CS208289B1 - Avirulentný kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnej vulvovaginitídy a spósob jeho vyšlechtěnia - Google Patents

Avirulentný kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnej vulvovaginitídy a spósob jeho vyšlechtěnia Download PDF

Info

Publication number
CS208289B1
CS208289B1 CS469979A CS469979A CS208289B1 CS 208289 B1 CS208289 B1 CS 208289B1 CS 469979 A CS469979 A CS 469979A CS 469979 A CS469979 A CS 469979A CS 208289 B1 CS208289 B1 CS 208289B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
virus
cultures
strain
kidney
bovine
Prior art date
Application number
CS469979A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Alojz Zuffa
Original Assignee
Alojz Zuffa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Alojz Zuffa filed Critical Alojz Zuffa
Priority to CS469979A priority Critical patent/CS208289B1/cs
Publication of CS208289B1 publication Critical patent/CS208289B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

1 208 289
Vynález sa týká avirulentného kmena virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustu-lárnej vulvovaginitídy /Sálej IBR-IPV/ schopného priemyselnej multiplikácie na viacerých dru-hoch homológnych a heterológnych tkaniv pre pripravu živej očkbvacej látky a spósobu jehoizolácie. Účast virusu IBR-IPV na vývoji ochoreni dýchacích a reprodukěných orgánov hovadziehodobytka /HD/ je dnes váeobecne známa. Infekcia týmto virusom postihuje 5 až 20 celosvětové-ho stavu HD a zapříčiňuje, menovite v podmienkach vysokej koncentrácie zvierat, Velké hospo-dářské straty. Preto sa trvale vynakládá velké úsilie na zdokonalovanie metod špecifickejprofylaxie nákazy zapříčiněnéj týmto virusom. Doposial boli proti IBR-IPV vyvinuté a použí-vajú sa živé aj inaktivované vakciny s rozdielnou technológiou ich výroby. Pre pripravu ži-vých vakcín sa používajú kmene, ktorých virulencia bola oslabená dlhodobým pasážovaním nabuňkových kultúrách připravených z homológnych /Schwarz’ A.J.F., York Ch.J., Zirbel L.V.,Estela L.A. Modification of Infectious Bovine Rhinotracheitis /iBR/ Virus in Tissue Cultureand Development of a Vaccine, Proč. Soc. exp. Biol. Med., 96, 453“^58, 1957} Straub O.C.fMoglichkeiten zur Bekampfung der Infektiosen Bovinen Rhinotracheitis /IBR/ Deutsch. Tier-arztl. Wschr., 83, 270-273, 1976/, alebo heterológnych tkaniv /Todd J.D., Volenec F.J., Pa-ton I.M, Intranasal Vaccination Against Infectious Bovine Rhinotracheitis: Studies on Early onset of Protection and Use of the Vaccine in Pregnant Cows, J.Am.Vet.Med. Ašsoc., 159,1370—1374, 1971/ alebo pósobením mutagenov /Zygraich N., Lobmann M., Vascoboinic E., Berge E.,Huygelen C. In Vivo and in Vitro Properties of a Temperature Sensitive Mutant of infectiousBovine Rhinotracheitis Virus, Res. vet. Sci., 16, 329"335, 197V·
Spósob výroby živých vakcín sa zakladá na pomnožení avirulentného imunogénneho kmeňana tkanivových kulturách připravených z obličiek alebo semeníkov hovddzích plodov alebo na—rodených teliat, na diploidných buňkových líniách derivovaných z bovínnych orgánov /životnost30—40 pasáží/, připadne na buňkových kulturách připravených z iných druhov zvierat. Ak sa má-ju k pomnožovaniu virusu slúžiaceho pre pripravu živej vakciny použit stabilně buňkové linie,musia byť kontrolované na onkogenitu /Perkins P.T., Safety of Vaccines., Brit. Med. Bull. 25, 208-212, 1969., Smith H, The Search for Protective Antigens, Brit. Med, Bull,, 25, 126-130, 1969/· Použitie primárných kultúr připravených z orgánov bovínnych plodov alebo národe—ných teliat pre výrobu živých vakcín je spojené s nebezpečím přenosu infekčných zárodkov me-novite virusovéj povahy, ktoré móžu latentne infikovat tieto tkanivá /Miller R.B., Quinn P. J., Observations on Abortions in Cattle: A Comparison of Pathological, Microbiological and
Immunological Findings in Aborted Foetuses and Foetuses Collected at Abattoirs, Can. J. Comp.Med., 39, 270-290, 197^·, Hubbert Ϊ.Τ., Bryner J.H., Fernelius A.L., Frank G.H., Estes P.C.,Viral Infection of the Bovine Fetus and Its Environment, Arch. ges. Virusforsch., 4l, 86-98,1973·, Massip A., Wellemaas G., Leunen J., Charleire G,, Anticorps Ántiviraux dans le sérumsenguin de veux nouveaunés, Ann.Rech. vírór., 5, 397-406, 1974/. Pre vylúčenie přenosu uvede-ných ako aj falších nemenovaných infekcií je třeba robiif dokonalá kontrolu očkovacích látok, 208 289 ktorá popři tom, že je technicky, odborné a časovo velmi náročná, nezaručuje istotu odkrytiavžetlcých latentných virusových kontaminácií. Je preto velmi žiaduce použit pre pomnožovanieatenuovaných kmeňov virusu IBR-IFV slúžiacich pre pripravu živých vakcin také druhy tkaniv,ktoró pri produkcii virusu do vysokých titrov sú prosté virusov patogénnych pre HD alebo as-poň nebezpečie přenosu infekcii živou očkovacou látkou významné znižujú. Toto nebezpečie ne—vylučujú ani linie diploidných buniek, ktoré popři obmedzenej životnosti sú velmi náročné nakvalitu živných médii a kultivačného skla· Priemyselná produkcia vačších objemov vakcíny zvirusu pomnožovanóho na kulturách z králičích obličiek /Todd J.D., Volenec P.J., Paton X.M. ,Intranasal Vaccination Against Infectious Bov^ne Rhinotracheitis i Studios on Early Onset ofprotection and Use of the Vrccine in Pregnant Cows. J. Am. Vet. Med. Assoc., 159 . 1370-137^,1971/ naráže na obtiaže súvisiace s malou výťažnosťou suspenzie buniek z uvedených orgánov.Spoločnou vlastnosťou jednotlivých kmeňov slúžiacich pre pripravu živých vakcin je, že sa kvýrobě používá len jeden definovaný druh tkaniva.
Uvedené nedostatky sú riešené podlá vynálezu, ktorého podstata spočívá v avirulentnomkmeni virusu IBR—IPV,vykazujúcom výhodné rastové schopnosti na buňkových kultúrach připrave-ných známým spósobom z orgánov bovínnych plodov alebo narodených teliat, jahniat a králikov 785 s obsahem 10' až 10 ΤΚΙϋ^θ vírusu/ml v infekčných tekutinách z uvedených druhov tkaniv,s velmi dobrými imunologickými vlastnostem! a spósobe jeho izolácie.
Kmeň BNZ/K 4C uložený v zbierke mikroorganizmov na Výskumnom ústave veterinárneho lekán-štva v Brně Medlánkách, Hudcova 6θ pod číslom CAPM V—257 bol izolovaný spósobom podlá vyná-lezu z virulentného kmeňa IBR - IPV zo zbierky Inst. Nat. Rech. Vet. Brussel Greosselenberg99 Brussel 18, kde sa nachádza pod označením INRV N 3760 tak, že sa tento najprv prepasážo-val 250 krát na primárných kultúrach z telecích obličiek. Následné bol tento kmeň adaptovanýna buňkové kultúry z jahňacích obličiek, pričom po páťdesiatnásobnom prepasážovaní na uvede—nom druhu tkaniva vykazoval rovnaké rastové vlastnosti na kultúrach z jahňacích obličiek akona bovínnych obličkových kultúrach. Tento virus bol, postupným znižovaním kultivačněj teplotya tým selekciou virusových častíc s dobrými multiplikačnými vlastnostami pri nízkých teplo-tách, adaptovaný na rast pri teplotách 28 až 32 °C, s výhodou pri 3°°C. V tejto fáze selekč-ného procesu sa metodou hraničných riedení so šesťnásobným opakováním na jahňacích obličko-vých buňkách izoloval virusový klon predstavujúci homolognu virusová populáciu. Homogenitavírusovej populácie bola dokázaná zachováním si nezměněných vlastností po desatnásobnom pre—pasážovani virusu na telacích obličkových buňkách pri 37 °C a nezmenenou virulenciou po pia-tich sériových i.nas. pasážach na vnímavých telatách. Takto získaný virusový klon bol adap-tovaný, metodou alternatívnych pasáži na buňkových kultúrach z jahňacích a králičích obličiek,na rast na kultúrach z králičích obličiek, s rastom virusu pri 30 °C. Konťrolnými testami natelatách sa dokázalo, že virus pomnožovaný na všetkých uvedených druhoch tkaniv vykazuje rov-nakó rastové a imunobiologické vlastnosti ako virus pomnožovaný na kultúrach z bovínnych or-gánov. 3 208 289
Uvedeným postupom sa získal kmeň, s označením BNZ/κ 4c, ktorý má vlastnosti virusu vhod-ného pře přípravu živej vakcíny proti IBR—IPV, nakolko ša vyznačuje stratou virulencie prehovadzí dobytok rozličného veku pri zachovaní velmi dobrých imunizačných schopností, pričomz hladiska priemyselnej produkcie je vhodný najma v tom, že ho možno pre výrobně účely pom-nožovať na kultúrach z bovinnych obličiek a semeníkov, kulturách z jahňacích obličiek a seme·níkov, kultúrach z králičích obličiek ako aj na líniách diploidných buniek derivovaných z bo-vínnych a ovínnych orgánov, čo dovoluje kedykolvek produkovat požadované množstvo virusu de-finovaných imunobiologických vlastnosti.
Novovyšlachtený kmeň podlá vynálezu ΒΝΖ/Κ 4C CAPM V—257 je rozlišitelný od východisko-vého virulentného kmeňa IBR—IPV INRV Brussel N 3760 podlá rastových vlastnosti zistovanýchna buňkových kultúrach a zvieratách a imunologických vlastností zistovaných na zvieratách.
Podlá rastových vlastností na buňkových kultúrach sa novovyšlachtený kmeň odlišuje odvýchodiskového virulentného kmeňa schopnostou množit sa na kultúrach bovinnych, jahňacích akráličích obláčkových buniek s 10 až 100 násobné vyšším výťažkom virusu pri inkubácii infiko-vaných kultúr pri 37 °C. Intranazálna aplikácia východiskového virulentného kmeňa vnímavým *7 telatám vyvolá množenie virusu na slizniciach horných dýchadiel s obsahom až 10' TKID^^/mlnosného sekrétu a přetrváváním infekčnosti sekrétov do 10. až 14. dňa, doprevádzanó zápalomaž nekrozou nosnej sliznice a poruchou celkového zdravotnóho stavu charakterizovanou horúčkou,nežravosťou, apatiou a stratou na váhej množenie virusu po intranazálnej aplikácii vyselekto—váného kmeňa je časovo'limitované do 7. až ý. dňa, nevyvolá žiadne alebo len mierne lokálnězměny charakterizované začervenáním nosnej sliznice a miernym zmnožením nosného výtoku, pri—čom celkový zdravotný stav zvierat ostane neporušený.
Zvieratá infikované virulentným východiskovým kmeňom vytvoria v krvnom séro neutralizač-ně protilátky v titroch 1:16 až 1:128, kým zvieratá ošetřené vyselektovaným avirulentným kme—ňom len v titroch 1:2 až 1:32. Příklad prevedenia
Virulentný kmeň virusu IBR—IPV INRV 3760 sa sériovo pasážuje na primárných kultúrachz bovinnych obličiek, s použitím bežne zaužívaných laboratornych metod. Přítomnost virusu vtkanivových tekutinách sa na rozličných úrovniach pasážovania kontroluje vývojom virus—Spe-cifických cytopatických zmienj postup atenuovania virulencie sa kontroluje i.nas. aplikáciou 2—4 ml neriedenóho virusu jedno až štvormesačným telatám, so zisťovaním obsahu virusu v nos-ných sekrótoch, lokálnych zmien, termických a celkových klinických reakcií. Po zisťení výz-namného poklesu virulepcie virusu, k čomu dochádza na úrovni 150. až 200. tkanivovej pasáže,sa virus adaptuje na kultúry z jahňacích obličiek nasledovným spósobom: jahňacie obličkovébuňky narastené v skúmavkách v Earlovom médiu s 2 jí bovínneho fetálneho séra sa infikujú dáv-kou 0,1 ml virusu nepěstovaného na bovinnych obláčkových kultúrach a inkubujú pri 37 °C do—tial, kým aspoň 50 $ buniek monolayera nevykazuje charakteristické virusšpecifické změny. 4 208 289 Získané infekčně tkanivové tekutiny sa použiju k očkovaniu falších skúmavkových kultúr Jahna·»cích obličiek a v sériovom pasážovaní virusu na uvedenom druhu tkaniva sa rovnakým spósobompokračuje. Tkanivové tekutiny z každéj 10. pasáže na jahňacich obličkových kultúrach sa kon-trolujú na obsah virusu titráciami běžným spósobom na skúmavkových kultúrach z telacích obli-čiek a obsahom virusu v tekutinách stanoví akumulačným výpočtom podlá formule Reeda a Muencha.Priebeh atenuovania virulencie virusu počas sériového pasážovania sa kontroluje na jedno— ažStvormesačných telatách, ktorým sa i.nas. aplikuje po 4 ml neriedených tkanivových tekutin s 7 * , obsahom najmenej 10 TKCD* virusu na ml, obsah virusu v nosných sekrétoch zistuje titračne15° i·» 3.» 5·, 7·, 9. a 12. deň, a zvieratá kontrolujú termometricky a klinicky. Po dosiahnutítakého stupňa oslabenia virulencie pasážovanóho kmeňa, pri ktorom vyvolá u očkovaných zviératlen mierne zmnoženie nosných sekrétov ktoré si zachovajú serózny charakter, s pretrvávanim infekčnosti sekrétov najdlhSie do 9» dňa, ale nevyvolá poSkodenie nosnej sliznice a naruSeniecelkového zdravotného stavu, s maximálnym zvýSením telesnej teploty o 0,8 °C v období do 14dní od aplikácie, sa virus adaptuje na rast pri subnormálnych teplotách. Postupuje sa přitomtak, že infekčně kultúry sa inkubujú najskór pri 35 °C a v pasážovaní virusu na skúmavkovýchkultúrach sa pokračuje dotial’, kým nástup a vývoj cytopatického účinku virusu až do úplnéhorozpadu tkaniva neprebehne najneskór do 72 hod. od infekcie. Potom sa znižuje teplota pri kto·rej ea inkubujú infikované akúmavkové kultúry vždy o 1 °C a rast virusu posudzuje podlá rov-nakých kritérií ako bolo uvedené vyšSie. Následné sa uskutoční 10—20 sériových pasáží virusu pri 3θ °G a reziduálna virulencia virusu testuje na telatách.Ak vnímavé jedno— až štvormesač—7 8 né telatá nereagujú na podanie velkej dávky virusu /10' až 10 ΤΚΕβ^,θ/ termicky ani klinicky,virus vykazuje1 dobré multiplikačnó vlastnosti na slizniciach dýchadiel, priěom nosné sekrétysú infekčně najviac do 9, dňa a v krvných sérach sa za dva týždne po aplikácii zistí mera—telnó množstvo neutralizačných protilátok, izoluje sa z kmeňa čistá línia plakovou technikoualebo metodou hraničných riedení, s aspoň Sesťnásobným opakováním.
Tento virus sa adaptuje na buňkové kultúry z králičích obličiek a na diploidné buňkovélinie derivované z bovínnych, ovínnych alebo králičích orgánov, spósobom.ako bolo uvedené priadaptovaní virusu z bovínneho na ovínne tkanivo. Virus s dobrými rastovými vlastnostami naovčích a králičích kultúrach sa rýchlo adaptuje a do vysokých titrov pomhožuje na uvedených druhoch tkaniv. Po překonaní aspoň piatich priamych pasáží na uvedených druhoch buňkových7 0 kultur, S dosiahiiutim titrov najmenej 10'* TKED /ml infekčného média, sa potvrdí identita virusu: a/ neutralizáciou infekčnosti monoSpecifickým IBR-antisérom připraveným na králikoch imunizovaných východiskovým virulentným kmeňom alebo niektorým zo zbierkových kmeňxov IBR— IPVj -b/ pomocou imunofluorescencie ofarbením buňkových kultúr infikovaných kontrolovaným kmeňom Specifickým konjugovaným IBR-imunoglobulínomj c/ intranazálnym očkovahím vnímavých dvoj- až Stvormesačných teliat avirulentným kmeňom v dávke najmenej 10° TKID so zisťovaním5o množenia virusu, vývoja zmien na slizniciach nosa a celkového zdravotného stavu zvieratj d/stanovením titrov neutralizačných protilátok v křvných sérach teliat za dva, Styri a Šest

Claims (2)

  1. 5 208 289 týždňov po ihtranazálnom očkovaníj e/ dókazom rezistencie intranazálne očkovaných teliat proti infekcii známým virulentným kmeňom -virusu IBR—IPV. Kmeň, ktorý u jedno až štvormesačných vnímavých teliat nevyvolá po i.nas. aplikácii v7 množstve najmenej 10' TKID_ virusu poruchy zdravotného stavu, vykazuje dobré rastové vlast»5° e nosti na slizniciach horných dýchadiel /najmenej ICr ΤΚΙΏ^θ virusu na 1 ml sekretu na 3«deňpo aplikácii/ ale s vylučováním v nosných sekrétoch najdlhšie do 9· dňa, je vhodný pre příp-ravu žívej vakcíny proti IBR-IPV s možnošťou produkcie virusu na kultárach z bovínnych Obli-čiek a semeníkov, králičích obličiek a na diploidných buňkových líniach derivovaných z bovín-nych a ovinnych orgánov. Novovyšlachtený kmeň podlá vynálezu BNZ/K 4C CAPM V-257 je schopný množit sa na bovín-nych, králičích a jahňacich· obličkových kulturách a ich subpasáž, ako aj 'definovaných diplo—idných buňkách derivovaných z bovínnych) , jahňacich a králičích orgánov. Uvedené vlastnostikmeňa podlá vynálezu dovolujú výrobu bezpečnej a účinnej živej IBR—IPV vakcíny, s možnošťouvolby viacerých druhov tkaniv pre jej produkciu. PREDMET VYNÁLEZU
    1. Spósob šlachtenia kmeňa virusu infekčněj bovínnej rhinotracheitídy a,pustulárnej vulvova—ginitídy vyznačujúci sa tým, že kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnejvulvovaginitídy INRV 3760 sa najprv 200 až 250 krát pasážuje na primárných kultúrách telacíchobličkových buniek pri teplote 36 °C až 37 °C a potom 30 až 50 krát na primárných' buňkovýchkultúrach jahňacich obličiek pri teplote 35 °C až 37 °C, v ktorom sa pokračuje pri postupnomznižovaní kultivačnej teploty o 1 °C na hodnotu 28 °C a následné sa pasážuje pri teplotě 30 °C na primárných buňkových kultúrach jahňacich obličiek alebo semeníkov a na primárnýchbuňkových kultúrach králičích obličiek.
  2. 2. Avxrulentný kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnej vulvovaginitídyBNZ/K 4 G CAPM V-257 so zvýšenou schopnosťou reprodukcie vlastněj vírusovej substancie na tka1nivových kultúrach, získaný spósobom podlá bodu 1.
CS469979A 1979-07-04 1979-07-04 Avirulentný kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnej vulvovaginitídy a spósob jeho vyšlechtěnia CS208289B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS469979A CS208289B1 (sk) 1979-07-04 1979-07-04 Avirulentný kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnej vulvovaginitídy a spósob jeho vyšlechtěnia

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS469979A CS208289B1 (sk) 1979-07-04 1979-07-04 Avirulentný kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnej vulvovaginitídy a spósob jeho vyšlechtěnia

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS208289B1 true CS208289B1 (sk) 1981-09-15

Family

ID=5390343

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS469979A CS208289B1 (sk) 1979-07-04 1979-07-04 Avirulentný kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnej vulvovaginitídy a spósob jeho vyšlechtěnia

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS208289B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wensvoort et al. Bovine viral diarrhoea virus infections in piglets born to sows vaccinated against swine fever with contaminated vaccine
KR100444809B1 (ko) 저병원성생균백신및그제조방법
Maassab et al. Laboratory and clinical characteristics of attenuated strains of influenza virus
Zinsser et al. A study of rickettsiae grown on agar tissue cultures
US3959466A (en) Highly attenuated cytomegalovirus vaccine and production thereof
DK162421B (da) Hundeparvovirus-vaccine, fremgangsmaade til fremstilling heraf og virusstamme til brug i vaccinen
US3520972A (en) Feline virus vaccines obtained by propagation and serial passage attenuation of virulent feline viruses in diploid feline embryo tissue cell serial passage subculture strains
US4031204A (en) Feline viral rhinotracheitis vaccine and combination feline viral rhinotracheitis-calicivirus vaccine prepared therefrom
NO753676L (cs)
Gelb Jr et al. Effect of serial embryo passage of an Arkansas-type avian infectious bronchitis virus isolate on clinical response, virus recovery, and immunity
KR100531491B1 (ko) 백신으로서 소 호흡 코로나바이러스
Van der Heide et al. Pathogenicity for chickens of a reovirus isolated from turkeys
Saito et al. Attenuation of the myxoma virus and use of the living attenuated virus as an immunizing agent for myxomatosis
JPS5812258B2 (ja) ナマジヤクドクデンセンセイウシビコウキカンエンウイルスワクチンルイノセイゾウホウ
US3585266A (en) Live rabies virus vaccine and method for the production thereof
Sellers et al. The behaviour of strains of the virus of foot-and-mouth disease in pig, calf, ox and lamb kidney tissue cultures
Fattal et al. Enterovirus types in Israel sewage
US3000788A (en) Propagation of modified infectious canine hepatitis virus in tissue cultures of pig kidney and the preparation of a vaccine therefrom
CS208289B1 (sk) Avirulentný kmeň virusu infekčnej bovínnej rhinotracheitídy a pustulárnej vulvovaginitídy a spósob jeho vyšlechtěnia
US4312947A (en) Process for the preparation of a vaccine against panleucopenia of the cat
GB1560185A (en) Respiratory syncytical virus vaccine
CN112807424A (zh) 牛病毒性腹泻、牛传染性鼻气管炎二联活疫苗及其制备方法
Li et al. Serum neutralization tests in mice and in tissue culture against three types of poliomyelitis virus
Basurco et al. In vitro studies and in vivo immunisation with the first viral haemorrhagic septicaemia viruses isolated in Spain compared to international reference serotypes
RU2140982C1 (ru) Аттенуированный штамм трансмиссивного гастроэнтерита свиней (transmissive gastroenteritis virus)