CS202885B1 - Zařízeni pro kultivaci a uchovávání buněčných kultur pro virologické a cytologické testy - Google Patents
Zařízeni pro kultivaci a uchovávání buněčných kultur pro virologické a cytologické testy Download PDFInfo
- Publication number
- CS202885B1 CS202885B1 CS913778A CS913778A CS202885B1 CS 202885 B1 CS202885 B1 CS 202885B1 CS 913778 A CS913778 A CS 913778A CS 913778 A CS913778 A CS 913778A CS 202885 B1 CS202885 B1 CS 202885B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- cell
- cell cultures
- virological
- freezing
- cultivation
- Prior art date
Links
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 title claims description 31
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 title claims description 22
- 238000012360 testing method Methods 0.000 title claims description 8
- 230000002380 cytological effect Effects 0.000 title claims description 7
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 title 1
- 238000000465 moulding Methods 0.000 claims description 10
- 238000003860 storage Methods 0.000 claims description 8
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 claims description 4
- 238000010137 moulding (plastic) Methods 0.000 claims description 3
- 238000000034 method Methods 0.000 description 25
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 22
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 15
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 15
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 7
- 239000000463 material Substances 0.000 description 7
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 7
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 6
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 5
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 5
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 5
- 239000012595 freezing medium Substances 0.000 description 5
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 5
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N Dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 4
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 4
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 4
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 4
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 4
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 4
- 238000010257 thawing Methods 0.000 description 4
- 230000000120 cytopathologic effect Effects 0.000 description 3
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 3
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 3
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 3
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 3
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 3
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 3
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 3
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 3
- PPBRXRYQALVLMV-UHFFFAOYSA-N Styrene Chemical compound C=CC1=CC=CC=C1 PPBRXRYQALVLMV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 2
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 2
- 230000000959 cryoprotective effect Effects 0.000 description 2
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 2
- 230000001894 hemadsorption Effects 0.000 description 2
- 238000010166 immunofluorescence Methods 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 2
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 2
- 230000002093 peripheral effect Effects 0.000 description 2
- 238000012216 screening Methods 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 2
- 238000012800 visualization Methods 0.000 description 2
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M Bicarbonate Chemical compound OC([O-])=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- 241001430197 Mollicutes Species 0.000 description 1
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 1
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 1
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- 238000010009 beating Methods 0.000 description 1
- 235000010633 broth Nutrition 0.000 description 1
- 235000011089 carbon dioxide Nutrition 0.000 description 1
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000002577 cryoprotective agent Substances 0.000 description 1
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 238000005202 decontamination Methods 0.000 description 1
- 230000003588 decontaminative effect Effects 0.000 description 1
- 238000002405 diagnostic procedure Methods 0.000 description 1
- 230000005496 eutectics Effects 0.000 description 1
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 description 1
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 1
- 230000035931 haemagglutination Effects 0.000 description 1
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 description 1
- 239000012678 infectious agent Substances 0.000 description 1
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 238000013331 inoculum cultivation Methods 0.000 description 1
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 description 1
- 210000003292 kidney cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 1
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 238000005192 partition Methods 0.000 description 1
- -1 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 1
- 238000007789 sealing Methods 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 1
- 210000004881 tumor cell Anatomy 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
Vynález se týká zařízení pro kultivaci, ztnrazování, skladování a rekultivaci buněčných kultur. Postup a zařízení Umožňují rychlejší a standardnější detekci a izolaci zejména virových agens, organicky slučují dosud obvykle jednotlivě prováděné metodické úkony pro přípravu buněčných kultur jako vnímavého materiálu’ pro záchyt virů a umožňují současně použít širší metodické spektrum vizualizace virových antigenů.
Obtížnost detekce virových činitelů vyplývá z jejich vlastností pomnožovat se výhradně v živých vnímavých buňkách, na rozdíl od většiny jiných infekčních agens /baktérie, mykoplasmata, plísně atd./, která můžeme kultivovat na předem připravených snadněji dostupných umělých živných půdách.
V současné době existují ve virologii různé metodické přístupy pro detekci a průkaz virových antigenů, z nichž velká většina využívá metod buněčných kultur ín vítro. Kromě virologie se buněčných kultur in vitro používá v nejrůzněj ších výzkumných odvětvích cytologie, imunologie a dalších.
Pro příslušnou virologickou techniku nebo sérii diagnostických a izolačních metod se v konkrétní praxi využívá vnímavých buněčných kultur odvozených z příslušných orgánů /tripsinizačně, fragmentárně/ nebo se tyto buněčné kultury rekultivují ze zmrazené suspenze nebo,pokud jsou k dispozici.se pasážují za účelem pomnožení a teprve následně distribuují do příslušných kultivačních zařízení.
Pro účely vizualizace virových antigenů cytopatickým efektem nebo fluorescenční meto- . dou je používáno obvykle vložených krycích sklíček s nárůstem buněk do Leightonových nebo normálních zkumavek. Hemadsorpční, hemaglutinačněinhibiční a plakové testy se provádějí převážně ve zkumavkách nebo lahvích /Roux—', Black—, Carrel—, Míiller- typu/, seroneutrali— začni testy a titrační metody se většinou provádějí ve zkumavkách nebo zařízení typu mikrotitračních destiček. ,
Jednotlivě volená kultivační zařízení limitují spektrum použitelných virologických metodik. Např. z USA patentu č. 3 597 326 je známo zařízení, které obsahuje na podložce z průhledné umělé hmoty, například ze styrénu,několik řad misek pro pěstováni buněčných kultur, které jsou přikryty těsnicím víčkem. Jednotlivé sady těchto misek lze vrstvit na sebe. Toto zařízení nelze hermeticky uzavřít tak, aby sneslo zmrazovaci podtlak v tekutém dusíku a není umožněn centrální přístup k jednotlivým kultivačním oddílům. Mimoto nelze kultivovat v normální atmosféře.
Inokulace nelze provést jinak než ve sterilním prostředí /odklopením víčka/ a mikroskopicky lze prohlížet vzorek jen zvětšením cca ,00- až 200krát. Rovněž vzorky monolayeru helze z poměrně silného dna vykrojit bez porušení vlastního vzorku. Podobné řešení má US patent č. 3912596.
Nevýhodou dosavadních postupů při využívání buněčných kultur k diagnostickým účelům je skutečnost, že vhodná buněčná kultura není okamžitě k dispozici k příslušnému úkonu, a že zmiňovaná kultivační zařízení nemohou být současně využita jako skladovací, třansportní a rekultivační.
Uvedené nedostatky stávajících metodik z velké části odstraňuje zařízení podle vynálezu, jehož podstatou je, že sestává z umělohmotného výlisku nebo výlitku, 8 výhodou ve tvaru Petribo misky, jejíž spodní část má symetricky uspořádané komůrky se spodními dny sloužícími jako podloží pro nárůst buněčných kultur a horní část je ve tvaru víčka s centrálním výstupkem, přičemž obě tyto části mají na obvodu plochý okraj pro hermetické uzavření celého zařízení.
Zařízení podle vynálezu umožňuje, aby se monolayerový nárůst kultur zmrazil podle předem stanovené závislosti poklesu teploty na čase, skladoval a transportoval přímo na kultivačním podloží v hermeticky uzavřeném sterilním a průhledném zařízení, kde bezprostředně před virologickým nebo cytologickým testováním se buněčné kultury rozmrazí za sterilních podmínek.
Výhody zařízení podle vynálezu jsou zejména:
1. Zařízení je vyrobeno z umělé hmoty, netoxické pro kultivované buňky, která je průhledná pro sledování buněčných kultur makroskopicky i mikroskopicky.
2. Vnitřní plochy zařízení umožňují adhezi a proliferaci buněk a jsou do té míry tenké, že dovolují mikroskopováni kultur i výkonnými objektivy s krátkou ohniskovou vzdáleností ve fázovém kontrastu fluorescenčním mikroskopem.
3. Zařízení umožňuje vyříznutím vnitřní plochy zpracování pro různá elektromikroskopická vyšetření.
4. Zařízení umožňuje aplikaci radioisotopických metod.
5. Zařízení je hermeticky uzavřené, což je nutným předpokladem kultivace buněk v médiích s běžně užívaným bikarbonátovým ústrojím,
6. Zařízení je sterilní. Pokud je třeba nutná manipulace za sterilních podmínek, je toto umožněno středovým vpichem do všech sekcí a pokud zpracováváme kultury například pro vísualisací antigenů, je možné víčko jednoduše odstřihnout nůžkami.'
7. V zařízení je možná i kultivace orgánových kultur i buněčných kultur nádorového původu.
8. Zařízení je skladovatelné v běžně vyráběných kontejnerech na tekutý dusík nebo v suchém ledu.
9. Zařízení je výhodné i z bezpečnostních důvodů pro jednoduchou dekontamíptaci /spálením/.
10. Pro trvalé preparáty lze vložit na dno zařízení sklíčka ve tvaru daného sektoru /jako Leightonovy zkumavky/.
11. Použití způsobu a zařízení podle vynálezu umožňuje centrální přípravu různých buněčných kultur pro velký počet zdravotnických, pracovišt humánních a veterinárních.
12. Zařízení je jednoduché, modifikovateIné, lehce.vyrobitelné ve velkých sériích a levné.
Při' eventuální obtížnosti zmrazení a rekultivace určitého typu buněk přímo na podloží lze toto zařízení využít pro dodatečnou rekultivaci buněk zmrazených v suspenzi v prostoru zařízení. Při tomto alternativním způsobu je určité časové zpoždění, dané dobou, během které buněčná suspenze po rozmraženi a aplikaci na kultivační podloží doroste do monolayeru. Zůstávají zachovány výhody jednoduché manipulace pro rutinní diagnostické účely i možnost
202385 skladování, transportu a kultivace. Pro cytologické účely je tento alternativní «působ, tj . zmrazování buněk v suspenzi, v mnoha případech výhodnější.
Zmrazování buněk se provádí podle předem stanovené závislosti poklesu teploty na čase. Rychlost zmrazování, kryoprotektivní látky /dimethylsulfoxid, glycerin/ a jejich koncentrace v zmrazovacích médiích je nutno volit pro příslušné typy buněčných kultur individuálně. Pokles teploty se obvykle pohybuje v rozmezích 0,5 až 2 °C za minutu, s výjimkou oblasti eutektického bodu.
V této oblasti, kde dochází k uvolňování skupenského tepla, se osvědčilo rychle snížit teplotu okolního prostředí. Koncentrace dimethylsulfoxidu je optimální v rozmezí 7,5 až 12,5 procent. Pro některé buněčné kultury je výhodnější použít glycerinu. Zmrazovací médium nesmí obsahovat antibiotika. Rovněž opracování buněčných kultur před zmrazením, např. versenem nebo trypsinem a synchronizace buněčných kultur před zmrazováním vyžaduje individuální přístup k jednotlivým buněčným typům. Tento postup je nutno předem odzkoušet a pro daný typ buněk charakterizovat.
Po rozmražení, které je nutno provádět rychlou metodou, nejlépe ponořením zařízení do cirkulující vody 37 °C teplé, např. v Heplerově přístroji nebo Cyklotermu a odsátí zmrazovacího média, přičemž by úkon neměl převýšit doby 3 minut, lze buněčných kultur s nízkou mortalitou buněk použít okamžitě k testování virologických vzorků. V případe vyšší úmrtnosti buněk /cca 30 Z/ je výhodné nechat buněčné kultury dorůst opět do monolayerů, čehož je možno dosáhnout obvykle do 24 hodin po rozmražení a výměně zmrazovacího média za kultivační. V případě, že mortalita buněčných kultur po rozmražení je vyšší než 50 Z, je lépe využít alternativní metody paralelního zmrazení buněčné suspenze. Typ buněčné kul tury,jakož i tvar kultivačního podloží se zvolí podle předpokládané metodiky nej efektivnější pro danou cytologickou a virologickou prácí.
Další výhody nové metody spočívají v možnosti rychlého'použití,'větší standardnosti jednotlivých metodik, umožňují srovnání a opakovatelnost na tomtéž homogenním materiálu, pouze později rozmraženém, umožňuje centralizaci přípravy většího množství těchto zařízení, z jediného a jednorázově kontrolovaného zdroje citlivé buněčné kultury. Při přípravě těchto · nakultivovaných a zmrazených tkáňových systémů in vitro, která bude centralizována, lze tyto materiály pro jednotlivé laboratoře ekonomičtěji zajistit. Skladovat lze větší množství namnoženého materiálu v běžných nádobách pro skladování vzorků v tekutém N? nebo pevném CO?» event. v hlubokorarazicích pultech a poměrně snadno transportovat v přítomnosti pevného CO?.
V případě kultivací na agarosové vrstvičce na podloží nebo přímo na umělohmotném podloží je umožněno vyříznutí i jednotlivých, virem efektovaných nebo suspektních buněk z daného systému, např.. mikromanipulátorem. Tento odebraný vzorek je potom možno zmrazit a nakrájet běžnými technikami pro elektronmikroskopické vyšetření. Při potřebě zhotovit trvalé preparáty je možno podloží s nárůstem buněk přímo vystřihnout a zamontovat běžnými technikami na podložní sklíčka. V některých testech, např. určitých typů fixací, lze pomnožit buněčné kultury na vložených krycích sklíčkách na dno kultivačního zařízení.
Navrhovaným způsobem lze zajistit orientační virovou diagnostiku běžně i v menších nemocnicích a transfúzních stanicích. Nutné vybavení by sestávalo pouze ze skladovacího prostoru vybaveného pevným CO? nebo z kontejnerů tekutého N?, sterilního boxu /dostačuje Hansenova skříň nebo Lamínflow/, termostatu s nastavitelnou regulací teplá pro kultivaci, obvykle 37 °C.
Při menší úpravě by se mohly některé získané virologické vzorky inokulovat na buněčnou kulturu přímo v terénu, takže by se zamezilo případným inaktivacím virových činitelů dlouhým skladováním a transportem do míst, která jsou pro virologickou diagnostiku vybavena. Jednotlivé laboratoře by mohly poté provádět orientační diagnostiku bez zvláštního technického vybavení a bez personálu erudovaného v oblasti tkáňových kultur.
Zařízení, k provedení navrhovaného postupu s výhodou sestává ze sady umělohmotných průsvitných a steri 1 izovateIných výlisků /výlitků/, skládajících se ze dvou lisovatelných .
částí, Dolní část je rozčleněna na 6 až 9 polí, které mají plochu větší než 1 cm a jsou odděleny přepážkami z téhož materiálu. Ve středu dolní části může být vylisována jamka ve tvaru spodní části zkumavky, sloužící ke zmrazení buněčné suspenze ve·zmrazovacím médiu.
Obsah zmrazených buněk dostačuje k následné rekultivaci nebo sériovému zpracování na ploškách polí /komůrek/ tohoto výlisku nebo výlítku. Horní část /víčko/ zařízení může být s výhodou ve tvaru víčka Petriho misky se středovou vyvýšeninou umožňující centrální přístup ke váem ploškám /u alternativního zařízení i k spodní centrální jamce/ při aplikaci, odsávání.a inokuíaci buněčné suspenze, nejlépe injekční jehlou. Obě částí jsou ze stejného materiálu a spojitelné na okraji.
Velikost a tvar zařízení je koncipován tak, aby umožnil zmrazování a skladování v běžně dostupných skladovacích Dewerových nádobách pro tekutý dusík s vložnými skladovacími pouzdry ve tvaru válce o průměru cca 6,5 x 30 cm, přičemž jednotlivá zařízení zapadají horní částí jednoho výlisku /výlitku/ do dolní části dalšího.
Naskládání jednotlivých výlisků /výiitkú/ umožňuje vyvýšenina ve tvaru trnu na víčku zařízení. Horní část trnu může být ve tvaru malé jamky, která zapadá do spodní části výlisku /výlitku/ dalších zařízení a lépe umožní hermetické uzavření otvoru po vpichu při zmrazování, kultivaci a transportu.
Velikost zařízeni je volena tak, že umožňuje centrífugací jednotlivých výlisků /výlitků/ i jejich sady ve větších centrifugách, např. Janetzkí K 70, což je nezbytné pro sedimentaci suspenze buněk v centrální jamce při alternativním řešení.
Popsané zařízení, obsahující řadu komůrek, je možno použít též k rekultivaci a sériovým testům s virologickým a cytologickým materiálem v případě, že buněčné suspenze cíleně vybrané k daným testům budou zmrazený samostatně v nádobkách ověřených pro zmrazování, např. polyethylenové trubičky, nádobky a ampule z PVC. Plošky komůrek umožňuji screeningové odečítání běžných virologických a cyto logických metodik /seroneutralizačni testy, imunofluorescenční metody, různé druhy titrací, některé radioizotopové metody a další/.
Dále jsou uvedeny příklady zařízení podle vynálezu. Na přiložených výkresech 1 až 6 jsou schematicky znázorněny příklady zařízení dle vynálezu. Na obr. 1 v půdorysném pohledu je znázorněno uvedené zařízení sestávající z umělohmotného výlisku ve tvaru Petriho misky, jejíž spodní část 4 sestává ze symetricky uspořádaných komůrek 1 se spodními dny _2_, které slouží jako podloží pro kultivaci buněk. Na obr. 2 je znázorněna v půdorysu horní část 3^ zařízení. Horní část 3_ tvoří víčko s centrálním výstupkem 8^, který slouží jako vstup, případně výstup do komůrek _1_ /injekční jehlou/.
Na obr. 3 je celé zařízení znázorněno v nárysu. Obě části, tj . spodní část 4^ a horní část 3.,mají po obvodu plochý okraj 7 pro hermetické uzavření celého zařízení. Na obr. 4 až 6 je znázorněn příklad dalšího typu zařízení podle vynálezu pro buňky v suspenzi.
Na obr. 4 v půdorysu je znázorněna spodní část £ s komůrkami £ ve tvaru dutých válečků s rovným dnem v počtu šest s jednou centrální jamkou 5^ pro zmrazení buněk v suspenzi. Po obvodu části 4 je plochý okraj 7 pro hermetické uzavření obou částí 3_ a slisován nebo svařen.
Na obr. 5 v půdorysu je znázorněna horní část j4, která má tvar víčka s centrálním výstupkem £ tvaru jamky.
Na obr. 6 je v nárysném pohledu znázorněno celé zařízení podle vynálezu. Centrální jamka 5 s konvexně vypuklým dnem 6_ slouží ke zmrazování buněk v suspenzi, kde se tyto skladují pro případ, že je nelze udržet při zmrazování přímo na podloží. Význam kónického dna 6 je důležitý zejména pro odsávání kryoprotektivního média injekční stříkačkou /supernatantu/, tj. kdy buňky jsou v sedimentu.
Aby nedošlo ke zborcení zařízení, je nutno při jakémkoliv odsáváni média udělat v oblasti centrálního výstupku 8 vedle otvoru vpichu. ještě druhý otvor pro vyrovnání tlaku.
Způsob kultivace buněčných kultur podle vynálezu je předveden na následujícím příkladě, úkolem je nakultivovat buněčný substrát pro záchyt a následnou diagnostiku neznámého virového agens, který je předpokládán ve vzorku nosního výtěru, který byl virologicky připraven.
Před odběrem vzorku prasečích ledvin bylo na dno všech komůrek zařízení podle vynálezu pomocí Cornwalovy pipety rozdistribuováno 1 ml suspenze prasečích liniových ledvinných buněk jedním vpichem ze střední horní části centrálního výstupku* a tó do každé komůrky zvlášt* Poté necháme inokulovanou kulturu dorůst do monolayeru /asi 3 dny/. Po každé inokuíaci případně odsátí nebo výměně média se vpich uzavře, například zakápnutím roztaveným voskem nebo PVC,
Poté podle záměru můžeme narostlé buňky využít ihned k naočkování testovacího výtěru, anebo tuto předem zkontrolovanou šarži buněk zmrazíme, skladujeme /neomezeně/, případně transportujeme do míst použití. Před zmrazením vyměníme kultivační médium za kryoprotektivní a zmrazíme podle předem stanovené závislosti poklesu teploty na čase.
V prvním případě inokulujeme do každé komůrky opět středovým vpichem 0,2 ml připraveného vzorku. Po vazbě a doplnění média se opět uzavře vpichový otvor a kultivuje se 1 týden a odečítá se cytopatický efekt /CPE/. V průběhu kultivace inokula sledujeme buněčnou kulturu optickým inversním mikroskopem.
Poté se příslušné změny na tkáňové kultuře testovaly běžnými virologickými technikami, například fluorescencí, barvením, hemadsorpcí apod. Příslušné alterované buňky z monolayeru byly pak vykrojeny ze dna komůrky /včetně části dna/ a zpracovány pro elektron-optické vyšetření.
Podobně zařízení podle vynálezu lze využít pro serodiagnostiku, ale s tím rozdílem, že známé vírové antigeny jsou obsaženy již přímo v buňkách a testují se příslušná rekonvalescentní séra, například nepřímou imunofluorescencí.
Claims (2)
- PŘEDMĚT VYNÁLEZU1. Zařízení pro kultivaci a uchovávání buněčných kultur pro viřologické a cytologické testy, vyznačující se tím, že sestává z umělohmotného výlisku nebo výlitku, s výhodou ve tvaru Petriho misky, jejíž spodní část /4/ má symetricky uspořádané komůrky /1/ se spodními dny /2/ sloužícími jako podloží pro nárůst buněčných kultur a horní část /3/ je ve tvaru víčka s centrálním výstupkem /8/, přičemž obě tyto části mají na obvodu plochý okraj /7/ pro hermetické uzavření celého zařízení,
- 2. Zařízení podle bodu 2, vyznačené tím, že vedle komůrek IM, které jsou rozloženy symetricky po obvodu spodní části /4/, je v jejím středu centrální jamka /5/ s konvexně vypuklým dnem /6/ pro zmrazení buněk v suspenzi.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS913778A CS202885B1 (cs) | 1978-12-29 | 1978-12-29 | Zařízeni pro kultivaci a uchovávání buněčných kultur pro virologické a cytologické testy |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS913778A CS202885B1 (cs) | 1978-12-29 | 1978-12-29 | Zařízeni pro kultivaci a uchovávání buněčných kultur pro virologické a cytologické testy |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS202885B1 true CS202885B1 (cs) | 1981-02-27 |
Family
ID=5442662
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS913778A CS202885B1 (cs) | 1978-12-29 | 1978-12-29 | Zařízeni pro kultivaci a uchovávání buněčných kultur pro virologické a cytologické testy |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS202885B1 (cs) |
-
1978
- 1978-12-29 CS CS913778A patent/CS202885B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| McDonald et al. | “Tips and tricks” for high-pressure freezing of model systems | |
| US5484731A (en) | Multiwell in-vitro fertilization plate | |
| US20160278366A1 (en) | Microfluidic embryo and gamete culture systems | |
| WO2004011593A1 (ja) | 生体由来の細胞または組織の自動培養装置 | |
| CA2283753C (en) | Micropathological patient replica based on unadulterated whole blood | |
| CN106367393B (zh) | 小鼠前列腺癌循环肿瘤细胞系及前列腺癌循环肿瘤细胞分离和培养方法 | |
| Hubel | Preservation of cells: a practical manual | |
| Chandra et al. | Animal cell culture: basics and applications | |
| Ferrarini et al. | 3D-dynamic culture models of multiple myeloma | |
| US7691626B2 (en) | Self-contained cell culture apparatus and method of use | |
| Carlson et al. | Grasshopper neuroblast techniques | |
| Jeon | Micromanipulation of ameba nuclei | |
| CS202885B1 (cs) | Zařízeni pro kultivaci a uchovávání buněčných kultur pro virologické a cytologické testy | |
| ES2199999T3 (es) | Procedimiento para el cultivo de macrofagos. | |
| US20240200004A1 (en) | Multi-purpose container for biological materials and methods | |
| Frances et al. | Epoxy embedding of thin-layer material in commercially available vinyl cups for light and electron microscopy | |
| CN114656558A (zh) | 一种抗多房棘球绦虫成虫表膜抗原单克隆抗体的制备方法及应用 | |
| Švejcar et al. | In vitro technique of the cell migration from the spleen and/or artificial fragments | |
| RU2061753C1 (ru) | Штамм культивируемых клеток гонад capra hircus l-продуцент вирусов животных | |
| Van Noord et al. | The processing of mammalian haemopoietic cells in thin layer agar cultures for electron microscopy | |
| JP2003294741A (ja) | 細胞機能測定用マイクロチップ | |
| Sawicki et al. | Albumen embedding and individual mounting of one or many mammalian ova on slides for fluid processing | |
| RU2663732C1 (ru) | Способ автоматического отбора и упаковки микробиологических объектов | |
| RODRIGUES et al. | Resources needed to culture Chlamydia trachomatis in laboratories of clinics for sexually transmitted diseases | |
| Fox et al. | A simple and inexpensive culture device for cell growth, quantitative microscopy and autoradiography |