CS201621B1 - Způsob semikontinální výroby kyseliny 6-aminopenicilánové - Google Patents
Způsob semikontinální výroby kyseliny 6-aminopenicilánové Download PDFInfo
- Publication number
- CS201621B1 CS201621B1 CS367977A CS367977A CS201621B1 CS 201621 B1 CS201621 B1 CS 201621B1 CS 367977 A CS367977 A CS 367977A CS 367977 A CS367977 A CS 367977A CS 201621 B1 CS201621 B1 CS 201621B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- penicillin
- solution
- cells
- liters
- benzylpenicillin
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 22
- NGHVIOIJCVXTGV-ALEPSDHESA-N 6-aminopenicillanic acid Chemical compound [O-]C(=O)[C@H]1C(C)(C)S[C@@H]2[C@H]([NH3+])C(=O)N21 NGHVIOIJCVXTGV-ALEPSDHESA-N 0.000 title claims description 10
- NGHVIOIJCVXTGV-UHFFFAOYSA-N 6beta-amino-penicillanic acid Natural products OC(=O)C1C(C)(C)SC2C(N)C(=O)N21 NGHVIOIJCVXTGV-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 9
- 238000010924 continuous production Methods 0.000 title claims description 6
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 claims description 40
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 claims description 25
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 claims description 20
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 18
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 claims description 15
- 230000007017 scission Effects 0.000 claims description 15
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 claims description 14
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 claims description 13
- 108010073038 Penicillin Amidase Proteins 0.000 claims description 12
- 229940056360 penicillin g Drugs 0.000 claims description 12
- 235000019371 penicillin G benzathine Nutrition 0.000 claims description 10
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims description 8
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 claims description 6
- IYNDLOXRXUOGIU-LQDWTQKMSA-M benzylpenicillin potassium Chemical compound [K+].N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C([O-])=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 IYNDLOXRXUOGIU-LQDWTQKMSA-M 0.000 claims description 5
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims description 5
- 150000002960 penicillins Chemical class 0.000 claims description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims description 5
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 3
- 238000001816 cooling Methods 0.000 claims description 3
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 claims description 2
- 230000029087 digestion Effects 0.000 claims description 2
- 239000012452 mother liquor Substances 0.000 claims description 2
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 239000011734 sodium Substances 0.000 claims description 2
- 239000002689 soil Substances 0.000 claims description 2
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 19
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 19
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 16
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 15
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 15
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 12
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 11
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 9
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 9
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 239000008367 deionised water Substances 0.000 description 8
- 229910021641 deionized water Inorganic materials 0.000 description 8
- WLJVXDMOQOGPHL-UHFFFAOYSA-N phenylacetic acid Chemical compound OC(=O)CC1=CC=CC=C1 WLJVXDMOQOGPHL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000000047 product Substances 0.000 description 6
- 239000003651 drinking water Substances 0.000 description 5
- 235000020188 drinking water Nutrition 0.000 description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 5
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 5
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 5
- DKPFZGUDAPQIHT-UHFFFAOYSA-N Butyl acetate Natural products CCCCOC(C)=O DKPFZGUDAPQIHT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 4
- FUZZWVXGSFPDMH-UHFFFAOYSA-N hexanoic acid Chemical compound CCCCCC(O)=O FUZZWVXGSFPDMH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229960003424 phenylacetic acid Drugs 0.000 description 4
- 239000003279 phenylacetic acid Substances 0.000 description 4
- 230000006641 stabilisation Effects 0.000 description 4
- 238000011105 stabilization Methods 0.000 description 4
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 4
- NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N Ammonium chloride Substances [NH4+].[Cl-] NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N Ammonium hydroxide Chemical compound [NH4+].[OH-] VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 206010057248 Cell death Diseases 0.000 description 3
- NTIZESTWPVYFNL-UHFFFAOYSA-N Methyl isobutyl ketone Chemical compound CC(C)CC(C)=O NTIZESTWPVYFNL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- UIHCLUNTQKBZGK-UHFFFAOYSA-N Methyl isobutyl ketone Natural products CCC(C)C(C)=O UIHCLUNTQKBZGK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 235000011114 ammonium hydroxide Nutrition 0.000 description 3
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 3
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 208000035404 Autolysis Diseases 0.000 description 2
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 2
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N Sulfuric acid Chemical compound OS(O)(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 description 2
- 230000001588 bifunctional effect Effects 0.000 description 2
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 2
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 2
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 2
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 2
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 2
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 2
- 230000003834 intracellular effect Effects 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 2
- 230000003252 repetitive effect Effects 0.000 description 2
- 230000028043 self proteolysis Effects 0.000 description 2
- VZGDMQKNWNREIO-UHFFFAOYSA-N tetrachloromethane Chemical compound ClC(Cl)(Cl)Cl VZGDMQKNWNREIO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- ZMANZCXQSJIPKH-UHFFFAOYSA-N Triethylamine Chemical group CCN(CC)CC ZMANZCXQSJIPKH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 1
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N ammonia Natural products N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 239000012237 artificial material Substances 0.000 description 1
- FCPVYOBCFFNJFS-LQDWTQKMSA-M benzylpenicillin sodium Chemical compound [Na+].N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C([O-])=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 FCPVYOBCFFNJFS-LQDWTQKMSA-M 0.000 description 1
- 150000001719 carbohydrate derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 239000012045 crude solution Substances 0.000 description 1
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- ATDGTVJJHBUTRL-UHFFFAOYSA-N cyanogen bromide Chemical compound BrC#N ATDGTVJJHBUTRL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 1
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- 230000007071 enzymatic hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006047 enzymatic hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 239000012065 filter cake Substances 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 238000000265 homogenisation Methods 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 239000005457 ice water Substances 0.000 description 1
- 238000009413 insulation Methods 0.000 description 1
- 238000002386 leaching Methods 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 239000011368 organic material Substances 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 230000020477 pH reduction Effects 0.000 description 1
- 230000001376 precipitating effect Effects 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 description 1
- 239000000080 wetting agent Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
Vynález se týká způsobu semikontinuální výroby kyseliny 6-aminopenicilánové, základního meziproduktu výroby řady klinicky užívaných polosyntetických penicilinů. Jak je známo, získává se kyselina 6-aminopenicilánová (dále pro stručnost 6-APK) chemickým nebo enzymovým štěpením penicilinu, především benzylipenicilinu, a to působením penieilinacylázy produkované různými mikroorganismy, nej častěji Escherichia coli (NSR pat. spis č. 1, 114. 766). Při dosavadních postupech jde téměř výhradně o jednorázové použití nativních buněk při vsádkovém způsobu štěpení penicilinu, což je jejich podstatnou nevýhodou. U nativních buněk je velmi omezená možnost jejich opakovaného použití. Nativní buňky podléhají autolýze, aktivní enzym penicilinacyláza — je z nich vyplavován a s ním i obsah buněk, zejména vnitrobuněčné rozpustné bílkoviny, které pak zčásti doprovázejí vzniklou 6-APK celým procesem izolace a kontaminují konečný produkt. Polosyntetické peniciliny, připravené z takto získané 6-APK, vyvolávají alergické reakce u člověka i zvířete. Rozklad nativních buněk je urychlován vysokou iontovou silou štěpeného roztoku penicilinu, resp. relativně vysokými hodnotami pH, při kterých enzymová hydrolýza probíhá (7,6 až 8,2). Vyplavená peničilináčylása je pak prů opakování enzymového procesu ztracena. V praxi to znamená, že nativní buňky lze použít pouze jednorázově, že je nutno připravovat je vždy novou kultivací v živné půdě, jejíž zbytky se nedají při separaci buněk zcela odstranit. Tyto zbytky přispívají ke kontaminaci konečného produktu, popřípadě komplikují volbu vhodného izolačního postupu 6-APK.
Určitý pokrok představuje příprava 6-APK štěpením penicilinu pomocí penicilinacylázy vázané. Pro vazbu tohoto enzymu na nejrůznější anorganické i umělé organické materiály se užívá čištěných preparátů získaných z buněk mikroorganismů relativně drahými, složitými a hlavně ztrátovými postupy. Tak například v čs. patentu č. 145849 je uveden způsob čištění penicilinacylázy a její vazby na nosič, spočívající v kultivaci buněk E. coli a separaci biomasy, v jejím mechanickém drcení a opakované extrakci enzymu, frakčním srážením koncentrátu, jeho dialýze a případné lyofilizací enzymu. Tato mnohostupňová příprava končí se ziskem asi 30 % původního množství enzymu, o čistotě surového preparátu asi 10%, vztaženo na čistou penicilinacylázu. Takto získaný technický preparát enzymu pak slouží k vazbě na nosič typu póly sacharidových derivátů, po jeho předchozí chemické aktivaci bromkyanem.
Nosiče tohoto a podobných typů jsou však velice drahé přípravky, které zvyšují náklady na vázaný enzym do té míry, že jen asi 200násobné použití vázaného enzymu ve srovnání s jednorázovým použitím nativních buněk je efektivnější. Možnost mnohonásobného použití vázaného enzymu není vždy dána, zejména pracuj e-li se vsádkově v reaktoru za míchání, které působí na vázaný enzym silnými mechanickými vlivy. Umělé materiály s vyšší mechanickou pevností mívají opět nevýhodu v omezené difuzní rychlosti a proces hydrolýzy penicilinu se zpomaluje. Vázaný enzym se při častém opakovaném použití dříve nebo později denaturuje, zvláště tehdy, když se pro hydrolýzu užívá levnějších roztoků surového penicilinu, získávaných při jeho izolaci z vyfermentované kultivační kapaliny.
Bylo zjištěno, že zvláště vysokou produktivitu, výtěžnost a hospodárnost vykazuje způsob semikontinuální výroby kyseliny 6aminopenicilánové štěpením penicilinů, zejména benzylpenicilinu, mikrobiálními buňkami obsahujícími penicilinacylázu, zejména buňkami mikroorganismu Escherichia coli, podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že se štěpení provádí s použitím suspenze mikrobiálních buněk, obsahujících penicilinacylázu, předem chemicky stabilizovaných působením bifunkčního činidla, jako jsou dialdehydy, s výhodou působením glutardialdehydu, a s použitím roztoku penicilinu v koncentraci 1 až 10 % hmot. (objem, s výhodou 4 až 7 % hmot.) objem, při pH 7,2 až 8,2, po ukončeném štěpení a ochlazení reakční směsi na teplotu 0 až 5 °C se suspenze mikrobiálních buněk oddělí a použije ke štěpení čerstvé násady roztoku penicilinu a ze supernatantu, popřípadě z matečného, louhu se po úpravě pH a teploty izoluje 6-aminopenicilánová kyselina, přičemž se štěpení penicilinu a izolace 6-aminopenicilánové kyseliny alespoň dvakrát opakuje.
Na enzymové štěpení způsobem podle vynálezu se účelně používá jako roztoku penicilinu roztoku sodné nebo draselné soli benzylpenicilinu, popřípadě surového roztoku benzylpenicilinu ve formě kyseliny, získávaného při zpracovávání vyfermentované půdy po ukončené kultivaci.
Zásadní význam pro optimální průběh enzymového štěpení penicilinu způsobem podle vynálezu má stabilizace buněk mikroorganismu, zejména Escherichia coli; zvláště výhodné je použití kmenů s vysokým obsahem penicilinacylázy. Stabilizace buněk, resp. jejich vnitrobuněěného obsahu spolu s penicilinacy'lázou, se dosáhne kovalentním zesítěním působením vhodných bifunkóních činidel, s výhodou glutardialdehydem. Touto stabilizací, což je jednoduše realizovatelná reakce, se získá odolnost buněk proti autolýze a fixace penicilinacylázy v buňkách, bez významné ztráty jejich hydrolytické aktivity. Stabilizované buněčné suspenze lze opakovaně používat ke štěpení penicilinu, přičemž pokles účinnosti je mírný a pomalý. Aktivitu zesítěných buněk lze ještě zvýšit ošetřením vhodným organickým rozpouštědlem a vhodným smáčedlem, což má za následek vyplavení nezreagovaných buněčných komponent, především lipidů, které se neúčastní reakce s glutardialdehydem a tím k vyprání buněk a zlepšení jejich difuzních vlastností. Je-li k dispozici kmen s vysokým obsahem penicilinacylázy, lze za vhodných podmínek používat koncentrovanějšího roztoku penicilinu než dosud, přičemž konverze probíhá velmi rychle, v průběhu 2 až 3 hodin, s vysokým výtěžkem velmi čisté 6-aminopenicilánové kyseliny.
Při provedení způsobu semikontinuální výroby 6-aminopenicilánové kyseliny se po prvním štěpení roztoku penicilinu, obvykle v koncentraci 5 až 7 % hmot. (objem, jež probíhá obvyklým postupem za intenzivního míchání, regulace pH a teploty, se chemicky stabilizované buňky oddělí, nejlépe odstředěním, bez jakékoliv další úpravy se přes ně přelije čerstvý roztok penicilinu a probíhá další cyklus enzymové hydrolýzy za stejných podmínek. Tento postup lze mnohonásobně opakovat. Manipulační ztráty buněčné suspenze, vznikající především při odstřeďování, se nahrazují obvykle po pěti cyklech štěpení, doplněním suspenzí zásobních stabilizovaných buněk.
Mimo výhodné možnosti opakovaného používání chemicky stabilizovaných buněk je předností způsobu podle vynálezu jeho rychlost, neboť není nutno dbát na úplnou separaci buněčné hmoty do f ormy pasty a stabilizované buňky není třeba promývat. Zbytkový objem reakční směsi po hydrolýze, který zůstává v sedimentu, se s ním ihned vrací do procesu při zahájení druhého a dalšího cyklu hydrolýzy. Dřívější jednorázový postup se tak mění na opakovaný semikontinuální způsob, kdy po každých 3 hodinách se cyklus opakuje. Supematant rezultující po oddělení stabilizované buněčné suspenze se ihned zpracovává na krystalickou 6-APK, a to buď přímou úpravou pH a teploty nebo po zahuštění. Významné množství produktu lze získat i ze zahuštěných matečných louhů po odstranění fenyloctové kyseliny obvyklým způsobem.
Významné je dále i to, že 6-APK, získaná způsobem podle vynálezu, je podstatně čistší než produkty získávané jednorázovým postupem při použití nativních nestabilizovaných buněk, které se v průběhu štěpení částečně autolyzují a kontaminují 6-APK zplodinami svého rozpadu, především bílkovinami, které provázejí 6-APK v průběhu celé izolace, přičemž jejich dokonalé odstranění je velice obtížné a nákladné. Produkty získané štěpením pomocí chemicky stabilizovaných buněk není třeba pro další použití krystalovat a též jejich rozpustnost, je lepší.
Z uvedeného je zřejmý technický i ekonomický efekt při výrobě základního meziproduktu pro přípravu řady terapeuticky významných polosyntetickýoh penicilinů.
Způsob podle vynálezu je podrobně popsán v následujících příkladech provedení.
Příklad 1
Kultura vysokoprodukóní mutanty kmene Escherichia coli CCM 2843, vypěstovaná v 5 t fermentačním tanku, byla zahuštěna odstředěním na objem asi 300 litrů. Zahuštěná suspenze nativních buněk obsahovala asi 400 mg vlhké hmoty/ml. Tato suspenze byla mícháním zhomogenizována za úpravy pH na hodnotu 7,5 50%ním roztokem hydroxidu sodného. Poté byl za míchání přidán 50%ní vodný roztok glutardialdehydu do výsledné koncentrace v reakční směsi 2 % (hmotnost/ objem). Reakce probíhala 3 hodiny při teplotě 20 až 25 °C. Potom byla reakční směs zředěna 3000 litry pitné vody a suspenze opět odstředěním zahuštěna na objem 300 litrů.
Takto připravená suspenze chemicky stabilizovaných buněk byla použita pro hydrolýzu penicilinu na 6-APK, a to tak, že byla převedena do reaktoru a za míchání zředěna 2100 litry deionizované vody, takže obsahovala přibližně 80 mg vlhké hmoty buněk/ml, tj. přibližně 8 % obj. sedimentu. Teplota suspenze byla nastavena na 37 °C a byla přidána draselná sůl benzylpenicilinu do výsledné koncentrace 7 % (hmotnost/objem).
Enzymová hydrolýza probíhala za míchání při teplotě 37 °C, za kontinuálního udržování pH na hodnotě 7,6 až 8,2 přídavkem zředěného vodného roztoku čpavku. Po 2 hodinách byla enzymová hydrolýza skončena, což se projevilo jak zastavením spotřeby roztoku čpavku tak analyticky zjištěnou hodnotou přeměny benzylpenicilinu na 6-APK (95 % teorie 6-APK za 2 hodiny). Reakční rychlost a výtěžek 6-APK byl sledován spektrofotometricky podle čs. patentu č. 116959.
Po ukončení hydrolýzy byla reakční směs ihned ochlazena na teplotu 0 až —5 °C a suspenze buněk byla odstředěním zahuštěna na 1/9 původního objemu o oddělena od reakční směsi. Supematant o teplotě kolem 2 °C byl koncentrovanou kyselinou chlorovodíkovou okyslen, na pH 4,2, čímž se vyloučila krystalická 6-APK, která byla oddělena filtrací. Filtrát byl okyselen koncentrovanou kyselinou chlorovodíkovou na pH 2,0 a extrahován 30 % (objemovými) chloridu uhličitého. Vodná fáze byla neutralizována na hodnotu pH 7,0 koncentrovaným roztokem čpavku a vakuově azeotropicky zahuštěna při teplotě 35 0 na 1/3 objemu. Poté bylo pH upraveno na hodnotu 4,2 koncentrovanou kyselinou chlorovodíkovou za chlazení na teplotu 0 °C. Vykrystalovaná 6-APK byla odfiltrována. Z extraktu byla regenerována kyselina fenyloctová.
Zahuštěna suspenze buněk byla ihned převedena do dalšího reaktoru, opět zředěna na objem 2400 litrů a za výše popsahých podmínek proveden opakovaný cyklus enzymové hydrolýzy benzylpenicilinu. Uvedeným způsobem bylo semikontinuální štěpení benzylpenicilinu opakováno se stejnou suspenzí buneh 12kral, beZe ztiřál na výtěžnosti hydrolýzy a izolace 6-APK,
Příklad 2
Spojené zahuštěné suspenze nativních buněk E. coli ze dvou 5 t fermetačních tanků, o objemu 600 litrů, byly odstředěny do formy . buněčné pasty, čímž byly odděleny zbytky živné půdy. Buněčná pasta byla suspendována v 1000 litrech deionizované vody a za míchání homogenizována, takže obsahovala 300 mg vlhké hmoty nativních buněk/ml. Za míchání bylo upraveno pH této suspenze na hodnotu 7,0. přídavkem 50%ního (hmotnost/ objem) roztoku hydroxidu sodného a potom přidán 25%ní vodný roztok glutardialdehydu v takovém množství, aby jeho výsledná koncentrace v reakční směsi činila 1% (hmotnost/ objem). Reakce probíhala 3 hodiny při teplotě 25 °C. Po této době byla reakční směs zředěna 4000 litry deionizované vody á zahuštěna na objem 400 litrů.
Takto připravená suspenze chemicky stabilizovaných buněk byla přečerpána do reaktoru, za míchání zředěna 3600 litry deionizované vody a zhomogenizována, takže obsahovala přibližně 60 mg vlhké hmoty buněk/ml, tj. 6% obj. sedimentu. S touto buněčnou suspenzí bylo provedeno 25 cyklů konverzní 4%ního (hmotnost/objem) roztoku sodné soli benzylpenicilinu na 6-APK semikontinuálním způsobem za dobu 125 hodin za stejných podmínek jako v příkladu 1. Po každém pátém cyklu použití byla v případě potřeby reakční směs doplněna zásobní suspenzí chemicky stabilizovaných buněk, čímž byly nahrazeny manipulační ztráty.
Po oddělení buněk byl supematant zpracován na 6-APK tak, že po okyselení na pH 2,0 byl extrahován butylacetátem, vodná fáze byla alkalizována na pH 7,5 a vakuově zahuštěna na 1/2 původního objemu při teplotě 40 °C. Po ochlazení na 0 °C a okyselení na pH 4,2 se vyloučila krystalická 6-APK, která byla odfiltrována a promyta ledovou vodou a acetonem. Z extraktu byla regenerována kyselina fenyloctová obvyklým způsobem.
Průměrná analyticky zjištěná hodnota přeměny benzylpenicilinu na 6-APK činila 90% teorie za 2,5 hodiny, průměrný výtěžek suché 6-APK činil 84,5 % teorie.
Příklad 3
000 litrů kultury kmene Escherichia coli CCM 2843, vypěstované v 15 t fermentačním tanku obsahující přibližně 500 kg vlhké hmoty buněk (120 kg suché hmoty buněk) bylo zahuštěno na objem 1000 litrů pomocí sedimentačních odstředivek. Zahuštěná suspenze buněk byla homogenizována za úpravy pH 25%ním roztokem hydroxidu sodného na hodnotu 7,0. Za stálého míchání při teplotě 25 °C bylo přidáno 40 litrů 25%ního vodného roztoku glutardialdehydu. Reakce probíhala za míchání 3 hodiny při teplotě 25 °C. Směs byla zředěna pilnou vodou na objem 3500 litrů a dále míchána po dobu 15 minut. Reakční směs byla opět zahuštěna na sedimentačních odstředivkách.
400 litrů takto zesítěné buněčné biomasy bylo zředěno pitnou vodou na celkový objem 500 litrů a přidáno 50 litrů butylacetátu. Suspenze byla míchána po dobu 5 hodin při teplotě 25 °C. Po této době byl přidán roztok 10 kg Slovafolu 909 a dále mícháno ještě 15 minut. Po této době byla suspenze zředěna pitnou vodou na celkový objem 4000 litrů a odseparována na sedimentačních odstředivkách. Vypraná buněčná pasta byla suspendována v nádrži s intenzivním mícháním v 3500 litrech pitné vody a po homogenizaci dále míchána po dobu 30 minut. Po této době byla suspenze zahuštěna pomocí sedimentačních odstředivek na celkový objem 400 litrů. Zahuštěná suspenze byla opět přečerpána do míchané nádoby, zředěna na celkový objem 3500 litrů pitnou vodou a zahuštění zesítěných a vypraných buněk z míchané suspenze bylo opakováno ještě jednou popsaným způsobem opět na objem 400 litrů.
Z celkového množství 500 kg vlhké hmoty (120 kg suché hmoty) nativních buněk E. coli bylo popsaným procesem sítění, praní a pro-, mývání získáno 350 kg vlhké hmoty (84 kg suché hmoty) chemicky stabilizovaných buněk, což jest v hmotnostní bilanci 70%ní výtěžek.
300 litrů takto připravené zahuštěné suspenze chemicky stabilizovaných buněk bylo přečerpáno do reaktoru, zředěno na celkový objem 4000 litrů deionizovanou vodou a homogenizováno mícháním. Po rozmíchání činila koncentrace zesítěných buněk 60 mg vlhké hmoty/ml, tj. 17 až 20 mg suché hmoty/ml. Teplota suspenze byla nastavena na 37 °C a byla přidána draselná sůl benzylpenicilinu do výsledné koncentrace 6,5 % (hmotnost/objem), tj. 414 miliard jednotek (268 kg). Enzymová hydrolýza probíhala 2 hodiny za podmínek uvedených v příkladu 1.
Po ukončení hydrolýzy byly chemicky stabilizované buňky pomocí sedimentačních odstředivek zahuštěny na celkový objem 400 litrů a zahuštěná suspenze buněk ochlazena rua 5 °C. Čirá reakční směs po oddělení stabilizovaných buněk byla přečerpána do nádrží, zředěna přidáním 800 litrů metylizobutylketonu, promíchána, ochlazena na 2 °C a reakční směs okyselena na hodnotu pH 4,2 40%ním roztokem (hmotnost/objem) kyseliny sírové. Potom byla směs ponechána 3 až 4 hodiny krystalovat, pak byla zfiltrována, filtrační koláč prokryt 10 litry ledové deionizované vody, krystaly vyjmuty a suspendovány ve 120 litrech ledové deionizované vody a opět zfiltrovány. Potom byl produkt prokryt 10 litry zchlazeného acetonu, vyjmut a suspendován ve 120 litrech zchlazeného acetonu a znovu žfiltrován. Z filtrátu byla regenerována kyselina fenyloctová a metylizobutylketon.
400 litrů zahuštěné suspenze buněk ve zbytku reakční směsi z předcházejícího cyklu enzymové hydrolýzy bylo po 4 hodinách stání při 5 °C přečerpáno zpět do reaktoru, zředěno na objem 4000 litrů deionizovanou vodou a za výše popsaných podmínek proveden opakovaný cyklus enzymové hydrolýzy benzylpenicilinu.
Uvedeným způsobem bylo semikontinuální štěpení benzylpenicilinu na 6-APK opakováno se stejnou suspenzí chemicky stabilizovaných buněk 5krát s časovou prodlevou mezi započetím jednoho a skončením druhého cyklu 6 hodin, při dosažení průměrného stupně konverze uvedené koncentrace benzylpenicilinu na 6-APK 93 % a průměrného výtěžku 6-APK v izolaci 80 % teorie bez zpracování matečných louhů. Kvalita produktu byla posuzována z hlediska 4 kriterií a to čistoty (98,8 %), nerozpustného zbytku trietylaminové soli v diehlormetanu (2,18 %), vlhkosti (0,9 °/o) a tintometrickým měřením barevnosti (0,1/0,1).
Příklad 4
Zahuštění buněk E. coli po kultivaci v 151 fermentoru a jejich chemická stabilizace byla provedena jak je uvedeno v příkladu 3. Praní a promývání stabilizovaných buněk bylo provedeno rovněž stejným způsobem jak je uvedeno v příkladu 3 s tím rozdílem, že místo butylacetátu bylo použito toluenu a místo Slovafolu 909, Slovafolu 910 ve stejných koncentracích.
Semikontinuální hydrolýza 6,5%ního roztoku draselné soli benzylpenicilinu byla provedena rovněž stejným způsobem jak je uvedeno ,v příkladu 3, avšak s tím rozdílem, že bylo provedeno 15 opakovaných cyklů hydrolýzy, přičemž před zahájením pátého, desátého a čtrnáctého cyklu bylo přidáno vždy 27 litrů zahuštěné zásobní suspenze chemicky stabilizovaných buněk, čímž byly nahrazeny manipulační ztráty.
Izolační postup 6-APK byl rovněž stejný jak je uvedeno v příkladu 3 s tím rozdílem, že místo metylizobutylketonu bylo použito 1500 litrů butylacetátu.
Průměrný stupeň konverze 15 semikontinuálních cýkhi štěpení byl 92 %, průměrný výtěžek 6-APK v izolaci 81,6 % teorie bez zpracování matečných louhů. Kvalita 6-APK byla podobná jak je uvedeno v příkladu 3 s tím rozdílem, že průměrná hodnota nerozpustného zbytku činila 4,8 %.
Claims (3)
1. Způsob semikontinuální výroby kyseliny 6-aminopenieilánové štěpením penicilinů, zejména benzylpenicilinu, mikrobiálními buňkami obsahujícími penicilinacylázu, zejména buňkami mikroorganismu Escherjchia coli, vyznačující se tím, že se štěpení provádí s použitím suspenze mikrobiálních buněk, obsahujících penicilinacylázu, předem chemicky stabilizovaných působením bifunkčního činidla, jako jsou dialdehydy, s výhodou působením glutardialdehydu, a s použitím roztoku penicilinu v koncentraci 1 až 10 % hmotnost/objem, s výhodou 4 až 7 % hmotnost/objem, při pH 7,2 až 8,2 po . ukončeném štěpení a ochlazení reakčni směsi na teplotu 0 až 5 °C se suspenze mikrobiálních buněk oddělí, použije ke štěpení čerstvé násady roztoku penicilinu a ze supematantu, popřípadě matečného louhu se po úpravě pH a teploty izoluje 6-aminopenicilánová kyselina, přičemž se štěpení penicilinu a izolace 6-aminopenicilánové kyseliny alespoň dvakrát opakuje.
2. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že se jako roztoku penicilinu používá roztoku sodné nebo draselné soli benzylpenicilinu.
3. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že se jako roztoku penicilinu používá surového roztoku benzylpenicilinu ve formě kyseliny, získaného při zpracování vyfermentované půdy po ukončené kultivaci.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS367977A CS201621B1 (cs) | 1977-06-03 | 1977-06-03 | Způsob semikontinální výroby kyseliny 6-aminopenicilánové |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS367977A CS201621B1 (cs) | 1977-06-03 | 1977-06-03 | Způsob semikontinální výroby kyseliny 6-aminopenicilánové |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS201621B1 true CS201621B1 (cs) | 1980-11-28 |
Family
ID=5377552
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS367977A CS201621B1 (cs) | 1977-06-03 | 1977-06-03 | Způsob semikontinální výroby kyseliny 6-aminopenicilánové |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS201621B1 (cs) |
-
1977
- 1977-06-03 CS CS367977A patent/CS201621B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US3389133A (en) | Process for isolating and purifying soluble ribonucleic acid | |
| EP0166427B1 (en) | Stable glucose isomerase concentrate and a process for the preparation thereof | |
| US3436310A (en) | Hydrolysis of the acetoxymethyl group at the 3-position of the cephalosporin nucleus | |
| PL170842B1 (pl) | Sposób wytwarzania antybiotyków ß -laktamowych PL PL PL | |
| DE2232645C3 (de) | Verfahren zur Durchführung einer enzymkatalysierten Umwandlung eines Substrats | |
| SU1024014A3 (ru) | Способ получени ферментного препарата глюкоизомеразы | |
| US2821501A (en) | Recovery of starch | |
| EP0173215A2 (en) | Method for recovering purified growth hormones from genetically engineered microorganisms | |
| US3431176A (en) | Preparation of uricase | |
| CS201621B1 (cs) | Způsob semikontinální výroby kyseliny 6-aminopenicilánové | |
| US3736231A (en) | Preparation of insolubilized enzymes | |
| CN112384630B (zh) | 一种磷脂酰丝氨酸酶催化生产中抗黏性的方法以及用其生产磷脂酰丝氨酸的方法 | |
| IL44196A (en) | Stabilized glucose preparation - isomerase | |
| PL90477B1 (cs) | ||
| DE1966427C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von 6-AminopenicUlansäure | |
| US5905034A (en) | Method for precipitating natural avermectins | |
| KR940000810B1 (ko) | 결정상태의 글루타민산을 제조하는 방법 | |
| KR900005773B1 (ko) | L-트립토판의 제조방법 및 안정한 효소 수용액의 제조방법 | |
| US3161573A (en) | Method for the production of 6-aminopenicillanic acid | |
| US2703779A (en) | Method of preparing stable watersoluble catalase of high potency | |
| US2695861A (en) | Preparation of insulin | |
| KR880001120B1 (ko) | 엘라스타제의 정제 방법(Elastase의 精製方法) | |
| RU2269913C1 (ru) | Способ получения хитина | |
| Giacobbe et al. | Production of 6APA in the penicillin G fermentation plant by using fiber-entrapped penicillin amidase | |
| JPH0833493A (ja) | L−アスパラギン酸の製造方法 |