CS209251B1 - Způsob výroby L-sorbosy - Google Patents

Způsob výroby L-sorbosy Download PDF

Info

Publication number
CS209251B1
CS209251B1 CS491562A CS491562A CS209251B1 CS 209251 B1 CS209251 B1 CS 209251B1 CS 491562 A CS491562 A CS 491562A CS 491562 A CS491562 A CS 491562A CS 209251 B1 CS209251 B1 CS 209251B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
sorbose
sorbitol
fermentation
isolated
fructose
Prior art date
Application number
CS491562A
Other languages
English (en)
Inventor
Milos Kulhanek
Original Assignee
Milos Kulhanek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Milos Kulhanek filed Critical Milos Kulhanek
Priority to CS491562A priority Critical patent/CS209251B1/cs
Publication of CS209251B1 publication Critical patent/CS209251B1/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

(54) Způsob výroby L-sorbosy
Vynález se týká způsobu výroby L-sorbosy, ; důležitého meziproduktu syntézy kyseliny askorbové (vitaminu C).
L-sorbosa se vyrábí fermentačně-bakteriální dehydrogenací D-sorbitu vhodnými druhy octových bakterií, nejčastěji Acetobacter suboxydans.
Teoreticky má vzniknout ze 100 dílů sorbitu 98,9 dílu sorbosy. Při fermentad se zpravidla posuzuje výtěžek podle obsahu sorbosy, vypočítaného na základě stanovení redukujících cukrů, které jsou vyjádřeny v % sušiny přítomné ve vzorku a stanovené refraktometricky (vodné roztoky D-sorbitu a L-sorbosy o stejné koncentraci mají prakticky ; stejné indexy lomu). Při této metodě může být ; zjištěn uvedený teoretický výtěžek; nebere se při ; tom ovšem v úvahu ztráta sušiny cukrů, způsobená jednak totální disimilací sorbitu, jednak jeho ; spotřebou jako zdroje uhlíku pro růst bakterií. Tato ztráta se podle zkušeností pohybuje kolem ' 4—9 %, vztaženo na výchozí množství sorbitu.
Jak bylo prokázáno (Kulhánek, Ševčíkové, Folia ; microbiologica, 1962, v tisku), vzniká pří fermení tad vedle L-sorbosy v malých množstvích i D-fruktosa a v pokročilejších stadiích ještě i 5-keto-D-fruktosa (5-keto-L-sorbosa) jako vedlejší metabolity, které nežádoucím způsobem snižují výtěžek. Tyto vedlejší metabolity jsou při stanovení : távány jako sorbosa, což je dalším zdrojem nepřesností při zjišťování výtěžku fermentace. Pro určení výtěžku při výrobě sorbosy je z uvedených důvodů směrodatné pouze množství izolované sorbosy, vztažené na výchozí množství sorbitu.
V souvislosti se studiem podmínek pro zvýšení výtěžků byl vypracován nový způsob výroby L-sorbosy mikrobiální dehydrogenací D-sorbitu v tekuté živné půdě na bázi dusíkatých živin a minerálních živných solí, enzymovým systémem mikroorganizmů rodu Acetobacter, zejména Acetobacter suboxydans, podle vynálezu.
Podstata tohoto způsobu spočívá v tom, že se mikrobiální dehydrogenace provádí v přítomnosti inhibitorů, zabraňujících další enzymatické dehydrogenaci vzniklé sorbosy.
Jako inhibitorů enzymů lze používat fluoridu sodného, 2,4-dinitrofenolu nebo dithiokarbamátů, v koncentraci řádově 1.10-3 až 1. 10-4, vztaženo na objem živné půdy.
Příznivý vliv přídavku inhibitorů na zvýšení výtěžku, prokázaný papírovou chromatografií, se projevuje potlačením vedlejších reakcí, zejména tvorby 5-keto-D-fruktosy (5-keto-L-sorbosy).
Při vhodné koncentraci inhibitoru není doba fermentace nepříznivě ovlivňována. Vhodnou koncentraci mhibitoru, u kterého je možná částečná inaktivace reakcí se složkami surovin použitých k přípravě fermentační půdy, je nutno nalézt pro dané podmínky empiricky (např. u fluoridu sodného možnost reakce s vápenatými sloučeninami kukuřičného extraktu, vodovodní vody apod.). j Inhibitory přecházejí při izolaci sorbosy krystaliza- cí do matečných louhů a v isolované sorboze nebyly nalezeny.
Výhodou způsobu podle vynálezu je zvýšení výtěžku isolované sorbosy až o 10% proti kontrole, pří minimálně zvýšených nákladech.
Příklady provedení Přikladl:
Do 750 ml Erlenmayerovy baňky umístěno 100 ml živné půdy tohoto složení: 0,3 g kukuřičného extraktu, 0,17 sekundárního fosforečnanu amonného, 18,3 g sorbitu a 16,8 mg fluoridu sodného (koncentrace 4.10_3M). Po sterilizaci , měla půda objem 94 ml (obsah sorbitu přepočítaný na 100 ml byl 19,4 g). Ochlazená půda zaočkována 10 ml kultury Acetobacter suboxydans 125 (sbírka Mikrobiol. ústavu ČSAV Praha), připravené na půdě stejného složení, ale bez fluoridu sodného, jednodenní stacionární kultivací při 32 °C (inokulum obsahovalo původně 1,9 g sorbitu). Po 58 hodinách inkubace při 30 °C na reciproké třepačce činilo prokvašení 97%, přičemž obsah sušiny poklesl o 6%. Papírová chromatografie ukázala skvrnu sorbosy a velmi malého množství D-fruktosy. Z roztoku bylo po filtraci vrstvou křemeliny a po zahuštění ve vakuu při 20—25 °C izolováno1 krystalizací v několika frakcích celkem 17,4 g produktu, obsahujícího 17,0 g 100%ní sorbosy. V matečném louhu zbylo 0,7 g redukujících cukrů, počítáno jako sorbosa. Na analytickou kontrolu průběhu fermentace byly odebrány celkem 4 ml 1 roztoku, obsahujícího 0,8 g výchozího sorbitu. Z , celkového množství 19,3 g sorbitu (18,2 g + 1,9 g — 0,8 g) bylo tedy isolováno 17,0 g 100%ní sorbosy, což odpovídá výtěžku 88%. !
U současně provedeného slepého pokusu, při; němž bylo použito živné půdy stejného složení, avšak bez přísady fluoridu sodného, stejného inokula a stejných kultivačních podmínek, činilo i po 58 hodinách fermentace prokvašení 98%.
| Chromatografií dokázána přítomnost sorbosy, malého množství D-fruktosy a 5-keto-D-fruktosy. Pokles obsahu sušiny činil 9%. Isolováno celkem

Claims (2)

[ PŘEDMĚT
1. Způsob výroby L-sorbosy mikrobiální dehydrogenací D-sorbitu v tekuté živné půdě na bázi dusíkatých živin a minerálních živných solí, enzymovým systémem mikroorganizmů rodu Aceto- í barier, zejména Acetobacter suboxydans, vyzná- ; čující se tím, žé se mikrobiální dehydrogénace provádí v přítomnosti inhibitorů, zabraňujících |
15.7 g 10Ó%ní sorbosy z 19,6 g výchozího sorbitu (odebrané vzorky obsahovaly 0,5 g sorbitu), tj. 80%. V posledním matečném louhu zbylo 1,2 g redukujících cukrů, počítáno jako sorbosa.
Zvýšení výtěžku izolované sorbosy činilo tedy s použitím fluoridu sodného 8%.
Příklad 2:
Obdobně jako v příkladě 1. provedena fermentace s přídavkem 2,9 mg 2,4-dinitrofenolu (výsledná koncentrace 1,7.10_4M). Po 58 hodinách kultivace činilo prokvašení 98%, ztráta sušiny 7%. Chromatografií prokázána přítomnost sorbosy a velmi malého množství fruktosy. Izolováno
16.8 g 100%ní sorbosy, a to z 19,5 g výchozího sorbitu (se vzorky bylo odebráno 0,6 g z původního množství sorbitu). Výtěžek Snil tedy 86%, vztaženo na sorbit, což odpovídá zvýšení o 6% proti současně provedenému slepému pokusu. V matečném louhu zůstalo 0,5 g redukujících cukrů, počítáno jako sorbosa.
Příklad 3:
100 ml živné půdy, obsahující 0,1 g kukuřičného extraktu, 19,0 g D-sorbitu a 4,2 g fluoridu sodného (koncentrace 1.10_3M) zaočkováno po sterilizaci 4 ml kultury Acetobacter suboxydans 125, kultivované 2 dny stacionárně při 32 °C na půdě obsahující 20 % sorbitu, 0,5 % pekařského droždí ve formě 20%ního autolyzátU, dále 0,2 % sekundárního fosforečnanu amonného, 0,1 % primárního fosforečnanu draselného a 0,02 % kryst. síranu hořečnatého. Po 65hodinách submersní fermentace bylo dosaženo prokvašení 96 %. Chromatografická analýza prokázala přítomnost sorbosy a malého množství D-fruktosy. Bylo izolováno celkem
16,7 g sorbosy, tj. 16,2 g 100%ní sorbosy z 19,1 g sorbitu (19,0 g + 0,8 g — 0,7 g), tj. 85 % vztaženo na výchozí sorbit.
Pri slepém pokusu za stejných podmínek činilo prokvašení 96 %. Chromatografií prokázána přítomnost sorbosy, 5-keto-D-fruktosy a malého množství D-fruktosy. Z 19,4 g sorbitu (19,0 g + 0,8 g — 0,4 g) izolováno celkem 14,9 g sorbosy, tj. 14,6 g 100%ní sorbosy, což odpovídá výtěžku 75 %, vztaženo na výchozí sorbit. Zvýšení výtěžku isolované sorbosy pri fermentaci s přísadou fluoridu sodného činilo tedy 10 %.
další enzymatické dehydrogenaci vzniklé sorbosy.
2. Způsob podle bodu 1. vyznačující se tím, že se jako inhibitorů enzymů používá fluoridu sodného,
2,4-dinitrofenolu nebo dithiokarbamátů, v koncentraci řádově 1 .10-3 až 1. 10-4M, vztaženo na objem živné půdy.
CS491562A 1962-08-24 1962-08-24 Způsob výroby L-sorbosy CS209251B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS491562A CS209251B1 (cs) 1962-08-24 1962-08-24 Způsob výroby L-sorbosy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS491562A CS209251B1 (cs) 1962-08-24 1962-08-24 Způsob výroby L-sorbosy

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS209251B1 true CS209251B1 (cs) 1981-11-30

Family

ID=5392924

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS491562A CS209251B1 (cs) 1962-08-24 1962-08-24 Způsob výroby L-sorbosy

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS209251B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Haskins Biochemistry of the Ustilaginales: I. Preliminary cultural studies of Ustilago zeae
US3907639A (en) Method for producing 2-keto-L-gulonic acid
EP0032830B1 (en) Preparation of 2-keto-l-gulonic acid
US3716579A (en) Ester derivatives of pleuromutilin
Guevarra et al. Production of 2-hydroxyparaconic and itatartaric acids by Ustilago cynodontis and simple recovery process of the acids
JPS58111689A (ja) 新抗生物質ピロロマイシンeおよびその製造法
CS209251B1 (cs) Způsob výroby L-sorbosy
EP0043280B1 (en) Process for preparing a macrolide
KR20000070226A (ko) 발효 공정을 사용한 산화물의 제조 방법
US2918413A (en) Method and composition for producing gibberellins
EP0583687A2 (de) Verfahren zur Herstellung substituierter Methoxyphenole und dafür geeignete Mikroorganismen
US4316960A (en) Preparation of 2,5-diketogluconic acid
US2595605A (en) Method of producing polymyxin
SU582772A3 (ru) Способ получени деацетоксицефалоспорина с
US4205125A (en) Process for the production of coenzyme Q
US3347909A (en) Metabolic product isolated from cultures of aspergillus wentii
US2805185A (en) Antibiotic and production thereof
US3272716A (en) Microbial oxidation of naphthalene to salicylic acid in the presence of an aluminum compound
US3853707A (en) Method for producing hexanor-5,9-seco-pregnan-5-oic acid
US3772151A (en) Preparation of 2-chloro-7-hydroxy-11-(4-methyl-1-piperazinyl)- di benz(b,f)-oxazepine
JPH0374677B2 (cs)
RU2585233C2 (ru) Промышленный способ получения компактина
JPH0335785A (ja) イタコン酸の製造法
JPH0639480B2 (ja) 新規マクロライド系抗生物質m119
SU464615A1 (ru) Жидка питательна среда дл культивировани продуцента каталазы