CN118159669A - 一种用于诊断肝癌的核酸及蛋白检测试剂盒 - Google Patents
一种用于诊断肝癌的核酸及蛋白检测试剂盒 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种用于诊断肝癌的核酸检测试剂盒。本发明提供了″甲基化OTX1基因、甲基化HIST1H3G基因、甲胎蛋白和异常凝血酶原″组合作为联合标记物在如下中的应用:诊断或筛查癌症、在临床症状之前预警癌症、区分或辅助区分癌症和良性病变。本发明用OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量作为肝癌筛查的联合标志物。通过检测OTX1基因和HIST1H3G基因的甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量,并对所得数据进行分析,可以预测受检者罹患肝癌的可能性,进而实现在普通人群或肝癌高危人群中筛查肝癌的目的。
Description
本发明涉及生物医学领域,具体涉及一种用于诊断肝癌的核酸及蛋白检测试剂盒。
肝癌是世界上发病、死亡率很高的癌症之一,我国的肝癌发病情况尤为严重,全球超过50%的肝癌发生在中国。目前肝癌的筛查手段主要是血清甲胎蛋白(AFP)检查和超声显像检测,但这些方法存在对早期肝癌的灵敏性低或特异性不足的问题,且影像学检测更受限于检查医生的经验、检测仪器的性能等因素,目前有很大一部分肝癌发现时已经是晚期,而晚期肝癌的治疗、预后较差,患者的五年生存率较差。因此,建立一种准确、简便、经济的肝癌早期筛查方法具有重大意义。
当人体内的细胞破裂或死亡时,会释放其DNA进入循环系统内,即为游离DNA(cell-freeDNA,cfDNA)。同样的,当肿瘤细胞破裂或死亡时,也会释放出循环肿瘤DNA(circulatingtumorDNA,ctDNA),这些DNA携带有肿瘤细胞的遗传学信息。通过检测混杂在cfDNA里的ctDNA,分析其携带的突变和表观遗传学等信息,即可推断受检者罹患癌症的可能性。
科学家们开发出了许多高分子利用率的高通量测序技术,使得在血浆游离DNA中检测到微量的突变信号成为了可能,也推动着精准肿瘤早筛的发展。科学家们先从基因突变中寻找适用于肿瘤早筛的生物标志物,但是研究表明,单一采用突变信号进行肿瘤早筛效果有限。因此,科学家们开始从表观遗传学层面进行肿瘤早筛探索。DNA甲基化是一种重要的基因表达调控机制,能够调节基因的表达和沉默,在肿瘤的发生发展中具有重大的影响。癌症相关基因的异常甲基化常出现于癌症发生的早期,因此DNA甲基化信号被认为是有潜力的肿瘤早期筛查标志物。
综合国内外专注于肿瘤早筛技术研究的公司来看:目前Grail主要采用的研究技术是cfDNA靶向测序、WGS和WGBS,通过对大量癌症样本和非癌对照样本进行全基因组测序,挖掘肿瘤特异的突变和甲基化分子标志物。此策略能够较全面地对肿瘤基因组图谱进行研究,但高深度的全基因组测序带来的巨额成本并非一般研究单位能够承担。Guardant Health则专注于液体活检技术,采用高灵敏度的检测技术进行肿瘤早筛研究,但液体活检技术用于肿瘤早筛依然存在许多局限,如:早期肿瘤突变信号极弱、部分基因突变在多个不同癌种中存在和克隆性造血会对ctDNA检测带来巨大的干扰等。因此单一采用突变作为分子标志物效果受限较大。泛生子则联合突变和蛋白标志物进行检测,该研究也显示了应用多组学进行检测能够有效提高检测性能。鹍远基因和基准医疗则专注于甲基化的检测,DNA甲基化的变化往往是多个位点同时发生,因此相比单个位点的 基因突变具有更高的灵敏性,而且DNA甲基化信号的组织特异性,使得泛癌种肿瘤早筛成为可能,因此甲基化是肿瘤早筛非常理想的分子标志物。
目前国内外有许多基于DNA甲基化的肿瘤早筛研究,如被誉为“无创DNA产前检测的奠基人”的香港著名分子生物学临床应用专家卢煜明,在2019年时发表了使用低深度WGBS测序检测尿液cfDNA中的甲基化和拷贝数变异(CNA)情况,此方法用于膀胱癌检测灵敏性达到93.5%(特异性95.8%);如Anderson,B.W.等人在2018年发表的关于胃癌甲基化标志物临床验证的研究,该研究首先从DNA甲基化组中找到了胃癌相关的候选DNA甲基化标志物,然后采用甲基化特异性PCR(MSP)方法对大量样本进行测试,最终获得一个包括3个marker的panel(ELMO1,ZNF569,C13orf18),该方法的灵敏性达到86%(特异性95%,CI71-95%)。越来越多的研究报道证明了DNA甲基化标志物在肿瘤早筛领域的巨大潜力,在大量的研究基础上,开发一种基于甲基化的、“轻便”的检测方法将会加速甲基化肿瘤早筛向临床产业转化的进程。
现有的肝癌筛查方案(卫健委公布《原发性肝癌诊疗规范(2019年版)》)流程图如图1。目前肝癌的筛查手段主要是血清甲胎蛋白(AFP)检查和超声显像检测。这些方法存在对早期肝癌的灵敏性低或特异性不足的问题,且影像学检测更受限于检查医生的经验、检测仪器的性能等因素,目前有很大一部分肝癌发现时已经是晚期,而晚期肝癌的治疗、预后较差,患者的五年生存率较差。
OTX1基因编码一种转录因子蛋白,参与人体器官发育。HIST1H3G基因编码一种H3组蛋白,组蛋白在转录调控、DNA修复、DNA复制及染色体的稳定性等方面都有重要的作用。甲胎蛋白(AFP)是目前临床上最常用的肝癌检测蛋白标志物。血清异常凝血酶原(des-Y-carboxy-prothrombin,DCP)或称维生素K缺乏或拮抗剂诱导的蛋白Ⅱ(protein induced by vitamine K absence or antagonist-Ⅱ,PIVKA-Ⅱ),是由于维生素K不足或存在维生素K拮抗剂时肝癌细胞不能依赖维生素K合成正常的凝血因子导致凝血酶原前体羧化不足而生成的。近年来,FujitaK以及KinukawaH等学者报道PIVKA-Ⅱ在HCC早期即升高,可作为HCC早期诊断与筛查的血清学指标。
发明公开
本发明的目的是提供一种用于诊断肝癌的核酸检测试剂盒。
第一方面,本发明要求保护“甲基化OTX1基因、甲基化HIST1H3G基因、甲胎蛋白和异常凝血酶原”组合作为联合标记物在如下任一中的应用:
(A1)制备用于诊断或筛查癌症的产品;
(A2)诊断或筛查癌症;
(A3)制备用于在临床症状之前预警癌症的产品;
(A4)在临床症状之前预警癌症;
(A5)制备用于区分或辅助区分癌症和良性病变的产品;
(A6)区分或辅助区分癌症和良性病变。
其中,所述甲基化OTX1基因为SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化。所述甲基化HIST1H3G基因为SEQ ID No.4所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化。
第二方面,本发明要求保护用于检测“OTX1基因甲基化水平、HIST1H3G基因甲基化水平、甲胎蛋白含量和异常凝血酶原含量”的物质在如下任一中的应用:
(A1)制备用于诊断或筛查癌症的产品;
(A2)诊断或筛查癌症;
(A3)制备用于在临床症状之前预警癌症的产品;
(A4)在临床症状之前预警癌症;
(A5)制备用于区分或辅助区分癌症和良性病变的产品;
(A6)区分或辅助区分癌症和良性病变。
其中,所述OTX1基因甲基化水平为SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化水平。所述HIST1H3G基因甲基化水平为SEQ ID No.4所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化水平。
进一步地,用于检测所述OTX1基因甲基化水平的物质可为重亚硫酸盐试剂以及引物对和探针;所述引物对由SEQ ID No.5-SEQ ID No.112任一组所示的两条单链DNA组成;所述探针为SEQ ID No.113-SEQ ID No.115中任一所示单链DNA。优选地,所述引物对由SEQ ID No.95和SEQ ID No.96所示两条单链DNA组成;所述探针为SEQ ID No.113所示单链DNA。
进一步地,用于检测所述HIST1H3G基因甲基化水平的物质可为重亚硫酸盐试剂以及引物对和探针;所述引物对由SEQ ID No.116-SEQ ID No.197任一组所示的两条单链DNA组成;所述探针为SEQ ID No.198-SEQ ID No.202中任一所示单链DNA。优选地,所述引物对由SEQ ID No.140和SEQ ID No.141所示两条单链DNA组成;所述探针为SEQ ID No.202所示单链DNA。
进一步地,用于检测所述甲胎蛋白含量的物质为能够与甲胎蛋白特异性结合的物质,如抗甲胎蛋白的抗体。
进一步地,用于检测所述异常凝血酶原含量的物质为能够与异常凝血酶原特异性结合的物质,如抗异常凝血酶原的抗体。
在上述两方面的应用中,所述癌症包括但不限于肝癌、结直肠癌、肺癌、胃癌、胰腺癌、前列腺癌、食管癌或尿路上皮癌等。
在本发明的具体实施方式中,所述癌症为肝癌。相应的,所述良性病变为肝脏良性病变或肝硬化。所述肝脏良性病变具体为肝血管瘤,肝腺瘤,肝脓肿,肝囊肿,肝局灶性结节性增生,特发性非肝硬化性门静脉高压或炎性假瘤等。
第三方面,本发明要求保护一种试剂盒,记为试剂盒I。
所述试剂盒I可包含:
(B1)重亚硫酸盐试剂;以及
(B2)对照核酸1,所述对照核酸1的序列如SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示,并且具有与非癌症患者相关的甲基化状态;
(B3)对照核酸2,所述对照核酸2的序列如SEQ ID No.4所示,并且具有与非癌症患者相关的甲基化状态;
(B4)用于检测甲胎蛋白含量的物质;
(B5)用于检测异常凝血酶原含量的物质。
所述试剂盒具有如下任一用途:诊断或筛查癌症;在临床症状之前预警癌症;区分或辅助区分癌症和良性病变。
进一步地,用于检测所述甲胎蛋白含量的物质为能够与甲胎蛋白特异性结合的物质,如抗甲胎蛋白的抗体。
进一步地,用于检测所述异常凝血酶原含量的物质为能够与异常凝血酶原特异性结合的物质,如抗异常凝血酶原的抗体。
其中,所述非癌症患者可为健康对照或良性病变患者。
第四方面,本发明要求保护一种试剂盒,记为试剂盒II。
所述试剂盒II可包含:
(C1)重亚硫酸盐试剂;以及
(C2)对照核酸3,所述对照核酸3的序列如SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示,并且具有与癌症患者相关的甲基化状态;
(C3)对照核酸4,所述对照核酸4的序列如SEQ ID No.4所示,并且具有与癌症患者相关的甲基化状态;
(C4)用于检测甲胎蛋白含量的物质;
(C5)用于检测异常凝血酶原含量的物质。
所述试剂盒具有如下任一用途:诊断或筛查癌症;在临床症状之前预警癌症;区分或辅助区分癌症和良性病变。
进一步地,用于检测所述甲胎蛋白含量的物质为能够与甲胎蛋白特异性结合的物质,如抗甲胎蛋白的抗体。
进一步地,用于检测所述异常凝血酶原含量的物质为能够与异常凝血酶原特异性结合的物质,如抗异常凝血酶原的抗体。
第五方面,本发明要求保护一种试剂盒,记为试剂盒III。
所述试剂盒III可包含:
(D1)重亚硫酸盐试剂;以及
(D2)用于检测OTX1基因甲基化水平的引物对A和探针A;所述引物对A由SEQ ID No.5-SEQ ID No.112任一组所示的两条单链DNA组成;所述探针A为SEQ ID No.113-SEQ ID No.115中任一所示单链DNA。
优选地,所述引物对A由SEQ ID No.95和SEQ ID No.96所示两条单链DNA组成;所述探针A为SEQ ID No.113所示单链DNA。
(D3)用于检测HIST1H3G基因甲基化水平的引物对B和探针B;所述引物对B由SEQ ID No.116-SEQ ID No.197任一组所示的两条单链DNA组成;所述探针B为SEQ ID No.198-SEQ ID No.202中任一所示单链DNA。
优选地,所述引物对由SEQ ID No.140和SEQ ID No.141所示两条单链DNA组成;所述探针为SEQ ID No.202所示单链DNA。
(D4)用于检测甲胎蛋白含量的物质;
(D5)用于检测异常凝血酶原含量的物质。
所述试剂盒具有如下任一用途:诊断或筛查癌症;在临床症状之前预警癌症;区分或辅助区分癌症和良性病变。
进一步地,用于检测所述甲胎蛋白含量的物质为能够与甲胎蛋白特异性结合的物质,如抗甲胎蛋白的抗体。
进一步地,用于检测所述异常凝血酶原含量的物质为能够与异常凝血酶原特异性结合的物质,如抗异常凝血酶原的抗体。
所述试剂盒中还可含有用于扩增内参基因ACTB的引物对C和探针C;所述引物对C由SEQ ID No.203和SEQ ID No.204所示两条单链DNA组成;所述探针C为SEQ ID No.205所示单链DNA。
在上述第三到第五方面所述试剂盒中,所述癌症包括但不限于肝癌、结直肠癌、肺癌、胃癌、胰腺癌、前列腺癌、食管癌或尿路上皮癌等。
在本发明的具体实施方式中,所述癌症为肝癌,相应的,所述良性病变为肝脏良性病变或肝硬化。所述肝脏良性病变具体为肝血管瘤,肝腺瘤,肝脓肿,肝囊肿,肝局灶性结节性增生,特发性非肝硬化性门静脉高压或炎性假瘤等。
第六方面,本发明要求保护一种诊断或筛查癌症的方法。
本发明要求保护的诊断或筛查癌症的方法,可包括如下步骤:检测来自待测者的样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量,从而实现诊断或筛查癌症。
第七方面,本发明要求保护一种在临床症状之前预警癌症的方法。
本发明要求保护的在临床症状之前预警癌症的方法,可包括如下步骤:检测来自待测者的样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量,从而实现在临床症状之前预警癌症。
第八方面,本发明要求保护一种区分或辅助区分癌症和良性病变的方法。
本发明要求保护的区分或辅助区分癌症和良性病变的方法,可包括如下步骤:检测来自待测者的样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量,从而实现区分或辅助区分癌症和良性病变。
在上述第六至第八方面中,所述OTX1基因甲基化水平为SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化水平。
在上述第六至第八方面中,所述HIST1H3G基因甲基化水平为SEQ ID No.4所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化水平。
在上述第六至第八方面中,检测来自所述待测者的所述样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平的方法包括但不限于重硫酸盐转化(bisulfite conversion)、PCR、甲基化特异性PCR(MS-PCR)、焦磷酸测序(pyrosequencing)、高通量测序(High-throughput sequencing)、三代测序或单分子测序(Third-generation sequencing)等。
在本发明的具体实施方式中,检测来自所述待测者的所述样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平按照包括如下步骤的方法进行:
(E1)从所述样本中提取DNA(如cfDNA),然后进行重亚硫酸盐转化;
(E2)通过实时荧光定量PCR扩增(E1)所得经重亚硫酸盐转化的DNA(如cfDNA);进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的针对OTX1基因的引物对由SEQ ID No.5-SEQ ID No.112任一组所示的两条单链DNA组成,探针为SEQ ID No.113-SEQ ID No.115中任一所示单链DNA;进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的针对HIST1H3G基因的引物对由SEQ ID No.116-SEQ ID No.197任一组所示的两条单链DNA组成,探针为SEQ ID No.198-SEQ ID No.202中任一所示单链DNA。
优选地,进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的针对OTX1基因的引物对由SEQ ID No.95和SEQ ID No.96所示两条单链DNA组成,探针为SEQ ID No.113所示单链DNA;进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的针对HIST1H3G基因的引物对由SEQ ID No.140和SEQ ID No.141所示两条单链DNA组成,探针为SEQ SEQ ID No.202所示单链DNA。
进一步地,在步骤(E2)中,进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的内参为ACTB基因,用于扩增ACTB基因的引物对由SEQ ID No.203和SEQ ID No.204所示两条单链DNA组成,探针为SEQ ID No.205所示单链DNA。
在本发明的具体实施方式中,是采用免疫荧光法检测来自所述待测者的所述样本中甲胎蛋白和异常凝血酶原含量的。
进一步地,在检测完来自所述待测者的所述样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量后,还可包括如下步骤:
当ACTB基因的Ct值大于37时,判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果结果不可信;当ACTB基因的Ct值≤37时,判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信。
在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信的情况下,进一步按照如下进行结果判定:
当同时满足如下(a)和/或(b)和/或(c)时,判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;当均不满足如下(a)、(b)和(c)时,判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者:
(a)OTX1基因和/或HIST1H3G基因的Ct值≤37,计算OTX1基因和/或HIST1H3G基因的扩增Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值,根据目标基因 不同记为△Ct值(OTX1)和/或△Ct值(HIST1H3G);△Ct值(OTX1)≤5和/或△Ct值(HIST1H3G)≤9;
(b)甲胎蛋白≥100ng/ml;
(c)异常凝血酶原≥40mAU/ml。
在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果不可信的情况下,只考虑甲胎蛋白和异常凝血酶原含量检测结果,当甲胎蛋白≥100ng/ml和/或异常凝血酶原≥40mAU/ml,判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;当甲胎蛋白<100ng/ml且异常凝血酶原<40mAU/ml,判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者。
在上述第六至第八方面中,所述癌症包括但不限于肝癌、结直肠癌、肺癌、胃癌、胰腺癌、前列腺癌、食管癌或尿路上皮癌等。
在本发明的具体实施方式中,所述癌症为肝癌;所述良性病变为肝脏良性病变或肝硬化。所述肝脏良性病变具体为肝血管瘤,肝腺瘤,肝脓肿,肝囊肿,肝局灶性结节性增生,特发性非肝硬化性门静脉高压或炎性假瘤等。
在上述第六至第八方面中,所述样本可为能够提取DNA(优选cfDNA)的样本,包括但不限于血浆、血清、血液、组织、唾液、尿液、粪便等。
第九方面,本发明要求保护一种系统。
本发明要求保护的系统,可包括:
(F1)前文第五方面所述的试剂盒和实时荧光定量PCR仪;
(F2)装置,所述装置包括数据采集模块、阈值存储模块、数据比较模块、数据处理及结论输出模块。
所述数据采集模块被配置为采集(F1)检测得到的来自所述待测者的所述样本的针对OTX1基因和HIST1H3G基因的实时荧光定量PCR扩增结果数据,以及针对甲胎蛋白和异常凝血酶原的含量检测结果数据。
所述阈值存储模块被配置为存储阈值A、阈值B、阈值C、阈值D和阈值E;所述阈值A为ACTB基因的Ct值的阈值;所述阈值B为OTX1基因的Ct值的阈值;所述阈值C为HIST1H3G基因的Ct值的阈值;所述阈值D为甲胎蛋白的含量的阈值;所述阈值E为异常凝血酶原的含量的阈值。
所述数据比较模块被配置为接收来自所述数据采集模块发送的所述待测者的所述样本的针对OTX1基因和HIST1H3G基因的实时荧光定量PCR扩增结果数据,以及针对甲胎蛋白和异常凝血酶原的含量检测结果数据,并调用所述阈值存储模块中存储的所述阈值A、所述阈值B、所述阈值C、所述阈值D和所述阈值E,然后将所述待测者的ACTB基因的Ct值与所述阈值A进行比较,将所述待测者的OTX1基因的Ct值与所述阈值B行比较,将所述待测者的HIST1H3G基因的Ct值与所述阈值C行比较,将所述待测者的甲胎蛋白的含量值与所述阈值D进行比较,并将所述待测者的异常凝血酶原的含量值与所述阈值E进行比较。
所述数据处理及结论输出模块被配置为接收来自所述数据比较模块发送的 比较结果,然后按照如下输出结论:
若所述待测者的ACTB基因的Ct值大于所述阈值A,则判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果结果不可信;若ACTB基因的Ct值小于等于所述阈值A,则判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信;
在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信的情况下,进一步按照如下进行结果判定:
若同时满足如下(a)和/或(b)和/或(c),则判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;若均不满足如下(a)、(b)和(c)时,则判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者:
(a)OTX1基因的Ct值小于等于所述阈值B,和/或HIST1H3G基因的Ct值小于等于所述阈值C,计算OTX1基因和HIST1H3G基因的扩增Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值,根据目标基因不同记为△Ct值(OTX1)和/或△Ct值(HIST1H3G);△Ct值(OTX1)≤5和/或△Ct值(HIST1H3G)≤9;
(b)甲胎蛋白≥所述阈值D;
(c)异常凝血酶原≥所述阈值E。
在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果不可信的情况下,只考虑甲胎蛋白和异常凝血酶原含量检测结果,若甲胎蛋白≥所述阈值D和/或异常凝血酶原≥所述阈值E,则判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;若甲胎蛋白<所述阈值D且异常凝血酶原<所述阈值E,则判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者。
在本发明的具体实施方式中,所述阈值A、所述阈值B和所述阈值C均为37;所述阈值D为100ng/ml;所述阈值E为40mAU/ml。
第十方面,本发明要求保护前文第三到第五方面所述试剂盒或前文第九方面所述系统在如下任一中的应用:
(A1)制备用于诊断或筛查癌症的产品;
(A2)诊断或筛查癌症;
(A3)制备用于在临床症状之前预警癌症的产品;
(A4)在临床症状之前预警癌症;
(A5)制备用于区分或辅助区分癌症和良性病变的产品;
(A6)区分或辅助区分癌症和良性病变。
其中,所述癌症包括但不限于肝癌、结直肠癌、肺癌、胃癌、胰腺癌、前列腺癌、食管癌或尿路上皮癌等。
在本发明的具体实施方式中,所述癌症为肝癌;所述良性病变为肝脏良性病变或肝硬化。
在本发明的具体实施方式中,所述待测者选自:肝癌患者、肝良性病变患者、健康人后肝硬化患者。
在本发明中,所述肝癌可为原发肝细胞癌、肝内胆管癌或混合型肝癌。
所述肝脏良性病变具体为肝血管瘤,肝腺瘤,肝脓肿,肝囊肿,肝局灶性结节性增生,特发性非肝硬化性门静脉高压或炎性假瘤等。
图1为目前肝癌的筛查手段主要是血清甲胎蛋白(AFP)检查和超声显像检测。
图2为基于44对肝癌肿瘤组织与癌旁组织发现的2588个差异甲基化区域(DMR),其中333个为高甲基化(Hyper)DMR,2255个为低甲基化(Hypo)DMR。
图3为基于51个模型DMR的甲基化率在验证集I的热图。
图4为基于51个DMR的肝癌甲基化模型在验证集I中的效能。
图5为各标记物在独立验证集II中的性能。
实施发明的最佳方式
首先本发明通过对44对肝癌组织和肝癌癌旁组织进行甲基化高通量测序,通过对数据进行分析计算,找出了2588个可能与肝癌发生发展有关的差异化甲基化区域(Differentially methylated region,DMR)。
然后本发明通过来自对295个肝癌患者、180个健康人、34个肝良性病变患者、21个肝硬化患者的总计529个血浆游离细胞DNA(plasma cfDNA)进行靶向甲基化高通量测序,收集了这些DMR在肝癌病人和健康人cfDNA内的甲基化水平数据。
结合已经收集的数据,本发明通过一定条件的筛选及机器学习构建肝癌风险预测模型,选出了可用于肝癌筛查的51个DMR。
最后从这51个DMR中,选取了性能较好的OTX1基因和HIST1H3G基因作为用于检测肝癌的甲基化标志物。
同时发现,把临床上常用的甲胎蛋白(AFP)及异常凝血酶原(PIVKA-II,又名DCP)检测纳入本发明的肝癌诊断模型时,会提高检测性能。
本发明用OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化以及甲胎蛋白和异常凝血酶原作为肝癌筛查的标志物。通过检测OTX1基因和HIST1H3G基因的甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量,并对所得数据进行分析,可以预测受检者罹患肝癌的可能性,进而实现在普通人群或肝癌高危人群中筛查肝癌的目的。
以下的实施例便于更好地理解本发明,但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验,均设置三次重复实验,结果取平均值。
实施例1、肝癌特异性甲基化基因的发现
为了筛选在肝癌中特异性甲基化的生物标志物,对来自44个肝癌病人的肝癌组织和肝癌癌旁组织的基因组DNA进行全基因组甲基化测序(whole genome bisulfite sequencing,WGBS)。通过对数据进行分析计算,找出了2588个可能与肝癌发生发展有关的差异化甲基化区域(Differentially methylated region,DMR)。
1、组织样本提取
使用DNeasy Blood & Tissue Kit(Qiagen,#69506)对44对肝癌和肝癌癌旁组织样本进行DNA提取。用Qubit3.0系统(Invitrogen,美国)进行定量。
2、DNA片段化
取200ng提取好的DNA,同时加入1ng Unmethylated lambda DNA(PROMEGA,#D1521)用于后续C-U转化质控,使用超声打断仪将DNA打断,再使用AMPure XP(AGENCOURT,#A63882)对DNA进行片段选择,使DNA片段大小集中在160bp左右。
3、文库构建
使用KAPA HyperPlus Library Preparation Kit(KAPA,#KK8510)进行文库构建,具体操作参考试剂盒说明书,其中接头连接步骤所使用的接头以及PCR步骤所使用的PCR引物更换为适用于MGISEQ平台的接头和引物。
4、重亚硫酸盐转化
使用EZ DNA Metlylation-Gold Kit(Zymo Research,#D5006)对构建好的DNA文库进行重亚硫酸盐转化。
5、文库杂交捕获
使用Seq Cap EZ Hybridization and Wash Kit(ROCHE,5634253001)和SeqCap Epi CpGiant Enrichment Kit(ROCHE,7138911001)进行杂交、捕获和洗脱。由于使用了MGI平台的测序仪器,杂交过程中所用的Block须使用MGI平台对应的Block。
6、高通量测序
使用MGISEQ-2000(MGI)进行PE100测序。
7、数据分析
对测序数据进行质控、过滤、比对、计算,计算出了每个CpG位点的甲基化率。通过比较各个CpG位点在肝癌组织与癌旁组织中甲基化率的异同,采用层次贝叶方法辨析出了2588个肝癌组织与肝癌癌旁组织差异化甲基化区域(Differentially methylated region,DMR),即肝癌特异性甲基化区域。
图2展示了基于44对肝癌组织和癌旁组织发现的2588个DMR的热图。肝癌组织于左侧,癌旁组织于右侧。高甲基化DMR位于热图的上方,低甲基化DMR位于热图的下方。每格代表对应的该样本于该位点的DMR甲基化率,其范围为0-1。甲基化率越接近0,颜色越深。
实施例2、肝癌特异性甲基化基因的验证
对来自独立样本集合I的140例肝癌患者及84例健康人的血浆游离细胞DNA (plasma cfDNA)进行靶向甲基化高通量测序,利用机器学习构建肝癌风险模型,验证这些DMR。
1、血浆样本提取
使用MagPure Circulating DNA Maxi Kit(MAGEN,#12917PJ-100)对肝癌和健康人血浆样本进行cfDNA提取。用Qubit3.0系统(Invitrogen,美国)进行定量。取10ng cfDNA,并加入0.05ng打断并筛选至160bp左右的Unmethylated lambda DNA用于后续C-U转化质控。
2、文库构建
使用KAPA HyperPlus Library Preparation Kit(KAPA,#KK8510)进行文库构建,具体操作参考试剂盒说明书,其中接头连接步骤所使用的接头以及PCR步骤所使用的PCR引物更换为适用于MGISEQ平台的接头和引物。
3、重亚硫酸盐转化
使用EZ DNA Metlylation-Gold Kit(Zymo Research,#D5006)对构建好的DNA文库进行重亚硫酸盐转化。
4、文库杂交捕获
使用Seq Cap EZ Hybridization and Wash Kit(ROCHE,5634253001)和SeqCap Epi CpGiant Enrichment Kit(ROCHE,7138911001)进行杂交、捕获和洗脱。由于使用了MGI平台的测序仪器,杂交过程中所用的Block须使用MGI平台对应的Block。
5、高通量测序
使用MGISEQ-2000(MGI)进行PE100测序。
6、数据分析
对测序数据进行质控、过滤、比对、计算,计算出了每个CpG位点的甲基化率。通过比较各个CpG位点在肝癌病人血浆与健康人血浆中甲基化率的异同,采用基于随机森林的10折交叉验证,在高甲基化DMR中根据特征重要性进行筛选(特征重要性>0.15),筛选出51个可作为肝癌筛查的标志物的DMR。利用每折中验证集对模型性能进行评估,由此可得验证集的平均灵敏度为0.929,特异性为0.894,AUC为0.96。
图3展示了51个DMR在140个肝癌患者和84个健康人中区域内甲基化率的热图。横轴为样本,肝癌患者于最左侧,随后为健康人。纵轴为DMR。由图可见,筛选的51个DMR对肝癌患者与健康人样本有明显的区分度。
图4展示了基于51个DMR的肝癌甲基化模型在该实施例的验证集I中的性能。横轴代表假阳性率(1-特异性),纵轴代表灵敏度。由图可见,该甲基化模型对该实施例样本有良好的判断能力。
实施例3、对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化状态以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量诊断肝癌能力的评估
本发明从实施例2获得的51个DMR中,选取了性能较好的OTX1基因和HIST1H3G基因作为用于检测肝癌的甲基化标志物(这两个基因在肝癌中甲基化水平升高)。OTX1基因肝癌特异性甲基化区域核苷酸序列如SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示。HIST1H3G基因肝癌特异性甲基化区域核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。OTX1基因肝癌特异性甲基化区域相关信息参见表1。HIST1H3G基因肝癌特异性甲基化区域相关信息参见表2。
表1、OTX1基因肝癌特异性甲基化区域
表2、HIST1H3G基因肝癌特异性甲基化区域
此实施例的主要目的是在独立的验证集II里验证OTX1和HIST1H3G基因甲基化状态以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量筛查肝癌的性能,包括来自293个肝癌患者,33个肝良性病变患者,19个健康人及105个肝硬化患者的血浆游离DNA。肝癌样本的入组标准为:经病理确诊的原发肝细胞癌、肝内胆管癌或混合型肝癌,无既往恶性肿瘤史,术前未接收任何形式的抗肿瘤治疗。所述肝脏良性病变具体为肝血管瘤,肝腺瘤,肝脓肿,肝囊肿,肝局灶性结节性增生,特发性非肝硬化性门静脉高压或炎性假瘤等。健康人为未诉异常的体检样本。
1、血浆样本提取
使用MagPure Circulating DNA Maxi Kit(MAGEN,#12917PJ-100)对肝癌和健康人血浆样本进行cfDNA提取。用Qubit 3.0系统(Invitrogen,美国)进行定量。
2、重亚硫酸盐转化
取10ng cfDNA,使用EZ DNA Metlylation-Gold Kit(Zymo Research,#D5006)进行重亚硫酸盐转化。
3、实时荧光定量PCR(qPCR)
以ACTB基因为内参基因,通过qPCR扩增经重亚硫酸盐转化的cfDNA。整个反应体系包含5μl 10×PCR缓冲液(诺唯赞,中国),2单位Taq聚合酶(诺唯赞,中国),2.5mM dNTP(诺唯赞,中国),2μl(10pmol/μl)PCR引物,1μl(10pmol/μl)探针(表3和表4),以及经重亚硫酸盐转化的cfDNA。在如下条件下进行PCR反应:95℃预变性3分钟,然后进行95℃变性30秒、60℃ 退火30秒和72℃延伸30秒的循环40个。采用宏石96S qPCR仪进行检测,基线、阈值按照默认设置,在每个循环结束时收集荧光信号,最终进行72℃延伸5分钟。
表3、实时荧光定量PCR引物探针序列(扩增OTX1基因)
表4、实时荧光定量PCR引物探针序列(扩增HIST1H3G和ACTB内参)
编号 | 序列(5’-3’) | 用途 |
SEQ ID No.116 | TTTACGTCGTCGGTGGTC | HIST1H3G正向引物1 |
SEQ ID No.117 | CGCAAATCCACCGATAACA | HIST1H3G反向引物1 |
SEQ ID No.118 | TTTACGTCGTCGGTGGTC | HIST1H3G正向引物2 |
SEQ ID No.119 | CCGCACCAAACAAACTACAC | HIST1H3G反向引物2 |
SEQ ID No.120 | TTTGTTATCGGTGGATTTGC | HIST1H3G正向引物3 |
SEQ ID No.121 | AAACAATTTCCACTCTACCAAATAACT | HIST1H3G反向引物3 |
SEQ ID No.122 | GGACGGTAGCGATGAGGT | HIST1H3G正向引物4 |
SEQ ID No.123 | AACAACTAACCACTAAAACGACTCG | HIST1H3G反向引物4 |
SEQ ID No.124 | GAGTCGTTTTAGTGGTTAGTTGTTTG | HIST1H3G正向引物5 |
SEQ ID No.125 | CGCACCAAACAAACTACACG | HIST1H3G反向引物5 |
SEQ ID No.126 | TGAGATGGTTCGTATTAAGTAGATTGTAC | HIST1H3G正向引物6 |
SEQ ID No.127 | AACCGCCTTAATAACCAACTACTTAC | HIST1H3G反向引物6 |
SEQ ID No.128 | GTAAGTTTATCGGTGGTAAAGC | HIST1H3G正向引物7 |
SEQ ID No.129 | AAACGATAACGATAAAATTTCTTCAC | HIST1H3G反向引物7 |
SEQ ID No.130 | TTTATCGGTGGTAAAGCGTC | HIST1H3G正向引物8 |
SEQ ID No.131 | AAACGATAACGATAAAATTTCTTCAC | HIST1H3G反向引物8 |
SEQ ID No.132 | TTTTAGTGGTTAGTTGTTTGC | HIST1H3G正向引物9 |
SEQ ID No.133 | ATTTCCACTCTACCAAATAACTA | HIST1H3G反向引物9 |
SEQ ID No.134 | TTTTAGTGGTTAGTTGTTTGC | HIST1H3G正向引物10 |
SEQ ID No.135 | ATTTCCACTCTACCAAATAACTA | HIST1H3G反向引物10 |
SEQ ID No.136 | TTTTACGTCGTCGGTGGT | HIST1H3G正向引物11 |
SEQ ID No.137 | CGATAACAAAACGCCGCG | HIST1H3G反向引物11 |
SEQ ID No.138 | GACGGTAGCGATGAGGTT | HIST1H3G正向引物12 |
SEQ ID No.139 | CGATAACAAAACGCCGCG | HIST1H3G反向引物12 |
SEQ ID No.140 | CGCGTAGAGTTACGGTGT | HIST1H3G正向引物13 |
SEQ ID No.141 | CGATAACAAAACGCCGCG | HIST1H3G反向引物13 |
SEQ ID No.142 | TTTAGGTAGTTTGAGATGGT | HIST1H3G正向引物14 |
SEQ ID No.143 | CCTTAATAACCAACTACTTACG | HIST1H3G反向引物14 |
SEQ ID No.144 | TTATTTTGTTAAGTGGTTGAGT | HIST1H3G正向引物15 |
SEQ ID No.145 | CCTTAATAACCAACTACTTACG | HIST1H3G反向引物15 |
SEQ ID No.146 | GTTAGTTGTTTGCGCGGC | HIST1H3G正向引物16 |
SEQ ID No.147 | TCAAATAATCTAAAATAACCCGCACCA | HIST1H3G反向引物16 |
SEQ ID No.148 | GTTAGTTGTTTGCGCGGC | HIST1H3G正向引物17 |
SEQ ID No.149 | AACAATTTCCACTCTACCAAATAACT | HIST1H3G反向引物17 |
SEQ ID No.150 | TTTTACGTCGTCGGTGGT | HIST1H3G正向引物18 |
SEQ ID No.151 | CAAATCCACCGATAACAAAACG | HIST1H3G反向引物18 |
SEQ ID No.152 | GGACGGTAGCGATGAGGT | HIST1H3G正向引物19 |
SEQ ID No.153 | GCAAATCCACCGATAACAAAACG | HIST1H3G反向引物19 |
SEQ ID No.154 | GACGGTAGCGATGAGGTT | HIST1H3G正向引物20 |
SEQ ID No.155 | CAAATCCACCGATAACAAAACG | HIST1H3G反向引物20 |
SEQ ID No.156 | GTAAGTTTATCGGTGGTAAAGC | HIST1H3G正向引物21 |
SEQ ID No.157 | ATAACCGACGCGCTTTTC | HIST1H3G反向引物21 |
SEQ ID No.158 | TAAGTTTATCGGTGGTAAAGC | HIST1H3G正向引物22 |
SEQ ID No.159 | AAACGATAACGATAAAATTTCTTCA | HIST1H3G反向引物22 |
SEQ ID No.160 | GTTTGAGATGGTTCGTATTAAGTAGA | HIST1H3G正向引物23 |
SEQ ID No.161 | CCAACTACTTACGCGACG | HIST1H3G反向引物23 |
SEQ ID No.162 | GTAGTTTTTATTTTGTTAAGTGGTTGAGT | HIST1H3G正向引物24 |
SEQ ID No.163 | CCAACTACTTACGCGACG | HIST1H3G反向引物24 |
SEQ ID No.164 | TTTAGTGGTTAGTTGTTTGCGC | HIST1H3G正向引物25 |
SEQ ID No.165 | CTTTCAAATAATCTAAAATAACCCG | HIST1H3G反向引物25 |
SEQ ID No.166 | GTAGAGTTACGGTGTCGGGAC | HIST1H3G正向引物26 |
SEQ ID No.167 | ACTAAAACGACTCGAAAAAACG | HIST1H3G反向引物26 |
SEQ ID No.168 | GTTAGTTGTTTGCGCGGC | HIST1H3G正向引物27 |
SEQ ID No.169 | TTCAAATAATCTAAAATAACCCGCACCA | HIST1H3G反向引物27 |
SEQ ID No.170 | GACGGTAGCGATGAGGTT | HIST1H3G正向引物28 |
SEQ ID No.171 | CAAATCCACCGATAACAAAACG | HIST1H3G反向引物28 |
SEQ ID No.172 | TTTTTAGGTAGTTTGAGATGGTTCG | HIST1H3G正向引物29 |
SEQ ID No.173 | GCTTTACCACCGATAAACTTACGT | HIST1H3G反向引物29 |
SEQ ID No.174 | AGGTAGTTTGAGATGGTTCGTA | HIST1H3G正向引物30 |
SEQ ID No.175 | CCAACTACTTACGCGACG | HIST1H3G反向引物30 |
SEQ ID No.176 | TGATTCGTAAGTTGTTTTTTTAAC | HIST1H3G正向引物31 |
SEQ ID No.177 | CCTCCTACAAAACCATCA | HIST1H3G反向引物31 |
SEQ ID No.178 | TGATTCGTAAGTTGTTTTTTTAAC | HIST1H3G正向引物32 |
SEQ ID No.179 | AAACTCTAAAAACGCAAATCT | HIST1H3G反向引物32 |
SEQ ID No.180 | GGTAATTTGCGGATTAGTAGTTTAGTC | HIST1H3G正向引物33 |
SEQ ID No.181 | GACACCGTAACTCTACGCGA | HIST1H3G反向引物33 |
SEQ ID No.182 | GTAGAGTTACGGTGTCGGGAC | HIST1H3G正向引物34 |
SEQ ID No.183 | ACAACTAACCACTAAAACGACTCG | HIST1H3G反向引物34 |
SEQ ID No.184 | GTAGAGTTACGGTGTCGGGAC | HIST1H3G正向引物35 |
SEQ ID No.185 | ACTAAAACGACTCGAAAAAACG | HIST1H3G反向引物35 |
SEQ ID No.186 | GTAGAGTTACGGTGTCGGGAC | HIST1H3G正向引物36 |
SEQ ID No.187 | GCAAACAACTAACCACTAAAACGA | HIST1H3G反向引物36 |
SEQ ID No.188 | GTAGAGTTACGGTGTCGGGAC | HIST1H3G正向引物37 |
SEQ ID No.189 | AACTAACCACTAAAACGACTCGAA | HIST1H3G反向引物37 |
SEQ ID No.190 | AGTAGTTGGTTATTAAGGCGGTTC | HIST1H3G正向引物38 |
SEQ ID No.191 | ATAACGATAAAATTTCTTCACGCCG | HIST1H3G反向引物38 |
SEQ ID No.192 | GTAGAGTTACGGTGTCGGGAC | HIST1H3G正向引物39 |
SEQ ID No.193 | ACTAAAACGACTCGAAAAAACGCG | HIST1H3G反向引物39 |
SEQ ID No.194 | GTAGAGTTACGGTGTCGGGAC | HIST1H3G正向引物40 |
SEQ ID No.195 | ACTAAAACGACTCGAAAAAACG | HIST1H3G反向引物40 |
SEQ ID No.196 | GTAATAAAATTATTGGTTGAAGAGTTTAAC | HIST1H3G正向引物41 |
SEQ ID No.197 | CTTAAATCGCAAACTAACCGAA | HIST1H3G反向引物41 |
SEQ ID No.198 | ACCACTAAAACGACTCGAAAAAACGCGCCG | HIST1H3G探针1 |
SEQ ID No.199 | ACCGCCTTAATAACCAACTACTTACGCGAC | HIST1H3G探针2 |
SEQ ID No.200 | CAAACAACTAACCACTAAAACGACTC | HIST1H3G探针3 |
SEQ ID No.201 | AACCGCCTTAATAACCAACTACTTAC | HIST1H3G探针4 |
SEQ ID No.202 | AACGCGCCGACCACCGACGA | HIST1H3G探针5 |
SEQ ID No.203 | AAGGGGTTTATATGGTAATTGTG | ACTB正向引物序列 |
SEQ ID No.204 | GATTGAGTGTGGTAGGGATT | ACTB反向引物序列 |
SEQ ID No.205 | CCCACCACACTAAATCTCCCCTCCT | ACTB探针序列 |
4.结果分析
以用于扩增OTX1中SEQ ID No.3的引物对(SEQ ID No.95和SEQ ID No.96),探针为SEQ ID No.113(可检测如下CpG位点:chr2:63284080、chr2:63284082、chr2:63284092、chr2:63284099、chr2:63284104、chr2:63284111、chr2:63284140、chr2:63284146),以及用于扩增HIST1H3G中SEQ ID No.4的引物对(SEQ ID No.140和SEQ ID No.141),探针为SEQ ID No.202为(可检测如下CpG位点:chr6:26271462、chr6:26271464、chr6:26271474、chr6:26271510、chr6:26271513、chr6:26271520、chr6:26271523、chr6:26271525、chr6:26271560、chr6:26271562、chr6:26271565、chr6:26271576)为例进行说明,如下:
原理:根据目标基因的Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值(△Ct值)估算甲基化率,△Ct越小,目标基因的甲基化率越高。
各基因Ct值的阈值为37。
其中,当ACTB的Ct值大于37时,判定为结果不可信;当ACTB基因的Ct值≤37时,判定为结果可信,按照如下进行进一步判定:
当OTX1基因和HIST1H3G基因的Ct值均大于37时,判定待测者为非肝癌患者;当OTX1基因和HIST1H3G基因的Ct值不均大于37时(即均或之一≤37时),按照如下(1)-(3)进一步判定:
(1)当OTX1基因和HIST1H3G基因的Ct值均≤37时,计算OTX1基因和HIST1H3G基因的扩增Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值,分别记为△Ct值(OTX1)和△Ct值(HIST1H3G);
选定△Ct值(OTX1)≤5和/或△Ct值(HIST1H3G)≤9时,判定待测者为肝癌患者;△Ct值(OTX1)>5且△Ct值(HIST1H3G)>9时,判定待测者为非肝癌患者;
(2)当OTX1基因的Ct值≤37,但是HIST1H3G基因的Ct值>37时,计算OTX1基因的扩增Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值,记为△Ct值(OTX1);
选定△Ct值(OTX1)≤5时,判定待测者为肝癌患者;△Ct值(OTX1)>5时,判定待测者为非肝癌患者;
(3)当HIST1H3G基因的Ct值≤37,但是OTX1基因的Ct值>37时,计算HIST1H3G基因的扩增Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值,记为△Ct值(HIST1H3G);
选定△Ct值(HIST1H3G)≤9时,判定待测者为肝癌患者;△Ct值(HIST1H3G)>9时,判定待测者为非肝癌患者。
使用SPSS软件作两个待检测基因△Ct的ROC曲线,ROC曲线如图5所示,各基因的性能及曲线下面积(AUC)如表5示。
5、免疫化学发光:
(1)分别取20μL血浆样品和250μL抗体结合粒子(250μg/mL甲胎蛋白/异常凝血酶原单克隆抗体(鼠)结合的磁性微粒并含蛋白稳定剂(牛,小牛或鼠)和化学稳定剂的0.15M氯化钠/三羟甲基氨基甲烷(Tirs)缓冲液)溶液混匀,在37℃温育10min,在磁环境中清洗3遍。
(2)加入250μL碱性磷酸酶标记甲胎蛋白/异常凝血酶原抗体,混匀。在37℃温育10min,形成包括磁性微球包被的抗异常凝血酶原抗体、待测异常凝血酶原、抗异常凝血酶原抗体与碱性磷酸酶偶联的的发光免疫复合物以及包括磁性微球包被的抗甲胎蛋白抗体、待测甲胎蛋白、抗甲胎蛋白抗体与碱性磷酸酶偶联的的发光免疫复合物;
(3)检测:外加磁场将上述发光免疫复合物沉淀,除去上清液,并以自动灌注系统缓冲液进行清洗,加入200μL底物液(AMPPD),在波长447nm条件下检测发出的相对光强度(RLU)。换算得到异常凝血酶原以及甲胎蛋白的含量,并使用SPSS软件作两个蛋白标志物含量的ROC曲线,ROC曲线如图5所示,各基因的性能及曲线下面积(AUC)如表5示。
6、四个标记物联合使用
为了进一步提高试剂盒性能,整合四个标志物值进行分析,具体如下:
当ACTB基因的Ct值大于37时,判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果结果不可信;当ACTB基因的Ct值≤37时,判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信。
在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信的情况下,进一步按照如下进行结果判定:
当同时满足如下(a)和/或(b)和/或(c)时,判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;当均不满足如下(a)、(b)和(c)时,判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者:
(a)OTX1基因和/或HIST1H3G基因的Ct值≤37,计算OTX1基因和/或HIST1H3G基因的扩增Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值,根据目标基因不同记为△Ct值(OTX1)和/或△Ct值(HIST1H3G);△Ct值(OTX1)≤5和/或△Ct值(HIST1H3G)≤9;
(b)甲胎蛋白≥100ng/ml;
(c)异常凝血酶原≥40mAU/ml。
在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果不可信的情况下,只考虑甲胎蛋白和异常凝血酶原含量检测结果,当甲胎蛋白≥100ng/ml和/或异常凝血酶原≥40mAU/ml,判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;当甲胎蛋白<100ng/ml且异常凝血酶原<40mAU/ml,判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者。
使用SPSS软件作ROC曲线,得到AUC可达0.992。最终确定△Ct(OTX1)≤5、△Ct(HIST1H3G)≤9、甲胎蛋白≥100ng/ml,异常凝血酶原≥40mAU/ml至少一个条件满足时判定检测阳性,即当任意标志物阳性时则判定该样本检测阳性,在此判定条件下,在特异性(包含健康人、肝硬化和肝良性病变)为92.7%时,灵敏性(肝癌)可达87.6%。见表5。
以上结果表明,本发明通过多个基因联合检测,可以获得比单一基因检测更好的检测性能。
表5、各标志物的性能及曲线下面积(AUC)以及灵敏度和特异性
工业应用
通过对肝癌组织、正常组织、肝癌病人血浆、对照人群血浆的DNA进行甲基化测序,本发明发现OTX1基因和HIST1H3G基因的高甲基化与肝癌相关,可作为肝癌检测的标志物,并进一步将其与甲胎蛋白和异常凝血酶原联合使用。本发明提供了一种准确、简便、经济的肝癌早期筛查手段,可提高肝癌高危人群及普通体检人群中肝癌,尤其是早期肝癌的检出率,进而提高肝癌病人的生存率,并节约大量的医疗支出和降低医疗负担。
Claims (34)
- “甲基化OTX1基因、甲基化HIST1H3G基因、甲胎蛋白和异常凝血酶原”组合作为联合标记物在如下任一中的应用:(A1)制备用于诊断或筛查癌症的产品;(A2)诊断或筛查癌症;(A3)制备用于在临床症状之前预警癌症的产品;(A4)在临床症状之前预警癌症;(A5)制备用于区分或辅助区分癌症和良性病变的产品;(A6)区分或辅助区分癌症和良性病变。
- 根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述甲基化OTX1基因为SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化;所述甲基化HIST1H3G基因为SEQ ID No.4所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化。
- 用于检测“OTX1基因甲基化水平、HIST1H3G基因甲基化水平、甲胎蛋白含量和异常凝血酶原含量”的物质在如下任一中的应用:(A1)制备用于诊断或筛查癌症的产品;(A2)诊断或筛查癌症;(A3)制备用于在临床症状之前预警癌症的产品;(A4)在临床症状之前预警癌症;(A5)制备用于区分或辅助区分癌症和良性病变的产品;(A6)区分或辅助区分癌症和良性病变。
- 根据权利要求3所述的应用,其特征在于:所述OTX1基因甲基化水平为SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化水平;所述HIST1H3G基因甲基化水平为SEQ ID No.4所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化水平。
- 根据权利要求3或4所述的应用,其特征在于:用于检测所述OTX1基因甲基化水平的物质为重亚硫酸盐试剂以及引物对A和探针A;所述引物对A由SEQ ID No.5-SEQ ID No.112任一组所示的两条单链DNA组成;所述探针A为SEQ ID No.113-SEQ ID No.115中任一所示单链DNAA;用于检测所述HIST1H3G基因甲基化水平的物质为重亚硫酸盐试剂以及引物对B和探针B;所述引物对B由SEQ ID No.116-SEQ ID No.197任一组所示的两条单链DNA组成;所述探针B为SEQ ID No.198-SEQ ID No.202中任一所示单链DNA;用于检测所述甲胎蛋白含量的物质为能够与甲胎蛋白特异性结合的物质;用于检测所述异常凝血酶原含量的物质为能够与异常凝血酶原特异性结合的物质。
- 根据权利要求5所述的应用,其特征在于:所述引物对A由SEQ ID No.95和SEQ ID No.96所示两条单链DNA组成;所述探针A为SEQ ID No.113所示单链DNA;所述引物对B由SEQ ID No.140和SEQ ID No.141所示两条单链DNA组成;所述探针B为SEQ ID No.202所示单链DNA。
- 根据权利要求1-6中任一所述的应用,其特征在于:所述癌症为肝癌、结直肠癌、肺癌、胃癌、胰腺癌、前列腺癌、食管癌或尿路上皮癌。
- 根据权利要求7所述的应用,其特征在于:所述癌症为肝癌;所述良性病变为肝脏良性病变或肝硬化。
- 一种试剂盒,包含:(B1)重亚硫酸盐试剂;以及(B2)对照核酸1,所述对照核酸1的序列如SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示,并且具有与非癌症患者相关的甲基化状态;(B3)对照核酸2,所述对照核酸2的序列如SEQ ID No.4所示,并且具有与非癌症患者相关的甲基化状态;(B4)用于检测甲胎蛋白含量的物质;(B5)用于检测异常凝血酶原含量的物质;所述试剂盒具有如下任一用途:诊断或筛查癌症;在临床症状之前预警癌症;区分或辅助区分癌症和良性病变。
- 一种试剂盒,包含:(C1)重亚硫酸盐试剂;以及(C2)对照核酸3,所述对照核酸3的序列如SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示,并且具有与癌症患者相关的甲基化状态;(C3)对照核酸4,所述对照核酸4的序列如SEQ ID No.4所示,并且具有与癌症患者相关的甲基化状态;(C4)用于检测甲胎蛋白含量的物质;(C5)用于检测异常凝血酶原含量的物质;所述试剂盒具有如下任一用途:诊断或筛查癌症;在临床症状之前预警癌症;区分或辅助区分癌症和良性病变。
- 一种试剂盒,包含:(D1)重亚硫酸盐试剂;以及(D2)用于检测所述OTX1基因甲基化水平的引物对A和探针A;SEQ ID No.5-SEQ ID No.112任一组所示的两条单链DNA组成;所述探针A为SEQ ID No.113-SEQ ID No.115中任一所示单链DNA;(D3)用于检测所述HIST1H3G基因甲基化水平的引物对B和探针B;所述引物对B由SEQ ID No.116-SEQ ID No.197任一组所示的两条单链DNA组成;所述探针B为SEQ ID No.198-SEQ ID No.202中任一所示单链DNA;(D4)用于检测甲胎蛋白含量的物质;(D5)用于检测异常凝血酶原含量的物质;所述试剂盒具有如下任一用途:诊断或筛查癌症;在临床症状之前预警癌症;区分或辅助区分癌症和良性病变。
- 根据权利要求11所述的试剂盒,其特征在于:所述引物对A由SEQ ID No.95和SEQ ID No.96所示两条单链DNA组成;所述探针A为SEQ ID No.113所示单链DNA;所述引物对B由SEQ ID No.140和SEQ ID No.141所示两条单链DNA组成;所述探针B为SEQ ID No.202所示单链DNA。
- 根据权利要求11或12所述的试剂盒,其特征在于:所述试剂盒中还含有用于扩增内参基因ACTB的引物对C和探针C;所述引物对C由SEQ ID No.203和SEQ ID No.204所示两条单链DNA组成;所述探针C为SEQ ID No.205所示单链DNA。
- 根据权利要求11-13中任一所述的试剂盒,其特征在于:所述癌症为肝癌、结直肠癌、肺癌、胃癌、胰腺癌、前列腺癌、食管癌或尿路上皮癌。
- 根据权利要求14所述的试剂盒,其特征在于:所述癌症为肝癌;所述良性病变为肝脏良性病变或肝硬化。
- 一种诊断或筛查癌症的方法,包括如下步骤:检测来自待测者的样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量,从而实现诊断或筛查癌症。
- 一种在临床症状之前预警癌症的方法,包括如下步骤:检测来自待测者的样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量,从而实现在临床症状之前预警癌症。
- 一种区分或辅助区分癌症和良性病变的方法,包括如下步骤:检测来自待测者的样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量,从而实现区分或辅助区分癌症和良性病变。
- 根据权利要求16-18中任一所述的方法,其特征在于:所述OTX1基因甲基化水平为SEQ ID No.1或SEQ ID No.2或SEQ ID No.3所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化水平;所述HIST1H3G基因甲基化水平为SEQ ID No.4所示的DNA片段中全部或部分CpG位点的甲基化水平。
- 根据权利要求16-19中任一所述的方法,其特征在于:检测来自所述待测者的所述样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平的方法为重硫酸盐转化、PCR、甲基化特异性PCR、焦磷酸测序、桑格测序、高通量测序或三代测序或单分子测序。
- 根据权利要求16-20中任一所述的方法,其特征在于:检测来自所述待测者的所述样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平按照包括如下步骤的方法进行:(E1)从所述样本中提取DNA,然后进行重亚硫酸盐转化;(E2)通过实时荧光定量PCR扩增(E1)所得经重亚硫酸盐转化的DNA;进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的针对OTX1基因的引物对由SEQ ID No.5-SEQ ID No.112任一组所示的两条单链DNA组成,探针为SEQ ID No.113-SEQ ID No.115中任一所示单链DNA;进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的针对HIST1H3G基因的引物对由SEQ ID No.116-SEQ ID No.197任一组所示的两条单链DNA组成,探针为SEQ ID No.198-SEQ ID No.202中任一所示单链DNA。
- 根据权利要求21所述的方法,其特征在于:进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的针对OTX1基因的引物对由SEQ ID No.95和SEQ ID No.96所示两条单链DNA组成,探针为SEQ ID No.113所示单链DNA;进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的针对HIST1H3G基因的引物对由SEQ ID No.140和SEQ ID No.141所示两条单链DNA组成,探针为SEQ SEQ ID No.202所示单链DNA。
- 根据权利要求21或22所述的方法,其特征在于:在步骤(E2)中,进行所述实时荧光定量PCR扩增时采用的内参为ACTB基因,用于扩增ACTB基因的引物对由SEQ ID No.203和SEQ ID No.204所示两条单链DNA组成,探针为SEQ ID No.205所示单链DNA。
- 根据权利要求16-23中任一所述的方法,其特征在于:采用免疫荧光法检测来自所述待测者的所述样本中甲胎蛋白和异常凝血酶原含量。
- 根据权利要求21-24中任一所述的方法,其特征在于:在检测完来自所述待测者的所述样本中OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平以及甲胎蛋白和异常凝血酶原含量后,还包括如下步骤:当ACTB基因的Ct值大于37时,判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果结果不可信;当ACTB基因的Ct值≤37时,判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信;在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信的情况下,进一步按照如下进行结果判定:当同时满足如下(a)和/或(b)和/或(c)时,判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;当均不满足如下(a)、(b)和(c)时,判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者:(a)OTX1基因和/或HIST1H3G基因的Ct值≤37,计算OTX1基因和/或HIST1H3G基因的扩增Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值,根据目标基因不同记为△Ct值(OTX1)和/或△Ct值(HIST1H3G);△Ct值(OTX1)≤5和/或△Ct值(HIST1H3G)≤9;(b)甲胎蛋白≥100ng/ml;(c)异常凝血酶原≥40mAU/ml;在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果不可信的情况下,只考虑甲胎蛋白和异常凝血酶原含量检测结果,当甲胎蛋白≥100ng/ml和/或异 常凝血酶原≥40mAU/ml,判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;当甲胎蛋白<100ng/ml且异常凝血酶原<40mAU/ml,判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者。
- 根据权利要求16-25中任一所述的方法,其特征在于:所述癌症为肝癌、结直肠癌、肺癌、胃癌、胰腺癌、前列腺癌、食管癌或尿路上皮癌。
- 根据权利要求26所述的方法,其特征在于:所述癌症为肝癌;所述良性病变为肝脏良性病变或肝硬化。
- 根据权利要求16-27中任一所述的方法,其特征在于:所述样本为能够提取DNA的样本。
- 根据权利要求28所述的方法,其特征在于:所述样本为血浆、血清、血液、组织、唾液、尿液、粪便。
- 系统,包括:(F1)权利要求13所述的试剂盒和实时荧光定量PCR仪;(F2)装置,所述装置包括数据采集模块、阈值存储模块、数据比较模块、数据处理及结论输出模块;所述数据采集模块被配置为采集(F1)检测得到的来自所述待测者的所述样本的针对OTX1基因和HIST1H3G基因的实时荧光定量PCR扩增结果数据,以及针对甲胎蛋白和异常凝血酶原的含量检测结果数据;所述阈值存储模块被配置为存储阈值A、阈值B、阈值C、阈值D和阈值E;所述阈值A为ACTB基因的Ct值的阈值;所述阈值B为OTX1基因的Ct值的阈值;所述阈值C为HIST1H3G基因的Ct值的阈值;所述阈值D为甲胎蛋白的含量的阈值;所述阈值E为异常凝血酶原的含量的阈值;所述数据比较模块被配置为接收来自所述数据采集模块发送的所述待测者的所述样本的针对OTX1基因和HIST1H3G基因的实时荧光定量PCR扩增结果数据,以及针对甲胎蛋白和异常凝血酶原的含量检测结果数据,并调用所述阈值存储模块中存储的所述阈值A、所述阈值B、所述阈值C、所述阈值D和所述阈值E,然后将所述待测者的ACTB基因的Ct值与所述阈值A进行比较,将所述待测者的OTX1基因的Ct值与所述阈值B行比较,将所述待测者的HIST1H3G基因的Ct值与所述阈值C行比较,将所述待测者的甲胎蛋白的含量值与所述阈值D进行比较,并将所述待测者的异常凝血酶原的含量值与所述阈值E进行比较;所述数据处理及结论输出模块被配置为接收来自所述数据比较模块发送的比较结果,然后按照如下输出结论:若所述待测者的ACTB基因的Ct值大于所述阈值A,则判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果结果不可信;若ACTB基因的Ct值小于等于所述阈值A,则判定针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信;在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果可信的情况下,进一步按照如下进行结果判定:若同时满足如下(a)和/或(b)和/或(c),则判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;若均不满足如下(a)、(b)和(c)时,则判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者:(a)OTX1基因的Ct值小于等于所述阈值B,和/或HIST1H3G基因的Ct值小于等于所述阈值C,计算OTX1基因和HIST1H3G基因的扩增Ct值与内参ACTB基因的扩增Ct值的差值,根据目标基因不同记为△Ct值(OTX1)和/或△Ct值(HIST1H3G);△Ct值(OTX1)≤5和/或△Ct值(HIST1H3G)≤9;(b)甲胎蛋白≥所述阈值D;(c)异常凝血酶原≥所述阈值E。在针对OTX1基因和HIST1H3G基因甲基化水平检测结果不可信的情况下,只考虑甲胎蛋白和异常凝血酶原含量检测结果,若甲胎蛋白≥所述阈值D和/或异常凝血酶原≥所述阈值E,则判定待测者为或候选为癌症患者,或者待测者为癌症高风险患者;若甲胎蛋白<所述阈值D且异常凝血酶原<所述阈值E,则判定待测者为或候选为非癌症患者,或者待测者为癌症低风险患者。
- 根据权利要求30所述的系统,其特征在于:所述阈值A、所述阈值B和所述阈值C均为37;所述阈值D为100ng/ml;所述阈值E为40mAU/ml。
- 权利要求9-15中任一所述试剂盒或权利要求30或31所述系统在如下任一中的应用:(A1)制备用于诊断或筛查癌症的产品;(A2)诊断或筛查癌症;(A3)制备用于在临床症状之前预警癌症的产品;(A4)在临床症状之前预警癌症;(A5)制备用于区分或辅助区分癌症和良性病变的产品;(A6)区分或辅助区分癌症和良性病变。
- 根据权利要求32所述的应用,其特征在于:所述癌症为肝癌、结直肠癌、肺癌、胃癌、胰腺癌、前列腺癌、食管癌或尿路上皮癌。
- 根据权利要求33所述的应用,其特征在于:所述癌症为肝癌;所述良性病变为肝脏良性病变或肝硬化。
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