CS213847B1 - ) Inaktivovaná absorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu - Google Patents

) Inaktivovaná absorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu Download PDF

Info

Publication number
CS213847B1
CS213847B1 CS29580A CS29580A CS213847B1 CS 213847 B1 CS213847 B1 CS 213847B1 CS 29580 A CS29580 A CS 29580A CS 29580 A CS29580 A CS 29580A CS 213847 B1 CS213847 B1 CS 213847B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
vaccine
infectious bovine
inactivated
moraxella bovis
vaccine against
Prior art date
Application number
CS29580A
Other languages
English (en)
Inventor
Vladimir Simon
Pavla Horavova
Josef Krejci
Original Assignee
Vladimir Simon
Pavla Horavova
Josef Krejci
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vladimir Simon, Pavla Horavova, Josef Krejci filed Critical Vladimir Simon
Priority to CS29580A priority Critical patent/CS213847B1/cs
Publication of CS213847B1 publication Critical patent/CS213847B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Vynález řeší aktivní ochranu skotu vakcínou proti onnmocnění infekční keratokonjunktivítidou, které je vyvoláno bakterií Moraxella bovis.
Pokusy o tlumení infekční keratokonjunktivitidy skotu imunoprofylaktickými opatřeními byly založeny na pozorování, že telata dříve onemocnělá infekční keratokonjunktivitidou skotu vzdorovala infekce homologními kmeny Moraxella bovia (HUGHES, D.E. - PUGH, G.W. - McDONALD, Τ.Ϊ.: Experimental bovine infectious keratoconjunctivitis cauaed by aunlamp irradiation and Moraxella bovis infection: Resistence to re-exposure with homologous and heterologous Moraxella bovis. Am. J. vet. Res., 29, 1968, s«829 - 833). Později bylo pokusně zkoušeno několik druhů očkovacích létek. Poměrně příznivých výsledků bylo dosaženo, použilo-li se k očkování živé kultury Moraxella bovis (HUGHES, D.E. - FUGH, G.W.: Experimentally induced bovine infeetious keratoconjunctivitis: Effectiveness of intramuscular vaccination with viable Moraxella bovis cultura. Am. J„vet.Res., 32, 1971, s. 879 - 886.) Dále bylo ověřeno, že částečnou protekč ní účinnost lze dosáhnout i vakcínou inaktivovanou formaldehydem. Přitom byl stanoven též optimální interval mezi vakcinacemi v délce 14 dní (HUGHES, D.E. - PUGH, G.W.: Experimentally induced infectious bovine keratoconjunctivitis: Relationship of vaccination schedule to protection against exporuse with homologous Moraxella bovie culture. Am.J.vet.Res., 36, 1975 , 9. 263 265.)
213 847
V Brazílii byly proti infekční keratokonjunktivitidě skotu zkoušeny živé vakcíny, připravené jednak z jednotlivých kmenů Moroxella bovis, jednak z jejich kombinací. Dobré protekce bylo dosaženo tehdy, bylo-li k infekci užito homologního kmene. Užilo-li ae kmenů heterologních, byla protekce velmi variabilní (BAPTISTA, P.J.H.P.: Querato - conjuntivite infecciosa dos bovinos: (I) Resistencia de bovinos vacinados com culturas vivfiB a agresaao experimental com amostras homologa e heterologa de Moraxella bovis. (II) Etiologia. (III) Imunologia.
Bol. Inst. Pesquisas vet. “Desidério Pinamor, 3, 1975, s. 5 - 35.) V USA ve státě Qregon bylo užito k tlumení infekční keratokonjunktivitidy skotu podobně s dobrým výsledkem autogenní vakcíny připravené z kultury Moraxella bovis izolované z čerstvého případu onemocněni (STOREY, R.C. - STODDARD, P. - BARGER, R.: An autogenous vaccine in succesfUl treatment of infectious keratitis in cattle. Vet, Med. small.Anim.Clin., 72, 1977, s. 1050-1051.) Přes některé dobré výsledky vakcíny s obsahem jak živých, tak umrtvených bakterií Moraxella bovis, poskytovaly jen částečnou ochranu před onemocněním. Později byla vyzkoušena další vakoína obsahující koncentrát fimbrií Moraxella bovis rozbitých ultrazvukem a suspendovaných ve vodě nebo v oleji. Telata očkovaná fimbiovou vakcínou s oléjovým adjuvans měla ochrannou imunitu proti infekci homologním kmenem Moraxella bovis (PUGH, G.W. - HUDGES, D.S. - BOOTH, G.D.í Experimentally induced infectious bovine keratoconjunctivitis: Effectivenees of a pilus vaccine against exposure to homologous strains of Moraxella bovis. Am. J.vet.Res., 38,
1977, s. 1519 — 1522.) Pokusy zvýšit ochrannou protilétkovou odpověd vakcínou obohacenou inkompletním Freundovým adjuvans (HUGHES, D.E. - PUGH, G.W. - BOOTH, G.D.: Induced infectious bovine keratoconjunctiivitis: Vaccination with whole cell bacetrins of Moraxella bovis mixed with Freunds incomplete adjuvant. Am.J.vet.Res., 38,1977, a. 1905 — 1907.) nebo vakcínou s Mycobacterium paratuberculosis se nesetkaly s úspěchem (PUGH, G.W. - McDONALD, T.J. LARSEN, A.B.: Experimentally induced infectious bovine keratoconjunctivitis: Potentation of a MCraxella bovis pilus vaccine a immunogenicity by vaccination with Mycobacterium paratuberculosis bacterin. Am.J.vet.Res., 39,1978, s.1656-1661.) 0 odlišném typu vakcíny proti infekční keratokonjunktivitidě skotu bylo referováno z Uruquaye. Obsahovala autolyaovaná kultury Moraxella bovis, Staphylococcus aureus & Corynebacterium pyogenea, byla inaktivována formaldehydem a jako adjuvans byl přidán hydroxid hlinitý. Vakcína měla velmi dobrý ochranný i léčebný efekt (QUINONES SOWERBY, C.A.: Nueva vacuna confra la queratoconjunctivitie de los bovinos. Vet. Uruqay, 5, 1978, a. 27 - 34.) Podobného složení je vakcína francouzské provenience KÉRABOV, vyráběná firmou IFFA Mérieux. Informace o její ochranné účinnosti v našich chovech skotu se různí. Dobré výsledky byly zaznamenány při léčbě infekční keratokonjunktivltidy skotu. Lze léčit bud lokálně (FLEMING, G.A.: Bobine infectious keratoconjunctivitia. Vet. Rec., 97, 1975, s. 486.), nebo celkově, a doporučuje ae oba způsoby léčby kombinovat (PUGH, G.W. - McDonald, T.J·: Infectious bovine keratoconjunctivitis: Treatment of Moraxella bovis infections with antibiotica. 81 at Annual Meeting of the United States Animal Health Association, Mlnneapolis, Minnesota.) Při tlumení infekční keratokonjunktivitidy byla rovněž porovnávána účinnost léčby a vakcinace a zjistilo se, že léčllo-li se stádo Skota očním furazolidovým sprayem každý týden od května do srpna, omezila se incidence onemocnění více než vakcinací autogenním bakterínem Moraxella bovis umrtveným formaldehydem (HUGHES, D.E.
213 847
- KOHLMEIER, R.H. - PUGHj G.W.: Comparison of váccination and treatment in controlling naturaly occurring infectioua bovine keratoconjunctivitis. Am. J.vet.Res., 40, 1979, s.
241 - 244*) Tlumení infekční keratokonjunktivitidy skotu léčbou je však pracné a v podmínkách velkochovů a pastevního odchovu skotu neproveditelné. Schůdnější cestou je imunizace účinnou vakcínou připravenou z homologních, plně virulentních kmenů Moraxella bovis.
Narůstající problém infekční keratokonjunktivitidy skotu vedl k vyvinutí vakcíny, jejíž dobrá protekční účinnost byla v pokusech ověřena (ŠIMON, V. - HOŘAVOVÁ, P. - KREJČÍ, 3·· Imunoprofylaxe infekční keratokonjunktivitidy skotu. (Výzkumné zpráva) Brno, Výzkumný ústav veterinárního lékařství 1979. 20s. . ?
Byla vynalezena inaktivovaná adsorbátové vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu, která má nahradit vakcínu francouzské provenience KÉRABOV, v našich podmínkách nedostatečně účinnou* o *10
Podstatou vakclny je, že obsahuje suspenzi bakterií Moraxella bovis o počtu 10 až 10 GFU/l ml v množství 30 až 50 objemových %, suspenzí fimbrií téhož bakteriálního kmene o densitě dané propustností do 80 % při vlnové délce 540 nm v množství 30 až 50 objemových % a zby tek do 100 % objemových % tvoří adjuvans a inaktivační činidlo.
Vysoké ochranné účinnosti vakclny je dosahováno vlastnostmi vybraného bakteriálního kmene, plně virulentního, který kromě hemolytického a dermonekrotického toxinu tvoří fimbrie, které jsou rozhodujícím znekem patogenity a virulence kmenů Moraxella bovis. Účinnost vakcíny byla ověřena ve dvou za aebou následujících pokusech. Při prvním pokusu bylo zařazeno do vakcinované skupiny 37 a do kontrolní 49 telat. Po experimentální ipfekci provedené za 27 dní po posledním očkování byl ve skupině vakcinovaných telat nalezen pouze jeden případ nepatrné jizvy rohovky. V kontrolní skupině neočkovaných telat bylo zjištěno 10 případů, 38,8 % keratitid různého stupně, V druhém pokusu bylo zařazeno do vakcinované skupiny 19 a do kontrolní 42 telat. Po experimentální infekci provedené za 28 dní po posledním očkování bylo zjištěno onemocnění keratitidou pouze u jednoho telete, tj. 5,3 %· V kontrolní skupině neočkovaných telat bylo diagnostikováno 10 případů keratitid, tj. 23,8 %, Rozdíl v počtu onemocnělých kusů je významný na hladinu významnosti p - 0,05.
Vakcína se připravuje z bakteriálního kmene Moraxella bovis, který má tyto vlastnosti: gramnegativní krátké silnější tyčinky, hemolytické, nepohyblivé, neredukující nitráty v nitrity, neprodukující indol, nefermentující uhlohydráty, s proteolytickou schopností, s pozitivním oxidásovým testem, v lakmusovém mléce tvořící tři ohraničené zóny - horní zóna temně modrá, střední zóna tvořená kaselnem levandulové barvy, spodní zóna z koagulovaného kaseinu, nerostoucí na Simonsově citrétovém médiu. Na agarovém médiu s 5 - 10 % ovčí krve roste v lesk lých, šedě bílých konvexních koloniích, ostrých krajů, o průměru 1-3 mm, mírně vtlačených do média. Kultury izolované z patologického materiálu, které nebyly vícekrát pasážovány na krevním agaru, tvoří pevné, adherující kolonie, ve fyziologickém roztoku artoaglutinující. Příčinou autoagiutinability je tvorba fimbrií. Kmeny moraxella bovis z různých lokalit jsou antigennš rozdílné.
Příklad provedení:
Vakcína obsahuje:
213 847
Příklad provedeni:
Vakcína obsahuje:
suspenzi bakterií Moraxella bovis o počtu 10$ CFU/1 ml ..... 40 objemových % suspenzí fimbrií' o densitě dané propustností 80 % při vlnové délce 540 π» ..... 40 objemových % sterilní gel hydroxidu hlinitého ' ..... 19,6 % formaldehyd ..... 0,4 %
Suspenze bakterií se zpravidla získává smytím nárůstu s povrchu krevního agaru pomocí fyziologického roztoku, agarové plotna o průměru 10 cm se smývá 2 ml sterilního fyziologického roztoku.
Fimbrie se získávají homogenizací bakteriální suspenze 20 minut při 10 000 otáčkách ze minutu za stálého ochlazování. Homogenizát se eentrifuguje 60 minut při 6000 ot./min. za teploty 3-5 °C. Fimbrie v supernatantu ae precipitují při 4 °C po dobu 18 - 24 hod. po přidání chloridu hořečnatého do koncentrace 0,1 mol/l. Precipitované fimbrie se centrifUgují při 6000 ot./min. po dobu 60 minut. Sediment se rozpustí v šestkrát menším objemu sterilní destilované vody, než byl původní objem bakteriální suspenze. Suspenze fimbrií se upraví na denzitu o propustnosti 80 % při 540 m. Vyšší propustnost fimbriové suspenze je možná, ale výrobně zbytečně nákladná.
Bakteriální suspenze se kontroluje na přítomnost fimbrií buá elektronopticky, nebo hemaglutinační zkouškou tSAKDHU, T.S. - WHITE, F.K. - SIMPSON, C.F.: Asaocletion of pili with rough colony type of Moraxella bovis. Am.J.vet.Res., 35, 1974, č. 3, s. 437 - 439).
Sterilita vakcťny se kontroluje po uskladnění při 4 - 5 °C za 72 hodiny vyočkováním na krevní agar.
Neškodnost vakcíny se kontroluje intramuskulární injekcí v dávce 5 ml teleti ve věku kolem 6-10 týdnů stáří. V místě vpichu nesmí dojít k zánět li vé resikci.
Vakcína mé ochrannou účinnost proti infekcím bakteriemi Moraxella bovis, které jsou antigenně homologní a kmenem užitým ve vakcíně. Antigenní shodnost terénních kmenů e vakcinačních kmenů Moraxella bovis se kontroluje buá precipitací v agarovém gelu, nebo pasivní hemaglutinací. Antigen k těmto reakcím se připravuje dezintegrací suspenze fimbrií ultrazvukem. Tekutý antigen se upraví na denzitu 50 % propustnosti při 540 nm. Protilátky se připravují postupnými intravenózními injekcemi na králících hmotnosti cca 2 kg podle tohoto časového rozvrhu:
1. týden 3 dny po sobě 0,5 ml, 2 - 3 týdny následující 3 dny po* sobě 1 ml antigenu. Králíci se vykrvují za 14 dní po posledním očkování* Antigenní shodnost se projeví zřetelnými precipitačními liniemi při precipitací v agarovém gelu nebo téměř shodnými vysokými titry při pasivní hemaglutinaci.
Telata se očkují v nejnižším stáří 8 týdnů dávkou 5 ml do krční svaloviny 2x v intervalu 14 - 21 dnů. Mladý skot od 150 kg výše se očkuje dávkou 8 ml rovněž 2x v intervalu 14 21 dnů do krční svaloviny.
Vakcína může být skladována půl roku při teplotě 5 °C. Imunita po vakciraci trvá cca měsíců. Vakcína má autoaglutinaňní vlastnosti a proto je nutno před upotřebením aglutinét____
213 847 roztřepat. Účinnost vakcíny byla prokázána v dříve popsaných pokusech. Vakcínou bylo zatím naočkováno 390 telat bez projevů poruch zdravotního stavu.

Claims (1)

  1. Inaktivovaná adeorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě akotu, vyznačující se ! tím, že obsahuje suspenzi bakterií Moraxella bovia o počtu 10® až 1O^° CFU/l ml v množství í 30 až 50 objemových %, suspenzi fimbrií téhož bakteriálního kmene o densitě dané propustností do 80 % při vlnové délce 540 nm, v množství 30 až 50 objemových % a zbytek do 100 % objemových % tvoří adjuvana a inaktivační činidlo.
CS29580A 1980-01-15 1980-01-15 ) Inaktivovaná absorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu CS213847B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS29580A CS213847B1 (cs) 1980-01-15 1980-01-15 ) Inaktivovaná absorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS29580A CS213847B1 (cs) 1980-01-15 1980-01-15 ) Inaktivovaná absorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS213847B1 true CS213847B1 (cs) 1982-04-09

Family

ID=5334806

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS29580A CS213847B1 (cs) 1980-01-15 1980-01-15 ) Inaktivovaná absorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS213847B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sandhu Immunization of White Pekin ducklings against Pasteurella anatipestifer infection
Jawetz et al. Avirulent strains of Pasteurella pestis
Agius et al. Immunization of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, against vibriosis: comparison of an extract antigen with whole cell bacterins by oral and intraperitoneal routes
Paterson et al. The immune response of Atlantic salmon, Salmo salar L., to the causative agent of bacterial kidney disease, Renibacterium salmoninarum
JPH04297424A (ja) ライム病ワクチンおよびワクチン効力評価用攻撃モデル
Mahan et al. The inactivated Cowdria ruminantium vaccine for heartwater protects against heterologous strains and against laboratory and field tick challenge
ELBERG Immunity to Brucella infection
Matsumoto et al. A broth bacterin against infectious coryza: immunogenicity of various preparations
Allsopp Trends in the control of heartwater: Tick-borne diseases
Kanemori et al. The role of extracellular protease produced by Vibrio anguillarum
US6379677B1 (en) Streptococcus iniae vaccine
Myers Enteric colibacillosis in calves: Immunogenicity and antigenicity of Escherichia coli antigens
Watson et al. Immunisation against experimental staphylococcal mastitis in sheep–effect of challenge with a heterologous strain of Staphylococcus aureus
Skerman et al. Duration of resistance to experimental footrot infection in Romney and Merino sheep vaccinated with Bacteroides nodosus oil adjuvant vaccine
NO169820B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av en mastittvaksine
Pugh Jr et al. Experimental production of infectious bovine keratoconjunctivitis: comparison of serological and immunological responses using pili fractions of Moraxella bovis
Krantz et al. Immune Response of Trout to Aeromonas Salmonicida Part II. Evaluation of Feeding Techniques
Evelyn et al. Laboratory and field observations on antivibriosis vaccines
US3423505A (en) Rabies vaccine and process for preparation thereof
CS213847B1 (cs) ) Inaktivovaná absorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu
Silverman et al. The cause of increased susceptibility of mice to avirulent Pasteurella pestis after exposure to a sublethal dose of x irradiation
US5702708A (en) Salmonicida iron regulated protein and lipopolysaccharide vaccine
Brunner et al. Immunization of hamsters and dogs against experimental leptospirosis
Hahn A contribution to consumer protection: TAD Salmonella vac® E-A new live vaccine for chickens against Salmonella Enteritidis
US6019981A (en) Modified live Edwardsiella ictaluri against enteric septicemia in channel catfish