CS218023B1 - Způsob enzymové výroby kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové - Google Patents

Způsob enzymové výroby kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové Download PDF

Info

Publication number
CS218023B1
CS218023B1 CS658681A CS658681A CS218023B1 CS 218023 B1 CS218023 B1 CS 218023B1 CS 658681 A CS658681 A CS 658681A CS 658681 A CS658681 A CS 658681A CS 218023 B1 CS218023 B1 CS 218023B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
enzyme
adck
production
water
aminodesacetoxycephalosporanic acid
Prior art date
Application number
CS658681A
Other languages
English (en)
Inventor
Jarmila Machova
Vladimir Vojtisek
Ludvik Novak
Karel Culik
Original Assignee
Jarmila Machova
Vladimir Vojtisek
Ludvik Novak
Karel Culik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jarmila Machova, Vladimir Vojtisek, Ludvik Novak, Karel Culik filed Critical Jarmila Machova
Priority to CS658681A priority Critical patent/CS218023B1/cs
Publication of CS218023B1 publication Critical patent/CS218023B1/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Vynález se týká způsobu enzymové výroby a izolace kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové z desacetoxycefalosporinu pomocí speciálně vyvinutých, mobilizovaných, buněčných katalyzátorů na bázi zesítěné a permeabilizované biomasy, buněčných agregátů, nebo na bázi navzájem che- . micky vázaných mikrobiálních buněk obsahujících enzym penicilinacylázu. Získaná kyselina 7-aminodesacetoxycefalosporanová slouží jako základní meziprodukt pro výrobu polosyntetických desacetoxycefalosporinů, zejména cefalexinu.

Description

Vynález se týká způsobu enzymové výroby 7-aminodesacetoxycefalosporanové kyseliny (dále jen 7-ADCK j z N-fenylacetamidodesacetoxycefalosporinu (dále jen DAOC-G) zesítěnými, agregovanými nebo vázanými buňkami s penicilinacylázovou aktivitou.
7-ADCK je klíčovým meziproduktem syntézy alfa-aminocefalosporinových antibiotik typu cefradinu, zejména však cefalexinu, to jest monohydrátu kyseliny D-(—)-(alfa-amino-alf a-fenylacetamido j -3-methyl-3-cefem-4-karboxylové, který je vysoce účinný, komerčně vyráběným antibiotikem proti některým pathogenním grampozitivním a gramnegativníxn mikroorganismům, zahrnuje v to i kmeny necitlivé na přirozené a polosyntetické peniciliny.
7-ADCK lze připravit řadou způsobů, z nichž z průmyslového hlediska nejvýznamnější jsou dva způsoby. První způsob vychází z draselné soli benzylpenicilinu (penicilinu Gj nebo' fenoxymetylpenicilinu (penicilinu V), jejichž karboxylové skupiny se přechodně chrání tvorbou snadno zmýdelnitelných esterů, např. p-nitrobenzylesteru,
2,2,2-trichloretylesteru nebo benzylhydrylesterů. Ty se v dalším stupni převádějí oxidací v příslušné sulfoxid-estery, které se Pummererovým přesmykem mění z penamových struktur v cefemové, to jest v estery desacetoxycefalosporinů G či V. V dalším reakčním stupni je zapotřebí odstranit nežádoucí postranní řetězec za vzniku 7-ADCK se stále ještě chráněnou karboxylovou skupinou.
Chrániči skupiny se odstraní a volná 7-ADCK se pak acyluje za vzniku cefalexinu, s výhodou např. podle čs. autorského osvědčení č. 177 703. Odstranění nežádoucího postranního řetězce u tohoto způsobu se provádí výlučně chemickým způsobem; sulfoxidy benzylpenicilinu nebo fenoxymetylpenicillnu s chráněnou karboxylovou skupinou se uvádějí do reakce s činidly typu chloridu fosforečného, intermediárně vzniká chloriminový derivát, který je alkoholýzou převáděn v příslušný iminoderivát, následná hydrolýza vede k příslušným esterům 7-ADCK (F. Huber et al., In: Cephalosporin and Penicillin Compounds, Their Chemistry and Biology, ed. E. H. Flynn, pp. 27—73, Academie Press, New York, 1973).
Chemická hydrolýza probíhá sice s dobrým výtěžkem, představuje však sled velice nepříjemných operací, použití velmi agresivních chemikálií, atakujících použité aparatury.
Druhý způsob výroby 7-ADCK je co do počtu technologických operací kratší a z ekonomického hlediska výhodnější. Fenoxymetylpenicilin (penicilín V), zejména však benzylpenicilin (penicilín G] se převádí nejprve v příslušný sulfoxid s nechráněnou karboxylovou skupinou, s výhodou postupy podle čs. autorského osvědčení č. 221 161 a č. 210 739. V dalším stupni se provádí Pummererův přesmyk za vzniku desacetoxycefalosporinu G.
Z uvedeného vyplývá, že druhý způsob přípravy desacetoxycefalosporinů přináší četné výhody a je proto dnes využíván většinou výrobců polosyntetických cefalosporinů. Tím, že zcela eliminuje používání chránících skupin a jejich následné odstraňování, je podstatně kratší. I v tomto druhém, ekonomicky výhodném způsobu výroby 7-ADCK, zůstává problém odstranění nežádoucího postranního řetězce. Chemický způsob, podobně jako u prvého způsobu, používá agresivního, snadno se hydrolyzujícího chloridu fosforečného a má-li se docílit vysokého výtěžku, je nezbytné pracovat za nízkých teplot; při výrobě ve větším měřítku je třeba zpracovávat i mimořádně toxické odpadní louhy. Chemický způsob odstraňování postranního řetězce (desacetylacej nepředstavuje tedy ani v jednom z obou uvedených způsobů výhodné řešení problému.
V odborné a patentové literatuře je rovněž popsán způsob enzymové desacetylace postranního řetězce desacetoxycefalosporinů, zejména desacetoxycefalosporinů G, enzymem penicilinacylázou, produkovanou různými mikroorganismy, zejména Bacillus megatherium, např. podle NDR patentového spisu č. 97 213, a nativními (živými) buňkami Escherichia coli, popřípadě rozpustnou penicilinacylázou izolovanou z těchto buněk podle čs. AO č. 190 459. Zmíněný enzymový způsob desacetylace postranních řetězců desacetoxycefalosporinů je sice selektivní, vylučuje řadu zmíněných technologických a z části i ekonomických potíží ve srovnání s chemickou hydrolýzou (eliminace agresivních chemikálií], avšak vede ke vzniku produktů 7-ADCK silně znečištěných bílkovinnými příměsemi plynoucími z autolyzovaných buněk, popřípadě z enzymových a balastních bílkovin, což vede k izolačním ztrátám při dalším čištění, popřípadě k nebezpečí vzniku alergických reakcí při aplikaci polosyntetických desacetoxycefalosporínů, vyrobených z takto získané 7-ADCK v klinické praxi.
Další nevýhodou tohoto postupu je, že nativní (živé) buňky, nebo rozpustný enzym z nich izolovaný, lze pro enzymovou reakci použít pouze jednorázově, což ve svých důsledcích znamená nevýhodnou ekonomickou bilanci ve srovnání s chemickou hydrolýzou, neboť pro každou výrobní šarži je třeba vykultivovat enzymově aktivní biomasu ve velkokapacitním fermentoru pro jednorázové použití. Při eventuální aplikaci rozpustného enzymu, použitého byť pouze v technické formě, náklady na izolaci enzymu z buněk mikrobiálního producenta vzrostou natolik, že aplikace takovéto technologie je ekonomicky nereálná.
Ve snaze o ekonomizaci procesu enzymové desacetylace postranních řetězců kyseliny 7-fenylacetamidodesacetoxycefalospo218023 ranové vyrobené z benzylpenicilinu a kyseliny 7-fenoxyacetamidodesacetoxycefalosporanové vyrobené z fenoxymetylpenicilinu a k odstranění zmíněných nežádoucích vlivů, byly vyvinuty různé formy, především různým způsobem imobilizovaných preparátů enzymu penicilinacylázy, izolované z buněk Escherichia coli, Bacillus megatherlum, Próteus rettgeri a Erwinia aroidea, umožňující další ekonomizaci procesu přípravy 7-ADCK, spočívající především ve vícenásobném vsádkovém nebo kontinuálním využití imobilizovaných forem tohoto enzymu (B. J. Abbott, In: Advances Applied Microbiology, ed. D. Perlman, Vol. 20, pp. 203— —257, Academie Press, New York, San Francisco, London, 1976). Jedná se především o práce japonských autorů (britský patentový spis č. 1 324 159), kteří izolovanou penicilinacylázu z Bacillus megatherium sorbovali na křemelinu, aktivní uhlí, karboxymetylcelulózu, nebo různé iontoměnné pryskyřice, a takto fyzikálně, resp. fyzikálně-chemicky imobilizovaného enzymu použili pro přípravu 7-ADCK. Rovněž italští autoři (čs. patentový spis č. 190 469 fyzikálně zabudovali izolovanou penicilinacylázu z buněk Escherichia coli do vláken triacetátu celulózy a tohoto preparátu použili jak pro enzymovou přípravu 7-ADCK z DAOC—G, tak pro enzymovou acylací 7-ADCK mathylesterem D-( —)-fenylglycinu za vzniku cefalexinu. Posléze zmíněná metoda imobilizace penicilinacylázy do vláken triacetátu celulózy, enzym byl však izolován z jiného druhu mikroorganismu (NSR patentový spis č. 2 422 374), byl využit pro přípravu 7-ADCK při použití kyseliny 7-fenoxyacetamidodesacetoxycefalosporanové či jejich solí jako substrátu. Naznačeným způsobem získané imobilizované formy penicilinacylázy, lze použít pro přípravu 7-ADČK opakovaně, biologické a ostatní toxické příměsi v produktu a tím v klinických formách polosyntetických desacetoxycefalosporinů jsou zanedbatelné a celý proces ekonomie je řízen především náklady na katalyzátor, tj. náklady na kultivaci enzymově aktivní biomasy a především na výtěžek v izolaci enzymu a výtěžek jeho imobilizace. Je pochopitelné, že v ekonomii celého procesu je limitujícím faktorem zejména výtěžnost izolace enzymu a cena a dostupnost nosičů pro vazbu enzymu a výtěžek imobilizace, včetně operačního (pracovního) poločasu imobilizovaného enzymu, tj. v praxi hodnota, kolikrát, resp. jak dlouho lze katalyzátor opakovaně nebo kontinuálně využívat bez významné ztráty jeho specifické enzymové účinnosti. V neposlední řadě hraje významnou roli při použití imobilizovaných enzymů účinnost a stupeň enzymové konverze substrátu na produkt, výtěžek v izolaci a kvalita produktu.
Byla vyvinuta řada technologií výroby biokatalyzátorů s penicilinacylázovou aktivitou určených především pro účely enzymové výroby 6-aminopenicilanové kyseliny (dále jen 6-APK) enzymovou hydrolýzou penicilinu, zejména benzylpenicilinu. Jedná se především o imobilizované materiály s penicilinacylázovou aktivitou na principu chemicky imobilizovaných buněk Escherichia coli a dalších mikroorganismů, a to jednak zesítěných a permeabilizovaných buněk produkčního mikroorganismu, umožňující opakované použití tohoto materiálu pro semikontinuální výrobu 6-APK, jejich výroba a použití pro uvedený účel je předmětem čs. autorského osvědčení č. 201 621, jednak mikrobiálních buněčných agregátů s penicilinacylázovou aktivitou, jejichž výroba je předmětem čs. autorského osvědčení č. 197 101, dále výroba navzájem chemicky vázaných buněk s peniciliacylázovou aktivitou podle čs. autorského osvědčení č. 203 607, a konečně výroba navzájem chemicky vázaných buněk prokaryontních a eukaryontních mikroorganismů s různými enzymovými aktivitami, mimo jiné i s aktivitou penicilinacylázovou, podle čs. autorského osvědčení č. 209 265.
Citované postupy výroby těchto biokatalyzátorů nevyužívají izolace enzymu z buněk mikrobiálního producenta a jeho následné vazby na nosič, nýbrž využívají buňku producenta jako přirozený nosič aktivity enzymu a původními postupy imobilizace pouze enzym chemicky (kovalentní vazbou) fixují uvnitř produkčních buněk, případně takto chemicky „konzervované“ buňky, odolné vůči autolýze, další chemickou reakcí spojují navzájem bez použití jakéhokoliv ve vodě nerozpustného nosiče s cílem zdokonalení sedimentačních vlastností vzniklých částic, které tvoří integrální jednotky s vysokou penicilinacylázovou aktivitou.
Vlastnosti zmíněných buněčných biokatalyzátorů, specifická aktivita, enzymová účinnost, mechanická a enzymová stabilita částic a další biochemické, fyzikálně-chemické a fyzikální vlastnosti těchto materiálů, dovolují mnohonásobně opakované (diskontinuální) nebo kontinuální použití pro účely výroby 6-APK. Z ekonomického hlediska pak náklady na výrobu zmíněných typů biokatalyzátorů jsou minimální, neboť technologie jejich výroby nevyžaduje žádný komerční nosič, zahrnuje malý počet operací, surovinové náklady na jejich výrobu jsou minimální.
Zjistili jsme nyní, že za selektivních reakčních podmínek vedení biochemické reakce lze s výhodou zmíněné imobilizované buněčné materiály využít pro předmětný způsob výroby 7-ADCK z desacetoxycefalosporinů, zejména z DAOC-G, a to jak mnohonásobně opakovaně (diskontinuálně nebo semikontinuálně), tak kontinuálně, při vysoké účinnosti enzymové konverze substrátu na produkt (95—100% teorie), vysoké výtěžnosti v izolaci produktu (molární výtěžek v izolaci až 90% teorie) a vysoké kvalitě (minimální obsah účinné látky pro218023 duktu 95% teorie). Ve spojení se zjednodušenými a ekonomlzovanými chemickými postupy výroby desacetoxycefalosporinu G, které jsou předmětem čs. autorských osvědčení č. 209 641, č. 210 739, představuje předmětný způsob enzymové výroby 7-ADCK podle vynálezu komplexní, moderní a ekonomicky reálnou chemicko-enzymovou technologií výroby tohoto farmaceuticky důležitého meziproduktu, umožňující následnou výrobu polosyntetických desacetoxycefalosporinů, zejména cefalexinu.
Způsob enzymové výroby 7-ADCK podle předmětného vynálezu je vyznačen tím, že se vodný roztok desacetoxycefalosporlnů G, s výhodou jeho solí o koncentraci 0,05—10,0 proč. hmota/objem, s výhodou 6 % hmota/ /objem, s hodnotou pH 7,0-8,5, s výhodou 7,8, uvádí při teplotě 10—45 °C, s výhodou 37 °C, diskontinuálně, semikontinuálně nebo kontinuálně ve styk s biokatalyzátorem na bázi zesítěné a permeabilizované biomasy mikrobiálních producentů penicilinacylázy nebo na bází agregovaných nebo navzájem chemicky vázaných buněk producenta tohoto enzymu, načež se po ukončené enzymové konverzi ze supernatantu, popřípadě z matečného louhu po úpravě pH a teploty, Izoluje kyselina 7-aminodesacetoxycefalosporanová.
Způsob enzymové výroby podle předmětného vynálezu je dále vyznačen tím, že izolace 7-ADCK se provádí v rozmezí teplot —1 až +15 °C, v rozmezí hodnot pH 3,5 až 5,0, s výhodou +2 °C a pH 4,2, popřípadě v přítomnosti s vodou nemísitelných organických rozpouštědel, zejména benzinu nebo petroletheru a/nebo· se vykrystalizovaný produkt suspenduje v rozpouštědlech mísitelných s vodou, zejména v etanolu či acetonu, nebo se oba způsoby kombinují.
Způsoby výroby podle vynálezu jsou dále
doloženy v příkladech provedení, aniž by lita produktu jsou shrnuty jak následuje
se jimi omezovaly.
Počáteční koncentrace DAOC-G (v %) 1,0 3,0 6,0 8,0 10,0
reakční doba nutná pro kvantitativní
konverzi (min.) 30 45 90 110 180
množství získané 7-ADCK (v gj 0,23 0,68 1,44 1,92 2,26
obsah 7-ADCK v produktu (v %) 96,83 97,7 97,57 92,65 92,24
výtěžek 7-ADCK (% teorie) 85,65 84,85 86,2 85,5 80,8
Promyté odsáté katalyzátory byly popsaným způsobem a za uvedených podmínek použity ještě jedenkrát, přičemž bylo dosaženo stejných výsledků.
P ř í k 1 a d 2
Do 21itrového skleněného reaktoru opatřeného vtavenou porcelánovou fritou S 2 na dně vnitřního prostoru reaktoru a výpustním ventilem uzavírajícím prostor pod fritou a duplikačním zařízením na oběžnou vodní temperaci reakční směsi udržovanou pomocí ultratermostatu, bylo předloženo 900 ml demineralizované vody a za míchání verPříklady provedení.
Příklad 1
Chemicky vázané mikrobiální buňky s penicilinacylázovou aktivitou vyrobené podle čs. autorského osvědčení č. 203 607 o parametrech: specifická aktivita 6,5 j./mg vlhké hmoty materiálu, průměrné distribuci velikosti částic 0,15 až 0,3 mm a průměrném obsahu sušiny v materiálu 35 %, byly v množství á 5 g postupně suspendovány v á 45 ml vodných roztocích K-soli DAOC-G (průměrný obsah účinné látky 96,92 %) v rozmezí počátečních koncentrací substrátu 1,0 až 10,0 % hmota/objem. Enzymová reakce probíhala při teplotě 37 °C za nepřetržitého míchání a kontinuální úpravy pH 0,1 až 1,0 N vodným roztokem NaOH pomocí pH-statu v rozmezí hodnot pH 7,6 až 7,8.
Po skončení enzymové hydrolýzy, která je indikována zastavením spotřeby alkálie, byly částice biokatalyzátoru odděleny vakuovou filtrací přes terylenovou plachetku a promyty vodou. Čiré roztoky reakčních směsí byly ochlazeny na teplotu +4 °C a za stálého míchání byl přidáván 25% vodný roztok kyseliny sírové za současné potenciometrické kontroly pH na hodnotu 4,2. Po úpravě pH reakčních směsí byly tyto okyselené reakční směsi ponechány v klidu cca 1 hodinu při uvedené teplotě.
Po kvantitativní krystalizaci produktu byly krystaly z jednotlivých reakčních směsí postupně na fritě odděleny vakuovou filtrací a produkty postupně suspendovány v 50 mililitrech vychlazeného etanolu (+10 °Cj, znovu odděleny filtrací, na fritě ještě promyty přebytkem chladného etanolu a vysušeny do konstantní hmoty. Dosažené parametry enzymové hydrolýzy, výtěžky a kvatikálně umístěným ocelovým kotvovým míchadlem o počtu otáček 60/min., bylo rozpuštěno· v předložené vodě 57 g K-soli DAOC-G o obsahu účinné látky 96,92 %. Do reaktoru byla upevněna skleněná pH-elektroda spojená s pH-statem, pH-metrem a dávkovacím zařízením pro kontinuální úpravu pH. Po rozpuštění bylo pH roztoku upraveno na hodnotu 7,9 jednonormálním roztokem NaOH.
Po vytemperování roztoku na teplotu 37 °C bylo za nepřetržitého míchání přidáno 110 gramů vlhké hmoty biokatalyzátoru, jehož parametry jsou uvedeny v příkladu 1. Pomocí zmíněného automatického zařízení na kontinuální úpravu pH bylo toto nepřetržitě udržováno na hodnotě 7,8 roztokem 1 N NaOH v průběhu nepřetržitého míchání a temperace po celých 90 min. enzymové reakce. Po této době byla suspenze vakuově odsáta otevřením výpustního ventilu, přičemž vtavená frita mezi dnem vnitřního prostoru reaktoru umožnila kvantitativní oddělení čiré reakční směsi od částic biokatalyzátoru, které setrvaly v reaktoru.
Po odsátí zreagované kapaliny bylo do reaktoru, který obsahoval vlhkou nepromytou odsátou násadu katalyzátoru použitou v předchozím cyklu, opět předloženo 900 ml vody, v které byla předem rozpuštěna K-sůl DAOC-G ve stejné koncentraci jako v cyklu předchozím a celý postup byl opakován 10x se stejnou násadou katalyzátoru.
Po odsátí zreagované kapaliny z každého· z cyklů opakované enzymové hydrolýzy, byla tato přelita do chlazené nádoby, v které bylo předem předloženo 330 ml benzinu vychlazeného na +2 °C a kapalina nepřetržitě míchána a chlazena tak, aby výsledná teplota se pohybovala v rozmezí +1 až +5 stupňů Celsia. pH vychlazené, míchané kapaliny sestávající z organické s vodou nemísitelné a vodné fáze bylo upraveno na hodnotu 4,2 způsobem uvedeným v příkladu 1. Po přibližně půlhodinovém míchání po úpravě pH byla krystalizační směs ponechána v klidu při teplotě kolem 4 °C přibližně 1 hodinu. Poté byl produkt oddělen vakuovou filtrací, vyjmut a suspendován ve 100 ml ledového acetonu, znovu odělen filtrací, na filtru ještě několikrát promyt přebytkem ledové vody a vysušen do konstantní hmoty.
V 10 opakovaných cyklech použití téže násady katalyzátoru bylo celkem získáno 292 g 7-ADCK o průměrném obsahu účinné látky 96,94 % a celkovém výtěžku 89,7 % teorie. Specifická aktivita katalyzátoru se po jeho lOnásobném opakovaném použití nezměnila. Úbytek hmoty katalyzátoru činil po 10 cyklech 2 % vztaženo na sušinu částic a neovlivnil reakční rychlost a stupeň konverze mezi 1. a 10. cyklem jeho opakovaného použití.
Příklad 3
Chemicky vázané mikrobiální buňky s peniciíinacylázovou aktivitou, získané postupem podle čs. autorského osvědčení č. 209 265 o parametrech:
specifická aktivita 2,5 j./mg vlhké hmoty materiálu, částic ve formě granulí o velikosti 1—3 mm a průměrném obsahu sušiny 40 %, byly v množství 55 g naplněny do skleněného sloupce o průměru 2,6 cm s temperovaným pláštěm. Imobilizovaným materiálem bylo čerpáno 0,5 1 0,5-molárního fosfátového pufru pH 7,9, v kterém byla rozpuštěna K-sůl DAOC-G v koncentraci 3% hmota/objem směrem zdola nahoru rychlostí 2030 ml/hod., při teplotě 37 °C. Za tohoto uspořádání bylo provedeno 5 opakovaných enzymových konverzí 0,5 1 rozotoku substrátu uvedené koncentrace s touže násadou katalyzátoru umístěnou trvale ve sloupci, recirkulací reakční směsi při kontinuální úpravě pH zředěnou čpavkovou vodou (1: : 1) na hodnotu 7,9 v mimo sloupec umístěné skleněné míchané nádobě, v níž byla vestavěna pH-elektroda spřažená s pH-statem. Reakční doba pro každý cyklus enzymové konverze v recirkulačním reaktoru činila 120 min.
Po skončení každé z enzymových konverzí byla zreagovaná kapalina zpracována stejným způsobem, jak je uvedeno v příkladu 2 s tím rozdílem, že namísto benzinu byl předložen předchlazený petroléter v množství 160 ml a odsátý produkt po krystalizaci byl suspendován opět v petroléteru, znovu odsát a promyt ledovou vodou a vysušen do konstantní hmoty.
V 5 opakovaných cyklech použití téže násady katalyzátoru v recirkulačním reaktoru s jeho vznosným ložem bylo celkem získáno 36,5 g 7-ADCK o průměrném obsahu účinné látky 97,7 % a celkovém výtěžku 91,09 proč. teorie.
Příklad 4
1-litrové skleněné laboratorní fermentační tanky umístěné ve vodní lázni vyhřívané na 37 °C byly naplněny každý 200 g vázaných buněk s penicilinacylázovou aktivitou, jejichž parametry byly uvedeny v příkladu 1. Reaktory měly vestavěny pH-elektrody spřažené s pH-staty a dávkovavíc zařízením roztoku alkálie. Do každého z reaktorů bylo přilito 500 ml 6% vodného roztoku K-soli DAOC-G o pH 7,8 a spuštěna míchadla, jejichž intenzita činila 80 až 100 otáček/min. Enzymová reakce z počátku probíhala vsádkovým způsobem za míchání, temperace a kontinuální úpravy pH čpavkovou vodou na hodnotu 7,8, dokud koncentrace substrátu neklesla v prvním reaktoru na 10—15 %, v druhém reaktoru na 2—0 % výchozího množství. Po dosažení tohoto stavu byl postupně spuštěn kontinuální provoz. Ze zásobníku, který obsahoval 6% roztok DAOC-G vychlazený na +5 °C, byl čerpán pomocí jednoho čerpadla roztok substrátu do 1. reaktoru rychlostí 0,46 litrů/hod., částečně zhydrolyzovaný roztok substrátu pomocí 2. čerpadla z 1. reaktoru do 2. reaktoru rychlostí 0,47 litrů/ /hod. (korekce na vzrůst objemu způsobeném zvětšením objemu v prvním reaktoru přítokem většího množství alkálie) a pomocí třetího čerpadla z 2. reaktoru do chlazeného zásobníku zreagované konverzní směsi (+5 °Cj rychlostí v rozmezí 0,46 až 0,48 litrů/hod. V obou reaktorech bylo udržováno pH reakční směsi kontinuálně dávkováním 16% čpavkové vody pomocí dvou nezávislých pH-statů. Zadržování částic katalyzátoru v reaktorech bylo dosaženo tím, že trubice odsávající reakční směs z reaktorů byly opatřeny filtrační plachetkou, která byla umístěna těsně nad míchadlem.
Kontinuální míchané reaktory zapojené v sérii byly v nepřetržitém provozu 25 hodin, přičemž za tuto dobu bylo kvantitativně hydrolyzováno 11,7 litrů substrátu na požadovaný produkt. Izolace 7-ADCK byla prováděna krystalizací produktu jen z vodné fáze se suspendací a promytím etanolem postupem uvedeným v příkladu 1. Bylo získáno
370,6 g produktu o průměrném obsahu 7-ADCK 96,9 °/o, což je 87,6 % teorie. Specifická aktivita katalyzátoru se po 25 hodinách nepřetržitého provozu nezměnila.
Příklad 5 kg vlhké hmoty buněčné pasty jednotlivě kovalentně zesítěných permeabilizovaných a promytých buněk E. coli s penicilinacylázovou aktivitou (8 j./mg vlhké hmoty], získaných postupem podle čs. autorského osvědčení č. 201621, bylo suspendováno v 9 litrech pitné vody a pH suspenze bylo upraveno 1N roztokem NaOH na hodnotu 7,9. 10 litrů takto připravené homogenní buněčné suspenze bylo přečerpáno do 201itrového skleněného fermentačníhó tanku umístěného ve vodní lázni temperované na 37 °C, do kterého byla vestavěna skleněná pH elektroda spojená v dřívějších příkladech zmíněným automatickým zařízením nakontinuální úpravu pH. Poté bylo do míchané (250 otáček/min.) vodné suspenze nasypáno 513 g K-soli DAOC-G a kontinuálně udržováno pH na hodnotě 7,8 1 N roztokem NaOH po dobu 90 min. Po této době byly zesítěné buňky odstředěny na odstředivce Sharples. Bylo získáno 8,4 litrů čirého supernatantu, z kterého byla izolována 7-ADCK jak bude dále uvedeno.
Řídká buněčná pasta obsahující část zreagované reakční směsi z předcházejícího cyklu byla suspendována opět v 9 litrech vody a celý postup enzymové hydrolýzy čerstvého roztoku substrátu byl popsaným způsobem 5x opakován, přičemž v průběhu semikontinuálního použití byly před zahájením dalšího cyklu (po kontrole množství biomasy stanovením její sušiny) kompenzovány hmotnostní ztráty způsobené vlivem manipulace při odstřeďování, doplněním čerstvé zásobní zesítěné a nepoužité biomasy 20 gramů vl. hm. v třetím cyklu a 50 gramů vl. hm. v pátém semikontinuálním cyklu.
Z jednotlivých semikontinuálních cyklů byla ze supernatantu izolována 7-ADCK postupem uvedeným v příkladu 2 za použití předloženého vychlazeného benzinu v množství 3 litry/cyklus, zpracování supernatantu zreagované kapaliny, suspendace produktu po filtraci v 1 litru ledového acetonu a promytí ledovou vodou.
V 5 semikontinuálních cyklech bylo celkem získáno 1,25 kg produktu o obsahu 7-ADCK 96,9 %' a celkovém výtěžku 85,33 % teorie.

Claims (2)

1. Způsob enzymové výroby kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové vyznačující se tím, že se vodný roztok kyseliny 7-fenylacetamidodesacetoxycefalosporanové, s výhodou jejích solí, o koncentrací 0,05 až 10% hniota/objem, s výhodou 6% hmota/objem, s hodnotou pH 7,0 až 8,5, s výhodou pH 7,8, uvádí při teplotě 10 až 45 °C, s výhodou 37 °C, diskontinuálně, semikontinuálně nebo kontinuálně ve styk s biokatalyzátorem na bázi zesítěné a permeabilizované biomasy mikrobiálního producenta penicilinacylázy nebo na bázi agregovaných nebo navzájem chemicky vázaných buněk producenta tohoto enzymu, načež se po ukončené konverzi ze supernatantu, popříVYNÁLEZU pádě z matečného louhu po úpravě pH a teploty izoluje kyselina 7-aminodesacetoxycefalosporanová.
2. Způsob podle bodu 1 vyznačující se tím, že izolace kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové se provádí v rozmezí teplot —1 až +15 °C, v rozmezí hodnot pH 3,5 až 5,0, s výhodou +2 °C a pH 4,2, popřípadě v přítomnosti s vodou nemísitelných organických rozpouštědel, zejména benzinu nebo petroléteru a/nebo se vykrystalizovaný produkt suspenduje v organických rozpouštědlech mísitelných s vodou, s výhodou v etanolu či acetonu, nebo se oba způsoby kombinují.
CS658681A 1981-09-07 1981-09-07 Způsob enzymové výroby kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové CS218023B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS658681A CS218023B1 (cs) 1981-09-07 1981-09-07 Způsob enzymové výroby kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS658681A CS218023B1 (cs) 1981-09-07 1981-09-07 Způsob enzymové výroby kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS218023B1 true CS218023B1 (cs) 1983-02-25

Family

ID=5413266

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS658681A CS218023B1 (cs) 1981-09-07 1981-09-07 Způsob enzymové výroby kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS218023B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lagerlöf et al. [52] Production of 6-aminopenicillanic acid with immobilized Escherichia coli acylase
NO134546B (cs)
EP2173892B8 (en) Process for the preparation of immobilised recombinant Penicillin Acylase biocatalyst from Achromobacter sp CCM 4824 expressed in E. coli BL21 CCM 7394 and its use for the synthesis of beta-lactam antiobiotics
Sawant et al. Process development for 6-Aminopenicillanic acid production using lentikats-encapsulated Escherichia coli Cells expressing penicillin V acylase
SE409469B (sv) Forfarande for utforande av en enzymkatalyserad transformation av ett substrat
Sakai et al. Immobilization of chitinolytic enzymes and continuous production of N-acetylglucosamine with the immobilized enzymes
KR101505412B1 (ko) 7-메톡시-3-데스아세틸세팔로틴의 제조방법
US3843442A (en) Immobilized glucose isomerase
DK142373B (da) Fremgangsmåde til enzymatisk N-deacylering af 7beta-fenoxyacetamidocephalosporiner.
Okita et al. Covalent coupling of microorganisms to a cellulosic support
US3989597A (en) Aggregate of flocculated cells
US3989596A (en) Aggregate of dried flocculated cells
CS218023B1 (cs) Způsob enzymové výroby kyseliny 7-aminodesacetoxycefalosporanové
USRE29130E (en) Enzymatic process using immobilized microbial cells
EP0261836B1 (en) Immobilised enzyme preparation and its use
US3976546A (en) Cephalosporins
EP0638649B1 (en) New use of alcaligenes faecalis penicillin G acylase
CS207715B2 (en) Method of preparation of the 6-aminopenicillane acid
US4113941A (en) Process for purifying products obtained from enzymatic cleavage of beta-lactam antibiotics
US3161573A (en) Method for the production of 6-aminopenicillanic acid
Ačai et al. Biotransformation of cephalosporin C to 7-aminocephalosporanic acid with coimmobilized biocatalyst in a batch bioreactor: Part 1: Reaction kinetics and diffusion effects
KR830002697B1 (ko) 고정화 효소의 제조방법
CS201621B1 (cs) Způsob semikontinální výroby kyseliny 6-aminopenicilánové
WO1998056945A1 (en) PROCESS FOR ENZYMATICALLY PREPARING A β-LACTAM ANTIBIOTIC AND THIS ANTIBIOTIC
CN115851786A (zh) 一种编码青霉素g酰化酶的基因及表达的突变后青霉素g酰化酶在制备头孢氨苄中应用