CS225134B2 - A method for commercial or crude insulin storage - Google Patents

A method for commercial or crude insulin storage Download PDF

Info

Publication number
CS225134B2
CS225134B2 CS78849A CS84978A CS225134B2 CS 225134 B2 CS225134 B2 CS 225134B2 CS 78849 A CS78849 A CS 78849A CS 84978 A CS84978 A CS 84978A CS 225134 B2 CS225134 B2 CS 225134B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
insulin
water
column
fractions
buffer
Prior art date
Application number
CS78849A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Klavs H Jorgensen
Original Assignee
Novo Terapeutisk Labor As
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from CS695548A external-priority patent/CS225117B2/en
Application filed by Novo Terapeutisk Labor As filed Critical Novo Terapeutisk Labor As
Priority to CS78849A priority Critical patent/CS225134B2/en
Publication of CS225134B2 publication Critical patent/CS225134B2/en

Links

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Aplikuje-li se vodný roztok komerčního nebo surového inzulínu o pH 6 až 10 na sloupec aniontoměniče a poté se sloupec eluuje ve frakcích s vodou mísitelným alifatickým Cf-Co-alkanolem a jímají-li ae frakce vykazující eaenciálne jedinou složku (při analýze pomocí D1SC PAGE), získá ee Inzulín prosty pankreatlckýeh bílkovin o molekulová hmotnosti vySSÍ, než je molekulová hmotnost inzulínu, a prostý antigenních nečistot podobných inzulínu o přibližní téže molekulové hmotnosti jakou má inzulín. Uvedený s vodou mjlsitelny alkanol obsahuje vodu v množství 20 až 70 % objemových a má pH 6 až 10.When an aqueous solution of commercial or crude insulin at pH 6 to 10 is applied to an anion exchange column and the column is then eluted in fractions with a water-miscible aliphatic C1-C2 alkanol and the fractions showing essentially a single component (when analyzed by D1SC PAGE) are collected, the insulin obtained is free of pancreatic proteins of molecular weight higher than that of insulin and free of antigenic impurities similar to insulin of approximately the same molecular weight as insulin. The water-miscible alkanol contains water in an amount of 20 to 70% by volume and has a pH of 6 to 10.

Description

Vynález se týká způsobu Slátání komerčního nebo surového inzulínu pro jeho zbavení pankreatickýeh bílkovin o molekulová hmotnosti vyšší než je molekulová hmotnost inzulínu, totiž nad 6 000, i antigenních inzulínu podobných neSiatot o přibližně táže molekulová hmotnosti jako má inzulín, aplikací k Slátání určeného inzulínu na sloupce mániSe,aniontů.BACKGROUND OF THE INVENTION The present invention relates to a method of fusing commercial or crude insulin to deprive pancreatic proteins of molecular weight greater than that of insulin, namely over 6,000, and non-insulin-like antigenic insulins of approximately the same molecular weight as insulin. mania, anions.

Britský patentní spis č. 1 285 023 popisuje injekční inzulínový přípravek s obsahem inzulínu získaného ze slinivek břiáníoh, rozpuátěného nebo suspendovaného ve vodném injekčním médiu, přičemž inzulín je prost bílkovin pankreatického původu o molekulové hmotnosti nad 6 000 a vykazuje v podstatě jedinou složku při analýze jeho roztoku polyakrylamidovou gelovou elektroforézou (tzv. metoda Disc Pege).British Patent Specification No. 1,285,023 discloses an injectable insulin preparation comprising insulin obtained from the pancreas, dissolved or suspended in an aqueous injection medium, wherein the insulin is free of proteins of pancreatic origin having a molecular weight of more than 6,000 and exhibits essentially a single component when analyzing its solution by polyacrylamide gel electrophoresis (the so-called Disc Pege method).

Jako výchozího materiálu při čištění inzulínu se obvykle používá komerčního inzulínu, tj. amorfního inzulínu nebo krystalického inzulínu, který může být několikrát překryštelován. Lze váak rovněž používat surového inzulínu, například koláče,solí, obsahujícího inzulín, jenž vzniká při izolaci inzulínu z pankreatickýeh žláz a obvykle obsahuje 10 až 31 % hmotnostních inzulínu, avšak pro vysoký obsah nečistot je tento materiál méně vhodný pro způsob .Siátšní podle vynálezu. Lepši výchozí materiál lze získat zpracováním roztoku koláče solí isoelektrickým srážením nastavením hodnoty pH roztoku na 5,5 a izolací sraženiny odstředěním.Commercial insulin, i.e., amorphous insulin or crystalline insulin, which can be recrystallized several times, is generally used as the starting material for insulin purification. It is also possible to use crude insulin, such as cakes, insulin-containing salts, which results from the isolation of insulin from the pancreatic glands and usually contains 10-31% by weight of insulin, but due to its high impurity content this material is less suitable for the inventive process. A better starting material can be obtained by treating the salt cake solution by isoelectric precipitation by adjusting the pH of the solution to 5.5 and isolating the precipitate by centrifugation.

Původně panoval obecný názor, že vhodně překrystalovaný inzulín ve formě romboedrů s ostrými hranami, spojených s rovnými krystalovými plochami, představuje čistou bílkovinu, inzulín, jehož konfigurace byla určena Sangerem se sp., viz například Biochemical Journal 60 (1955), 556. Později váak bylo nalezeno, že tomu tak není. Vědecká analytická zkoumání ukázala, že zmíněný krystalický inzulín obsahuje bílkoviny pankreatického původu s molekulární hmotností vyáái než má čistý inzulín a kromě toho látky podobná inzulínu přibližně stejné molekulové hmotnosti jakou má čistý inzulín (asi 6 000).Initially, it was generally believed that appropriately recrystallized, sharp-edged romboeders, coupled with flat crystal surfaces, is a pure protein, an insulin whose configuration has been determined by Sanger et al., See, for example, Biochemical Journal 60 (1955), 556. Later it was found not to be so. Scientific analytical investigations have shown that said crystalline insulin contains proteins of pancreatic origin with a molecular weight higher than that of pure insulin and, moreover, an insulin-like substance of approximately the same molecular weight as pure insulin (about 6000).

Bylo dokázáno, že krystalický inzulín rozpuštěný v 1 M kyselině octové lze frakcionovat ve složky (a), (b) a popřípadě (c), gelovou filtrací na koloně Sephadexu 0-50 (Sephadex je chráněná známka), což je dextren zesítěný epichlorhydrinem s limitem penetrace asi 10 000 (minimální molekulová hmotnost vylučovaná látky), který je ve-formě zrn (průměr 20 až 80 mikronů). Tyto tři složky lze izolovat obvyklými způsoby z jejich roztoků, například vysolením, srážením zinečnatou solí při neutrální reakcí, lyofilizací apod. Obě složky (a) a (b) obsahují bílkoviny pankreatického původu a molekulární hmotností vyěěí než 6 000, zatímco složka (c) obsahuje čistý inzulín kontaminovaný bílkovinami podobnými inzulínu, přibližně stejné molekulární hmotnosti jakou má čistý inzulín.It has been shown that crystalline insulin dissolved in 1 M acetic acid can be fractionated in components (a), (b) and optionally (c) by gel filtration on a Sephadex 0-50 column (Sephadex is a trademark) which is dextrene cross-linked with epichlorohydrin a penetration limit of about 10,000 (minimum molecular weight of the excreted substance), which is in the form of grains (20 to 80 micron diameter). The three components can be isolated by conventional means from their solutions, for example by salting, zinc salt precipitation in a neutral reaction, lyophilization, etc. Both components (a) and (b) contain proteins of pancreatic origin and a molecular weight greater than 6000, while component (c) it contains pure insulin contaminated with insulin-like proteins of approximately the same molecular weight as pure insulin.

Množství složky (a) může tvořit 2 až 5 % hmotnostních krystalovaného inzulínu a méně než 1 % hmotnostní překrystalovaného inzulínu. Množství složky (b) může činit v obou případech 4 až 8 % hmotnostních a množství bílkovin podobných inzulínu ve složce (o) může činit 5 až 13 % hmotnostních ve složce (c).The amount of component (a) may comprise 2 to 5% by weight of the crystallized insulin and less than 1% by weight of the recrystallized insulin. The amount of component (b) may in both cases be 4 to 8% by weight and the amount of insulin-like protein in component (o) may be 5 to 13% by weight in component (c).

Imunologická pokusy provedená na zvířatech, která tvořily základ tohoto vynálezu prokázaly, že výše uvedená složky (a) a (b) a do určitá míry bílkoviny podobná Inzulínu přítomné ve složce (c) jsou v podstatě odpovědné za antlgenní vlastnosti dosud známých inzulínových preparátů.The animal immunological experiments underlying the present invention have shown that components (a) and (b) above and to some extent the insulin-like protein present in component (c) are essentially responsible for the anti -genic properties of the prior art insulin preparations.

Účelem vynálezu je odstranit jednoduchým a účinným způsobem nečiatoty obsažená nejenom v surovém inzulínu, ale zejména v komerčním inzulínu tak, že čištěný inzulín nevykazuje žádnou nebo podstatně sníženou antigenicitu, protože neobsahuje ani Vysokomolekulární bílkoviny a ani antigenní látky podobná inzulínu.The purpose of the invention is to eliminate the impurities contained not only in the raw insulin but especially in the commercial insulin in a simple and efficient manner such that the purified insulin shows no or substantially reduced antigenicity, since it contains neither high-molecular proteins nor insulin-like antigenic substances.

Podstata vynálezu způsobu čištění komerčního nebo surového Inzulínu pro jeho zbavení pankreatickýeh bílkovin o molekulové hmotnosti nad 6 000 a podobných nečistot pomoci sloupcové chromatografie spočívá v tom, že jako vodného roztoku inzulínu, který má být čištěn,SUMMARY OF THE INVENTION A process for purifying commercial or crude insulin to deprive pancreatic proteins of molecular weight above 6,000 and similar impurities by column chromatography is to use, as an aqueous solution of the insulin to be purified,

225,34 se používá roztoku o hodnotě pH v rozsahu 6 až 10, ze sloupce se frakce vymývají alifatickým alkanolem (o 1 až 3 uhlíkových atomech v molekule) mlsitelným s vodou, ktorý obsahuje vodu v množství 20 až 70 % objemových, výhodně 30 až 50 %, objemových a který má hodnotu pH v rozsahu 6 až 10, výhodně 6,5 až 8,5, jímá se nebo jímají ee frakce eluétu vykazující při analýze pomocí elektroforézy na polyakrylamidovém gelu (DISC PAGE) esenciálně jedinou složku, a inzulín takto vyčištěný se izoluje ze zjímané frakce nebo ze zjímaných frakcí.225.34, a solution having a pH in the range of 6 to 10 is used, from which the fractions are eluted with a water-miscible aliphatic alkanol (1 to 3 carbon atoms per molecule) containing water in an amount of 20 to 70% by volume, preferably 30 to 50%, by volume, and having a pH in the range of 6 to 10, preferably 6.5 to 8.5, collects or collects the eluate fractions having essentially a single component when analyzed by polyacrylamide gel electrophoresis (DISC PAGE), and insulin thus purified is recovered from the collected fraction or collected fractions.

Je výhodné jako měniče aniontů používat, silně bazického měniče aniontůIt is advantageous to use strongly basic anion exchangers as anion exchangers

Pro analytické účely byla již použita diskontinuáíní alektroforéza na polyakrylamidovém gelu, rovněž v souvislosti » krystalickým inzulínem. Teto specifická gelová «slekirOforéza byla vyvinuta B, J, Daviaem a L. Oraateiítea » je popsána v Asm. M. X, Aead. Sci. W, str. 321 až 349 a 474 až 427 (1964). V tomto případě se ve spodním gelu používá 7,58 polyakrylamidu, který obsahuje 8 U močovinu a aá hodnotu pH aai 3/?, zatímco vr-chní gel a nanáěený roztok inzulínu, obsahující aul 0,1 mg tasulinu, obsahují rovněž 8 U močovinu.For analytical purposes, polyacrylamide gel discontinuous alecophoresis has already been used, also in connection with crystalline insulin. This specific gel "slekirophoresis was developed by B, J, Davia and L. Oraateiite" is described in Asm. M. X., Aead. Sci. W, pp. 321-497 and 474-427 (1964). In this case, 7.58 polyacrylamide, which contains 8 U urea and a pH of 3 and a pH of 3, is used in the bottom gel, while the top gel and the applied insulin solution containing aul 0.1 mg of tasulin also contain 8 U urea. .

Je· nejenom překvapující} Se podle -vynálezu lze odvtreňovat vysokomolekulái-ní bílkoviny, je věak rovněž překvapující, 'že diskontinuáíní elektroforézy na pdyekřylemidovém gelu lze používat jek? kritéria nepřitemnosti těchto bílkovin, nehol je známo, Se použiti tohoto analytického způsobu v souvislosti s komerčním itutilínsm poskytuje inzulínový pda obsahující vysokomolekulámí bílkovinu, dimer, .viz. například článek Steinera ě spol,. v Diabetes, 17. stí·» 728, sloupec vpravo.It is not only surprising that , according to the present invention, high molecular weight proteins can be eliminated. Non-darkness criteria for these proteins, not known. Using this analytical method in connection with commercial itutilins provides an insulin pda containing a high molecular weight protein, a dimer, see. for example, an article by Steiner et al. in Diabetes, 17th century »» 728, right column.

Déle nemohlo být očekáváno, že použité eluční činidlo by mohlo být schopné vytvářet takový monomerizBční efekt u přítomných bílkovin, aby byla možná separace látek podobných inzulínu.It could no longer be expected that the eluent used could be capable of producing a monomerizing effect on the proteins present to allow separation of insulin-like substances.

Měniče aniontů, které by měly být s výhodou silně bazického typu, používané při způsobu podle vynálezu, jsou známé. Příklady slabě bazických měničů aniontů jsou Bio-Oel UM, vyráběný na bázi polyakrylamidů, DEAE-Sephadex, vyráběný ze sírovaných dextranů a DBAE-celulóza, vyráběná z celulózy. Příklady silně bezickýeh měničů aniontů jsou Dowery (Dovex je chráněné známka), vyráběné z polystyrénů a QAE-Sephadex, x.r.váběný se zesilovaných dextranů.Anion exchangers which should preferably be of the strongly basic type used in the process of the invention are known. Examples of weakly basic anion exchangers are Bio-Oel UM, manufactured on the basis of polyacrylamides, DEAE-Sephadex, made from sulfated dextrans, and DBAE-cellulose, made from cellulose. Examples of strongly anionic anion exchangers are Dowers (Dovex is a trademark), made of polystyrene and QAE-Sephadex, x.r.buttoned with crosslinked dextrans.

Příklady vodu obsahujících s vodou mísitelných organických «lučních rozpouštědel jsou tetrametylmočovina, dimetylformamid, dloxan, s vodou mísitelné ketony, například aceton, a alkanoly, například metanol, etanol-a propanoly. Alkanoly představují výhodná organická eluční rozpouštědla pro použití při způsobu podle vynálezu a používají se s výhodou ve formě, která obsahuje od 30 do 50 % objemových vody.Examples of water-containing organic water-miscible solvents are tetramethylurea, dimethylformamide, dloxane, water-miscible ketones, for example acetone, and alkanols, for example methanol, ethanol and propanols. The alkanols are preferred organic elution solvents for use in the process of the invention and are preferably used in a form containing from 30 to 50% by volume of water.

Eluční činidlo obsahuje vždy pufrační látku pro kontrolu hodnoty pH «lučního Činidle. Je výhodné provádět způsob podle vynálezu při stélé hodnotě pH. Hodnota pH eluSního činidla by měle být udržována v rozmezí od 6,5 do 8,5, měřeno skleněnou élektrcdou, nastavenou obvyklým způsobem na standardní pufr.The eluent always contains a buffering agent to control the pH of the eluent. It is preferred to carry out the process of the invention at a stable pH. The pH of the eluent should be maintained in the range of from 6.5 to 8.5, as measured by glass electrode, adjusted in the usual manner to a standard buffer.

Vhodné pufry lze nalézt v dostupné literatuře.Suitable buffers can be found in the available literature.

Zásadní význam má konstantní teplota během výměny iontů. Τορ.>.οΐ,υ. lze v ulit v rozmzzí od -10 °C do 40 °C, s výhodou od 0 °C až do 30 °C. fliětěný inzulín z jímttsýssh frakcí lze izolovat obvyklým způsobem, například odpařením, vysolením nebo srážením v «aao-fní nebe krystalické formě v přítomnosti lontů zinku.Constant temperature during ion exchange is essential. >ορ.>. Οΐ, υ. it can be cast in the range of -10 ° C to 40 ° C, preferably 0 ° C to 30 ° C. The reshaped insulin from the fractions may be isolated in the usual manner, for example by evaporation, salting out or precipitation in an arafic or crystalline form in the presence of zinc lions.

Při izolaci Inzulínu je známo podrobit kyselé nebo neutralizované alkoholické extrakty z pankreatu Bloupcové chromatografie na měniči kationtů, například na kavboxymetylcelulóze (francouzský patentní spis 2. 1 499 126), sulfonovazých pryskyřicích syntetizovaných z kopolymeru styrenu a divinylbenzenu (britský patentní spis 2. 1 054 523) nebo na měniči aniontů, například aa dietylaminoetylcelulóze (britský patentní spis 2. 931 954). AvSak inzulín získaný těmito způsoby obsahuje nečistoty stejně jako krystalický inzulín získaný obvyklými izolačními způsoby včetně opakovaného srážení surových roztoků inzulínu vysolováním chloridem sodným.In the isolation of Insulin, it is known to subject acidic or neutralized alcoholic extracts from the pancreas to column chromatography on a cation exchanger, e.g. ) or on an anion exchanger, for example aa diethylaminoethylcellulose (British Patent No. 2,931,954). However, the insulin obtained by these methods contains impurities as well as the crystalline insulin obtained by conventional isolation methods including repeated precipitation of crude insulin solutions by salting out with sodium chloride.

Z britského patentního spisu č. 881 855 je rovněž známé sloupcová chromatografie nespecifikovaného zink-inzulínu na měniči kationtů Dowex 50-XI (eulfonovaný styrenTdivinylový kopolymer v zrněné formě) za použití vodného etanolu jako elučního činidla, avěak i když se jako výchozího materiálu použije překryštelovaného inzulínu, izolovaný inzulín obsahuje většinou tytéž nečistoty jako výchozí materiál, protože se jímají všechny frakce obsahující inzulín a nikoliv specifické frakce obsahující inzulín, které vykazují jedinou složku pomocí metody CISC PAGE.British Patent Specification No. 881,855 also discloses column chromatography of unspecified zinc-insulin on a Dowex 50-XI cation exchanger (eulfonated styrene T divinyl copolymer in granular form) using aqueous ethanol as the eluent, although using as starting material of recrystallized insulin, isolated insulin usually contains the same impurities as the starting material, since all the fractions containing insulin and not specific fractions containing insulin are collected which have a single component by the CISC PAGE method.

Z britského patentního spisu č. 913 042 je dále známo čištění krystalického inzulínu ve směsi s amorfními nebo cizími mikrokrystalickými materiály promýváním nečistého krystalizátu vodným roztokem, jehož hodnota pH je udržována od 3,8 do 4,3 pomocí slabé kyseliny nebo směsi pufrů. Tento stupeň čištění však neodstraňuje takové nečistoty jako proinzulín, dimer nebo jeho intermediát.It is further known from British Patent No. 913,042 to purify crystalline insulin in admixture with amorphous or foreign microcrystalline materials by washing the impure crystallizate with an aqueous solution whose pH is maintained from 3.8 to 4.3 with a weak acid or a mixture of buffers. However, this purification step does not remove impurities such as proinsulin, dimer or an intermediate thereof.

Konečně z britského patentového spisu č. 871 541 je známá sloupcová chromatografie šestkrát krystalovaného inzulínu a inzulínu čištěného jak je popsáno Lensem (Biochem. et Biophys. Acta (1948) 2, 76] na styren-divinylbenzenovém kopolymerovém měniči kationtů na netečném zřeňovadle s velkým povrchem, avšak inzulín obsahuje po této chromatografii ještě nečistoty, například proinzulín, dimer a intermediát spolu s arginin-inzulínem a monodesaminoinzulínem, protože přítomnost těchto nečistot nezabraňuje tomu, aby chromatogram nevzbuzoval dojem, že materiál eluovaný z kolony je v podstatě homogenní.Finally, British Patent Specification No. 871,541 discloses column chromatography of six times crystallized insulin and insulin purified as described by Lens (Biochem. Et Biophys. Acta (1948) 2, 76) on a styrene-divinylbenzene copolymer cation exchanger on a large surface inert diluent. however, insulin still contains impurities such as proinsulin, dimer and intermediate along with arginine-insulin and monodesaminoinsulin after this chromatography, because the presence of these impurities does not prevent the chromatogram from giving the impression that the material eluted from the column is substantially homogeneous.

Vynález je ilustrován následujícími příklady»The invention is illustrated by the following examples »

Příklady provedení ť ř í k 1 a d 1Examples of examples 1 and d 1

Připraví se pufr tohoto složení:Prepare a buffer of the following composition:

0,1 M roztok chloridu amonného0.1 M ammonium chloride solution

0,02 14 roztok amoniaku0.02 14 ammonia solution

60% etanol (obj./obj.)60% ethanol (v / v)

Hodnota pH je 8,3 při 25 °C.The pH is 8.3 at 25 ° C.

g měniče aniontů Dowex 1 x 2 (oka: 50/100) se nechá nabobtnat v pufru a nejjemnější částice se odstraní dekantací. Materiálu se použije k naplnění kolony o průměru 1,6 cm a výšce 25 om. Kolona se ekvilibruje pufrem. Dowex 1 x 2 je kopolymer styrenu s 2 % divinylbenzenu, jenž obsahuje jako funkční skupiny benzyltrimetylamoniové skupiny a je v zrněné formě.g of the Dowex 1 x 2 anion exchanger (mesh: 50/100) is swollen in buffer and the finest particles are removed by decantation. The material was used to fill a column with a diameter of 1.6 cm and a height of 25 µm. Equilibrate the column with buffer. Dowex 1 x 2 is a copolymer of styrene with 2% divinylbenzene, which contains benzyltrimethylammonium as functional groups and is in granular form.

500 mg inzulínu, jednou krystalovaného z citrátového pufru, se rozpustí ve směsi 20 mg dvojsodné soli kyseliny etylendiamintetraoctové, 5 ml pufru, 5 ml 60% (obj./obj.) etanolu a 0,04 ml 15,3 M roztoku amoniaku (konečná hodnota pH 8,5). Nerozpustný materiál se odstraní odstředěním a čirý roztok se nanese na kolonu. Vymývání se provádí pufrem při teplotě 25 °C a rychlostí 7,5 ml/h. Jímají se frakce po 5 ml.500 mg of insulin, once crystallized from citrate buffer, are dissolved in a mixture of 20 mg of ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt, 5 ml of buffer, 5 ml of 60% (v / v) ethanol and 0.04 ml of 15.3 M ammonia solution (final pH 8.5). The insoluble material was removed by centrifugation and the clear solution was applied to the column. Elution is performed with buffer at 25 ° C and 7.5 ml / h. Fractions of 5 ml are collected.

Měří se hodnoty extinkce při 276 nm a vynášejí se proti číslům frakcí. Frakce odpovídající střední hlavní části inzulínového maxima (největší maximum), která elekťroforézou na polyakrylamidovém gelu (tzv. DISC PAGE) vykázala esenciálně jedinou komponentu, se smísí a inzulín se sráží přidáním 100 ml vody, 1,3 ml 1 N roztoku kyseliny chlorovodíkové a 2 mlExtinction values at 276 nm are measured and plotted against fraction numbers. The fraction corresponding to the middle main part of the insulin maximum (the highest maximum), which showed essentially a single component by polyacrylamide gel electrophoresis (DISC PAGE), is mixed and the insulin is precipitated by adding 100 ml of water, 1.3 ml of 1 N hydrochloric acid and 2 ml

225Ί34225Ί34

N roztoku octanu zinečnatého na 100 ml spojených frakcí. Sraženina se izoluje odstředěním a krystaluje známým způsobem ze směsi aceton-citrétový pufr. Výtěžek čištěného inzulínu je 200 mg.N of zinc acetate solution per 100 ml of combined fractions. The precipitate is isolated by centrifugation and crystallized from acetone-citrate buffer in a known manner. The yield of purified insulin is 200 mg.

Příkl, ad 2Example 2

Připrnví se pufr tohoto složení:Add the following buffer:

25,0 g tris(hydroxymetyl)aminometanu 29,0 ml 6 N roztok kyseliny chlorovodíkové25.0 g of tris (hydroxymethyl) aminomethane 29.0 ml of a 6 N hydrochloric acid solution

1,2 litru metanolu1.2 liters of methanol

Voda k doplnění celkového objemu na 2 litry. Hodnota pH je 7,3‘při 25 °C.Water to make up the total volume to 2 liters. The pH is 7.3‘ at 25 ° C.

g měniče aniontů QAE-Sephadex A-25 se nechá nabobtnat v pufru a nejjemnější částice se odstraní dekantací. Materiálu se použije k naplnění kolony o průměru 2,5 cm a výšce 25 cm. Kolona se ekvilibruje pufrem. QAE-Sephadex A-25 je dextran zesítěný epichlorhydrinem s limitem penetrace asi 5 000 (minimální molekulové hmotnost vyloučených látek), jenž má jako funkční skupiny dietyl-(2-hydroxypropyl)-aminoetylskupiny, je v zrněné formě (průměr 40 až 120 mikronů).The QAE-Sephadex A-25 anion exchanger was swelled in buffer and the finest particles were removed by decantation. The material was used to fill a column with a diameter of 2.5 cm and a height of 25 cm. Equilibrate the column with buffer. QAE-Sephadex A-25 is epichlorohydrin cross-linked dextran with a penetration limit of about 5,000 (minimum molecular weight of excreted substances), which has diethyl- (2-hydroxypropyl) aminoethyl functional groups as granules (average 40 to 120 microns) .

- 500 mg inzulínu krystalovaného jednou z citrátového pufru se rozpustí ve směsi 25 mg dvojscdné soli kyseliny etyléndiamintetraoctové, 94 mg tris(hydroxymetyl)aminometanu, ml 60% metanolu (obj./obj.) a 0,073 ml 6 N roztoku kyseliny chlorovodíkové (konečná hodnota pH 7,3). Nerozpustný materiál se odstraní odstředěním a čirý roztok se nanese na kolonu. Vymývání se provádí pufrem při teplotě 25 °C a rychlostí 30 ml/h. Jímají se frakce po 5 ml. Extinkce se měří při 276 nm a vynáší proti číslům frakcí. Frakce odpovídající střední hlavní části inzulínového maxima (největší maximum), která elektroforézou na polyakrylamidovém gelu (tzv. DISC PASE) vykázala.esenciálně jedinou komponentu, se smísí a Inzulín se sráží přidáním 100 ml vody a 2 ml 1 N roztoku octanu zinečnatého na 1 00 ml spojených frakcí. Sraženina se izoluje známým způsobem odstředěním a krystaluje ze směsi aceton-citrétový pufr. Výtěžek čištěného inzulínu je 250 mg.- 500 mg of insulin crystallized with one of the citrate buffer are dissolved in a mixture of 25 mg of ethylenediaminetetraacetic acid dibasic salt, 94 mg of tris (hydroxymethyl) aminomethane, ml of 60% methanol (v / v) and 0.073 ml of 6 N hydrochloric acid (final value) pH 7.3). The insoluble material was removed by centrifugation and the clear solution was applied to the column. Elution is performed with buffer at 25 ° C and 30 ml / h. Fractions of 5 ml are collected. Extinction is measured at 276 nm and plotted against fraction numbers. The fraction corresponding to the middle main part of the insulin maximum (maximum maximum), which showed a single component by polyacrylamide gel electrophoresis (essentially a single component), is mixed and the insulin is precipitated by adding 100 ml of water and 2 ml of 1N zinc acetate solution ml of combined fractions. The precipitate is isolated by known centrifugation and crystallized from acetone-citrate buffer. The yield of purified insulin is 250 mg.

Příklad 3Example 3

Připraví se pufr tohoto složení:Prepare a buffer of the following composition:

0,06 M tris(hydroxymetyl)aminometanu0.06 M tris (hydroxymethyl) aminomethane

0,02 M roztok kyseliny chlorovodíkové0.02 M hydrochloric acid solution

0,075 M roztok chloridu sodného % etanol (obj./obj.)0,075 M sodium chloride solution% ethanol (v / v)

Hodnota pH je 8,3 při 25 °C.The pH is 8.3 at 25 ° C.

g měniče aniontu uvedeného v příkladu 2 se nechá nabobtnat v pufru a nejjemnější částice se odstraní dekantací. Materiál se použije k naplněni kolony o průměru 2,5 cm a výšce 50 cm. Kolona se ekvilibruje pufrem,g of the anion exchanger of Example 2 is swelled in buffer and the finest particles are removed by decantation. The material was used to pack a column with a diameter of 2.5 cm and a height of 50 cm. Equilibrate the column with buffer,

2,5 g inzulínu krystalovaného jednou z citrátového pufru se rozpustí při teplotě 0 °C ve směsi 450 mg tris(hydroxymetyl)eniinometanu, 100 mg čtyřsodné soli kyseliny etyléndiamintetraoctové, 25 ml pufru, 25 ml 6056 etanolu (obj./obj.) a 0,08 ml 4 N roztoku kyseliny chlorovodíkové (konečné hodnota pH při 25 °C je 8,4). Nerozpustný materiál se odstraní odstředěním při teplotě 2 až 4 °C a čirý filtrát se nanese na kolonu. Vymývání se provádí pufrem při teplotě 4 °C a rychlostí 26 ml/h. Jímají se frakce po 20 al.2.5 g of insulin crystallized with one of the citrate buffer were dissolved at 0 ° C in a mixture of 450 mg of tris (hydroxymethyl) eniinomethane, 100 mg of ethylenediaminetetraacetic acid, disodium salt, 25 ml of buffer, 25 ml of 6056 ethanol (v / v) and 0.08 ml of a 4 N hydrochloric acid solution (final pH at 25 ° C is 8.4). The insoluble material was removed by centrifugation at 2-4 ° C and the clear filtrate was applied to the column. Elution is performed with buffer at 4 ° C and 26 ml / h. Fractions of 20 [mu] l are collected.

tete

Extinkce se měří při 276 nm a vynááí proti číslům frakcí. Frakce odpovídající střední hlavní části inzulínového maxima (největSÍ maximum), která elektroforézou na polyakrylamidovém gelu (tzv. DISC FAGE) vykázala esenciálně jedinou komponentu, se smísí a inzulín se sráží přidáním stejného objemu 0,02 M roztoku octanu zinečnatého, 0,03 N roztoku kyseliny chlorovodíkové. Sraženina se izoluje odstředěním a krystaluje ze směsi acetoncitráíový pufr známým způsobem. .Extinction is measured at 276 nm and plotted against fraction numbers. The fraction corresponding to the middle main part of the insulin maximum (the highest maximum), which showed essentially a single component by polyacrylamide gel electrophoresis (so-called DISC FAGE), is mixed and the insulin is precipitated by adding an equal volume of 0.02 M zinc acetate, 0.03 N hydrochloric acid. The precipitate is isolated by centrifugation and crystallized from the acetonitrile buffer mixture in a known manner. .

Výtěžek čištěného inzulínu je 1,3 g.The yield of purified insulin is 1.3 g.

Příklad 4Example 4

Připraví se pufr následujícího složení:Prepare a buffer of the following composition:

14,9 g hydrochloridů histidinu14.9 g of histidine hydrochloride

38,7 ml 1 N roztoku hydroxidu sodného38.7 ml of 1 N sodium hydroxide solution

16,1 g chloridu sodného 3,12 litrů 96% etanolu (obj./obj.)16.1 g sodium chloride 3.12 liters 96% ethanol (v / v)

Voda k doplněni celkového objemu 5 litrů. Hodnota pH při teplotě 25 °C je 6,5.Water to make up a total volume of 5 liters. The pH at 25 ° C is 6.5.

g měniče aniontů uvedeného v příkladu 2 se nechá nabobtnat. v pufru a nejjemnSjší částice se odstraní dekantacl. Materiálu se použije k naplnění kolony průměru 2,5 cm a výšky 25 cm. Kolona se ekvilibruje pufrem.g of the anion exchanger in Example 2 is swollen. in buffer and the finest particles are removed by decantation. The material was used to fill a column of 2.5 cm diameter and 25 cm height. Equilibrate the column with buffer.

500 mg inzulínu jednou krystalovaného z nitrátového pufru se rozpustí ve směsi 20 mg dvojsodné soli kyseliny etyléndiamintetraoctové, 6,5 ml pufru a 6 ml 60% etanolu (obj. na objem), přičemž hodnota pH se nastaví na 6,8 přidáním 1 N roztoku hydroxidu sodného. Nerozpustný materiál se odstraní odstředěním a čirý roztok se nanese na kolonu. Vymýváni se provádí pufrem při teplotě 27 °C a rychlostí 30 ml/h. Jímají se frakce po 5 ml.500 mg of insulin once crystallized from nitrate buffer are dissolved in a mixture of 20 mg of ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt, 6.5 ml of buffer and 6 ml of 60% ethanol (v / v), and the pH is adjusted to 6.8 by adding 1 N solution sodium hydroxide. The insoluble material was removed by centrifugation and the clear solution was applied to the column. Elution is performed with a buffer at a temperature of 27 ° C and a rate of 30 ml / h. Fractions of 5 ml are collected.

Extinkce se měří při 276 nm a vynáší proti číslům frakcí. Frakae odpovídající střední hlavní části inzulínového maxima (největší maximum), které elektroforézou na pólyakry 1amidovém gelu (tzv. DISC PAGE) vykázala esenciálně jedinou komponentu, se smísí a inzulínExtinction is measured at 276 nm and plotted against fraction numbers. The fraction corresponding to the central major part of the insulin maximum (the highest maximum), which showed an essentially single component by electrophoresis on 1-amide gel electrophoresis (so-called DISC PAGE), is mixed and the insulin

J ee aréží přidáním stejného objemu 0,02 κ roztoku octnou zinečnatého. Sraženina se izoluje odstředěním a krystaluje ze směsi aceton-oitrétový pufr známým způsobem. Výtěžek čištěného ΐ ' inzulínu je 210 mg.It is then added by adding an equal volume of 0.02 κ zinc zinc solution. The precipitate is isolated by centrifugation and crystallized from the acetone-acetate buffer mixture in a known manner. The yield of purified insulin is 210 mg.

Příklad. 5Example. 5

Připraví se pufr tohoto složení:Prepare a buffer of the following composition:

i ,25 kg trieíhydroxymetyljeainometeEfttti, 25 kg of trihydroxymethyl ieainometeEfttt

725 ml 12,3 N roztoku kyseliny chlorovodíkové725 ml of a 12.3 N hydrochloric acid solution

62,4 litrů 96% etanolu (obj./obj,)62.4 liters of 96% ethanol (v / v)

Voda k doplnění celkového objemu na 100 litrů. Hodnota pH při teplotě 25 °C je 7,3.Water to make up the total volume to 100 liters. The pH at 25 ° C is 7.3.

1,3 kg měniče aniontů uvedeného v příkladu 2 »e nechá nabobtnat v pufru a nejjemnější Sástice se odstraní dekantací. Materiál se použije k. naplněni kolony průměru 15 cm a výšky í5 čni. Kolona se ekvilibruje pufrem.1.3 kg of the anion exchanger shown in Example 2 were swollen in buffer and the finest particles were removed by decantation. The material was used to load a column of 15 cm diameter and 15 cm height. Equilibrate the column with buffer.

g překrystalovaného vepřového nebo hovězího inzulínu, obsahujícího 0,4 % zinku, :e rozpustí ve směsi 0,72 g dvojsodné soli kyseliny etylé-ndiaaintetraoctová, 10,2 g tris;hydroxymetyl)aminometanu a 720 ml 60% etanolu (obj./obj.). Nerozpustný materiál se odstraní odstředěním. K čirému roztoku se přidá 10,7 ml 6 N roztoku kyseliny chlorovodíkovég of recrystallized pork or bovine insulin containing 0.4% zinc is dissolved in a mixture of 0.72 g of disodium ethylenedietaetraacetic acid disodium, 10.2 g of tris; hydroxymethyl) aminomethane and 720 ml of 60% ethanol (v / v). .). Insoluble material is removed by centrifugation. To the clear solution was added 10.7 mL of 6 N hydrochloric acid

Ί 225134 a roztok se nanese na kolonu, Vymývání se provéčí pufrem při teplotě 25 °C a rychlostí 1,2 litr/h. Jímají se frakce po 0,5 litru.51 225134 and the solution is applied to the column, eluting with buffer at 25 ° C at a rate of 1.2 L / h. 0.5 liter fractions were collected.

Extinkce se měří při 276 nm (Egyg) a vynášejí proti číslům frakcí. Frakce odpovídající střední hlavní Sásti inzulínového maxima (největší maximum), která elektroforázou na polyakrylamidovém gelu (tzv. LISC PAGE) vykázala esenciálně jedinou komponentu, se spojí. Inzulín se sráží ze spojených frakci přidáním stejného objemu 0,02 M roztoku octanu zinečnatého. Sraženina se izoluje odstředěním a krystaluje ze směsi aceton-citrátový pufr známým způsobem.Extinctions are measured at 276 nm (EGg) and plotted against fraction numbers. The fraction corresponding to the central major part of the insulin maximum (the highest maximum), which showed an essentially single component by electrophoresis on a polyacrylamide gel (so-called LISC PAGE), was pooled. Insulin is precipitated from the pooled fractions by adding an equal volume of 0.02 M zinc acetate solution. The precipitate is isolated by centrifugation and crystallized from the acetone-citrate buffer mixture in a known manner.

Získá se 8,2 g čištěného inzulínu. Inzulín se překrystaluje z pufru následujícího složení:8.2 g of purified insulin are obtained. Insulin is recrystallized from a buffer of the following composition:

2,0 inzulínu2.0 insulin

0,8 % Zn++ (ve formě chloridu) vztaženo na hmotnost inzulínu0.8% Zn ++ (as chloride) based on insulin weight

0,1 U roztok octanu sodného0.1 U sodium acetate solution

7,0 % chloridu sodného7.0% sodium chloride

Kyselina chlorovodíková do hodnoty pH 5,45 až 5,55.Hydrochloric acid up to a pH of 5.45 to 5.55.

Inzulín se rozpustí ve vodě obsahující kyselinu chlorovodíkovou a chlorid zinečnatý, načež se přidá roztok obsahující příslušné množství octanu sodného a chloridu sodného. Krystalizace se provádí za mechanického mícháni při teplotě místnosti. Krystalizace je skončena během jednoho nebo dvou dnů. Inzulín se izoluje filtraci, promyje vodou a suší ve vakuu. Výtěžek je 8,0 g.The insulin is dissolved in water containing hydrochloric acid and zinc chloride and a solution containing the appropriate amounts of sodium acetate and sodium chloride is added. Crystallization is carried out with mechanical stirring at room temperature. Crystallization is complete within one or two days. The insulin is isolated by filtration, washed with water and dried in vacuo. Yield 8.0 g.

Čištěného inzulínu lze.používat pro přípravu všech druhů farmaceutických inzulínových přípravků pro klinické použití.Purified insulin can be used to prepare all kinds of pharmaceutical insulin preparations for clinical use.

Claims (4)

1. Způsob čištění komerčního nebo surového inzulínu pro jeho zbavení pankreatických · bílkovin o molekulové hmotnosti vyšěí než je molekulová hmotnost inzulínu, totiž nad 6 000, i antigenních inzulínu podobných nečistot o přibližně téže molekulové hmotnosti jako má inzulín, aplikací k čiětění určeného inzulínu na sloupec měniče aniontů vyznačující se tím, že jako vodného roztoku inzulínu, který má být čiětěn, se používá roztoku o hodnotě pH v rozsahu 6 až 10, ze sloupce se frakce vymývají alifatickým C,-Cy-alkanolem misitelným s vodou, který obsahuje vodu v množství 20 až 70 % obj. a který má hodnotu pH v rozsahu 6 až 10, jímá se nebo jímají se frakce eluátu vykazující při analýze pomocí elektroforézy na polyakrylamidovém gelu (DISC PAGE) esenciálně jedinou složku, a inzulín takto vyčištěný se izoluje ze zjímané frakce nebo ze zjímaných frakcí.1. A method of purifying commercial or crude insulin to deprive pancreatic proteins of molecular weight greater than that of insulin, i.e., above 6,000, of antigenic insulin-like impurities of approximately the same molecular weight as insulin, by applying to the column the desired insulin. anion exchanger, characterized in that a solution having a pH in the range of 6 to 10 is used as the aqueous insulin solution to be clarified, and the fractions are eluted from the column with an aliphatic water-miscible C 1 -C 8 -alkanol containing water in an amount of 20 to 70% v / v and having a pH in the range of 6 to 10, the eluate fractions having essentially a single component when analyzed by polyacrylamide gel electrophoresis (DISC PAGE) are collected or collected, and the insulin thus purified is isolated from the collected fraction or of the collected fractions. 2. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že se jako elunetu používá s vodou mísitelného 0,-Cyalkanolu obsahujícího 30 až 50 % objemových vody.2. A process according to claim 1, wherein the water-miscible O, -Cyalkanol containing 30 to 50% by volume of water is used as the elunet. 3. Způsob podle bodu 1 nebo 2, vyznačující se tím, že se používá elunetu o hodnotě pH 6,5 až 8,5.3. Method according to claim 1 or 2, characterized in that an elunet having a pH of 6.5 to 8.5 is used. 4. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že jako měniče aniontů se používá silně bázického měniče aniontů.4. The method of claim 1, wherein the anion exchanger is a strongly basic anion exchanger.
CS78849A 1969-08-11 1978-02-09 A method for commercial or crude insulin storage CS225134B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS78849A CS225134B2 (en) 1969-08-11 1978-02-09 A method for commercial or crude insulin storage

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS695548A CS225117B2 (en) 1968-08-09 1969-08-11 The purification of insulin
CS78849A CS225134B2 (en) 1969-08-11 1978-02-09 A method for commercial or crude insulin storage

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS225134B2 true CS225134B2 (en) 1984-02-13

Family

ID=5400584

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS78849A CS225134B2 (en) 1969-08-11 1978-02-09 A method for commercial or crude insulin storage

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS225134B2 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4129560A (en) Process for the purification of high molecular weight peptides using non-ionic detergents
JP3262128B2 (en) Protein purification method
DE2319495C2 (en) Method for the selective, reversible binding of biomolecules to an adsorbent in a chromatographic column
US4861870A (en) Process for purifying anthracyclinone glycosides by selective adsorption on resins
Fraenkel-Conrat et al. Avidin. I. Isolation and characterization of the protein and nucleic acid
US3907676A (en) Process for purifying insulin
US4303650A (en) Process for production of erythropoietin
US3719655A (en) Process for the crystallization of the ammonium and alkali metal salts in insulin
CZ283356B6 (en) Process of purifying insulin and/or insulin derivatives by chromatography
Scopes Multiple enzyme purifications from muscle extracts by using affinity-elution-chromatographic procedures
NL8501105A (en) PROCESS FOR THE PURIFICATION OF INSULIN.
ARAI et al. Studies on the Polypeptide Elongation Factors from E. coli: IV. Crystalline Tu. GTP, Tu. Gpp (CH2) p, and Phenylalanyl-tRNA Tu. GTP Complex
GB1576344A (en) Process for purifying glucagon
KR890001244B1 (en) How to purify growth hormone-positive substances
EP0013826A1 (en) Process for purifying insulin and insulin so prepared
CS225134B2 (en) A method for commercial or crude insulin storage
Planta et al. Chromatographic purification of the thiol enzyme cathepsin C
RU2081122C1 (en) Method of isolation and purification of insulin or its biotechnological precursors
US4617376A (en) Process for recovering glucagon from pancreas glands
EP0089218B1 (en) A process for purifying human chorionic gonadotropin
CA1284000C (en) Process for recovering glucagon from pancreas glands
US3591678A (en) Method of purifying intrinsic factor
DE1966573C3 (en) Method for purifying insulin
US4495096A (en) Process for producing and obtaining anaphylatoxin-and cocytotaxin-containing leucotaxine preparations and of anaphylatoxin and cocytotaxin proteins in molecularly homogeneous, biologically active form
AT304760B (en) Method for purifying insulin