CS255146B1 - Process for preparative isolation of (methyl-3)thymidine and (6-3h)thymidine - Google Patents

Process for preparative isolation of (methyl-3)thymidine and (6-3h)thymidine Download PDF

Info

Publication number
CS255146B1
CS255146B1 CS864275A CS427586A CS255146B1 CS 255146 B1 CS255146 B1 CS 255146B1 CS 864275 A CS864275 A CS 864275A CS 427586 A CS427586 A CS 427586A CS 255146 B1 CS255146 B1 CS 255146B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
thymidine
methyl
radioactive
reaction mixture
isolation
Prior art date
Application number
CS864275A
Other languages
Czech (cs)
Other versions
CS427586A1 (en
Inventor
Karel Mudra
Jan Koclbl
Original Assignee
Karel Mudra
Jan Koclbl
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Karel Mudra, Jan Koclbl filed Critical Karel Mudra
Priority to CS864275A priority Critical patent/CS255146B1/en
Publication of CS427586A1 publication Critical patent/CS427586A1/en
Publication of CS255146B1 publication Critical patent/CS255146B1/en

Links

Landscapes

  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Abstract

(Metyl '-Jí!) -Thymidj r*, (6- JII) -thymidin jsou používány jako stopovací látky v biochemickém, biologickém a lékařském výzkumu. Cílem řešení je zvýšit výtěžky výše uváděných preparátů, zkrátit separační cyklus a zlepšit kvalitu výrobku. Vyšší účinek spočívá ve využití vysokoúčinné kapalinové chromatografie, což umožňuje získat radiochemicky čisté thymidiny o vyšším výtěžku v kratším separaéním cyklu. Uvedeným postupem bylo dosaženo 90% výtěžku radioaktivních thymidinu o radioohemické čistotě vyšší, jak 97 %.(Methyl-1H) -thymidine, (6-II) -thymidine are used as tracers in biochemical, biological and medical research. The aim of the solution is to increase the yields of the above-mentioned preparations, to reduce the separation cycle and to improve the quality of the product. Higher performance is due to the use of high performance liquid chromatography, which makes it possible to obtain radiochemically pure thymidines with a higher yield in a shorter separation cycle. This procedure yielded a 90% yield of radioactive thymidine with radioohemical purity greater than 97%.

Description

Vynález se týká preparativní izolace (metyl- H)-thymidinu a (6- H)-thymidinu z reakčních směsí po jejich přípravě enzymatickou syntézou.The invention relates to the preparative isolation of (methyl-H) -thymidine and (6- H) -thymidine from the reaction mixtures after their preparation by enzymatic synthesis.

Obvyklými způsoby izolace shora uvedených sloučenin z reakčních směsí po jejich enzymatické syntéze jsou metody preparativní papírové chromatografie. Zejména při přípravě (me3 3 tyl- H)-thymidinu respektive (6- H)-thymidinu o vysokých molových aktivitách má tento způsob izolace řadu nedostatků. Především dochází k izolačním ztrátám (až 30 %) a izolovaná sloučenina není chemicky čistá. Při dnešních požadavcích na vysokou molovou aktivitu sloučenin značených radionuklidem nejsou izolační ztráty při aplikaci standardních postupů z ekonomického hlediska již zanedbatelné.The usual methods for isolating the above compounds from the reaction mixtures after their enzymatic synthesis are preparative paper chromatography methods. Especially in the preparation of (Me 3 -yl-H) -thymidine and (6-H) -thymidine with high molar activities, this method of isolation has a number of drawbacks. In particular, insulation losses (up to 30%) occur and the isolated compound is not chemically pure. With today's requirements for high molar activity of radionuclide-labeled compounds, the insulation losses when using standard procedures are no longer negligible economically.

Nízký stupěň chemické Čistoty preparátů, izolovaných preparativní papírovou chromatograf iií, je zapříčiněn zejména přítomnost výluhů z chromatografického papíru, případně nečistoty z rozpouštědel. Tyto nečistoty vadí při aplikacích těchto preparátů v biochemickém, biologické a lékařské výzkumu. Další nedostatek papírové chromatografie spadá do úseku bezpečnosti práce s radioaktivními sloučeninami. Manipulace š radioaktivními látkami při nanášení na chromatografické papíry, autoradiografie a eluce podstatně zvyšují možnost kontaminace osob i prostředí. Nutno ještě konstatovat, že preparativní papírová chromatografie je časově náročnou metodou.The low degree of chemical purity of the preparations isolated by preparative paper chromatography is mainly due to the presence of extracts from chromatographic paper or impurities from solvents. These impurities interfere with the application of these preparations in biochemical, biological and medical research. Another shortcoming of paper chromatography falls within the field of safety of work with radioactive compounds. Handling with radioactive substances when applied to chromatographic papers, autoradiography and elution significantly increases the possibility of contamination of persons and the environment. It should be noted that preparative paper chromatography is a time-consuming method.

Pro ilustraci uvádíme doposud používaný technologický postup izolace (metyl- H)-thyadi3 minu z reakční směsi po jeho enzymatické přípravě. Izolace (metyl- H)-thymidinu z reakční směsi se provede metodou papírové chromatografie na chromatografickém papíru W-3 v soustavě etylacetát nasycený vodou, thymidinu v této soustavě je 0,45. Identifikace radioaktivních sloučenin na chromatogramech se provede jejich porovnáním s neaktivními standardy. Proužek odpovídající radioaktivnímu thymidinu se vystřihne a eluuje redistilovanou vodou. Protože se nedosáhne požadované radiochemické čistoty, je třeba papírovou chromatografii zopakovat v jiné vyvíjecí soustavě, čímž se opět zvyšují ztráty izolovaného preparátu.By way of illustration, we present the technological procedure used so far to isolate (methyl-H) -thyadien from the reaction mixture after its enzymatic preparation. Isolation of (methyl-H) -thymidine from the reaction mixture was performed by paper chromatography method on chromatographic paper W-3 in water-saturated ethyl acetate system, the thymidine in this system was 0.45. The identification of radioactive compounds in the chromatograms is carried out by comparing them with inactive standards. The band corresponding to radioactive thymidine is excised and eluted with redistilled water. Since the desired radiochemical purity is not achieved, the paper chromatography needs to be repeated in another development system, thus increasing the losses of the isolated preparation again.

Podstata způsobu preparativní izolace (metyl-3H)-thymidinu o molové aktivitě 1,5-2 TBg/mmol, respektive (6-^)-thymidinu o molové aktivitě 0,060-1,00 TBg/mmol eluČní vysokoúčinnou kapalinovou chromatografií podle předmětného vynálezu spočívá v tom, že · se směs sloučenin vznikajících při přípravě radioaktivních thymidinů dělí na sloupci hydrofobního specifického'sorbentu. Povrch sorbentu je pokryt oktadecylovými skupinami, s výhodou lze použít tuzemský sorbent SEPARON SIX S 18. K dělení se používá 0,6 % vodný roztok čistého 3 3 athanolu. Eluovaný radioaktivní (metyl- H)-thymidin respektive (6- H)-thymidin se po dozimetrii a stanovení radiochemické čistoty naředí na expediční koncentraci a přímo expeduje.The method for preparative isolation (methyl- 3 H) thymidine of 1.5-2 mole TBG activity / mmol, respectively, (6 -?) - thymidine about 0.060 to 1.00 mole of TBG activity / mmol elution HPLC according to the invention consists in that the mixture of compounds resulting from the preparation of radioactive thymidines is separated on a column of a hydrophobic specific adsorbent. The surface of the sorbent is covered with octadecyl groups, preferably the domestic sorbent SEPARON SIX S 18 can be used. A 0.6% aqueous solution of pure 3 3 ethanol is used for separation. The eluted radioactive (methyl-H) -thymidine and (6- H) -thymidine, respectively, after dosimetry and radiochemical purity determination, are diluted to expedition concentration and shipped directly.

Výhody nového postupu spočívají v tom, že výtěžek radioaktivních thymidinů je v dlouhodobém průměru o 20 % vyšší, než při jejich izolaci shora uvedeným způsobem preparační papírové chromatografie.The advantages of the novel process are that the yield of radioactive thymidines is 20% higher in the long-term average than when recovered by the above-mentioned preparative paper chromatography method.

Zásadní výhodou izolace uváděných thymidinů dle předmětného vynálezu je možnost získávání produktů o vysoké radiochemické Čistotě (min. 97-98 %) a bez přítomnosti chemických nečistot. Dále se získávají nazpět příslušné nezreagované. radioaktivní thyminy, které 3 3 se dají opět využít pro přípravu (metyl- H)-thymidinu, respektive (6- H)-thymidinu. Další výhodou je zkrácení doby separace, místo 24 hod. pouze 8 hod. Dělení kapalinovou chromatograf ií probíhá v kapalném prostředí v uzavřené poloautomatizovaném systému. Odpadá autoradiograf ie a sušení chromatografických papírů, kdy snadno může dojít ke kontaminaci.A major advantage of the isolation of the thymidines of the present invention is the possibility of obtaining products of high radiochemical purity (min. 97-98%) and without the presence of chemical impurities. Furthermore, the corresponding unreacted are recovered. radioactive thymines, which can be used again for the preparation of (methyl-H) -thymidine and (6- H) -thymidine, respectively. Another advantage is the reduction of the separation time, instead of 24 hours only 8 hours. Separation by liquid chromatography takes place in a liquid medium in a closed semi-automated system. There is no need for autoradiography and drying of chromatographic papers where contamination can easily occur.

. 3. 3

Tím se podstatně zvyšuje bezpečnost práce při přípravě (metyl- H)-thymidinu nebo (6- H)-thymidinu.This considerably increases the safety of work in the preparation of (methyl-H) -thymidine or (6- H) -thymidine.

Pro objasnění je dále uveden příklad separace radioaktivního (mety1-3H)-thymidinu z reakční směsi po jeho enzymatické syntéze.To illustrate further example of the separation of radioactive (mety1- 3 H) thymidine from the reaction mixture after the enzymatic synthesis.

Q Složení reakčni směsi před zahájením reakce bylo následující:Q The composition of the reaction mixture prior to the start of the reaction was as follows:

mg 2-Deoxy- -D-Ribosa-l-fosfátmg of 2-Deoxy-D-Ribosa-1-phosphate

0,5 mg (metyl- H)-thyminu, t j. 6.600 MBq0.5 mg of (methyl-H) -thymine, i.e. 6.600 MBq

0,4 ml redestilované vody0.4 ml of redistilled water

0,2 ml enzymu 'Echerichia coli0.2 ml of the enzyme Echerichia coli

Reakce probíhala při teplotě 37 °C ve vodním prostředí při pH 7,4 až 7,8. Průběh reakce byl kontrolován odběrem vzorků a jejich okamžitou analýzou na analytickém kapalinovém chromatografu.The reaction was carried out at 37 ° C in an aqueous medium at pH 7.4 to 7.8. The course of the reaction was controlled by sampling and immediate analysis on an analytical liquid chromatograph.

Reakce byla ukončena, když složení reakčni směsi bylo:The reaction was complete when the composition of the reaction mixture was:

71,8 % (metyl-3H)-thymidinu71.8% (methyl- 3 H) thymidine

21,2 % (metyl-3H)-thyminu % látky, jejichž chemickou podstatu se nepodařilo identifikovat.21.2% (methyl- 3 H) thymine% substances whose chemical nature is not identified.

Baňka s reakčni směsí byla ponořena do horké vody, aby došlo k vyvločkování enzymu, který se z reakčni směsi odstranil odstředěním. Sedlina byla 3x promyta a jednotlivé supernatanty byly spojeny. Celkový objem takto upravované reakčni směsi činil 8 ml. K separačnímu dělení byla použita skleněná kolona 350 x 15 mm, která byla naplněna tuzemským sorbentem SEPARONThe flask with the reaction mixture was immersed in hot water to flocculate the enzyme, which was removed from the reaction mixture by centrifugation. The grounds were washed 3 times and the individual supernatants were combined. The total volume of the reaction mixture thus treated was 8 ml. For separation separation a 350 x 15 mm glass column was used, which was filled with a domestic sorbent SEPARON

SIXC 18. Kolona byla před vnesením vzorku 120 minut promývána 0,6 % vodným roztokem C2H5OH.SIXC 18. The column was washed with a 0.6% aqueous solution of C 2 H 5 OH for 120 minutes before loading the sample.

Průtok eluentu byl 100 ml/hod. Po vnesení vzorku byl kolona promývána eluentem o stejné rychlosti. Při tomto průtoku se nezreagovaný (metyl- H)-thymin začal eluovat po 87 minutách od začátku promývání. Čas potřebný k eluci radioaktivního thyminu činil 20 minut a získaná látka se nacházela ve 33 ml 0,6 % CoHe0H.The eluent flow rate was 100 ml / h. After loading the sample, the column was washed with the same speed eluent. At this flow rate, unreacted (methyl-H) -thymine began to elute 87 minutes after the beginning of the wash. The time required to elute the radioactive thymine was 20 minutes and the resulting material was found in 33 ml of 0.6% C h E 0H.

55

Radioaktivní (metyl- H)-thymidin se začal eluovat po 214 minutách (od začátku promývání) doba jeho eluce činila 45 minut, což představuje eluční objem 74 ml. Bylo získáno 4.375 MBq (metyl- H)-thymidinu o radioaktivní čistotě 97 %. Dále se získalo 1.490 MBq nezreagovaného 3 (metyl- H)-thyminu.Radioactive (methyl-H) -thymidine began to elute after 214 minutes (from the beginning of the wash) its elution time was 45 minutes, representing an elution volume of 74 ml. 4.375 MBq of (methyl-H) -thymidine of 97% radioactive purity was obtained. Further, 1,490 MBq of unreacted 3 (methyl-H) -thymine was obtained.

Jak jíž bylo dříve uvedeno enzymatická reakce proběhla na 71,8 %. To znamená, že v reakčni směsi bylo 4.738 MBq(metyl-3H)-thymidinu (71,8 % z 6,600 MBq). Bylo získáno 4.375 MBq radioaktivního thymidinu, což představuje výtěžek 92,3 %.As previously mentioned, the enzymatic reaction was 71.8%. That is, in the reaction mixture 4738 MBq (methyl- 3 H) thymidine (71.8% of 6,600 MBq). 4.375 MBq of radioactive thymidine was obtained, which represents a yield of 92.3%.

Claims (1)

Způsob izolace (metyl- H)-thymidinu a (6- H)-thymidinu, z reakčni směsi eluční vysokoúčinnou kapalinovou chromatografií, vyznačující se tím, že se směs sloučenin, vznikajících 3 3 při enzymatické přípravě (metyl- H)-thymidinu respektive (6- H)-thymidinu dělí na sloupci porézního hydrofóbního iontoměniče na bázi silikagelu, jehož povrch je pokryt oktadecylovými skupinami za použití eluentu 0,6 % vodný roztok čistého ethanolu.A process for the isolation of (methyl-H) -thymidine and (6-H) -thymidine from the reaction mixture by elution high performance liquid chromatography, characterized in that the mixture of compounds resulting from the enzymatic preparation of (methyl-H) -thymidine and ( 6- H-thymidine is separated on a column of a porous hydrophobic ion exchange resin based on silica gel, the surface of which is coated with octadecyl groups using a 0.6% aqueous solution of pure ethanol as eluent.
CS864275A 1986-06-10 1986-06-10 Process for preparative isolation of (methyl-3)thymidine and (6-3h)thymidine CS255146B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS864275A CS255146B1 (en) 1986-06-10 1986-06-10 Process for preparative isolation of (methyl-3)thymidine and (6-3h)thymidine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS864275A CS255146B1 (en) 1986-06-10 1986-06-10 Process for preparative isolation of (methyl-3)thymidine and (6-3h)thymidine

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS427586A1 CS427586A1 (en) 1987-06-11
CS255146B1 true CS255146B1 (en) 1988-02-15

Family

ID=5385123

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS864275A CS255146B1 (en) 1986-06-10 1986-06-10 Process for preparative isolation of (methyl-3)thymidine and (6-3h)thymidine

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS255146B1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1916003A1 (en) * 2006-10-25 2008-04-30 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Thymidine analogs for imaging

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1916003A1 (en) * 2006-10-25 2008-04-30 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Thymidine analogs for imaging
WO2008049644A1 (en) * 2006-10-25 2008-05-02 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Thymidine analogs for imaging

Also Published As

Publication number Publication date
CS427586A1 (en) 1987-06-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pfeuffer et al. 7-O-Hemisuccinyl-deacetyl forskolin-Sepharose: a novel affinity support for purification of adenylate cyclase
Russell et al. Separate phosphodiesterases for the hydrolysis of cyclic adenosine 3′, 5′-monophosphate and cyclic guanosine 3′, 5′-monophosphate in rat liver
Wang et al. Biosynthesis of δ-aminolevulinate in greening barley leaves IV. Isolation of three soluble enzymes required for the conversion of glutamate to δ-aminolevulinate
Henry et al. Application of a new chemically bonded, superficially porous anion-exchange packing to nucleotide analysis
Dräger Identification and quantification of calystegines, polyhydroxyl nortropane alkaloids
Cramer et al. Tandem use of carboxypeptidase y reactor and displacement chromatograph for peptide synthesis
Oates et al. The use of gas–liquid chromatography in the analysis of neutral monosaccharides in hydrolysates of gastric mucopolysaccharides
CS255146B1 (en) Process for preparative isolation of (methyl-3)thymidine and (6-3h)thymidine
Robinson et al. Pilot scale affinity chromatography: Purification of β‐galactosidase
Sjövall et al. General and selective isolation procedures for GC/MS analysis of steroids in tissues and body fluids
Dahlqvist The separation of intestinal invertase and three different intestinal maltases on TEAE-cellulose by gradient elution, frontal analysis and mutual displacement chromatography
CS255180B1 (en) Process for preparative isolation of (6-3h)-thymine
McLaughlin et al. The use of high-performance liquid chromatography in the isolation and analysis of oligoribonucleotides synthesized by the T4 RNA ligase reaction
William Jr et al. Preparation and purification of carbamylated intermediates of human hemoglobin
CS254823B1 (en) Method of(methyl-3h)thymine's preparative insulation by means of elution high-efficiency liquid chromatography
Counis et al. Adenylate cyclase assay with [α-32P] ATP as substrate: A simple modification for lowering blanks
Turkova et al. Reversible and irreversible immobilization of car☐ ypeptidase y using biospecific adsorption
Tiselius A chromatographic separation of the different forms of vitamin B6
Palla Isolation and identification of phenolic glucosides in liquid sugars from cane molasses
Pimenov et al. Simultaneous separation of ribonucleotides, nucleosides and nitrogen bases by ion-pair reversed-phase high-performance liquid chromatography on columns with radial compression
Akiyama et al. High-performance liquid chromatographic determination of sugars in an infusion and soft drinks using a silica-based 3-morpholinopropyl-bonded stationary phase
CS270774B1 (en) Method of /5-3h/uridine insulation from reaction mixture
Clonis et al. High-performance dye-ligand chromatography
Brodelius et al. The synthesis of 8-(6-aminohexyl)-amino-GMP and its applications as a general ligand in affinity chromatography
Holton et al. The rapid separation and isolation of mono-and oligo-nucleotides by high speed liquid chromatography: An ion exchange, reversed-phase system