CS213847B1 - Inactivated adsorbate vaccine against infectious bovine keratoconjuctivitis - Google Patents

Inactivated adsorbate vaccine against infectious bovine keratoconjuctivitis Download PDF

Info

Publication number
CS213847B1
CS213847B1 CS29580A CS29580A CS213847B1 CS 213847 B1 CS213847 B1 CS 213847B1 CS 29580 A CS29580 A CS 29580A CS 29580 A CS29580 A CS 29580A CS 213847 B1 CS213847 B1 CS 213847B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
vaccine
infectious bovine
inactivated
moraxella bovis
vaccine against
Prior art date
Application number
CS29580A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Vladimir Simon
Pavla Horavova
Josef Krejci
Original Assignee
Vladimir Simon
Pavla Horavova
Josef Krejci
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vladimir Simon, Pavla Horavova, Josef Krejci filed Critical Vladimir Simon
Priority to CS29580A priority Critical patent/CS213847B1/en
Publication of CS213847B1 publication Critical patent/CS213847B1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Vynález řeší aktivní ochranu skotu vakcínou proti onnmocnění infekční keratokonjunktivítidou, které je vyvoláno bakterií Moraxella bovis.The invention provides for active protection of bovine vaccines against infectious keratoconjunctivitis caused by Moraxella bovis.

Pokusy o tlumení infekční keratokonjunktivitidy skotu imunoprofylaktickými opatřeními byly založeny na pozorování, že telata dříve onemocnělá infekční keratokonjunktivitidou skotu vzdorovala infekce homologními kmeny Moraxella bovia (HUGHES, D.E. - PUGH, G.W. - McDONALD, Τ.Ϊ.: Experimental bovine infectious keratoconjunctivitis cauaed by aunlamp irradiation and Moraxella bovis infection: Resistence to re-exposure with homologous and heterologous Moraxella bovis. Am. J. vet. Res., 29, 1968, s«829 - 833). Později bylo pokusně zkoušeno několik druhů očkovacích létek. Poměrně příznivých výsledků bylo dosaženo, použilo-li se k očkování živé kultury Moraxella bovis (HUGHES, D.E. - FUGH, G.W.: Experimentally induced bovine infeetious keratoconjunctivitis: Effectiveness of intramuscular vaccination with viable Moraxella bovis cultura. Am. J„vet.Res., 32, 1971, s. 879 - 886.) Dále bylo ověřeno, že částečnou protekč ní účinnost lze dosáhnout i vakcínou inaktivovanou formaldehydem. Přitom byl stanoven též optimální interval mezi vakcinacemi v délce 14 dní (HUGHES, D.E. - PUGH, G.W.: Experimentally induced infectious bovine keratoconjunctivitis: Relationship of vaccination schedule to protection against exporuse with homologous Moraxella bovie culture. Am.J.vet.Res., 36, 1975 , 9. 263 265.)Attempts to control infectious bovine keratoconjunctivitis by immunoprophylactic measures were based on the observation that calves formerly infected with infectious bovine keratoconjunctivitis have resisted infection with homologous strains of Moraxella bovia (HUGHES, DE-PUGH, GW-McDONALECTIVE INFRACTIONAL CULTURALCONSUNCTIONAL CULTURAL INFECTIVE CULTURE). and Moraxella bovis infection: Resistance to re-exposure with homologous and heterologous Moraxella bovis (Am. J. vet. Res., 29, 1968, pp. 829-833). Later, several types of vaccines were tested. Relatively favorable results were obtained when Moraxella bovis (HUGHES, DE - FUGH, GW) was used to vaccinate a live culture: Experimentally Induced Bovine Infeetious Keratoconjunctivitis: Effectiveness of Intramuscular Vaccination with Moraxella Bovis Cultura Am. 32, 1971, pp. 879-886. It was further verified that partial protection efficacy could also be achieved with a formaldehyde inactivated vaccine. The optimal interval between vaccinations of 14 days was also determined (HUGHES, DE - PUGH, GW: Experimentally Induced Infectious Bovine Keratoconjunctivitis: Relationship of Vaccination Schedule to Export with Homologous Moraxella Bovie Culture. Am.J.vet.Res., 36, 1975, 9, 263 265.)

213 847213 847

V Brazílii byly proti infekční keratokonjunktivitidě skotu zkoušeny živé vakcíny, připravené jednak z jednotlivých kmenů Moroxella bovis, jednak z jejich kombinací. Dobré protekce bylo dosaženo tehdy, bylo-li k infekci užito homologního kmene. Užilo-li ae kmenů heterologních, byla protekce velmi variabilní (BAPTISTA, P.J.H.P.: Querato - conjuntivite infecciosa dos bovinos: (I) Resistencia de bovinos vacinados com culturas vivfiB a agresaao experimental com amostras homologa e heterologa de Moraxella bovis. (II) Etiologia. (III) Imunologia.In Brazil, live vaccines prepared from individual strains of Moroxella bovis and combinations thereof have been tested against infectious bovine keratoconjunctivitis. Good protection was achieved when a homologous strain was used for infection. If ae strains were heterologous, the protection was very variable (BAPTISTA, PJHP: Querato - conjunctivitis infecciosa dos bovinos: (I) Resistance of bovinos vacinados with cultures of vivfiB and aggression of experimental homologs and heterologues of Moraxella bovis. (II). (III) Immunology.

Bol. Inst. Pesquisas vet. “Desidério Pinamor, 3, 1975, s. 5 - 35.) V USA ve státě Qregon bylo užito k tlumení infekční keratokonjunktivitidy skotu podobně s dobrým výsledkem autogenní vakcíny připravené z kultury Moraxella bovis izolované z čerstvého případu onemocněni (STOREY, R.C. - STODDARD, P. - BARGER, R.: An autogenous vaccine in succesfUl treatment of infectious keratitis in cattle. Vet, Med. small.Anim.Clin., 72, 1977, s. 1050-1051.) Přes některé dobré výsledky vakcíny s obsahem jak živých, tak umrtvených bakterií Moraxella bovis, poskytovaly jen částečnou ochranu před onemocněním. Později byla vyzkoušena další vakoína obsahující koncentrát fimbrií Moraxella bovis rozbitých ultrazvukem a suspendovaných ve vodě nebo v oleji. Telata očkovaná fimbiovou vakcínou s oléjovým adjuvans měla ochrannou imunitu proti infekci homologním kmenem Moraxella bovis (PUGH, G.W. - HUDGES, D.S. - BOOTH, G.D.í Experimentally induced infectious bovine keratoconjunctivitis: Effectivenees of a pilus vaccine against exposure to homologous strains of Moraxella bovis. Am. J.vet.Res., 38,Bol. Inst. Pesquisas vet. Desidério Pinamor, 3, 1975, pp. 5–35. In the US in Qregon, infectious bovine keratoconjunctivitis was similarly used to control infectious bovine keratoconjunctivitis similarly to a good outcome of an autogenous vaccine prepared from a culture of Moraxella bovis isolated from a fresh case (STOREY, RC - STODDARD, P. - BARGER, R .: An Autogenous Vaccine in Succesful Treatment of Infectious Keratitis in Cattle (Vet, Med. Small. Ali.Clin., 72, 1977, pp. 1050-1051.) Despite some good results of a vaccine containing both living and dead Moraxella bovis, provided only partial protection against the disease. Later, another vacoin containing a concentrate of Moraxella bovis fimbriae, ultrasonically broken and suspended in water or oil, was tested. The calves vaccinated with the fimbium vaccine with the olive adjuvant had protective immunity against infection with the homologous strain of Moraxella bovis (PUGH, GW-HUDGES, DS-BOOTH, GDi). Experimentally induced infectious bovine keratoconjunctivitis: Effectivenees of a pilus vaccine against homologous disease. J.vet. Res., 38,

1977, s. 1519 — 1522.) Pokusy zvýšit ochrannou protilétkovou odpověd vakcínou obohacenou inkompletním Freundovým adjuvans (HUGHES, D.E. - PUGH, G.W. - BOOTH, G.D.: Induced infectious bovine keratoconjunctiivitis: Vaccination with whole cell bacetrins of Moraxella bovis mixed with Freunds incomplete adjuvant. Am.J.vet.Res., 38,1977, a. 1905 — 1907.) nebo vakcínou s Mycobacterium paratuberculosis se nesetkaly s úspěchem (PUGH, G.W. - McDONALD, T.J. LARSEN, A.B.: Experimentally induced infectious bovine keratoconjunctivitis: Potentation of a MCraxella bovis pilus vaccine a immunogenicity by vaccination with Mycobacterium paratuberculosis bacterin. Am.J.vet.Res., 39,1978, s.1656-1661.) 0 odlišném typu vakcíny proti infekční keratokonjunktivitidě skotu bylo referováno z Uruquaye. Obsahovala autolyaovaná kultury Moraxella bovis, Staphylococcus aureus & Corynebacterium pyogenea, byla inaktivována formaldehydem a jako adjuvans byl přidán hydroxid hlinitý. Vakcína měla velmi dobrý ochranný i léčebný efekt (QUINONES SOWERBY, C.A.: Nueva vacuna confra la queratoconjunctivitie de los bovinos. Vet. Uruqay, 5, 1978, a. 27 - 34.) Podobného složení je vakcína francouzské provenience KÉRABOV, vyráběná firmou IFFA Mérieux. Informace o její ochranné účinnosti v našich chovech skotu se různí. Dobré výsledky byly zaznamenány při léčbě infekční keratokonjunktivltidy skotu. Lze léčit bud lokálně (FLEMING, G.A.: Bobine infectious keratoconjunctivitia. Vet. Rec., 97, 1975, s. 486.), nebo celkově, a doporučuje ae oba způsoby léčby kombinovat (PUGH, G.W. - McDonald, T.J·: Infectious bovine keratoconjunctivitis: Treatment of Moraxella bovis infections with antibiotica. 81 at Annual Meeting of the United States Animal Health Association, Mlnneapolis, Minnesota.) Při tlumení infekční keratokonjunktivitidy byla rovněž porovnávána účinnost léčby a vakcinace a zjistilo se, že léčllo-li se stádo Skota očním furazolidovým sprayem každý týden od května do srpna, omezila se incidence onemocnění více než vakcinací autogenním bakterínem Moraxella bovis umrtveným formaldehydem (HUGHES, D.E.1977, pp. 1519 - 1522.) Attempts to enhance protective antibody response by vaccine enriched with incomplete Freund's adjuvant (HUGHES, DE-PUGH, GW-BOOTH, GD: Induced infectious bovine keratoconjunctiivitis: Vaccination with whole cell bacetrins of Moraxella bovis adjuvant mixed with Freund Am.J.vet.Res., 38, 1977, a. 1905-1907) or Mycobacterium paratuberculosis vaccine have not been successful (PUGH, GW-McDonald, TJ LARSEN, AB: Experimentally Induced Infectious Bovine Keratoconjunctivitis: Potentation of and MCraxella bovis pilus vaccine and immunogenicity by a vaccination with Mycobacterium paratuberculosis bacterin. Am.J.vet.Res., 39,1978, p. 1656-1661. A different type of vaccine against infectious bovine keratoconjunctivitis has been reported from Uruquay. It contained autolysed cultures of Moraxella bovis, Staphylococcus aureus & Corynebacterium pyogenea, was inactivated with formaldehyde and aluminum hydroxide was added as adjuvant. The vaccine had a very good protective and therapeutic effect (QUINONES SOWERBY, CA: Nueva vacuna confra la queratoconjunctivitie de los bovinos. Vet. Uruqay, 5, 1978, pp. 27-34). A similar composition is a vaccine of French origin KERRAB, manufactured by IFFA Mérieux . Information about its protective efficacy in our cattle breeds varies. Good results have been reported in the treatment of infectious bovine keratoconjunctivitis. Can be treated either locally (FLEMING, GA: Bobine infectious keratoconjunctivitia. Vet. Rec., 97, 1975, p. 486.), or overall, and recommends that both treatments be combined (PUGH, GW - McDonald, TJ): Infectious bovine In the control of infectious keratoconjunctivitis, the efficacy of treatment and vaccination was also compared, and it was found that if the cattle herd was treated with ocular bovine animals. furazolide spray every week from May to August, reducing the incidence of the disease more than vaccination with autogenous Moraxella bovis with dead formaldehyde (HUGHES, DE

213 847213 847

- KOHLMEIER, R.H. - PUGHj G.W.: Comparison of váccination and treatment in controlling naturaly occurring infectioua bovine keratoconjunctivitis. Am. J.vet.Res., 40, 1979, s.- KOHLMEIER, R.H. - PUGHj G.W .: Comparison of Vaccination and Treatment in Natural Controlling Infectious Bovine Keratoconjunctivitis. Am. J.vet. Res., 40, 1979, p.

241 - 244*) Tlumení infekční keratokonjunktivitidy skotu léčbou je však pracné a v podmínkách velkochovů a pastevního odchovu skotu neproveditelné. Schůdnější cestou je imunizace účinnou vakcínou připravenou z homologních, plně virulentních kmenů Moraxella bovis.241 - 244 *) Control of infectious bovine keratoconjunctivitis by treatment is, however, laborious and impracticable in conditions of large-scale breeding and grazing. A more feasible route is to immunize with an effective vaccine prepared from homologous, fully virulent Moraxella bovis strains.

Narůstající problém infekční keratokonjunktivitidy skotu vedl k vyvinutí vakcíny, jejíž dobrá protekční účinnost byla v pokusech ověřena (ŠIMON, V. - HOŘAVOVÁ, P. - KREJČÍ, 3·· Imunoprofylaxe infekční keratokonjunktivitidy skotu. (Výzkumné zpráva) Brno, Výzkumný ústav veterinárního lékařství 1979. 20s. . ? The increasing problem of infectious bovine keratoconjunctivitis has led to the development of a vaccine whose good protective efficacy has been verified in experiments (ŠIMON, V. - HOŘAVOVÁ, P. - KREJČÍ, 3 ·· Immunoprophylaxis of infectious bovine keratoconjunctivitis. 20s. ?

Byla vynalezena inaktivovaná adsorbátové vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě skotu, která má nahradit vakcínu francouzské provenience KÉRABOV, v našich podmínkách nedostatečně účinnou* o *10An inactivated adsorbate vaccine against infectious bovine keratoconjunctivitis has been invented to replace a vaccine of French provenance KÉRABOV, which is not effective enough in our conditions * o * 10

Podstatou vakclny je, že obsahuje suspenzi bakterií Moraxella bovis o počtu 10 až 10 GFU/l ml v množství 30 až 50 objemových %, suspenzí fimbrií téhož bakteriálního kmene o densitě dané propustností do 80 % při vlnové délce 540 nm v množství 30 až 50 objemových % a zby tek do 100 % objemových % tvoří adjuvans a inaktivační činidlo.The essence of the vaccine is that it contains a suspension of Moraxella bovis of 10 to 10 GFU / l ml in an amount of 30 to 50 vol%, a suspension of fimbriae of the same bacterial strain with a density of up to 80% at 540 nm in an amount of 30 to 50 vol. % and the remainder to 100% by volume are adjuvant and inactivating agent.

Vysoké ochranné účinnosti vakclny je dosahováno vlastnostmi vybraného bakteriálního kmene, plně virulentního, který kromě hemolytického a dermonekrotického toxinu tvoří fimbrie, které jsou rozhodujícím znekem patogenity a virulence kmenů Moraxella bovis. Účinnost vakcíny byla ověřena ve dvou za aebou následujících pokusech. Při prvním pokusu bylo zařazeno do vakcinované skupiny 37 a do kontrolní 49 telat. Po experimentální ipfekci provedené za 27 dní po posledním očkování byl ve skupině vakcinovaných telat nalezen pouze jeden případ nepatrné jizvy rohovky. V kontrolní skupině neočkovaných telat bylo zjištěno 10 případů, 38,8 % keratitid různého stupně, V druhém pokusu bylo zařazeno do vakcinované skupiny 19 a do kontrolní 42 telat. Po experimentální infekci provedené za 28 dní po posledním očkování bylo zjištěno onemocnění keratitidou pouze u jednoho telete, tj. 5,3 %· V kontrolní skupině neočkovaných telat bylo diagnostikováno 10 případů keratitid, tj. 23,8 %, Rozdíl v počtu onemocnělých kusů je významný na hladinu významnosti p - 0,05.The high protective efficacy of the vaccine is achieved by the properties of a selected bacterial strain, fully virulent, which, in addition to the haemolytic and dermonecrotic toxin, forms fimbriae, which is a critical sign of the pathogenicity and virulence of Moraxella bovis strains. The efficacy of the vaccine was verified in two successive experiments. In the first experiment, 37 were included in the vaccinated group and 49 in the calves. After experimental ipfection 27 days after the last vaccination, only one case of slight corneal scar was found in the vaccinated calves group. In the control group of unvaccinated calves, 10 cases, 38.8% of keratitis of varying grade were found. After an experimental infection carried out 28 days after the last vaccination, keratitis was found in only one calf, ie 5.3% · In the control group of unvaccinated calves, 10 cases of keratitis, ie 23.8%, were diagnosed. significant to the significance level p - 0.05.

Vakcína se připravuje z bakteriálního kmene Moraxella bovis, který má tyto vlastnosti: gramnegativní krátké silnější tyčinky, hemolytické, nepohyblivé, neredukující nitráty v nitrity, neprodukující indol, nefermentující uhlohydráty, s proteolytickou schopností, s pozitivním oxidásovým testem, v lakmusovém mléce tvořící tři ohraničené zóny - horní zóna temně modrá, střední zóna tvořená kaselnem levandulové barvy, spodní zóna z koagulovaného kaseinu, nerostoucí na Simonsově citrétovém médiu. Na agarovém médiu s 5 - 10 % ovčí krve roste v lesk lých, šedě bílých konvexních koloniích, ostrých krajů, o průměru 1-3 mm, mírně vtlačených do média. Kultury izolované z patologického materiálu, které nebyly vícekrát pasážovány na krevním agaru, tvoří pevné, adherující kolonie, ve fyziologickém roztoku artoaglutinující. Příčinou autoagiutinability je tvorba fimbrií. Kmeny moraxella bovis z různých lokalit jsou antigennš rozdílné.The vaccine is prepared from the bacterial strain Moraxella bovis, which has the following properties: Gram-negative short strong sticks, Hemolytic, immovable, non-reducing nitrates in nitrites, Non-inducing non-fermenting carbohydrates, Proteolytic ability, Positive oxidase test in three litmus milk zones - upper zone dark blue, middle zone formed by lavender color cassel, lower zone from coagulated casein, not growing on Simons citric medium. On agar medium with 5-10% sheep blood it grows in shiny, gray-white convex colonies, sharp edges, 1-3 mm in diameter, slightly pressed into the medium. Cultures isolated from pathological material that have not been passaged multiple times on blood agar form solid, adhering colonies, artoagglutinating in saline. The cause of autoagiutinability is the formation of fimbrios. Moraxella bovis strains from different sites are antigenically different.

Příklad provedení:Example:

Vakcína obsahuje:The vaccine contains:

213 847213 847

Příklad provedeni:Example:

Vakcína obsahuje:The vaccine contains:

suspenzi bakterií Moraxella bovis o počtu 10$ CFU/1 ml ..... 40 objemových % suspenzí fimbrií' o densitě dané propustností 80 % při vlnové délce 540 π» ..... 40 objemových % sterilní gel hydroxidu hlinitého ' ..... 19,6 % formaldehyd ..... 0,4 %a suspension of Moraxella bovis of 10 $ CFU / ml ..... 40% by volume of fimbriae suspensions having a density of 80% at a wavelength of 540 π »..... 40% by volume sterile aluminum hydroxide gel. ... 19.6% formaldehyde ..... 0.4%

Suspenze bakterií se zpravidla získává smytím nárůstu s povrchu krevního agaru pomocí fyziologického roztoku, agarové plotna o průměru 10 cm se smývá 2 ml sterilního fyziologického roztoku.The bacterial suspension is generally obtained by washing the growth from the surface of the blood agar with saline, the 10 cm agar plate being washed with 2 ml of sterile saline.

Fimbrie se získávají homogenizací bakteriální suspenze 20 minut při 10 000 otáčkách ze minutu za stálého ochlazování. Homogenizát se eentrifuguje 60 minut při 6000 ot./min. za teploty 3-5 °C. Fimbrie v supernatantu ae precipitují při 4 °C po dobu 18 - 24 hod. po přidání chloridu hořečnatého do koncentrace 0,1 mol/l. Precipitované fimbrie se centrifUgují při 6000 ot./min. po dobu 60 minut. Sediment se rozpustí v šestkrát menším objemu sterilní destilované vody, než byl původní objem bakteriální suspenze. Suspenze fimbrií se upraví na denzitu o propustnosti 80 % při 540 m. Vyšší propustnost fimbriové suspenze je možná, ale výrobně zbytečně nákladná.Fimbriae are obtained by homogenizing the bacterial suspension for 20 minutes at 10,000 rpm while cooling. The homogenate was centrifuged at 6000 rpm for 60 minutes. at 3-5 ° C. Fimbriae in the supernatant ae precipitate at 4 ° C for 18-24 hours after the addition of magnesium chloride to a concentration of 0.1 mol / l. The precipitated fimbriae are centrifuged at 6000 rpm. for 60 minutes. The sediment is dissolved in six times less sterile distilled water than the original volume of the bacterial suspension. The fimbria suspension is adjusted to a density of 80% at 540 m. Higher permeability of the fimbria suspension is possible, but unnecessarily expensive to manufacture.

Bakteriální suspenze se kontroluje na přítomnost fimbrií buá elektronopticky, nebo hemaglutinační zkouškou tSAKDHU, T.S. - WHITE, F.K. - SIMPSON, C.F.: Asaocletion of pili with rough colony type of Moraxella bovis. Am.J.vet.Res., 35, 1974, č. 3, s. 437 - 439).The bacterial suspension is checked for the presence of the fimbriae either electronically or by the hemagglutination assay of tSAKDHU, T.S. - WHITE, F.K. - SIMPSON, C.F .: Asaocletion of pili with rough colony type of Moraxella bovis. Am.J. Res. Res., 35, 1974, No. 3, pp. 437-439).

Sterilita vakcťny se kontroluje po uskladnění při 4 - 5 °C za 72 hodiny vyočkováním na krevní agar.Vaccine sterility is checked after storage at 4-5 ° C for 72 hours by plating on blood agar.

Neškodnost vakcíny se kontroluje intramuskulární injekcí v dávce 5 ml teleti ve věku kolem 6-10 týdnů stáří. V místě vpichu nesmí dojít k zánět li vé resikci.The harmlessness of the vaccine is controlled by intramuscular injection at a dose of 5 ml of calf at about 6-10 weeks of age. There must be no inflammation at the injection site.

Vakcína mé ochrannou účinnost proti infekcím bakteriemi Moraxella bovis, které jsou antigenně homologní a kmenem užitým ve vakcíně. Antigenní shodnost terénních kmenů e vakcinačních kmenů Moraxella bovis se kontroluje buá precipitací v agarovém gelu, nebo pasivní hemaglutinací. Antigen k těmto reakcím se připravuje dezintegrací suspenze fimbrií ultrazvukem. Tekutý antigen se upraví na denzitu 50 % propustnosti při 540 nm. Protilátky se připravují postupnými intravenózními injekcemi na králících hmotnosti cca 2 kg podle tohoto časového rozvrhu:The vaccine has protective efficacy against Moraxella bovis infections that are antigenically homologous and the strain used in the vaccine. The antigenic identity of field strains and vaccine strains of Moraxella bovis is checked either by precipitation in an agar gel or by passive hemagglutination. The antigen for these reactions is prepared by disintegrating the suspension of the fimbriae by ultrasound. The liquid antigen is adjusted to a density of 50% transmittance at 540 nm. Antibodies are prepared by sequential intravenous injections on rabbits weighing about 2 kg according to the following schedule:

1. týden 3 dny po sobě 0,5 ml, 2 - 3 týdny následující 3 dny po* sobě 1 ml antigenu. Králíci se vykrvují za 14 dní po posledním očkování* Antigenní shodnost se projeví zřetelnými precipitačními liniemi při precipitací v agarovém gelu nebo téměř shodnými vysokými titry při pasivní hemaglutinaci.Week 1 3 days in a row 0.5 ml, 2-3 weeks following 3 days in a row 1 ml antigen. Rabbits are bled 14 days after the last vaccination. * Antigenic identity is indicated by distinct precipitation lines on agar gel precipitation, or nearly identical high titers in passive hemagglutination.

Telata se očkují v nejnižším stáří 8 týdnů dávkou 5 ml do krční svaloviny 2x v intervalu 14 - 21 dnů. Mladý skot od 150 kg výše se očkuje dávkou 8 ml rovněž 2x v intervalu 14 21 dnů do krční svaloviny.Calves are vaccinated at the lowest age of 8 weeks with a dose of 5 ml in cervical muscle twice every 14 - 21 days. Young cattle from 150 kg upwards are vaccinated with a dose of 8 ml also twice every 14 21 days into the neck muscles.

Vakcína může být skladována půl roku při teplotě 5 °C. Imunita po vakciraci trvá cca měsíců. Vakcína má autoaglutinaňní vlastnosti a proto je nutno před upotřebením aglutinét____The vaccine may be stored at 5 ° C for six months. Immunity after vaccination lasts about months. The vaccine has autoagglutinating properties and therefore agglutinin should be used before use.

213 847 roztřepat. Účinnost vakcíny byla prokázána v dříve popsaných pokusech. Vakcínou bylo zatím naočkováno 390 telat bez projevů poruch zdravotního stavu.213 847 shake. The efficacy of the vaccine has been demonstrated in the previously described experiments. So far, 390 calves have been vaccinated without signs of health disorders.

Claims (1)

Inaktivovaná adeorbátová vakcína proti infekční keratokonjunktivitidě akotu, vyznačující se ! tím, že obsahuje suspenzi bakterií Moraxella bovia o počtu 10® až 1O^° CFU/l ml v množství í 30 až 50 objemových %, suspenzi fimbrií téhož bakteriálního kmene o densitě dané propustností do 80 % při vlnové délce 540 nm, v množství 30 až 50 objemových % a zbytek do 100 % objemových % tvoří adjuvana a inaktivační činidlo.Inactivated adeorbate vaccine against infectious keratoconjunctivitis of acota, characterized by: containing a suspension of Moraxella bovia of 10 to 10 ° CFU / ml in an amount of 30 to 50 vol%, a suspension of fimbriae of the same bacterial strain having a density of up to 80% at a wavelength of 540 nm in an amount of 30 up to 50% by volume and the remainder up to 100% by volume are adjuvant and inactivating agent.
CS29580A 1980-01-15 1980-01-15 Inactivated adsorbate vaccine against infectious bovine keratoconjuctivitis CS213847B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS29580A CS213847B1 (en) 1980-01-15 1980-01-15 Inactivated adsorbate vaccine against infectious bovine keratoconjuctivitis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS29580A CS213847B1 (en) 1980-01-15 1980-01-15 Inactivated adsorbate vaccine against infectious bovine keratoconjuctivitis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS213847B1 true CS213847B1 (en) 1982-04-09

Family

ID=5334806

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS29580A CS213847B1 (en) 1980-01-15 1980-01-15 Inactivated adsorbate vaccine against infectious bovine keratoconjuctivitis

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS213847B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sandhu Immunization of White Pekin ducklings against Pasteurella anatipestifer infection
Gould et al. Spray vaccination: a method for the immunization of fish
Jawetz et al. Avirulent strains of Pasteurella pestis
Agius et al. Immunization of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, against vibriosis: comparison of an extract antigen with whole cell bacterins by oral and intraperitoneal routes
Paterson et al. The immune response of Atlantic salmon, Salmo salar L., to the causative agent of bacterial kidney disease, Renibacterium salmoninarum
JPH04297424A (en) Lime disease vaccine and attack model for evaluating effectiveness of vaccine
Mahan et al. The inactivated Cowdria ruminantium vaccine for heartwater protects against heterologous strains and against laboratory and field tick challenge
Matsumoto et al. A broth bacterin against infectious coryza: immunogenicity of various preparations
Allsopp Trends in the control of heartwater: Tick-borne diseases
Kanemori et al. The role of extracellular protease produced by Vibrio anguillarum
US6379677B1 (en) Streptococcus iniae vaccine
Myers Enteric colibacillosis in calves: Immunogenicity and antigenicity of Escherichia coli antigens
Watson et al. Immunisation against experimental staphylococcal mastitis in sheep–effect of challenge with a heterologous strain of Staphylococcus aureus
Skerman et al. Duration of resistance to experimental footrot infection in Romney and Merino sheep vaccinated with Bacteroides nodosus oil adjuvant vaccine
NO169820B (en) PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF A MASTITE VACCINE
Pugh Jr et al. Experimental production of infectious bovine keratoconjunctivitis: comparison of serological and immunological responses using pili fractions of Moraxella bovis
Krantz et al. Immune Response of Trout to Aeromonas Salmonicida Part II. Evaluation of Feeding Techniques
Evelyn et al. Laboratory and field observations on antivibriosis vaccines
US3423505A (en) Rabies vaccine and process for preparation thereof
CS213847B1 (en) Inactivated adsorbate vaccine against infectious bovine keratoconjuctivitis
Silverman et al. The cause of increased susceptibility of mice to avirulent Pasteurella pestis after exposure to a sublethal dose of x irradiation
US5702708A (en) Salmonicida iron regulated protein and lipopolysaccharide vaccine
Brunner et al. Immunization of hamsters and dogs against experimental leptospirosis
Hahn A contribution to consumer protection: TAD Salmonella vac® E-A new live vaccine for chickens against Salmonella Enteritidis
US6019981A (en) Modified live Edwardsiella ictaluri against enteric septicemia in channel catfish