CS206823B1 - Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture - Google Patents

Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture Download PDF

Info

Publication number
CS206823B1
CS206823B1 CS298279A CS298279A CS206823B1 CS 206823 B1 CS206823 B1 CS 206823B1 CS 298279 A CS298279 A CS 298279A CS 298279 A CS298279 A CS 298279A CS 206823 B1 CS206823 B1 CS 206823B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
oxidized
polymers
sorbents
saccharides
reaction
Prior art date
Application number
CS298279A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Karel Filka
Jiri Coupek
Jan Kocourek
Original Assignee
Karel Filka
Jiri Coupek
Jan Kocourek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Karel Filka, Jiri Coupek, Jan Kocourek filed Critical Karel Filka
Priority to CS298279A priority Critical patent/CS206823B1/en
Priority to DE19803014632 priority patent/DE3014632A1/en
Priority to GB8013733A priority patent/GB2048896B/en
Priority to CH322680A priority patent/CH653348A5/en
Priority to FR8009553A priority patent/FR2455061A3/en
Publication of CS206823B1 publication Critical patent/CS206823B1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/22Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof comprising organic material
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08GMACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED OTHERWISE THAN BY REACTIONS ONLY INVOLVING UNSATURATED CARBON-TO-CARBON BONDS
    • C08G81/00Macromolecular compounds obtained by interreacting polymers in the absence of monomers, e.g. block polymers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08HDERIVATIVES OF NATURAL MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08H1/00Macromolecular products derived from proteins

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
  • Other Resins Obtained By Reactions Not Involving Carbon-To-Carbon Unsaturated Bonds (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)

Abstract

Lectines are covalently bonded on vehicles selected from the group comprising oxidized polysaccharides, oxidized glycosilized hydroxyalkylacrylates or hydroxyalkylmethacrylates, oxidized polyacrylamide and polyvinylalcohol to form sorbents. The vehicles may be oxidized by the action of sodium or potassium periodate. Following the bonding of the lectines, remaining active aldehydic groups in the vehicle may be eliminated by the action of a reductant such as sodium borohydride.

Description

Vynález se týká sorbentů pro sacharidy, glyko- i proteiny a polymery, obsahující sacharidy a způso- ; bu jejich výroby.The invention relates to sorbents for carbohydrates, glycoproteins and polymers containing carbohydrates and processes; production.

Bílkoviny, které jsou schopny selektivně vytvářet komplexy s cukry, polysacharidy a s glykopro- ’· teiny a které nesou obecný název lektiny byly izolovány z řady rostlinných i živočišných zdrojů. Jsou charakterizovány nejen svým původem, ale především svojí specifickou afinitou к cukrům a jejich derivátům.Proteins that are capable of selectively forming complexes with sugars, polysaccharides and glycoproteins, and which bear the common name lectins, have been isolated from a variety of plant and animal sources. They are characterized not only by their origin, but also by their specific affinity for sugars and their derivatives.

Navázáním lektinů na vhodný nosič vznikají specifické adsorbenty pro sacharidy, podmínkou vazebné reakce je zachování aktivního sorpčního . centra v molekule lektinů, které při vazebné reakci ; nesmí být blokováno. Lektiny obsahující sorbenty i nacházejí použití v analytické i preparativní afinitní ! chromatografií a při selektivních precipitačních í Ϊ technikách používaných při izolaci biologicky ak- j ; tivních frakcí. ;By binding the lectins to a suitable carrier, specific adsorbents for carbohydrates are formed, the binding reaction being conditioned by the maintenance of active sorption. centers in the lectin molecule, which in the binding reaction; must not be blocked. Lectins containing sorbents also find use in analytical and preparative affinity ! chromatography and selective precipitation techniques used in the isolation of biologically and ac; fractions. ;

Lektiny byly vázány na polysacharidy dextrano- | vého případně agarosového typu bromkyanovou J ! metodou a využity pro celou řadu izolačních i technik při separaci glykoproteinů (K. Aspberg = ! and J. Porath, Acta Chem. Scand. 24 (1970) 1839), ' ! dextranů (K. O. Lloyd, Arch. Biochem. Biophys. j L137 (1970) 460) nebo buněk (G. H. Edelman, U. i i Rutishauser and C. F. Millete, Proč. Nat. Acad. Sci. J ΐ USA, 68 (1971) 2153). Výhodou procesu je jeho j |206823 ' vysoká selektivita a rychlost. Polysacharidové nosiče dextranového nebo polysacharidového typu i však mají i některé nevýhodné vlastnosti, mezi něž patří především velké rozdíly v botnání v roztocích s proměnnou iontovou silou a pH, nízká mechanická pevnost částic a odtud plynoucí potíže s ucpáváním kolon plněných těmito materiály při zvýšených tlacích a průtokových rychlostech mobilní fáze. V neposlední řadě může být na překážku i nízká · odolnost vůči hydrolýze a působení mikroorganis: mů. Způsob vazby molekul lektinů bromkyanovou ! metodou představuje nutnost pracovat s vysoce ! toxickým aktivačním činidlem, jehož účinnost je poměrně nízká. Vazba, která při bromkyanovém postupu vzniká není pro některé účely dostatečně ' stabilní, bylo pozorováno její postupné hydrolyticI ké štěpení doprovázené snižováním kapacity sorí bentu.Lectins were bound to dextrano-polysaccharides agarose type of cyanogen bromide. method and used for a variety of isolation and glycoprotein separation techniques (K. Aspberg = J. and J. Porath, Acta Chem. Scand. 24 (1970) 1839); dextrans (KO Lloyd, Arch. Biochem. Biophys. j L137 (1970) 460) or cells (GH Edelman, U. ii Rutishauser and CF Millete, Proc. Nat. Acad. Sci. J. USA, 68 (1971) 2153) . The advantage of the process is its high selectivity and speed. However, polysaccharide carriers of the dextran or polysaccharide type also have some disadvantageous properties, including, in particular, large differences in swelling in solutions of variable ionic strength and pH, low mechanical strength of the particles, and hence difficulties in clogging columns loaded with these materials at elevated pressures and flow rates. mobile phase speeds. Last but not least, the resistance to hydrolysis and the action of microorganisms may be an obstacle. Method for Binding Cyanogen Lectins The method represents the need to work with high ! a toxic activating agent whose activity is relatively low. The bond formed in the cyanogen bromide process is not sufficiently stable for some purposes, its gradual hydrolytic cleavage was observed, accompanied by a decrease in sorbent bent capacity.

Hmoty podle tohoto vynálezu odstraňují uvede- , né nedostatky dosud známých sorpčních materiálů. ’ Kovalentní vazbu cukerných molekul lze s výho- j dou uskutečnit postupem podle čs. autorského i osvědčení č. 195 044 využívajícím kysele katalýzo- I váné reakce sacharidů s polymery obsahujícími hydroxylové skupiny v dioxanu nebo v tetráhydro- ΐ furanu. К této reakci lze využít vedle hydrofilních i syntetických polymerů (makroporezní hydroxyal- ’ í kylakryláty a hydroxyalkylmethakryláty, částečně !The compositions of the present invention overcome these drawbacks of the prior art sorption materials. The covalent bonding of the sugar molecules can preferably be carried out according to the procedure of MS. No. 195,044, utilizing the acid-catalyzed reaction of saccharides with hydroxyl-containing polymers in dioxane or tetrahydro-furan. In addition to hydrophilic and synthetic polymers (macroporous hydroxyalkylacrylates and hydroxyalkylmethacrylates), this reaction can be used in part!

hydrolysovaný síťovaný polyvinylacetát a další) i řady přirozených nebo polosyntetických hydrofilhích polymerů (polydextrany, agarosové polymery, celulóza aj.) protože vlastní reakci je nutno provádět v bezvodém prostředí, které vylučuje případnou hydrolýzu glykosidických nebopeptidivkých vazeb.hydrolysed cross-linked polyvinyl acetate and others) as well as a number of natural or semi-synthetic hydrophilic polymers (polydextrans, agarose polymers, cellulose, etc.) because the reaction itself has to be carried out in an anhydrous environment, which excludes possible hydrolysis of glycosidic or peptide bonds.

Výsledné glykosylové deriváty polymerů se podrobí oxidaci jodistanem, jehož působením dochází к rozštěpení C-C vazby mezi dvěma atomy uhlíku s vicinálné vázanými hydroxyly v molekulách kovalentné vázaných sacharidů za vzniku dvou aldehydických skupin, které jsou značně reaktivní. Oxidací aktivovaný polymer reaguje v dalším stupni s lektiny za vzniku Schiffovy báze. Rychlost této reakce závisí na koncentraci složek a na teplotě a je značně ovlivněna hodnotou pH reakčního prostředí. Nezreagované aldehydické funkční skupiny jsou redukovány působením borohydridu sodného. Vzniklé sorpční, případně precipitační materiály se vyznačují vysokou kapacitou.The resulting glycosyl derivatives of the polymers are subjected to periodate oxidation to degrade the C-C bond between the two carbon atoms with the vicinally bonded hydroxyls in the covalently bonded carbohydrate molecules to form two aldehyde groups, which are highly reactive. The oxidation-activated polymer reacts in the next step with lectins to form a Schiff base. The rate of this reaction depends on the concentration of the components and the temperature and is greatly influenced by the pH of the reaction medium. Unreacted aldehyde functional groups are reduced by the action of sodium borohydride. The resulting sorption or precipitation materials are characterized by high capacity.

Předmětem vynálezu jsou selektivně působící polymemí sorbenty pro sacharidy, glykoproteiny a polymery obsahující sacharidy.The present invention provides selectively acting polymeric sorbents for carbohydrates, glycoproteins, and carbohydrate-containing polymers.

, Jejich podstata spočívá v tom, že na nosičích, vybraných ze skupiny oxidovaných polysacharidů, oxidovaných glykosilovaných hydroxyalkylakrylátů nebo hydroxyalkylmethakryrátů, oxidovaného polyakrylamidu a polyvinylalkoholu, jsou kovalentně vázáný lektiny.They are characterized in that lectins are covalently bound on carriers selected from the group of oxidized polysaccharides, oxidized glycosylated hydroxyalkyl acrylates or hydroxyalkyl methacrylates, oxidized polyacrylamide and polyvinyl alcohol.

Způsob výroby těchto sorbentů je vyznačen tím, že se polymery, obsahující kobalentně vázané sacharidy oxidují jodistanem sodným nebo draselným, načež se takto aktivované polymery ponechají reagovat s lektiny při teplotách 40 °C v tlumivých roztocích pH 7 až 12, přičemž se po reakci zbývající aldehydické funkční skupiny eliminují působením redukčních činidel, s výhodou borohydrídem sodným.The process for producing these sorbents is characterized in that the polymers containing cobalent-bound carbohydrates are oxidized with sodium or potassium periodate, followed by reacting the activated polymers with lectins at 40 ° C in buffer solutions of pH 7 to 12, leaving the remaining aldehyde after the reaction. functional groups are eliminated by the action of reducing agents, preferably sodium borohydride.

Ve svém účinku jsou hmoty podle vynálezu srovnatelné se známými a dostupnými materiály na bázi polysacharidů s vázanými lektiny bromkyanovým postupem, přičemž za kriterium účinnosti je brána adsorpční kapacita sorbentů. Způsob výroby podle vynálezu je z technologického hlediska podstatně snazší, nevyžaduje zvláštních opatření pro práci s vysoce toxickými aktivačními Činidly a dovoluje jednoduchou regulaci stupně konverze vazebné reakce při vysoké reprodukovatelnosti. Navíc neoxidované sacharidové molekuly vázané na nosiči mu propůjčují hydrofilní charakter nebo jeho původní hydrofilnost zvyšují. Tím se snižuje pravděpodobnost nespecifických interakcí složek dělených systémů při použití sorbentů v afinitní chromatografií.In their action, the compositions of the invention are comparable to known and available lectin-based polysaccharide materials by the cyanogen bromide process, the adsorption capacity of the sorbents being considered as an efficiency criterion. The process according to the invention is considerably easier from a technological point of view, does not require special measures for working with highly toxic activating agents and allows simple regulation of the degree of conversion of the coupling reaction at high reproducibility. In addition, the non-oxidized carrier-bound carbohydrate molecules lend it hydrophilic character or enhance its original hydrophilicity. This reduces the likelihood of non-specific interactions of the components of the partitioned systems using sorbents in affinity chromatography.

Předmět vynálezu je objasněn v následujících příkladech aniž by však byl těmito příklady jakkoli omezován.The subject matter of the invention is illustrated in the following examples without being limited thereto.

Příklad 1 g kopolymerů 2-hydroxyethylmethakrylátu s ethylenmethakrylátem s vylučovacím limitem molekulové hmotnosti 1 000 000 obsahující 16 % kovalentně vázané galaktosy (Separon HEMA1000-Gal) bylo zbotnáno ve vodě (150 ml) po dobu 20 hodin. Poté byla kapalina odsáta přidáno 346 ml 0,1 M NaJO4. Oxidace byla prováděna po dobu 100 minut při teplotě 25 °C. Produkt byl promyt vodou do negativní reakce na oxidující látky (Mn++), ekvilibrován pufrem, ve kterém se provádí vazba lektinu (acetátové pufry s různým pH) a použit v následující vazebné reakci.Example 1 g of 2-hydroxyethyl methacrylate-ethylene methacrylate copolymers with a molecular weight cut-off of 1,000,000 containing 16% covalently bound galactose (Separon HEMA1000-Gal) were swelled in water (150 ml) for 20 hours. Subsequently, the liquid was aspirated by addition of 346 ml of 0.1 M NaJO 4 . The oxidation was carried out for 100 minutes at 25 ° C. The product was washed with water to a negative reaction to oxidizing substances (Mn ++ ), equilibrated with lectin-binding buffer (acetate buffers of different pH) and used in the following coupling reaction.

140 ml acetátového pufru pH 7,8 bylo použito : pro rozpuštění 2,4 g lektinu z Canavalia ensiformis DC (konkanavalin) а к roztoku byl přidán ekvilibrovaný oxidovaný nosič z předchozího stupně ve formě husté kaše spolu s 250 mgD-glukózy. Směs byla v lednici při 4 °C míchána po dobu 24 hodin. Poté bylo přidáno 25 mg NaBH4 a po 20 minutách další dávka 25 mg NaBH4. Směs byla s borohydridem sodným ponechána celkem 40 min. Poté byl sorbent promyt acetátovým pufrem pH 7,3 a dále třikrát promyt 200 ml Tris HC1 pufru v 1 mol NaCl· pH 8 a acetátovým pufrem v 1 mol NaCl pH 4.ř Takto zpracovaný sorbent byl přenesen do kolony a promýván pufrem, v němž byl prokázán sorpční účinek vůči derivátům sacharidů. Množství na váza-> něho konkanavalinu 15 mg/g suchého nosiče.140 ml of acetate buffer pH 7.8 was used: to dissolve 2.4 g of lectin from Canavalia ensiformis DC (concanavalin) and to the solution was added an equilibrated oxidized carrier from the previous step as a thick slurry together with 250 mg D-glucose. The mixture was stirred at 4 ° C for 24 hours. Then 25 mg NaBH 4 was added and after 20 minutes another dose of 25 mg NaBH 4 was added. The mixture was left with sodium borohydride for a total of 40 min. The sorbent was then washed with acetate buffer pH 7.3 and then washed three times with 200 ml of Tris HCl buffer in 1 mol NaCl · pH 8 and with acetate buffer in 1 mol NaCl pH 4. The sorbent so treated was transferred to the column and washed with buffer in which a sorption effect against carbohydrate derivatives has been demonstrated. Amount per bound concanavalin 15 mg / g dry carrier.

Účinek vázaného lektinu byl ověřen sorpcí syntetického polymeru (akrylamidu) obsahujícího kovalentně vázané sacharidy (glukosu, galaktosu) následujícím postupem:The effect of bound lectin was verified by sorption of a synthetic polymer (acrylamide) containing covalently bound carbohydrates (glucose, galactose) as follows:

Na sloupec 1 g nosiče s vázaným lektinem po ekvilibraci acetátovým pufrem pH 7,3 bylo naneseno 0,3427 g rozpustného polyakrylamidového polymeru s obsahem 9,4 % hmot, glukózy ve startov' ním pufru. Při eluci 102 ml pufru byl sledován obsah cukru až do nulové hodnoty. Na kolonu byl pak uváděn roztok 0,5 mol methyl-alfa-D-glukopyranosidu (30 ml) a pak byla kolona promývána· startovním pufrem pH 7,3. Eluát byl jímán, dialy- : zován a lyofilizován. Gravimetrickým stanovením: bylo stanoveno 0,016 g polymeru. Na základě látkové bilance bylo při chromatografií stanoveno’A column of 1 g of lectin-bound carrier after equilibration with an acetate buffer pH 7.3 was loaded with 0.3427 g of a soluble polyacrylamide polymer containing 9.4 wt% glucose in the starting buffer. The elution with 102 ml of buffer monitored the sugar content up to zero. The column was then loaded with a solution of 0.5 mol methyl-alpha-D-glucopyranoside (30 mL) and then the column was washed with a pH 7.3 start buffer. The eluate was collected, dialyzed and lyophilized. Gravimetric determination: 0.016 g of polymer was determined. On the basis of the material balance,

3,1 % ztrát glykosylovaného polyakrylamidového standardu.3.1% loss of glycosylated polyacrylamide standard.

Příklad 2Example 2

Sorbent byl připraven a zpracován analogicky· j ako v příkladu 1. Jeho účinek byl ověřen selektivní sorpcí ovalbuminu, dále bylo hodnoceno opakované použití. 1 g sorbentů podle příkladu 1 svázaným konkanavalinem bylo ekvilibrováno v acetátovém pufru pH 7,3 a poté byla provedena ekvilibrace v Tris HC1 pufru pH 7,8 + 0,15 M NaCl. Na sloupec bylo naneseno 49 mg ovalbuminu v 5 ml startovního pufru a systém byl promýván pufrem až; do negativní reakce na bílkoviny (UV absorbance 280 nm) za současného jímání eluátu. Poté byl nasazen 0,1 M roztok Me-alfa-D-glukopyranosidu (50 ml). Eluát byl jímán, dialyzován a lyofilizován. Výtěžek v eluátu činil 7,8 mg, obsah nevázané bílkoviny byl stanoven na 40 mg. ztráty představují 2,44 %.The sorbent was prepared and processed analogously to Example 1. Its effect was verified by the selective sorption of ovalbumin, and the reuse was evaluated. 1 g of the sorbents of Example 1 bound with concanavalin was equilibrated in acetate buffer pH 7.3 and then equilibrated in Tris HCl buffer pH 7.8 + 0.15 M NaCl. The column was loaded with 49 mg of ovalbumin in 5 ml of starting buffer and the system was washed with buffer up to; to a negative protein reaction (UV absorbance 280 nm) while collecting the eluate. Then, a 0.1 M solution of Me-alpha-D-glucopyranoside (50 mL) was seeded. The eluate was collected, dialyzed and lyophilized. The yield in the eluate was 7.8 mg, the unbound protein content was determined to be 40 mg. losses represent 2.44%.

Sloupec byl pak promyt 20 ml Tris HC1 pufrem pH 7,8 + 1 MNaCla20 mlacetátovéhopufru 4- 1 M NaCl pH 4, ekvilibrován Tris HC1 pufrem + 0,15 M NaCl pH 7,8 a celý postup byl opakován.The column was then washed with 20 ml of Tris HCl buffer pH 7.8 + 1 MNaCla20 in acetate buffer 4-1 M NaCl pH 4, equilibrated with Tris HCl buffer + 0.15 M NaCl pH 7.8 and the procedure repeated.

Při druhém cyklu byl stanoven obsah bílkoviny v eluentu po promytí Me-alfa-D-glukopyránosidem 7,6 mg při třetím 7,8 mg a při čtvrtém 7,6 mg.In the second cycle, the protein content of the eluent was determined after washing with Me-alpha-D-glucopyranoside 7.6 mg for the third 7.8 mg and for the fourth 7.6 mg.

Příklad 3Example 3

Sorbent byl připraven postupem analogickým jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že místo kopolymeru s vylučovacím limitem 1 mil. daltonů bylo jako nosiče použito kopolymerů 2-hydróxyethylmethakrylátu s ethylendimethakrylátem.o vylučovacím limitu molekulové hmotnosti 300 000. Při ověření účinku glykosylovaným polyakrylamidem byla nalezena 4,6 % ztráta (naneseno 0,3470 g, v eluentu stanoveno 0,0154 g). Výchozí sorbent obsahoval kovalentně vázanou glukózu v obsahu 18 % hmotnostních.The sorbent was prepared in a manner analogous to Example 1 except that copolymers of 2-hydroxyethyl methacrylate with ethylenedimethacrylate with a molecular weight exclusion limit of 300,000 were used as the carrier instead of a copolymer with an exclusion limit of 1 million daltons. 6% loss (0.3470 g applied, 0.0154 g in eluent). The starting sorbent contained covalently bound glucose at 18% by weight.

Příklad 4 : К vazbě lektinu z Ricinus communis byl použit oxidovaný nosič z příkladu 3. 1,9 g lektinu bylo rozpuštěno v 70 ml acetátového pufru pH 7,3 obsahujícího 220 mg galaktosy a přidáno 10 g oxidovaného nosiče. Eliminace nezreagovaných aldehydických funkčních skupin byla provedena 25 mg NaBH4, doba reakce byla stejná jako v příkladu 1.Example 4: The oxidized carrier of Example 3 was used to bind lectin from Ricinus communis. 1.9 g of lectin were dissolved in 70 ml of acetate buffer pH 7.3 containing 220 mg galactose and 10 g of the oxidized carrier were added. Elimination of unreacted aldehyde functional groups was performed with 25 mg NaBH 4 , the reaction time was the same as in Example 1.

Účinek byl testován polyakrylamidem s obsahem cukru 9,4 % hmotn. Naneseno 0,3412 g, výtěžek v eluentu 0,0154 g, ztráty 3,8%.The effect was tested with polyacrylamide having a sugar content of 9.4% by weight. Loaded 0.3412 g, eluent yield 0.0154 g, loss 3.8%.

Příklad 5Example 5

Vazba lektinu z Ricinus communis byla próvedena analogicky jako v příkladu 4 s tím rozdílem, že oxidovaný nosič měl vylučovací limit molekulové váhy 300 000 daltonů.The lectin binding from Ricinus communis was performed analogously to Example 4 except that the oxidized carrier had a molecular weight exclusion limit of 300,000 daltons.

Při ověření účinku polykrylamidem s vázanou glukózou bylo naneseno na 1 g sloupen 0,3400 g polymeru, výtěžek v eluentu 0,0171, ztráty 4,75%.To verify the effect of the glucose-bound polycrylamide, 0.3400 g of polymer was applied to 1 g of column, yield in eluent 0.0171, loss 4.75%.

Příklad 6Example 6

4,2 g sférické celulózy bylo ponecháno botnat po dobu 20 hodin v 50 ml dioxanu nasyceného plynným HC1 na obsah 16 % váh. Po této době bylo к reakční směsi přidáno 2,0 g D-galaktózy a při laboratorní teplotě byla směs třepána 24 hodin. Po této době byl obsah nádoby vlit do 5 litrů vody a produkt byl po odsátí na filtru opakovaně promýván vodou do neutrálního pH a negativní reakce na cukr.4.2 g of spherical cellulose were allowed to swell for 20 hours in 50 ml of dioxane saturated with HCl gas to a content of 16% by weight. After this time, 2.0 g of D-galactose was added to the reaction mixture, and the mixture was shaken at room temperature for 24 hours. After this time, the contents of the vessel were poured into 5 liters of water and the product was sucked on the filter repeatedly with water to neutral pH and negative reaction to sugar.

4,0 g sférické celulózy s vázanou D-galaktosou (analýzou byl stanoven obsah vázané D-galaktózy4.0 g of spherical cellulose with bound D-galactose (content of bound D-galactose was determined by analysis)

11,7 % váh.) bylo ponecháno botnat po dobu 20 hodin v destilované vodě. Voda byla odfiltrována а к mokrému gelu bylo přidáno 100 ml 0,111.7% by weight) was swelled for 20 hours in distilled water. The water was filtered and 100 ml 0.1 was added to the wet gel

M NaJO4. Oxidace při laboratorní teplotě probíha206823 la 1 hod. za míchání. Pak byl roztok NaJO4 odfiltrován a gel byl promýván na sloupci destilovanou vodou až do dosažení vodivosti eluátu rovné vodivosti použité destilované vody. К celulózovému gelu byl pak přidán borátový pufr pH 8,5 a po 1 hodině 500 mg konkanaválinu A (lektinu z Canavalia ensiformis). Lektin byl inhibován methylα-D-glukopyranosidem. Po 70 hodinách stání při teplotě 4 °C byly nezreagované aktivní funkční skupiny zredukovány při 4 °C 20 mg NaBH4 při míchání po dobu 20 minut. Gel byl pak střídavě promýván acetátovým pufrem pH 4,1 (1 M NaCl) a TRIS-HC1 pufrem 9 (1 m NaCl). V konečné fázi před použitím byl gel skladován v acetátovém pufru pH 6 (1 M NaCl) obsahujícím 10~3 M MnCl2 a 1СГ3 M CaCl2. Obsah navázané bílkoviny byl stanoven 9,0 mg/ml vlhkého gelu.M NaJO 4 . Oxidation at room temperature is 206823 l for 1 hour with stirring. The NaJO 4 solution was then filtered off and the gel was washed on the column with distilled water until the conductivity of the eluate was equal to that of the distilled water used. Borate buffer pH 8.5 was added to the cellulose gel and after 1 hour 500 mg concanavaline A (lectin from Canavalia ensiformis). The lectin was inhibited by methyl α-D-glucopyranoside. After standing at 4 ° C for 70 hours, unreacted active functional groups were reduced at 4 ° C to 20 mg NaBH 4 with stirring for 20 minutes. The gel was then washed alternately with pH 4.1 acetate buffer (1 M NaCl) and TRIS-HCl buffer 9 (1 m NaCl). In the final phase prior to use, the gel was stored in a pH 6 acetate buffer (1 M NaCl) containing 10 -3 M MnCl 2 and 1 S 3 M CaCl 2. The bound protein content was determined to be 9.0 mg / ml wet gel.

Příklad 7Example 7

Aminoglykosylový derivát celulózy byl připraven způsobem analogickým jako v příkladu 6 s tím rozdílem, že к reakci bylo vzato 0,8 g N-acetyl-Dglukosaminu a produkt nebyl oxidován, nýbrž bylo stanoveno pouze množství navázaného aminocukru na celulosovém nosiči.The aminoglycosyl cellulose derivative was prepared in a manner analogous to Example 6, except that 0.8 g of N-acetyl-D-glucosamine was taken into the reaction and the product was not oxidized, but only the amount of bound amino sugar on the cellulose carrier was determined.

Příklad 8Example 8

Analogický pokus jako v příkladu 7 byl proveden s nosičem, tvořeným hydroxyethylmethakrylátovým kopolymerem s vylučovacím limitem molekulové hmotnosti 1 000 000, viz příklad 1. Obsah vázaného aminocukru 8,9 % váh. je dvojnásobkem proti příkladu 7.An analogous experiment to Example 7 was carried out with a carrier consisting of a hydroxyethyl methacrylate copolymer with a molecular weight cut-off of 1,000,000, see Example 1. The bound amino sugar content was 8.9% by weight. is twice that of Example 7.

Příklad 9Example 9

4,0 g rozpustného plyakrylamidového gelu se zapolymerovaným allylglukosidem (připraven dle V. Hořejší, P. Šmolek and J. Kocourek, Biochim. Biophys, Acta, 538 (1978) 293-298) bylo oxidováno ve 100 ml 0,1 M NaJO4 po dobu 1 hodiny při teplotě laboratoře. Po této době byla reakční.směs zředěna na 250 ml a ponechána dialyzovat proti destilované vodě. Po odstranění jodistanu z reakční směsi dialýzou byl gel lyofilizován. Lyofilizát byl rozpuštěn ve 20 ml destilované vody. К roztoku bylo přidáno 500 mg lektinu z Canavalia ensiformis iňhibovaného methyl-a-D-glukopyranosidem. Směs reagovala po dobu 70 hodin při 4 °C, pak byly zredukovány zbylé aldehydické skupiny reakcí s NaBH4 stejně jako v příkladu 6. Konečná reakční směs byla po zahuštění lyofilizací rozdělena preparativní gelovou chromatografií na dextranovém gelu na frakci lektinu a frakci obsahující lektin navázaný na glykosylovaném polymemím akrylamidu.4.0 g of soluble polyacrylamide gel with polymerized allyl glucoside (prepared according to V. Horejsi, P. Smolek and J. Kocourek, Biochim. Biophys, Acta, 538 (1978) 293-298) was oxidized in 100 ml of 0.1 M NaJO 4 for 1 hour at room temperature. After this time, the reaction mixture was diluted to 250 mL and allowed to dialyzed against distilled water. After the periodate was removed from the reaction mixture by dialysis, the gel was lyophilized. The lyophilisate was dissolved in 20 ml of distilled water. 500 mg of methyl-α-D-glucopyranoside-inhibited lectin from Canavalia ensiformis was added to the solution. The mixture was reacted for 70 hours at 4 ° C, then the remaining aldehyde groups were reduced by treatment with NaBH 4 as in Example 6. After concentration by lyophilization, the final reaction mixture was separated by preparative dextran gel chromatography on the lectin fraction and the lectin-containing fraction bound to the lectin. glycosylated polymer acrylamide.

Příklad 10Example 10

4,0 g polyvinylalkoholu o molekulové hmotnosti4.0 g of polyvinyl alcohol of molecular weight

125 000 a stupni hydrolýzy 87—89 %, který byl substituován D-glukózou podle čs. autorského osvědčení č. 195044 bylo oxidováno analogicky jako v příkladě 9.125,000 and a degree of hydrolysis of 87-89%, which was substituted with D-glucose according to U.S. Pat. No. 195044 was oxidized analogously to Example 9.

PřikladliThey did

Sorbent byl připraven postupem analogickým jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že místo kopolymeru ethylendimethakrylátu s hydroxyethylmet------( hylakryíátu s ethylendiakrylátem o vylučovacím < limitu molekulové váhy 500 000 daltonů. Při ověření účinku glykosylovaného polyakrylamidu : při sorpci byla nalezena ztráta 5,3 %.The sorbent was prepared by a procedure analogous to Example 1 with the difference that instead of ethylene glycol dimethacrylate copolymer having hydroxyethylmet ------ (hylakryíátu ethylendiakrylátem with the exclusion <limit of molecular weight 500,000 daltons. When verification glycosylated polyacrylamide effect: the sorption was found Loss 5.3%.

hakrylátem bylo použito kopolymerů hydroxyet-hydroxyacrylate copolymers were used

Claims (2)

PŘEDMĚT VYNÁLEZUSUBJECT OF THE INVENTION 1. Sorbenty pro sacharidy, glykoproteiny a polymery, obsahující sacharidy, vyznačené tím, že na nosičích, vybraných ze skupiny oxidovaných polysacharidů, oxidovaných glykosilovaných hydroxyalkylakrylátů nebo hydroxyalkylmethakrylátu, oxidovaného polyakrylamidu a polyvinylalkoholu, jsou kovalentně vázány lektiny.Sorbents for saccharides, glycoproteins and carbohydrate-containing polymers, characterized in that lectins are covalently bonded to carriers selected from the group of oxidized polysaccharides, oxidized glycosylated hydroxyalkyl acrylates or hydroxyalkyl methacrylate, oxidized polyacrylamide and polyvinyl alcohol. 2. Způsob výroby sorbentů podle bodu 1, vy značený tím, že se polymery, obsahující kovalentně vázaně sacharidy, oxidují jodistanem sodným nebo draselným, načež se takto aktivované polymery ponechávají reagovat s lektiny při teplotě 0 až ,40 °C v tlumivých roztocích pH 7 až 12, přičemž se po reakci zbývající aldehydové funkční skupiny z polymeru eliminují působením redukčních činidel, s výhodou borohydridem sodným.2. A process for preparing sorbents according to claim 1, characterized in that the polymers containing covalently bound carbohydrates are oxidized with sodium or potassium periodate, followed by reacting the activated polymers with lectins at a temperature of 0 to 40 [deg.] C. in buffer solutions of pH 7. 12 to 12, wherein after the reaction the remaining aldehyde functionalities from the polymer are eliminated by treatment with reducing agents, preferably sodium borohydride. Vytiskly Moravské tiskařské závody, provoit 12, Leninova 21, OlomoucPrinted by Moravian Printing Works, provoit 12, Leninova 21, Olomouc
CS298279A 1979-04-28 1979-04-28 Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture CS206823B1 (en)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS298279A CS206823B1 (en) 1979-04-28 1979-04-28 Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture
DE19803014632 DE3014632A1 (en) 1979-04-28 1980-04-16 SORBENTS FOR SACCHARIDES, GLYCOPROTEINS AND SACCHARIDES CONTAINING POLYMERISATES AND METHOD FOR THE PRODUCTION THEREOF
GB8013733A GB2048896B (en) 1979-04-28 1980-04-25 Sorbents for saccharides glycoproteins and saccharide-containing polymers and a method of their manufacture
CH322680A CH653348A5 (en) 1979-04-28 1980-04-25 SORBENTS FOR SACCHARIDES AND SACCHARID-CONTAINING POLYMERISATES AND METHOD FOR THE PRODUCTION THEREOF.
FR8009553A FR2455061A3 (en) 1979-04-28 1980-04-28 POLYMERS CONTAINING SORBENTS OF SACCHARIDES, GLYCOPROTEINS AND SACCHARIDES, AND PROCESS FOR THEIR PREPARATION

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS298279A CS206823B1 (en) 1979-04-28 1979-04-28 Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS206823B1 true CS206823B1 (en) 1981-07-31

Family

ID=5368590

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS298279A CS206823B1 (en) 1979-04-28 1979-04-28 Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture

Country Status (5)

Country Link
CH (1) CH653348A5 (en)
CS (1) CS206823B1 (en)
DE (1) DE3014632A1 (en)
FR (1) FR2455061A3 (en)
GB (1) GB2048896B (en)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE8202544L (en) * 1982-04-23 1983-10-24 Larsson Per Olof LESS-CONTAINING SEPARATIONS
EP0211756A1 (en) * 1985-08-01 1987-02-25 Merck & Co. Inc. Assay for varicella-zoster virus (VZV) antibodies
GB2184732B (en) * 1985-12-26 1990-07-11 Showa Denko Kk Active support substance and adsorbent for chromatography
ES2058020B1 (en) * 1992-07-03 1995-10-01 Consejo Superior Investigacion MANUFACTURING PROCEDURE FOR INERT SOLID SUPPORTS ACTIVATED WITH AMINO GROUPS.
CN114236138B (en) * 2021-12-20 2023-11-07 杨霜 Preparation method of fucose glycoprotein fluorescent chromogenic vector, preparation method of fluorescent intensity reference vector and application of fucose glycoprotein fluorescent chromogenic vector

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CH536860A (en) * 1971-03-31 1973-05-15 Nestle Sa Process for preparing a product endowed with enzymatic activity, insoluble in aqueous medium

Also Published As

Publication number Publication date
DE3014632C2 (en) 1992-05-21
CH653348A5 (en) 1985-12-31
FR2455061B3 (en) 1981-03-20
DE3014632A1 (en) 1980-11-06
FR2455061A3 (en) 1980-11-21
GB2048896A (en) 1980-12-17
GB2048896B (en) 1983-03-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3645852A (en) Method of binding water-soluble proteins and water-soluble peptides to water-insoluble polymers using cyanogen halide
US6699386B2 (en) Endotoxin adsorbent, and a method of removing endotoxin by using the same
US5328603A (en) Lignocellulosic and cellulosic beads for use in affinity and immunoaffinity chromatography of high molecular weight proteins
Lloyd The preparation of two insoluble forms of the phytohemagglutinin, concanavalin A, and their interactions with polysaccharides and glycoproteins
US4269605A (en) Method and kit for separation of glycoproteins
CA1334042C (en) Process for the preparation of a material for affinity chromatography
US8496123B2 (en) Process for cross-linking cellulose ester membranes
US4411832A (en) Polysaccharide matrices comprising macromolecular spacer arms for use as adsorbents in affinity chromatography techniques
KR101355276B1 (en) Manufacture of chromatography matrices
JPS5839576B2 (en) A novel substance that can reversibly immobilize biological macromolecules and its production method
EP1729867B1 (en) A method for chromatographic purification
US3649456A (en) Separation of polypeptide substances with macroreticular resins
US4281233A (en) Hydrophilic macroporous three dimensional copolymers of hydroxyalkyl acrylates or methacrylates with crosslinking agents and the method of their manufacturing
US4446275A (en) Sorbent for saccharides, glycoproteins and polyesters comprising a lectin covalently bonded with a vehicle and method for preparation thereof
CS206823B1 (en) Sorbents for saccharides,glycoproteins and polymers,containing saccharides and method of their manufacture
Sasaki et al. Improved method for the immobilization of heparin
CA1283073C (en) Adsorbent for purification of blood coagulation factor viii and process for purification of blood coagulation factor viii using the same
EP0165800A1 (en) Support material for immobilisation of ligands
JP2903251B2 (en) Carrier for affinity chromatography and method for purifying antithrombin III
Bussey et al. Specific ion mediated chromatography of glycoproteins and neutral polysaccharides on substituted agarose gels
Lis et al. [32] Wheat germ agglutinin
Andrew et al. Affinity chromatography of arabinogalactan-proteins
WO1991007427A1 (en) Carrier for column chromatography, process for separating and purifying water-soluble polymeric substance using said carrier, novel pectic acid-cellulose gel and process for preparing the same, and adsorbent for affinity chromatography
CN1191866A (en) Synthesis of affinity film medium using cellulose as substrate
JPS6348451A (en) Adsorption carrier for chromatography