CS197918B1 - Způsob kultivace chlorokokálních řas, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^4C - Google Patents

Způsob kultivace chlorokokálních řas, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^4C Download PDF

Info

Publication number
CS197918B1
CS197918B1 CS388678A CS388678A CS197918B1 CS 197918 B1 CS197918 B1 CS 197918B1 CS 388678 A CS388678 A CS 388678A CS 388678 A CS388678 A CS 388678A CS 197918 B1 CS197918 B1 CS 197918B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
culture
algae
radioactive
radionuclide
cultivation
Prior art date
Application number
CS388678A
Other languages
English (en)
Inventor
Jiri Doucha
Ivan Setlik
Josef Kolina
Blazena Pekarkova
Stefan Kubin
Miroslav Smazik
Original Assignee
Jiri Doucha
Ivan Setlik
Josef Kolina
Blazena Pekarkova
Stefan Kubin
Miroslav Smazik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jiri Doucha, Ivan Setlik, Josef Kolina, Blazena Pekarkova, Stefan Kubin, Miroslav Smazik filed Critical Jiri Doucha
Priority to CS388678A priority Critical patent/CS197918B1/cs
Publication of CS197918B1 publication Critical patent/CS197918B1/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Vynález řeší způsob kultivace chlorokokálních řas vhodného typu, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o 'vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem 14C.
Příprava radioaktivních sloučenin, značených radionuklidem ^4C, pomocí autotrofnich organizmů, které využívají radioaktivní kysličník uhličitý jako zdroj uhlíku, se v současné době ve světě uplatňuje především při výrobě aminokyselin, bílkovin a nukleových kyselin. Některé postupy jsou předmětem patentů (viz např, čs. patent č. 100738, čs. patent č. 121808, franc. patent č. 72Ó8482), jiné jsou utajeny. Rovněž postupy , používané u výrobců glycidů, značených radioizotopem ^4C, nejsou zveřejněny. Předpokládá se, že i zde se k výrobě požadovaných sloučenin používá autotrofnich organizmů.
Dosavadní způsob kultivaoe, kterého československý monopolní výrobce radioaktivních sloučenin - Ústav pro výzkum, výrobu a využití radioizotopů - při výrobě radioaktivních glycidů, značených radionuklidem ^4C, používá, se vyznačuje malou výtěžností cca 1 % z celkové inkorporované radioaktivity.
Předmětem vynálezu je způsob kultivace chlorokokálních řas vhodného typu, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^4C, jehož podstata spočívá v tom, že kultivace se provádí za přítomnosti specifického inhibitoru oykloheximidu. Ke kultivaci se použije populace dceřinných buněk
197 918
187 911 synchronní kultury, při čemž teto populaoe prochází před zahájením výrobního oyklu prodlouženou temnou periodou cyklu· Při tomto uspořádání pokusu js inhlbována syntéza nukleových kyselin a stimulována syntéza glyoidů. Během jednorázové, pouze několikahodinové kultivaoe, která je předpokladem pro přežití organizmu, rostoucího v přítomnosti radioaktivního kysličníku uhličitého jako jediného zdroje uhlíku, se dosáhne syntézy významného množství škrobu a sacharózy, a tím i vysoké speoifioké aktivity produktů·
Inhibitorem syntézy nukleovýoh kyselin a bílkovin je cykloheximid· Potosyntetioká aktivita a růstová ryohlost jsou stejné jako za optimálníoh kultivačníoh podmínek.
Podmínkou zdárného průběhu výrobní kultivaoe je, aby násada řas, se kterou se výroba začíná, měla požadované vlastnosti. Příprava násady včetně zařízení, ve kterém probíhá, je proto součástí popisovaného vynálezu.
Vzhledem k tomu, že odezva kultivované populaoe buněk na zásah do jejího metaboli® mu je různá v různých fázích života buňky, je pro dosažení vysokých výtěžků a získání produktu o vysoké specifické aktivitě nutné použít synohronní populaoe (tj. populace, ve které jsou všechny buňky ve stejném stádiu životního cyklu). Synchronní kultura umožňuje rovněž regulovat množství glycidů, především škrobu, v buňkách před začátkem kultivaoe na ^^COg. Toto startovní množství glycidů, které z hlediska dosažení vysokých specifických aktivit musí být oo nejnižší, se reguluje jednak délkou temné periody synchronního oyklu a teplotou, při které dělení mateřských buněk na buňky doeřinné probíhá jednak použitím speoifiokýoh látek, které během temné periody cyklu cyklu aktivují působení enzymů, urychlujících štěpení glyoidů.
Předkultivaoe v atmosféře ^OOg i vlastní výrob, kultivaoe se provádějí v kultivačním zařízení téhož typu. Sestává ze skleněného kultivačního váloe s dvojitým pláštěm (meziprostorem protéká chladivo, zajišťující optimální teplotu kultivované suspenze) o pracovním objemu 750 ml. V kultivačním prostoru je suspenze řas vystavena fotosynteticky účinnému záření, při čemž je intenzívně míchána a sycena kysličníkem uhličitým, probublávajíoím suspenzí ve směsi COg/vzďuoh.
Příslušenství výrobního kultivátoru sestává z
- ozařovaoího tělesa U tvaru, osazeného dvěma lampami typu Nitrafot o celkovém příkonu 1000 W. Vnitřní strany tělesa jsou pokryty zrcadlovými plochami,· rovněž odrazová zadní stěna je kryta zrcadlem. Přiložení osvětlovaoího TJ tělesa k zadní zrcadlové stěně umožňuje úplné uzavření kultivačního váloe v prostoru ozařovaoího tělesa. Intenzita fotosyntetioky účinného záření (PAR), dopadajícího na čelní stěnu kultivátoru, se měří fytoaktinometrem (tj. čidlem, neselektivně citlivým v oblasti fotosynteticky účinného záření v rozmezí 400 až 700 nm) a je plynule nastavitelná pomooí transformátoru, regulujícího vstupní napětí,
- vyvíječe ^COg, zapojeného do okruhu cirkulace směsi C02/vzduoh· ^COg se uvolňuje ve vyvíječi ze suroviny, jíž je Ba^CO^, dávkováním kyseliny. Do cirkulačního okruhu je zařazen indikátor koncentrace ^COg v plynné směsi, vlastní oirkulaoe směsi je zajištěna čerpadlem,
197 819
- absorpční nádoby na pohloení ^OOg, která se připojuje do okruhu atmosféry, cirkulující aparaturou, po ukončené kultivaci nebo kdykoliv je třeba kultivaci přerušit,
- vývěvy, připojené přes absorbér ^COg na plynný prostor aparatury. Používá se jí pro vytvoření podtlaku, který indikuje těsnost aparatury a znemožňuje únik plynná směsi do vnějšího prostoru,
- chladícího zařízení, tvořeného ultratermostatem, zapojeným přes kontaktní teploměr v uzavřeném okruhu s kultivátorem.
Příklad provedení
K výrobní kultivaci se použije chlorokokální řasa Ohlorella vulgaris BEIJE3INCK, kmen OM - 12/1975, jejíž kmenová kultura se přechovává ve zkumavkách na šikmých agarech, nasycených minerálním živným roztokem, při teplotě 15 °C a intenzitě ozáření 10 W.m
PAR.
a) Příprava kultury
Kultura se z agaru převede do tekutého živného roztoku následujícího složení:
KNOj 1 g . I-1, MgS04.7 HgO 1 g.l1 KHgPO4 680 mg.l1, Ca(N03>2 . 4 H20 10 mg.l1, ohelatonát železito-sodný 18,4 mg.l“1 (obsah Pe+++ 5,6 mg.l1), H^BO^ 6,18 mg.l1 a stopové těžké kovy: Cu 0,635 mg.l1, Mn 0,6 mg.l1, Mo 0,96 mg.l1, Co 0,59 mg.l1.
K úpravě pH na hodnotu 6,8 se přidává do živného roztoku potřebné množství KOH.
V uvedeném živném roztoku se kultura pěstuje v kultivačním váloi o objemu 300 ml při ozáření 50 W.m2, teplotě 27 °C a takové koncentraci COg ve směsi se vzduchem, která odpovídá 2 % rozpuštěného COg v suspenzi až do hustoty začátku stacionární fáze růstové křivky (nejčastěji 5 dní). Takto připravená kultura, převedená do kultivačního válce výrobního typu, se synchronizuje. Synchronizace se provádí metodou střídání period světla a tmy (způsob provedení viz např. DOUCHA: Synohronous culturesj Algal Assays in Eutrophication Monitoring, Stuttgart 1978). Synchronní, po každém oyklu ředěná kultura se pěstuje v rozsahu optických hustot + 0,150 (začátek světelné periody) až 1,200 (po rozdělení mateřských buněk na buňky doeřinné) při ozářenosti FAR 150 W.m2, teplotě 27 °C a 2 % rozpuštěného C02 v suspenzi. Za těchto podmínek trvá světelná perioda synchronního oyklu 14 hodin, temná perioda 8 hodin a průměrná specifická růstová rychlost kultury /ň 0,22.^1. Po 3 až 4 oykleoh je kultura připravena k výrobní kultivaci.
Během předkultivaoe i výrobní kultivaoe jsou průběžně sledovány a korigovány následující údaje:
teplota suspenze, pH suspenze, koncentrace COg, rozpuštěného v suspenzi, optická hustota suspenze a intenzita PAR, dopadajícího na povrch kultivační kyvety.
Optická hustota se měří v 5 mm kyvetě při vlnové délce 750 nm na fotometru
SPECOL. Znásobíme-li hodnotu optioké hustoty koeficientem 0,65, dostaneme (v rozsahu používaných kultivačních hustot populace) přibližnou hodnotu sušiny řas.
s
197 919
b) Výrobní kultivace
Temná perioda posledního předvýrobního synchronního cyklu probíhá po dobu 13 hodin. Hodinu před ukončením- temné periody oyklu se ve výrobním kultivačním váloi připraví 750 ml nového živného roztoku, který je zbaven veškerého fyzikálně rozpuštěného neradioaktivního kysličníku uhličitého. Do tohoto roztoku se dodá oyklohezlmid v množství 5 mg.l“·1·. Potom se nasytí roztok radioaktivním kysličníkem uhličitým (rovnovážný stav v suspenzi rozpuštěného ^OOg s atmosférou, obsahující 2 % ^COg, nastane asi po 30 minutách intenzivního probublávání). Po nasycení se do váloe vpraví takové množství promytého rasového inokula, aby startovní hustota suspenze byla
400 mg sušiny.ml“1 a vlastní šestihodinový výrobní cyklus proběhne na světle. Počá••2 «»2 teční ozářenost 130 W.m PAR se po čtvrté hodině zvýší na 180 W.ra PAR. Po ukončení kultivace se suspenze řas ochladí na 2 °C a při této teplotě oentrifuguje. Získaný řasový sediment je výchozím radioaktivním produktem pro vlastní zpracování.
Průběh syntézy škrobu a saoharózy při kultivaci, vyjádřený v /Ug/ml suspenze a v % sušiny řas, je uveden na obrázku číslo 1 a 2. Specifická aktivita saoharózy a glukózy (po hydrolýze škrobu) v průběhu kultivaoe je uvedena na obr. 3.

Claims (1)

  1. Způsob kultivaoe ohlorokokálních řas, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^C, vyznačený tím, že se kultivaoe provádí za přítomnosti specifického inhibitoru proteinové syntézy cykloheximidu a ke kultivaci se použije populace dceřinnýoh buněk synchronní kultury, při čemž tato populace prochází před zahájením výrobního cyklu prodlouženou temnou periodou oyklu.
CS388678A 1978-06-14 1978-06-14 Způsob kultivace chlorokokálních řas, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^4C CS197918B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS388678A CS197918B1 (cs) 1978-06-14 1978-06-14 Způsob kultivace chlorokokálních řas, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^4C

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS388678A CS197918B1 (cs) 1978-06-14 1978-06-14 Způsob kultivace chlorokokálních řas, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^4C

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS197918B1 true CS197918B1 (cs) 1980-05-30

Family

ID=5380244

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS388678A CS197918B1 (cs) 1978-06-14 1978-06-14 Způsob kultivace chlorokokálních řas, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^4C

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS197918B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Oren et al. Induction of anaerobic, photoautotrophic growth in the cyanobacterium Oscillatoria limnetica
Matsunaga et al. Glutamate production from CO2 by marine cyanobacterium Synechococcus sp. using a novel biosolar reactor employing light-diffusing optical fibers
Scoma et al. Outdoor H2 production in a 50-L tubular photobioreactor by means of a sulfur-deprived culture of the microalga Chlamydomonas reinhardtii
Smith Photosynthesis in relation to light and carbon dioxide
Ogbonna et al. Sequential heterotrophic/autotrophic cultivation–an efficient method of producing Chlorella biomass for health food and animal feed
Torzillo et al. Temperature as an important factor affecting productivity and night biomass loss in Spirulina platensis grown outdoors in tubular photobioreactors
Touloupakis et al. Hydrogen production by immobilized Synechocystis sp. PCC 6803
Falkner et al. pH changes in the cytoplasm of the blue-green alga Anacystis nidulans caused by light-dependent proton flux into the thylakoid space
PRINGSHEIM et al. Photo-assimilation of acetate by green organisms
Torzillo et al. Effect of light and temperature on the photosynthetic activity of the cyanobacterium Spirulina platensis
Lowe et al. Carbon dioxide requirement for growth of legume nodule bacteria
Vesell Lactate dehydrogenase isozymes: substrate inhibition in various human tissues
JPH0789946B2 (ja) 微生物によるl−アスコルビン酸の製造法
Masukawa et al. Hydrogenases and photobiological hydrogen production utilizing nitrogenase system in cyanobacteria
Guoce et al. Growth and physiological features of cyanobacterium Anabaena sp. strain PCC 7120 in a glucose-mixotrophic culture
CS197918B1 (cs) Způsob kultivace chlorokokálních řas, zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidů o vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem ^4C
ES8200723A1 (es) Un procedimiento para la produccion de acido 2-ceto-l-gulo- nico
CS199446B1 (cs) Způsob kultivace chlorokokálních řas zaměřený na intenzivní syntézu radioaktivních sacharidu 0 vysoké specifické aktivitě, značených radionuklidem 14c
Poddar et al. An unusual light-sensing function for coenzyme B12 in bacterial transcription regulator CarH
Kieler Influence of CO2 Tension on the Respiration of Yoshida Ascites Tumor Ceils
SU1324627A1 (ru) Штамм вольвоксовой водоросли DUNaLIeLLa SaLINa TeoD CALU-834-продуцент белково-каротиновой биомассы
Lesburg et al. Crystallization and preliminary X‐ray diffraction analysis of recombinant pentalenene synthase
Wennicke et al. Control of the photosynthetic apparatus of Acetabularia mediterranea by blue light: analysis by light-saturation curves
Weiss et al. Photosynthesis and heat response of the green alga Micrasterias denticulata (Desmidiaceae)
Wang Effect of dim light on the y-1 mutant of Chlamydomonas reinhardtii