CS202046B2 - Způsob přípravy funkcionalizovaných derivátů adeninu - Google Patents
Způsob přípravy funkcionalizovaných derivátů adeninu Download PDFInfo
- Publication number
- CS202046B2 CS202046B2 CS764702A CS470276A CS202046B2 CS 202046 B2 CS202046 B2 CS 202046B2 CS 764702 A CS764702 A CS 764702A CS 470276 A CS470276 A CS 470276A CS 202046 B2 CS202046 B2 CS 202046B2
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- adenine
- adenosine
- water
- dinucleotide
- derivatives
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
- C07D473/00—Heterocyclic compounds containing purine ring systems
- C07D473/26—Heterocyclic compounds containing purine ring systems with an oxygen, sulphur, or nitrogen atom directly attached in position 2 or 6, but not in both
- C07D473/32—Nitrogen atom
- C07D473/34—Nitrogen atom attached in position 6, e.g. adenine
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
Předmětem vynálezu je způsob přípravy adeninových derivátů s reaktivními funkcemi a tím získaných produktů. Podrobněji uvedeno se předložený vynález týká způsobu přípravy adeninových derivátů s reaktivními funkcemi majících v poloze 8 postranní řetězec omega-karboxylové kyseliny, při kterém se! vychází ze sloučenin, které obsahují adeninové jádro s halogenovým atomem v této poloze. Výchozí látky pro tento způsob se mohou získat běžnými postupy, halogenováním sloučenin obsahujících adeninový cyklus např. amidu kyseliny nikotinové, dinukleotidu adeninu (NAD+), fosforečnanu dinukleotidu nikotinoylamidadeninu (NADP+), trifosfátu adenosinu (ATP), difosfátu adenosinu (ADP), monofosfátu adenosinu (AMP), adenosinu.
Většina těchto sloučenin má důležitý význam v biochemii a jejich funkcionalizace rozšiřuje jejich aplikační oblast.
Tak například v případě NAD+, přičemž však budiž poznamenáno, že tyto vývody se také dobře hodí pro ostatní členy, jeho funkcionalizované deriváty se mohou užívat po spojení kovalentní vazbou s makromolekulami, které jsou buď ve vodě rozpustné nebo nerozpustné, jako nedifundující koenzymy nebo v afinitní chromatografii. V případě navázání na vodorozpustné makromolekulární látky mohou být vzniklé produkty použity jako nedifundovatelné vodorozpustné makromolekularizované koenzymy. Tyto látky rozšiřují možnosti použití známých enzymatických systémů, ve kterých je enzym fyzicky zabudován v nerozpustných porézních strukturách, jako jsou vlákna, polyakrylamidový gel, mikrokapsle apod., které jsou neprůchodné pro makromolekuly. Důsledkem fyzického zabudování vodorozpustného makromolekularizovaného koenzymu do enzymu nebo polyenzymatického systému je ve skutečnosti to, že jak enzym, tak koenzym zůstávají v těsném kontaktu a je znemožněno rozptýlení koenzymu ven z uzavřené struktury. Tento jev není u přírodního koenzymu možný vzhledem k jeho nízké molekulové hmotnosti. V případě navázání na vodorozpustné makromolekulární sloučeniny lze produktů použít v afinitní chromatografii nebo pro enzymatické reakce v heterogenní fázi, přičemž je možno regenerovat koenzym.
Předmětem vynálezu je způsob přípravy funkcionalizovaných derivátů adeninu, který spočívá v tom, že sloučenina ze skupiny dinukleotidu nikotinoylamidadeninu, fosfátu dinukleotidu nikotinoylamidadeninu, adenosinmonofosfátu, cyklického adenosinmonofosfátu, adenosintrifosfátu, adenosinu a adeninu, jejíž adeninové jádro je v poloze 8 substituováno halogenem, se nechá v prostředí polárního aprotického rozpouštědla při teplotě 20 až 60 °C reagovat se sloučeninou obecného vzorce
M+-S— (CH2jn—COO-M + , kde
M je ion alkalického kovu a n je celé číslo 2 až 4.
Jako aprotického polárního rozpouštědla lze použít například hexamethyltriamidu kyseliny fosforečné, dimethylsulfoxidu a dimethylformamidu. Reakce se provádí za bezvodých podmínek a s výhodou při teplotě místnosti.
Při reakci dochází k substituci halogenu v poloze 8 adeninového jádra podle tohoto schématu:
MU
R kde n a M+ mají týž význam, jak je uveden no nahoře,
X znamená halogen a
R je neadeninový zbytek sloučeniny.
Sůl takto získaného karboxylového derivátu se potom převede v průběhu zpracování na příslušnou volnou kyselinu.
Způsob je zcela obecný avšak v další části popisu se bude uvádět reakce dvojsodné soli kyseliny 3-merkaptopropionové s deriváty NAD+ a NADP+, které bylý hromovány na uhlíku v poloze 8 adeninového jádra adenosinu, a to za účelem osvětlení způsobů, jichž je zapotřebí pro provádění zmíněného postupu.
Při studiu dalšího popisu bude však vždy jasné, že každý odborník může získat funkcionalizované adeninové deriváty, popsané nahoře, vycházeje z jakéhokoli adeninového základního skeletu substituovaného halogenem v poloze 8, prostým přizpůsobením pracovních podmínek povaze výchozí sloučeniny a aniž překročí rozsah tohoto vynálezu,
Příklad 1
Příprava 8-(2-karboxyethylthio) adenosinu
K roztoku 380 mg (1,1 mmol) 8-bromadenosinu v 8 ml bezvodého hexamethyltriamidu kyseliny fosforečné se přidá za míchání při teplotě místnosti a bezvodé atmosféře (dusík) 633 mg (4,2 mmol) dvojsodné soli kyseliny 3-merkaptopropionové (připravené z merkaptokyseliny přidáním stechiometrického množství hydridu sodného při teplotě místnosti v bezvodém tetrahydrofuranu a odstraněním rozpouštědla za sníženého tlaku).
Po 16tihoidinovém míchání při teplotě místnosti se směs zfiltruje a filtrát se doplní 15 ml vody a extrahuje několikrát chloroformem, až se zbaví hexamethyltriamidu kyseliny fosforečné.
Vodný roztok se upraví přidáním zředěné kyseliny chlorovodíkové na pH 8,5 a chromatografuje se na DOWEX—1 (HCOO-) za eluování gradientem kyseliny mravenčí ve vodě. Frakce s Amax 282 mm se spojí, mrazově suší o poskytnou 327 mg 8-(2-karboxyethylthio J -adenosinu.
Při analýze v tenké vrstvě (silikagel s fluorescenčním' indikátorem; eluční činidlo isopropanol—voda—32% amoniak v objemovém poměru 7:2: l;vizualizace skvrny UF zdrojem při 254 nm; Rf = 0,56) se produkt jeví jako čistý a také při vysokovoltové eleiktroforéze (Whatmanův papír 3MM 11 x 57 cm; elektrolyt 0,02 M octan amonný pH 5,0, potenciál 5000 V během 40 minut, vizualizace skvrny UF zdrojem při 254 · nm; pohyb produktu směrem k anodě se shoduje s přítomností karboxylové skupiny, zatímco adenosin migruje směrem ke katodě).
UF spektrum v 0,1 M NaOH má vrcholovou absorpci při 282 nm zatímco 8-bromadenosin ji má při 263 nm.
XH NMR v NaO2H vykazuje mimo signály vztahující se k adenosinu s vyloučením protonového z polohy 8 ty, které připadají na vrub protonů postranního řetězce: 2,88 (2H, t; CH2COO) a 3,86 (2H, t; CH2S).
Také hmotnostní spektrum potvrzuje strukturu přisuzovanou produktu (m/e 239, 221, 192, 167).
P ř í k 1 a d 2
Příprava dinukleotidu nikotinoylamid-8- (2-karboxyethylthio) -adenosinu.
K 118 mg (160 mmol) dinukleotidu nikotinoylamid-8-bromadeninu rozpuštěného v 2 ml bezvodého dimethylsulfoxidu se přidá za míchání při teplotě místnosti pod bezvodou atmosférou (dusík) 98,4 mg (656 mmol) dvojsodné soli kyseliny 3-merkapto202046 propionové (připravené podle příkladu 1).
Po 16tihodinovém míchání při teplotě místnosti se směs zfiltruje a k filtrátu se přidá desetinásobek jeho objemu acetonu. Získaná sraženina oddělená odstředěním a promytá acetonem se suší za sníženého tlaku a rozpustí v 15 ml 0,1 M HC1. Roztok se upraví na pH 7,5 zředěnou sodou a chromatografuje se na DOWEX—1 (HCOO“j eluováním gradientem kyseliny mravenčí ve vodě.
Chromatografické frakce s Amax 276,5 se spojí a po mrazovém vysušení dají 90 miligramů dinukleotidu nikotinoylamid-8-(2-karboxyethylthio)-adeninu. Při tenkovrstvé chromatografii na silikagelu s fluorescenčním indikátorem se ukazuje, že produkt je čistý; eluční prostředek: isomáselná kyselina—voda—32% amoniak v objemovém poměru 66 : 33 : 1,7; vizualizace skvrny UF zdrojem při 254 nm; Rf 0,31 (a při vysokovoltové elektroforéze s 3MM Whatman papírem 11 x 57 cm; elektrolyt: 0,02 M octan amonný, pH 5,0, potenciál 5000 V během 30 minut; vizualizace skvrny UF zdrojem při 254 nm; pohyblivost směrem k anodě než u NAD+ v souhlasu s přítomností karboxylové skupiny).
Ultrafialové spektrum v roztoku pyrofosfátového ústojného roztoku o pH 8,7 má maximum při 276,5 nm, které při enzymatické redukci alkohol—dehydrogenázou z kvasnic přechází na 282 nm za vzniku nového vrcholu při 340 nm, který je charakteristický pro redukované nikotinoylamidové jádro.
NMR v 2HO vykazuje mimo signály vztahující se k NAD2+ s vyloučením protonového od uhlíku v poloze 8 adeninového jádra ty, které připadají na vrub protonů postranního řetězce: delta 2,88 (2H, t;
CH2COO) a 3,86 (2H, t; CHzS). Také hmotnostní spektrum potvrzuje strukturu přisuzovanou produktu (m/e 221, 192, 167). Příklad 3
Příprava fosfátu dinukleotidu nikotinoylamid-8- (2-karboxyethylthio j adeninu.
K 50 miligramům (57,6 mikromolj fosfátu dinukleotidu nikotinoylamid-8-bromadeninu rozpuštěného v 1 ml bezvodého dimethylsulfoxidu se přidá za míchání při teplotě místnosti a pod bezvodou atmosférou (dusík) 36 miligramů (240·mikromolj dvojsodné soli kyseliny 3-merkaptopropionové (připravené jak bylo popsáno v příkladě 1).
Po 16tihodinovém míchání při teplotě místnosti se směs zfiltruje a k filtrátu se přidá 10 objemů acetonu. Získaná sraženina se oddělí odstředěním, promyje acetonem, suší za sníženého tlaku a rozpustí v 10 ml 0,1 M HC1.
Zředěnou sodou se upraví pH roztoku na
7,5 a chromatografuje se na DOWEX—1 (Cl-) eluováním gradientem CaCk ve vodě okyseleného na pH 3 přídavkem HC1. Chromatografické reakce obsahující očekávaný produkt se spojí, zkoncentrují na malý objem a zbaví solí gelovou filtrací na Sephadexu G—10 eluováním produktu vodou.
Charakterizace fosfátu dinukleotidu nikotinoylamid-8- (2-karboxyethylthio J -adeninu se provádí podobně, jak bylo popsáno v příkladu 2 pro příslušný derivát NAD+ (pro enzymatickou redukci se použila glukózo-6-fosf átdehydrogenáza).
Claims (1)
- PŘEDMĚTZpůsob přípravy funkcionalizovaných derivátů adeninu, vyznačující se tím, že sloučenina ze skupiny dinukleotidu nikotinoylamidadeninu, fosfátu dinukleotidu nikotinoylamidadeninu, adenosinmonofosfátu, cyklického adenosinmonofosfátu, adenosintrifosfátu, adenosinu a adeninu, jejíž adeninové jádro je v poloze 8 substituováno halogenem, se nechá v prostředí polárního aprotického rozpouštědla při teplotě 20 až ynAlezu60 °C reagovat se sloučeninou obecného vzorceM+-S—(CH2)n—C00-M+, kdeM je ion alkalického kovu a n je celé číslo 2 až 4.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS793667A CS202047B2 (cs) | 1976-05-04 | 1979-05-28 | Způsob přípravy makromolekularizováných derivátů adeninu |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| IT25419/75A IT1039860B (it) | 1975-07-15 | 1975-07-15 | Processo per la preparazione di derivati adeninici funziona lizzati e prodotti cosi ottenuti |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS202046B2 true CS202046B2 (cs) | 1980-12-31 |
Family
ID=11216629
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS764702A CS202046B2 (cs) | 1975-07-15 | 1976-07-15 | Způsob přípravy funkcionalizovaných derivátů adeninu |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
| BE (1) | BE844163A (cs) |
| CS (1) | CS202046B2 (cs) |
| HU (1) | HU177890B (cs) |
| IT (1) | IT1039860B (cs) |
| SU (1) | SU656520A3 (cs) |
| ZA (1) | ZA764049B (cs) |
-
1975
- 1975-07-15 IT IT25419/75A patent/IT1039860B/it active
-
1976
- 1976-07-07 ZA ZA764049A patent/ZA764049B/xx unknown
- 1976-07-14 HU HU76SA2947A patent/HU177890B/hu unknown
- 1976-07-15 SU SU762381802A patent/SU656520A3/ru active
- 1976-07-15 BE BE168943A patent/BE844163A/fr not_active IP Right Cessation
- 1976-07-15 CS CS764702A patent/CS202046B2/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| ZA764049B (en) | 1977-05-25 |
| BE844163A (fr) | 1977-01-17 |
| HU177890B (en) | 1982-01-28 |
| IT1039860B (it) | 1979-12-10 |
| SU656520A3 (ru) | 1979-04-05 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US12006540B2 (en) | Synthesis of novel disulfide linker based nucleotides as reversible terminators for DNA sequencing by synthesis | |
| Trayer et al. | Preparation of adenosine nucleotide derivatives suitable for affinity chromatography | |
| DK171822B1 (da) | Modificerede nucleotider og fremgangsmåder til deres fremstilling og påvisning | |
| DE2122529C2 (cs) | ||
| SU437288A1 (ru) | Способ получени тиофосфатных аналогов нуклеозид-ди-или -трифосфатов | |
| PL168874B1 (pl) | Sposób wytwarzania 3’amino-albo tiolomodyfikowanych, sprzegnietych z barwnikiem fluorescencyjnym nukleozydów, nukleotydów i oligonukieotydów PL PL | |
| Craven et al. | Affinity Chromatography on Immobilised Adenosine 5′‐monophosphate: 1. A New Synthesis and Some Properties of an N6‐Immobilised 5′‐AMP | |
| Hall et al. | Nucleoside Polyphosphates. III. 1 Syntheses of Pyrimidine Nucleoside-2'(3'), 5'-diphosphates | |
| US4336188A (en) | Method for the preparation of macromolecularized adenine derivatives | |
| CA1220148A (en) | 9-(aminoalkyl)-8-hydroxyadenines and method of their preparation | |
| Mosbach | [16] AMP and NAD as “general ligands” | |
| CS202046B2 (cs) | Způsob přípravy funkcionalizovaných derivátů adeninu | |
| DK154670B (da) | Homogen, specifik bindings-analyse med en prostetisk gruppe som maerke samt reagenssystem til brug ved analysen | |
| US4199498A (en) | Macromolecularized adenine derivatives | |
| EP0333832B1 (en) | Artificial dna base pair analogues | |
| Czarnik et al. | Hexadeoxycycloheptaamylose-pyridoxamine, an artifical transaminase with a “deeper” binding pocket | |
| JPS6350359B2 (cs) | ||
| EP0407816A2 (en) | Base modified nucleosides | |
| JPS63130599A (ja) | 修飾ヌクレオチド | |
| Cremo | [5] Fluorescent nucleotides: Synthesis and characterization | |
| US5399681A (en) | Method for preparing N6 -substituted NAD, NADP or FAD | |
| Holý | Preparation of 9-(β-D-ribofuranosyl)-2-hydroxypurine | |
| Eckstein et al. | A facile method for the preparation of N 6-substituted ATP-Sepharose | |
| FUJISAWA | Flavin-hypoxanthine dinucleotide | |
| Quiggle et al. | Design of new photoaffinity labels for ribosomal peptidyltransferase |