glass fiber
EP2673065B1 (en) * 2011-02-10 2015-12-09 Academisch Ziekenhuis Leiden Acting Under The Name Leiden University Medical Center Method for the purification of a glycan and/or a glycoconjugate by chromatography using a stationary phase comprising cotton

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE458793C (de) * 1928-04-25 Conrad Esche Dr Hilfsmittel zur Feststellung der Wirkung einer Haarfrisur
US3146163A (en) * 1962-01-23 1964-08-25 John H Brewer Apparatus for separating certain components from blood
GB1325043A (en) * 1969-08-04 1973-08-01 Greenspan D J Method of separating blood components
DE3029579C2 (de) * 1980-08-05 1985-12-12 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren und Mittel zur Abtrennung von Plasma oder Serum aus Vollblut
US4426451A (en) * 1981-01-28 1984-01-17 Eastman Kodak Company Multi-zoned reaction vessel having pressure-actuatable control means between zones
US4594327A (en) * 1983-11-02 1986-06-10 Syntex (U.S.A.) Inc. Assay method for whole blood samples

Also Published As

Publication number Publication date
EP0183991B1 (de) 1989-06-14
DE3441149A1 (de) 1986-05-15
ZA858618B (en) 1986-07-30
IL76962A (en) 1989-09-28
IL76962A0 (en) 1986-04-29
DE3571082D1 (en) 1989-07-20
JPS61118661A (ja) 1986-06-05
CS801985A2 (en) 1988-03-15
EP0183991A1 (de) 1986-06-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7078480B2 (en) Process for stabilizing the content of glycated protein of a sample on a matrix material
US5135716A (en) Direct measurement of HDL cholesterol via dry chemistry strips
US5055195A (en) Erythrocyte-retention substrates
FI77894C (fi) Foerfarande foer framstaellning av ett analytiskt element foer bestaemning av glukos i hoeg konsentration.
CA2108105C (en) Improved device and method of assaying whole blood for hdl cholesterol
US5215886A (en) HDL determination in whole blood
EP0820338B1 (en) Whole blood separation method and devices
CA1179865A (en) Process for analytical determinations and rotor insert element therefor
CS259884B2 (en) Method of blood division
EP2438856B1 (en) Hdl-cholesterol-measuring strip and method for measuring cholesterol using same
US20040126833A1 (en) Test strip and method for determining concentration of creatinine in a body fluid
WO2006091918A2 (en) Process, composition and kit for providing a stable whole blood calibrator/control
US6309887B1 (en) Filter paper treatment for improved diagnostic assays
JPH0698028B2 (ja) 分析用組成物,分析要素及び被分析物の測定方法
US4990457A (en) Whole blood dry analysis element
EP0252750B1 (en) Composition and analytical element having stabilized peroxidase
EP0295526B1 (en) Process and device for separating and testing whole blood
US6521460B1 (en) Method of carrying out blood tests
Standefer et al. Evaluation of a colorimetric method for determination of glycosylated hemoglobin.
Hoffmann et al. Automated nephelometry of fibrinogen: analytical performance and observations during thrombolytic therapy.
EP0182385B1 (de) Verfahren und Reagenz zur quantitativen Bestimmung von freiem Thyroxin in Plasma, Serum oder Vollblut
JPS61170400A (ja) 酵素阻害によるテオフイリンの分析用分析素子,組成物および方法
Grann et al. Polybrene neutralization as a rapid means of monitoring blood heparin levels
Nakashima et al. D-mannose as a preservative of glucose in blood samples.
EP0345460A2 (en) Method and device employing covalently immobilized colored dyes