CN1329510C - 一种微球菌两级复凝固定化方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及向Na·Alg溶液里加入1ml吐温80和微球菌,在40-45℃,通过9#针头注射器,控制下滴速度40-60滴/分钟,向Gel和CaCl2混合液中滴加,稳定3.5-5h,然后在CaCl2溶液中二次钙化10-15min,随后在CS溶液中进行二级复凝聚反应2-3h,再利用柠檬酸囊内液化5-8min,以无菌生理盐水水浸泡6-24h,增殖培养制得微胶囊。本发明优点为:微球菌生理活性良好,微胶囊囊壁的机械强度高、壁结构均匀,微胶囊的缓释性能优异。
Description
技术领域
本发明涉及细胞固定化生物制剂,尤指微球菌(Micrococcus sp.)两级复凝固定化方法,具体地说是一种海藻酸钠(Na·Alg)—明胶(Gel)—氯化钙(CaCl2)—氯化钙(CaCl2)—壳聚糖(CS)两级复凝微胶囊工艺。
背景技术
微胶囊包埋细菌技术因包埋细菌数量大、缓释、生物相容性好等特点,一直以来被人们广泛关注,已经在制药、食品、酿造、提纯等领域得到了普遍应用;但由于微胶囊壁(厚度)薄,机械强度较小,长期使用易破碎等缺陷,限制了其广泛范围。
传统增强微胶囊壁厚度的方法有两种:一是选用强度高的载体材料,一是延长制囊时间,以增加微胶囊壁厚。但是高强度载体的生物相容性和水溶性一般较差,制得的微胶囊缺少弹性;延长制囊时间将导致胶囊壁产生过多的单质渗出层,并使钙化层过度增厚,阻塞囊壁孔隙,不利于氧气、营养物质以及其它的小分子物质自由通过微胶囊膜进行物质传递,因此,如何在保证微胶囊壁渗透性的基础上,最大限度的提高囊壁强度,是微胶囊技术能否大规模实际应用的关键控制性因素。
微球菌Micrococcus sp.菌体尺寸微小,适宜的微胶囊壁孔径不宜过大,否则容易泄漏;一般在Na·Alg—CS复凝制囊时,为了提高强度而延长时间,导致囊壁孔隙阻塞,固定化失败。
发明内容
本发明的目的在于利用Na·Alg-Gel-CaCl2一级复凝、CaCl2二次钙化和CS两级复凝技术,在保证囊壁传质渗透性的前提下,提高微胶囊壁的机械强度,成功固定化微球菌Micrococcus sp.,制备性能优良的微生物菌剂。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案为:向Na·Alg溶液里加入1ml吐温80和微球菌,在40-45℃,通过9#针头注射器,控制下滴速度40-60滴/分钟,向Gel和CaCl2混合液中滴加,稳定3.5-5h,然后在CaCl2溶液中二次钙化10-15min,随后在CS溶液中进行二级复凝聚反应2-3h,再利用柠檬酸囊内液化5-8min,以无菌生理盐水水浸泡6-24h,增殖培养,备用。
微球菌两级复凝固定化方法,可按如下步骤进行具体操作,
1)壁材配制:按质量百分比配制1.5-2.5%海藻酸钠(Na·Alg)的水溶液(用自来水浸润24h),灭菌冷却(使用前于111℃下湿热灭菌30min,冷却到45℃),加入与海藻酸钠的水溶液体积比为200∶1的无菌吐温80,并加入海藻酸钠的水溶液总质量15-30%的微球菌液体种子(菌龄16-20h),搅拌均匀;
2)一级芯材溶液配制:按质量百分比配制含1.5-2.5%明胶(Gel)和1.0-2.0%氯化钙(CaCl2)的水溶液,pH=5.0-7.0,灭菌冷却(使用前于111℃下湿热灭菌30min),备用;
3)二次钙化溶液配制:按质量百分比配制0.2-0.8%氯化钙(CaCl2)的水溶液,灭菌冷却(使用前于121℃下湿热灭菌20min),备用;
4)二级芯材溶液配制:按质量百分比配制0.1-0.7%壳聚糖(CS)的水溶液,pH=3.5-5.5,灭菌冷却(使用前于111℃下湿热灭菌30min),备用;
5)囊内液化液配制:按摩尔浓度配制0.055mol/L柠檬酸水溶液,灭菌冷却(使用前于111℃下湿热灭菌30min),备用;
6)微胶囊制备:在40-45℃下,将壁材溶液在无菌条件下按40-60滴/分钟的速度滴入一级芯材溶液中,不断搅拌;胶珠成型后,稳定3.5-5h;,将胶珠转移到二次钙化液中,二次钙化10-15min,然后将胶珠转移到二级芯材溶液中,进行二级复凝聚反应2-3h;将胶珠转移到柠檬酸溶液中,搅拌囊内液化5-8min;取出胶珠用无菌水或无菌生理盐水浸泡6-24h(通常为16h),置于增殖培养基中,增殖培养后制得微胶囊。
壁材配制中海藻酸钠水溶液的质量百分比浓度为1.6-2.0%(以自来水浸润24h),灭菌冷却,向其中加入海藻酸钠的水溶液总质量20%的微球菌液体种子,搅拌均匀;一级芯材配制中明胶和氯化钙的质量百分比分别为1.8-2.2%和1.2-1.8%,pH=5.5-6.5;二次钙化溶液配制中氯化钙水溶液的质量百分比浓度为0.3-0.6%;二级芯材溶液配制中壳聚糖(CS)水溶液的质量百分比浓度为0.25-0.55%,pH=4.0-5.0。
壁材配制中海藻酸钠水溶液的质量百分比浓度为1.8%(以自来水浸润24h);一级芯材配制中明胶(Gel)和氯化钙(CaCl2)的质量百分比分别为2.0%和1.5%,pH=6.0;二次钙化溶液配制中氯化钙水溶液的质量百分比浓度为0.5%;二级芯材溶液配制中壳聚糖(CS)水溶液的质量百分比浓度为0.4%,pH=4.5。
所述增殖培养是将制备的微胶囊在无菌条件下按照4%的质量浓度加入到增殖培养基中,控制温度:28-30℃,摇床转速:130rpm-140rpm,培养时间:24小时,之后更换培养基,共2次培养,备用。
本发明具有如下优点:
1.微球菌(生理)活性良好。本发明通过优化两级复凝聚体系组分含量,包括Na·Alg、Gel、CS、CaCl2,制备得到平均直径为25μm-45μm的微胶囊,微胶囊扩散传质性能优异,固定后的微球菌Micrococcus sp.(生理)活性良好。
2.提高了囊壁的机械强度。本发明采用Na·Alg-Gel-CaCl2-CaCl2-Na·Alg-CS两级复凝聚技术,在保证囊壁传质渗透性能的同时,成功地改善了微胶囊的结构,提高了囊壁的机械强度;制得的微胶囊机械强度高,在5000rpm速度下离心30min,胶囊不变形,不破碎;用于微球菌属固定,长期培养微胶囊不溶解。
3.胶珠壁结构均匀。微胶囊被束缚在直径1.5mm-2.5mm的多孔胶珠内部,胶珠壁结构均匀,有效防止了微胶囊流失,并起到了强化微胶囊机械强度的效果。
4.缓释性能优异。按本发明(配方)制备的微胶囊在液体环境中(连续)培养30天,微胶囊的缓释性能优异。
具体实施方式
下面通过实施例对本发明作进一步详细说明。
实施例1
(1)微球菌Micrococcus sp.斜面培养:在牛肉蛋白胨基础培养基(0.3%牛肉膏,1.0%蛋白胨,0.5%NaCl,1.5-2.0%琼脂,pH=7.0-7.2)的试管中接入微球菌Micrococcus sp.,置28℃-30℃培养箱中培养24h;
(2)微球菌Micrococcus sp.液体种子制备:用接种环在斜面培养基上接取2环菌苔,接入到液体种子培养基(1.25%葡萄糖,0.25%酵母膏,0.1%NH4NO3,0.02%MgSO4·7H20,0.02%KCl,pH=7.0-7.2)中,在摇床转速130rpm-140rpm、28℃-30℃条件下,培养16-20小时,制得液体种子;
(3)壁材配制:按质量百分比称取2.5%Na·Alg,以97.5%质量比的自来水浸润24小时。于111℃下湿热灭菌30min,冷却到45℃,加入1ml无菌吐温80,并加入上述总质量20%的液体种子,搅拌均匀;
(4)一级芯材溶液配制:按质量百分比称取2.5%Gel和2.0%CaCl2,以自来水定容,调节pH=7.0。于111℃下湿热灭菌30min;
(5)二次钙化溶液配制:按质量百分比称取0.8CaCl2,以自来水定容,pH自然。于121℃下湿热灭菌20min;
(6)二级芯材溶液配制:按质量百分比称取0.7%CS,以自来水定容,调节pH=5.5。于111℃下湿热灭菌30min;
(7)囊内液化液配制:按照摩尔浓度配制0.055mol/L柠檬酸水溶液,于121℃下湿热灭菌20min;
(8)微胶囊制备:将壁材溶液在无菌条件下注入注射器内,利用9#针头按照30滴/分钟的速度滴入一级芯材溶液中,不断搅拌。胶珠成型后,维持5h,将胶珠转移到二次钙化液中,稳定10min,然后将胶珠转移到二级芯材溶液中,稳定3h,将胶珠转移到柠檬酸溶液中,搅拌5min,用无菌生理盐水浸泡16h,置于增殖培养基(3.0%葡萄糖,0.4%酵母膏,0.1%牛肉膏,0.1%NH4NO3,0.02%MGSO4·7H20,0.02%KCl,pH=7.0-7.2)中,增殖24h,更换培养基,再次增殖24h,制得微胶囊。
(9)机械强度和缓释性检测:按照4%接种量将微胶囊接入增殖培养基中,培养30d后,取1g微胶囊置于生理盐水中,在5000rpm转速下离心30min,囊体不变形、不破碎。微胶囊失重率小于24%。
实施例2
与实施例1不同之处在于:配制壁材溶液时,按照质量百分比称取2.0%Na·Alg;配制一级芯材溶液时,按质量百分比称取2.2%Gel和1.8%CaCl2,调节pH=6.5;配制二次钙化溶液时,按质量百分比称取0.6CaCl2;配制二级芯材溶液时,按质量百分比称取0.55%CS,调节pH=5.0;控制壁材溶液下滴速度35滴/分钟,一级复凝胶珠成型后,维持4h,胶珠转移到二级芯材溶液中,稳定2.5h;经上述步骤制得的微胶囊机械强度较好,30d失重率小于23%。
实施例3
与实施例1不同之处在于:配制壁材溶液时,按照质量百分比称取1.8%Na·Alg;配制一级芯材溶液时,按质量百分比称取2.0%Gel和1.5%CaCl2,调节pH=6.0;配制二次钙化溶液时,按质量百分比称取0.5CaCl2;配制二级芯材溶液时,按质量百分比称取0.4%CS,调节pH=4.5;控制壁材溶液下滴速度45滴/分钟,一级复凝胶珠成型后,维持3.5h,胶珠转移到二级芯材溶液中,稳定2h;经上述步骤制得的微胶囊机械强度较好,30d失重率小于19%。
Claims (4)
1.一种微球菌两级复凝固定化方法,按如下步骤操作,其特征在于:
1)壁材配制:按质量百分比配制1.5-2.5%海藻酸钠的水溶液,灭菌冷却,加入与海藻酸钠的水溶液体积比为200∶1的无菌吐温80,并加入海藻酸钠的水溶液总质量15-30%的微球菌液体种子,搅拌均匀;
2)一级芯材溶液配制:按质量百分比配制含1.5-2.5%明胶和1.0-2.0%氯化钙的水溶液,pH=5.0-7.0,灭菌冷却,备用;
3)二次钙化溶液配制:按质量百分比配制0.2-0.8%氯化钙的水溶液,灭菌冷却,备用;
4)二级芯材溶液配制:按质量百分比配制0.1-0.7%壳聚糖的水溶液,pH=3.5-5.5,灭菌冷却,备用;
5)囊内液化液配制:按摩尔浓度配制0.050-0.060mol/L柠檬酸水溶液,灭菌冷却,备用;
6)微胶囊制备:在40-45℃下,将壁材溶液在无菌条件下按40-60滴/分钟的速度滴入一级芯材溶液中,不断搅拌;胶珠成型后,稳定3.5-5h,将胶珠转移到二次钙化液中,二次钙化10-15min,然后将胶珠转移到二级芯材溶液中,进行二级复凝聚反应2-3h;将胶珠转移到柠檬酸溶液中,搅拌囊内液化5-8min;取出胶珠用无菌水或无菌生理盐水浸泡6-24h,置于增殖培养基中,增殖培养后制得微胶囊。
2.按照权利要求1所述微球菌两级复凝固定化方法,其特征在于:壁材配制中海藻酸钠水溶液的质量百分比浓度为1.6-2.0%,灭菌冷却,加入海藻酸钠的水溶液总质量20%的微球菌液体种子,搅拌均匀;一级芯材配制中明胶和氯化钙的质量百分比分别为1.8-2.2%和1.2-1.8%,pH=5.5-6.5;二次钙化溶液配制中氯化钙水溶液的质量百分比浓度为0.3-0.6%;二级芯材溶液配制中壳聚糖水溶液的质量百分比浓度为0.25-0.55%,pH=4.0-5.0。
3.按照权利要求1所述微球菌两级复凝固定化方法,其特征在于:壁材配制中海藻酸钠水溶液的质量百分比浓度为1.8%;一级芯材配制中明胶和氯化钙的质量百分比分别为2.0%和1.5%,pH=6;二次钙化溶液配制中氯化钙水溶液的质量百分比浓度为0.5%;二级芯材溶液配制中壳聚糖水溶液的质量百分比浓度为0.4%,pH=4.5。
4.按照权利要求1所述微球菌两级复凝固定化方法,其特征在于:所述增殖培养是将制备的微胶囊在无菌条件下按照4%的质量浓度加入到增殖培养基中,控制温度28-30℃,摇床转速130rpm-140rpm,培养时间24小时,之后更换培养基,共2次培养,备用。
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