CS206823B1 - Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture - Google Patents

Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture Download PDF

Info

Publication number
CS206823B1
CS206823B1 CS298279A CS298279A CS206823B1 CS 206823 B1 CS206823 B1 CS 206823B1 CS 298279 A CS298279 A CS 298279A CS 298279 A CS298279 A CS 298279A CS 206823 B1 CS206823 B1 CS 206823B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
oxidized
polymers
sorbents
saccharides
reaction
Prior art date
Application number
CS298279A
Other languages
English (en)
Inventor
Karel Filka
Jiri Coupek
Jan Kocourek
Original Assignee
Karel Filka
Jiri Coupek
Jan Kocourek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Karel Filka, Jiri Coupek, Jan Kocourek filed Critical Karel Filka
Priority to CS298279A priority Critical patent/CS206823B1/cs
Priority to DE19803014632 priority patent/DE3014632A1/de
Priority to CH322680A priority patent/CH653348A5/de
Priority to GB8013733A priority patent/GB2048896B/en
Priority to FR8009553A priority patent/FR2455061A3/fr
Publication of CS206823B1 publication Critical patent/CS206823B1/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/22Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof comprising organic material
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08GMACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED OTHERWISE THAN BY REACTIONS ONLY INVOLVING UNSATURATED CARBON-TO-CARBON BONDS
    • C08G81/00Macromolecular compounds obtained by interreacting polymers in the absence of monomers, e.g. block polymers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08HDERIVATIVES OF NATURAL MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08H1/00Macromolecular products derived from proteins

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
  • Other Resins Obtained By Reactions Not Involving Carbon-To-Carbon Unsaturated Bonds (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)

Description

Vynález se týká sorbentů pro sacharidy, glyko- i proteiny a polymery, obsahující sacharidy a způso- ; bu jejich výroby.
Bílkoviny, které jsou schopny selektivně vytvářet komplexy s cukry, polysacharidy a s glykopro- ’· teiny a které nesou obecný název lektiny byly izolovány z řady rostlinných i živočišných zdrojů. Jsou charakterizovány nejen svým původem, ale především svojí specifickou afinitou к cukrům a jejich derivátům.
Navázáním lektinů na vhodný nosič vznikají specifické adsorbenty pro sacharidy, podmínkou vazebné reakce je zachování aktivního sorpčního . centra v molekule lektinů, které při vazebné reakci ; nesmí být blokováno. Lektiny obsahující sorbenty i nacházejí použití v analytické i preparativní afinitní ! chromatografií a při selektivních precipitačních í Ϊ technikách používaných při izolaci biologicky ak- j ; tivních frakcí. ;
Lektiny byly vázány na polysacharidy dextrano- | vého případně agarosového typu bromkyanovou J ! metodou a využity pro celou řadu izolačních i technik při separaci glykoproteinů (K. Aspberg = ! and J. Porath, Acta Chem. Scand. 24 (1970) 1839), ' ! dextranů (K. O. Lloyd, Arch. Biochem. Biophys. j L137 (1970) 460) nebo buněk (G. H. Edelman, U. i i Rutishauser and C. F. Millete, Proč. Nat. Acad. Sci. J ΐ USA, 68 (1971) 2153). Výhodou procesu je jeho j |206823 ' vysoká selektivita a rychlost. Polysacharidové nosiče dextranového nebo polysacharidového typu i však mají i některé nevýhodné vlastnosti, mezi něž patří především velké rozdíly v botnání v roztocích s proměnnou iontovou silou a pH, nízká mechanická pevnost částic a odtud plynoucí potíže s ucpáváním kolon plněných těmito materiály při zvýšených tlacích a průtokových rychlostech mobilní fáze. V neposlední řadě může být na překážku i nízká · odolnost vůči hydrolýze a působení mikroorganis: mů. Způsob vazby molekul lektinů bromkyanovou ! metodou představuje nutnost pracovat s vysoce ! toxickým aktivačním činidlem, jehož účinnost je poměrně nízká. Vazba, která při bromkyanovém postupu vzniká není pro některé účely dostatečně ' stabilní, bylo pozorováno její postupné hydrolyticI ké štěpení doprovázené snižováním kapacity sorí bentu.
Hmoty podle tohoto vynálezu odstraňují uvede- , né nedostatky dosud známých sorpčních materiálů. ’ Kovalentní vazbu cukerných molekul lze s výho- j dou uskutečnit postupem podle čs. autorského i osvědčení č. 195 044 využívajícím kysele katalýzo- I váné reakce sacharidů s polymery obsahujícími hydroxylové skupiny v dioxanu nebo v tetráhydro- ΐ furanu. К této reakci lze využít vedle hydrofilních i syntetických polymerů (makroporezní hydroxyal- ’ í kylakryláty a hydroxyalkylmethakryláty, částečně !
hydrolysovaný síťovaný polyvinylacetát a další) i řady přirozených nebo polosyntetických hydrofilhích polymerů (polydextrany, agarosové polymery, celulóza aj.) protože vlastní reakci je nutno provádět v bezvodém prostředí, které vylučuje případnou hydrolýzu glykosidických nebopeptidivkých vazeb.
Výsledné glykosylové deriváty polymerů se podrobí oxidaci jodistanem, jehož působením dochází к rozštěpení C-C vazby mezi dvěma atomy uhlíku s vicinálné vázanými hydroxyly v molekulách kovalentné vázaných sacharidů za vzniku dvou aldehydických skupin, které jsou značně reaktivní. Oxidací aktivovaný polymer reaguje v dalším stupni s lektiny za vzniku Schiffovy báze. Rychlost této reakce závisí na koncentraci složek a na teplotě a je značně ovlivněna hodnotou pH reakčního prostředí. Nezreagované aldehydické funkční skupiny jsou redukovány působením borohydridu sodného. Vzniklé sorpční, případně precipitační materiály se vyznačují vysokou kapacitou.
Předmětem vynálezu jsou selektivně působící polymemí sorbenty pro sacharidy, glykoproteiny a polymery obsahující sacharidy.
, Jejich podstata spočívá v tom, že na nosičích, vybraných ze skupiny oxidovaných polysacharidů, oxidovaných glykosilovaných hydroxyalkylakrylátů nebo hydroxyalkylmethakryrátů, oxidovaného polyakrylamidu a polyvinylalkoholu, jsou kovalentně vázáný lektiny.
Způsob výroby těchto sorbentů je vyznačen tím, že se polymery, obsahující kobalentně vázané sacharidy oxidují jodistanem sodným nebo draselným, načež se takto aktivované polymery ponechají reagovat s lektiny při teplotách 40 °C v tlumivých roztocích pH 7 až 12, přičemž se po reakci zbývající aldehydické funkční skupiny eliminují působením redukčních činidel, s výhodou borohydrídem sodným.
Ve svém účinku jsou hmoty podle vynálezu srovnatelné se známými a dostupnými materiály na bázi polysacharidů s vázanými lektiny bromkyanovým postupem, přičemž za kriterium účinnosti je brána adsorpční kapacita sorbentů. Způsob výroby podle vynálezu je z technologického hlediska podstatně snazší, nevyžaduje zvláštních opatření pro práci s vysoce toxickými aktivačními Činidly a dovoluje jednoduchou regulaci stupně konverze vazebné reakce při vysoké reprodukovatelnosti. Navíc neoxidované sacharidové molekuly vázané na nosiči mu propůjčují hydrofilní charakter nebo jeho původní hydrofilnost zvyšují. Tím se snižuje pravděpodobnost nespecifických interakcí složek dělených systémů při použití sorbentů v afinitní chromatografií.
Předmět vynálezu je objasněn v následujících příkladech aniž by však byl těmito příklady jakkoli omezován.
Příklad 1 g kopolymerů 2-hydroxyethylmethakrylátu s ethylenmethakrylátem s vylučovacím limitem molekulové hmotnosti 1 000 000 obsahující 16 % kovalentně vázané galaktosy (Separon HEMA1000-Gal) bylo zbotnáno ve vodě (150 ml) po dobu 20 hodin. Poté byla kapalina odsáta přidáno 346 ml 0,1 M NaJO4. Oxidace byla prováděna po dobu 100 minut při teplotě 25 °C. Produkt byl promyt vodou do negativní reakce na oxidující látky (Mn++), ekvilibrován pufrem, ve kterém se provádí vazba lektinu (acetátové pufry s různým pH) a použit v následující vazebné reakci.
140 ml acetátového pufru pH 7,8 bylo použito : pro rozpuštění 2,4 g lektinu z Canavalia ensiformis DC (konkanavalin) а к roztoku byl přidán ekvilibrovaný oxidovaný nosič z předchozího stupně ve formě husté kaše spolu s 250 mgD-glukózy. Směs byla v lednici při 4 °C míchána po dobu 24 hodin. Poté bylo přidáno 25 mg NaBH4 a po 20 minutách další dávka 25 mg NaBH4. Směs byla s borohydridem sodným ponechána celkem 40 min. Poté byl sorbent promyt acetátovým pufrem pH 7,3 a dále třikrát promyt 200 ml Tris HC1 pufru v 1 mol NaCl· pH 8 a acetátovým pufrem v 1 mol NaCl pH 4.ř Takto zpracovaný sorbent byl přenesen do kolony a promýván pufrem, v němž byl prokázán sorpční účinek vůči derivátům sacharidů. Množství na váza-> něho konkanavalinu 15 mg/g suchého nosiče.
Účinek vázaného lektinu byl ověřen sorpcí syntetického polymeru (akrylamidu) obsahujícího kovalentně vázané sacharidy (glukosu, galaktosu) následujícím postupem:
Na sloupec 1 g nosiče s vázaným lektinem po ekvilibraci acetátovým pufrem pH 7,3 bylo naneseno 0,3427 g rozpustného polyakrylamidového polymeru s obsahem 9,4 % hmot, glukózy ve startov' ním pufru. Při eluci 102 ml pufru byl sledován obsah cukru až do nulové hodnoty. Na kolonu byl pak uváděn roztok 0,5 mol methyl-alfa-D-glukopyranosidu (30 ml) a pak byla kolona promývána· startovním pufrem pH 7,3. Eluát byl jímán, dialy- : zován a lyofilizován. Gravimetrickým stanovením: bylo stanoveno 0,016 g polymeru. Na základě látkové bilance bylo při chromatografií stanoveno’
3,1 % ztrát glykosylovaného polyakrylamidového standardu.
Příklad 2
Sorbent byl připraven a zpracován analogicky· j ako v příkladu 1. Jeho účinek byl ověřen selektivní sorpcí ovalbuminu, dále bylo hodnoceno opakované použití. 1 g sorbentů podle příkladu 1 svázaným konkanavalinem bylo ekvilibrováno v acetátovém pufru pH 7,3 a poté byla provedena ekvilibrace v Tris HC1 pufru pH 7,8 + 0,15 M NaCl. Na sloupec bylo naneseno 49 mg ovalbuminu v 5 ml startovního pufru a systém byl promýván pufrem až; do negativní reakce na bílkoviny (UV absorbance 280 nm) za současného jímání eluátu. Poté byl nasazen 0,1 M roztok Me-alfa-D-glukopyranosidu (50 ml). Eluát byl jímán, dialyzován a lyofilizován. Výtěžek v eluátu činil 7,8 mg, obsah nevázané bílkoviny byl stanoven na 40 mg. ztráty představují 2,44 %.
Sloupec byl pak promyt 20 ml Tris HC1 pufrem pH 7,8 + 1 MNaCla20 mlacetátovéhopufru 4- 1 M NaCl pH 4, ekvilibrován Tris HC1 pufrem + 0,15 M NaCl pH 7,8 a celý postup byl opakován.
Při druhém cyklu byl stanoven obsah bílkoviny v eluentu po promytí Me-alfa-D-glukopyránosidem 7,6 mg při třetím 7,8 mg a při čtvrtém 7,6 mg.
Příklad 3
Sorbent byl připraven postupem analogickým jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že místo kopolymeru s vylučovacím limitem 1 mil. daltonů bylo jako nosiče použito kopolymerů 2-hydróxyethylmethakrylátu s ethylendimethakrylátem.o vylučovacím limitu molekulové hmotnosti 300 000. Při ověření účinku glykosylovaným polyakrylamidem byla nalezena 4,6 % ztráta (naneseno 0,3470 g, v eluentu stanoveno 0,0154 g). Výchozí sorbent obsahoval kovalentně vázanou glukózu v obsahu 18 % hmotnostních.
Příklad 4 : К vazbě lektinu z Ricinus communis byl použit oxidovaný nosič z příkladu 3. 1,9 g lektinu bylo rozpuštěno v 70 ml acetátového pufru pH 7,3 obsahujícího 220 mg galaktosy a přidáno 10 g oxidovaného nosiče. Eliminace nezreagovaných aldehydických funkčních skupin byla provedena 25 mg NaBH4, doba reakce byla stejná jako v příkladu 1.
Účinek byl testován polyakrylamidem s obsahem cukru 9,4 % hmotn. Naneseno 0,3412 g, výtěžek v eluentu 0,0154 g, ztráty 3,8%.
Příklad 5
Vazba lektinu z Ricinus communis byla próvedena analogicky jako v příkladu 4 s tím rozdílem, že oxidovaný nosič měl vylučovací limit molekulové váhy 300 000 daltonů.
Při ověření účinku polykrylamidem s vázanou glukózou bylo naneseno na 1 g sloupen 0,3400 g polymeru, výtěžek v eluentu 0,0171, ztráty 4,75%.
Příklad 6
4,2 g sférické celulózy bylo ponecháno botnat po dobu 20 hodin v 50 ml dioxanu nasyceného plynným HC1 na obsah 16 % váh. Po této době bylo к reakční směsi přidáno 2,0 g D-galaktózy a při laboratorní teplotě byla směs třepána 24 hodin. Po této době byl obsah nádoby vlit do 5 litrů vody a produkt byl po odsátí na filtru opakovaně promýván vodou do neutrálního pH a negativní reakce na cukr.
4,0 g sférické celulózy s vázanou D-galaktosou (analýzou byl stanoven obsah vázané D-galaktózy
11,7 % váh.) bylo ponecháno botnat po dobu 20 hodin v destilované vodě. Voda byla odfiltrována а к mokrému gelu bylo přidáno 100 ml 0,1
M NaJO4. Oxidace při laboratorní teplotě probíha206823 la 1 hod. za míchání. Pak byl roztok NaJO4 odfiltrován a gel byl promýván na sloupci destilovanou vodou až do dosažení vodivosti eluátu rovné vodivosti použité destilované vody. К celulózovému gelu byl pak přidán borátový pufr pH 8,5 a po 1 hodině 500 mg konkanaválinu A (lektinu z Canavalia ensiformis). Lektin byl inhibován methylα-D-glukopyranosidem. Po 70 hodinách stání při teplotě 4 °C byly nezreagované aktivní funkční skupiny zredukovány při 4 °C 20 mg NaBH4 při míchání po dobu 20 minut. Gel byl pak střídavě promýván acetátovým pufrem pH 4,1 (1 M NaCl) a TRIS-HC1 pufrem 9 (1 m NaCl). V konečné fázi před použitím byl gel skladován v acetátovém pufru pH 6 (1 M NaCl) obsahujícím 10~3 M MnCl2 a 1СГ3 M CaCl2. Obsah navázané bílkoviny byl stanoven 9,0 mg/ml vlhkého gelu.
Příklad 7
Aminoglykosylový derivát celulózy byl připraven způsobem analogickým jako v příkladu 6 s tím rozdílem, že к reakci bylo vzato 0,8 g N-acetyl-Dglukosaminu a produkt nebyl oxidován, nýbrž bylo stanoveno pouze množství navázaného aminocukru na celulosovém nosiči.
Příklad 8
Analogický pokus jako v příkladu 7 byl proveden s nosičem, tvořeným hydroxyethylmethakrylátovým kopolymerem s vylučovacím limitem molekulové hmotnosti 1 000 000, viz příklad 1. Obsah vázaného aminocukru 8,9 % váh. je dvojnásobkem proti příkladu 7.
Příklad 9
4,0 g rozpustného plyakrylamidového gelu se zapolymerovaným allylglukosidem (připraven dle V. Hořejší, P. Šmolek and J. Kocourek, Biochim. Biophys, Acta, 538 (1978) 293-298) bylo oxidováno ve 100 ml 0,1 M NaJO4 po dobu 1 hodiny při teplotě laboratoře. Po této době byla reakční.směs zředěna na 250 ml a ponechána dialyzovat proti destilované vodě. Po odstranění jodistanu z reakční směsi dialýzou byl gel lyofilizován. Lyofilizát byl rozpuštěn ve 20 ml destilované vody. К roztoku bylo přidáno 500 mg lektinu z Canavalia ensiformis iňhibovaného methyl-a-D-glukopyranosidem. Směs reagovala po dobu 70 hodin při 4 °C, pak byly zredukovány zbylé aldehydické skupiny reakcí s NaBH4 stejně jako v příkladu 6. Konečná reakční směs byla po zahuštění lyofilizací rozdělena preparativní gelovou chromatografií na dextranovém gelu na frakci lektinu a frakci obsahující lektin navázaný na glykosylovaném polymemím akrylamidu.
Příklad 10
4,0 g polyvinylalkoholu o molekulové hmotnosti
125 000 a stupni hydrolýzy 87—89 %, který byl substituován D-glukózou podle čs. autorského osvědčení č. 195044 bylo oxidováno analogicky jako v příkladě 9.
Přikladli
Sorbent byl připraven postupem analogickým jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že místo kopolymeru ethylendimethakrylátu s hydroxyethylmet------( hylakryíátu s ethylendiakrylátem o vylučovacím < limitu molekulové váhy 500 000 daltonů. Při ověření účinku glykosylovaného polyakrylamidu : při sorpci byla nalezena ztráta 5,3 %.
hakrylátem bylo použito kopolymerů hydroxyet-

Claims (2)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    1. Sorbenty pro sacharidy, glykoproteiny a polymery, obsahující sacharidy, vyznačené tím, že na nosičích, vybraných ze skupiny oxidovaných polysacharidů, oxidovaných glykosilovaných hydroxyalkylakrylátů nebo hydroxyalkylmethakrylátu, oxidovaného polyakrylamidu a polyvinylalkoholu, jsou kovalentně vázány lektiny.
  2. 2. Způsob výroby sorbentů podle bodu 1, vy značený tím, že se polymery, obsahující kovalentně vázaně sacharidy, oxidují jodistanem sodným nebo draselným, načež se takto aktivované polymery ponechávají reagovat s lektiny při teplotě 0 až ,40 °C v tlumivých roztocích pH 7 až 12, přičemž se po reakci zbývající aldehydové funkční skupiny z polymeru eliminují působením redukčních činidel, s výhodou borohydridem sodným.
    Vytiskly Moravské tiskařské závody, provoit 12, Leninova 21, Olomouc
CS298279A 1979-04-28 1979-04-28 Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture CS206823B1 (en)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS298279A CS206823B1 (en) 1979-04-28 1979-04-28 Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture
DE19803014632 DE3014632A1 (de) 1979-04-28 1980-04-16 Sorbenten fuer saccharide, glykoproteine und saccharide enthaltende polymerisate und verfahren zu deren herstellung
CH322680A CH653348A5 (de) 1979-04-28 1980-04-25 Sorbentien fuer saccharide und saccharide enthaltende polymerisate und verfahren zur herstellung derselben.
GB8013733A GB2048896B (en) 1979-04-28 1980-04-25 Sorbents for saccharides glycoproteins and saccharide-containing polymers and a method of their manufacture
FR8009553A FR2455061A3 (fr) 1979-04-28 1980-04-28 Polymeres contenant des sorbants des saccharides, des glycoproteines et des saccharides, et procede pour leur preparation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS298279A CS206823B1 (en) 1979-04-28 1979-04-28 Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS206823B1 true CS206823B1 (en) 1981-07-31

Family

ID=5368590

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS298279A CS206823B1 (en) 1979-04-28 1979-04-28 Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture

Country Status (5)

Country Link
CH (1) CH653348A5 (cs)
CS (1) CS206823B1 (cs)
DE (1) DE3014632A1 (cs)
FR (1) FR2455061A3 (cs)
GB (1) GB2048896B (cs)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE8202544L (sv) * 1982-04-23 1983-10-24 Larsson Per Olof Lektinhaltigt separationsmedel
EP0211756A1 (en) * 1985-08-01 1987-02-25 Merck & Co. Inc. Assay for varicella-zoster virus (VZV) antibodies
GB2184732B (en) * 1985-12-26 1990-07-11 Showa Denko Kk Active support substance and adsorbent for chromatography
ES2058020B1 (es) * 1992-07-03 1995-10-01 Consejo Superior Investigacion Procedimiento de fabricacion de soportes solidos inertes activados con grupos amino.
CN114236138B (zh) * 2021-12-20 2023-11-07 杨霜 一种岩藻糖糖蛋白荧光显色载体的制备方法、荧光强度参考载体的制作方法及用途

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CH536860A (fr) * 1971-03-31 1973-05-15 Nestle Sa Procédé de préparation d'un produit doué d'activité enzymatique, insoluble en milieu aqueux

Also Published As

Publication number Publication date
CH653348A5 (de) 1985-12-31
FR2455061B3 (cs) 1981-03-20
GB2048896A (en) 1980-12-17
GB2048896B (en) 1983-03-16
DE3014632C2 (cs) 1992-05-21
FR2455061A3 (fr) 1980-11-21
DE3014632A1 (de) 1980-11-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3645852A (en) Method of binding water-soluble proteins and water-soluble peptides to water-insoluble polymers using cyanogen halide
US6699386B2 (en) Endotoxin adsorbent, and a method of removing endotoxin by using the same
US5328603A (en) Lignocellulosic and cellulosic beads for use in affinity and immunoaffinity chromatography of high molecular weight proteins
Lloyd The preparation of two insoluble forms of the phytohemagglutinin, concanavalin A, and their interactions with polysaccharides and glycoproteins
US4269605A (en) Method and kit for separation of glycoproteins
CA1334042C (en) Process for the preparation of a material for affinity chromatography
US8496123B2 (en) Process for cross-linking cellulose ester membranes
US4411832A (en) Polysaccharide matrices comprising macromolecular spacer arms for use as adsorbents in affinity chromatography techniques
KR101355276B1 (ko) 크로마토그래피 매트릭스의 제조
JPS5839576B2 (ja) 生物学的巨大分子を可逆的に固定しうる新規物質並びにその製造方法
EP1729867B1 (en) A method for chromatographic purification
US3649456A (en) Separation of polypeptide substances with macroreticular resins
GB2024829A (en) Method and Product for Separation of Glycoproteins
US4281233A (en) Hydrophilic macroporous three dimensional copolymers of hydroxyalkyl acrylates or methacrylates with crosslinking agents and the method of their manufacturing
US4446275A (en) Sorbent for saccharides, glycoproteins and polyesters comprising a lectin covalently bonded with a vehicle and method for preparation thereof
CS206823B1 (en) Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture
Sasaki et al. Improved method for the immobilization of heparin
CA1283073C (en) Adsorbent for purification of blood coagulation factor viii and process for purification of blood coagulation factor viii using the same
EP0165800A1 (en) Support material for immobilisation of ligands
JP2903251B2 (ja) アフィニティークロマトグラフィー用担体およびアンチトロンビン▲iii▼の精製方法
Bussey et al. Specific ion mediated chromatography of glycoproteins and neutral polysaccharides on substituted agarose gels
Lis et al. [32] Wheat germ agglutinin
Andrew et al. Affinity chromatography of arabinogalactan-proteins
WO1991007427A1 (en) Carrier for column chromatography, process for separating and purifying water-soluble polymeric substance using said carrier, novel pectic acid-cellulose gel and process for preparing the same, and adsorbent for affinity chromatography
CN1191866A (zh) 以纤维素为基质的亲和膜介质的合成方法