CN117448332A - 一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,该方法利用在各个细胞中广泛表达的RNA结合蛋白HuR,通过在mRNA分子3’UTR内插入HuR蛋白特异性识别的序列,HuR蛋白特异性结合mRNA分子,增强mRNA稳定性,提高蛋白质的表达。本发明采用上述的一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,能够解决因mRNA分子不稳定,容易降解,从而导致蛋白表达量低的问题。
Description
技术领域
本发明涉及基因工程技术领域,尤其是涉及一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法。
背景技术
mRNA疫苗是在第一代减毒/灭活疫苗和第二代亚单位疫苗基础上发展起来的第三代人用疫苗技术,mRNA生产工艺简单、合成快速、成本较低;且在细胞质中翻译不进入细胞核,不会产生整合宿主基因组的风险;同时作为核酸本身具有激活免疫反应的佐剂作用。从mRNA的本身特性、引发的免疫反应情况、疫苗大规模生产的有利条件等方面来看,mRNA疫苗具有其它疫苗无法比拟的优势。
但是,mRNA极不稳定,很容易被组织和血液中的RNase降解,被免疫系统快速识别清除。mRNA疫苗的应用需要解决其稳定性较差、容易被降解,蛋白表达低的问题。mRNA作为疫苗通常以线性化的DNA为模板通过体外转录获得,研究人员可以对其DNA模板和转录原料进行设计,获得分子水平精准设计的mRNA产品。其中mRNA的组成含有几个必要的元件,包括帽子结构(Cap)、5’端非翻译区(5’untranslate region 5’UTR)、编码抗原蛋白的开放阅读框(open reding frames,ORF)、3’端非翻译区(3’untranslate region,3'UTR)和聚腺苷酸尾巴Poly(A)尾结构。现阶段,提高mRNA稳定性的研究方法,主要是对以上DNA模板上的元件进行序列设计优化,从而提高mRNA的稳定性和翻译效率。
RNA结合蛋白(RNA binding protein,RBP)是细胞中一类重要的蛋白质,RBP通过识别特殊的RNA序列与RNA互作,广泛参与到RNA的剪切、转运、序列编辑、胞内定位及翻译控制等多个转录后调控过程中。本发明提出了一种在3’UTR中插入一段RNA结合蛋白特异性结合的序列,该序列为一段富含腺嘌呤和尿嘧啶的短序列,简称为ARE(AU-rich element)元件。HuR是一种在机体各组织中广泛表达的重要RNA结合蛋白,HuR通过结合ARE元件,增强了mRNA分子的稳定性,提高了蛋白质的表达。在提高mRNA蛋白质表达上,本发明是一种新型的利用胞内RNA结合蛋白质进行mRNA序列优化的方法。
发明内容
本发明的目的是提供一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,解决因mRNA分子不稳定,容易降解,从而导致蛋白表达量低的问题。
为实现上述目的,本发明提供了一种提高蛋白质表达和增强mRNA稳定性的ARE,包括如下的一种:
ARE-0,其核苷酸序列如SEQ ID NO.44所示;
ARE-5,其核苷酸序列如SEQ ID NO.8所示;
ARE-9,其核苷酸序列如SEQ ID NO.12所示;
ARE-V8,其核苷酸序列为ATTTATTTA;
ARE-T8,其核苷酸序列如SEQ ID NO.31所示。
本发明还提供了mRNA,在其DNA模板序列的3’UTR的前面、中间或后面插入如权利要求1所述的ARE得到所述mRNA。
本发明还提供了包含上述ARE的质粒载体。
本发明还提供了ARE在提高蛋白质表达和增强mRNA稳定性中的应用。
本发明还提供了一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,包括以下步骤:
S1、设计上述mRNA的DNA模板序列,构建表达荧光素酶的质粒;
S2、设计引物,应用PCR反应,从质粒上扩增出载体的线状基因片段,应用Gibson反应,连接线性载体和ARE,使载体内插入ARE,在已设计质粒的基础上,应用定点突变,变换不同的ARE或对ARE进行截短和设计;
S3、提取质粒,酶切线性化,加入酶、核苷酶、缓冲液等原料体外转录出mRNA;
S4、mRNA和脂质体以一定比例混合,合成脂质纳米粒;
S5、转染细胞,mRNA在细胞内翻译出蛋白质;
S6、添加荧光素底物试剂,充分裂解细胞,酶标仪检测化学发光;
S7、RNA pull down验证ARE是否结合HuR蛋白。
优选的,所述mRNA与脂质体的体积比为3:1。
优选的,所述脂质体中各组分摩尔比为阳离子脂质体:辅助脂质:胆固醇:聚乙二醇=50:10:38.5:1.5。
本发明所述的一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法的优点和积极效果是:
1、本发明提供了一种新型的mRNA序列优化的方法,即利用细胞内表达的RNA结合蛋白结合特定的序列元件,来上调mRNA分子的稳定性,进而提高开放阅读框的蛋白量,实现翻译能力和生物利用度的增加。
2、本发明通过RNA pull downs实验结合western blot检测手段,与阴性对照相比,ARE元件上结合到了HuR蛋白,荧光素酶的表达量有显著性差异。
下面通过附图和实施例,对本发明的技术方案做进一步的详细描述。
附图说明
图1为本发明实施例中ARE元件前、中、后的插入位置示意图;
图2为本发明实施例中插入ARE元件的DNA模板电泳图;
图3为本发明实施例中ARE-F、ARE-M、ARE-R的细胞转染结果图;
图4为本发明实施例中ARE1-13的细胞转染结果图;
图5为本发明实施例中AREV1-V10的细胞转染结果图;
图6为本发明实施例中ARET1-T2、ARET4-T8的细胞转染结果图;
图7为本发明实施例中Western blot结果图。
具体实施方式
以下通过附图和实施例对本发明的技术方案作进一步说明。除非另外定义,本发明使用的技术术语或者科学术语应当为本发明所属领域内具有一般技能的人士所理解的通常意义。
本发明以易检测蛋白表达量的荧光素酶为例,首先,在DNA模板的3’UTR的不同位置插入ARE元件,与未插入ARE元件的序列Non-ARE做对比,显示RNA结合蛋白结合ARE元件增强蛋白质表达量,并且增强效果最显著的是ARE在3’UTR前。
其次,在确定ARE在3’UTR前为最优位置的基础上,通过定点突变更换13条不同的ARE元件序列,13条不同的ARE元件均来自于自然基因库,探究ARE元件的最优序列。
最后,在最优序列和自然基因库中筛选的基础上,探究保证ARE元件功能的最短和最长作用序列。因此,本发明采用一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,能够解决因mRNA分子不稳定,容易降解,从而导致蛋白表达量低问题。
实施例
一、设计DNA序列:以PUC57-Kan为质粒载体,选择XbaL I和Pci I为目的基因两侧的酶切位点,目的基因序列依次为T7启动子序列、5’UTR序列、优化后的荧光素酶序列、3’UTR序列、polyA序列。
1、ARE元件最优位置:ARE元件的插入位置如图1所示,ARE元件插入3’UTR序列前面标记为ARE-F,ARE元件插入3’UTR序列中间标记为ARE-M,ARE元件插入3’UTR序列后面标记为ARE-R,未插入ARE元件的质粒命名为Non-ARE。
2、从自然基因库中筛选的ARE元件:从自然基因库中选取了13条序列,除ARE元件的DNA序列同ARE-F不同,质粒上的其他基因均同ARE-F相同。13条序列中的ARE元件依次命名为序号ARE1-13,其核苷酸序列如SEQ ID NO.4-16所示。
3、ARE元件的截短和设计:对ARE-F的ARE-0元件进行截短和设计。截短的序列依次命名为ARE-V1(SEQ ID NO.17)、ARE-V2(SEQ ID NO.18)、ARE-V3(SEQ ID NO.19)、ARE-V4(SEQ ID NO.20)、ARE-V5(SEQ ID NO.21)、ARE-V6(SEQ ID NO.22)、ARE-V7(SEQ IDNO.23)、ARE-V8(ATTTATTTA)、ARE-V9(SEQ ID NO.24)、ARE-V10(SEQ ID NO.25),设计的ARE元件依次命名为ARE-T1、(SEQ ID NO.26)ARE-T2(TATTTATTT)、ARE T4-T8,其核苷酸序列如SEQ ID NO.27-31所示。
二、插入ARE元件:设计引物,通过PCR获得带有同源末端的载体和插入片段的ARE片段。通过Gibson组装3’UTR内含有ARE元件的质粒。通过PCR反应获得载体的引物序列如表1所示(SEQ ID NO.32-37),PCR反应参数如表2所示。
表1载体的引物序列
表2载体PCR反应参数
三、通过PCR反应获得ARE元件的引物序列如表3所示(SEQ ID NO.38-43),PCR反应参数如表4所示。
表3ARE元件的引物序列
表4ARE元件PCR反应参数
四、PCR反应纯化:采用PCR反应纯化试剂盒,按说明书操作步骤,得到纯化后的载体和ARE元件。利用超微量紫外分光光度计对DNA进行定性和定量分析,进行琼脂糖凝胶电泳验证DNA模板的完整性及纯度。电泳图谱如图2所示。图2种左图各条带依次为5k marker(从大到小依次为5000bp、3000bp、2000bp、1500bp、1000bp、800bp、500bp、300bp)、F-载体、F载体;中间图各条带依次为5k、M-载体、R载体;右图为2k marker(从大到小依次为2000bp、1000bp、750bp、500bp、250bp、100bp)、ARE-F元件、ARE-M元件、ARE-R元件。由图2我们可以看出通过设计引物及PCR反应,载体条带全部位于3000bp-5000bp之间,插入的ARE元件条带全部小于100bp,条带大小均符合预期。因此正确得到同源末端的载体和插入片段的ARE片段。
五、Gibon组装载体和插入ARE元件
(1)克隆反应体系
(2)轻轻混合,将样品在50℃下孵育1h。反应结束后,将离心管置于冰上冷却数秒。将样品储存在–20℃或直接用于后续转化。已插入ARE-0(SEQ ID NO.44)元件的ARE-F的载体序列如SEQ ID NO.1所示,ARE-M的载体序列如SEQ ID NO.2所示,ARE-R的载体序列如SEQID NO.3所示。
六、ARE元件的定点突变
在ARE-F的质粒基础上,将ARE元件进行定点突。通过点突变过程中,第一步使用PCR酶进行指数扩增引入突变序列。第二步是用含激酶、连接酶和Dpn I酶的特殊混合液处理,快速环化PCR产物和去除模板。第三步是高效转入化学感受态细胞。第四步是从菌液中提取质粒,测序,得到正确的突变后的DNA序列。
七、Gibson和定点突变重组产物转化到感受态细胞。
(1)E.coli DH5α感受态细胞使用前在冰上融化。
(2)50μL的细胞加入2μL Gibson重组产物,轻弹管壁混匀。
(3)冰浴30min,迅速放入42℃水浴中热击45s,再迅速转至冰中静置2min。
(4)添加SOC培养基,补足体积至1mL。
(5)37℃振荡培养1小时。
(6)浓缩:5000×g离心1min,弃掉900μL上清,剩余部分吹打混匀。
(7)将100μL菌液涂布于100mg/L Kan抗性的LB平板上,37℃正置直至菌液被吸收。
(8)37℃过夜倒置培养。
(9)次日,从平板上挑取单菌落接种到Kan抗性的LB培养基中,37℃摇床充分振荡培养12–16小时。
八、体外转录RNA:提取质粒,酶切线性化的DNA模板,据体外转录试剂盒,在体外加入RNA转录酶、帽子、三磷酸核苷酸和DNA模板等转录原料,37℃孵育2h,以DNA为模板转录得mRNA。
九、脂质体的配置:按照以下配比配置脂质体。其中阳离子脂质体:辅助脂质:胆固醇:聚乙二醇的摩尔比为50:10:38.5:1.5。阳离子脂质体为SM-102,辅助脂质为二油酰磷脂酰乙醇胺,缩写为DOPE,聚乙二醇为二肉豆蔻酰甘油-聚乙二醇2000,缩写为DMG-PEG 2000。
十、合成脂质纳米粒:根据脂质体和mRNA的体积比为3:1,配置所需体积的纳米粒,轻微震荡混匀,制得转染细胞所需的脂质纳米粒。
十一、细胞转染:转染的前一天细胞铺板,观察细胞状态,使细胞密度生长大约为70%-90%后,转染ARE-F、ARE-M、ARE-R到Hela、HEK-293T、4T1、A549细胞中,转染ARE1-13、AREV1-V10、ARET1-T2、ARET4-T8 RNA于Hela细胞中。转染后轻微震荡混匀,放入细胞培养箱中培养。
十二、24h后检测荧光强度:转染24h后,将孔板取出,平衡至室温后,加入荧光素底物,使细胞充分裂解3分钟后,在酶标仪检测发光信号。其中ARE-F、ARE-M、ARE-R的转染结果如图3所示,ARE1-13的转染结果如图4所示,AREV1-V10转染结果如图5所示,ARET1-T2、ARET4-T8 RNA的转染结果如图6所示。
由图3可以看出,相同细胞中ARE-F的转染效果较好,因此对ARE-F进行了截短设计(AREV1-V10),截短后的序列的转染效果如图5所示,从图5中可以看出,序列AREV8的转染效果较好,说明序列AREV8可以显著增强蛋白表达量。
图4为从自然基因库中筛选的13条序列,由图4的结果可知,对比Non-ARE,ARE-5和ARE-9的转染效果接近ARE-F,说明ARE-5和ARE-9同样可以显著增强蛋白表达量。
图6为人工设计的7条序列,由图6的结果可知,ARET8的转染效果优异,说明ARET8可以显著增强蛋白表达量。
十三、RNApull down确认ARE结合蛋白HuR。
1、细胞裂解
1)将Hela细胞培养于10cm的大皿中,培养3个大皿。
2)弃去培养基,用预冷的PBS洗3次,尽量吸尽上清。取4mL RIPA,加40μL PSMF,混匀置于冰上。
3)每个大皿加入1230μL RIPA裂解液,用枪吹打数下,使裂解液和细胞充分接触,冰上裂解30min。
4)用细胞刮板将细胞刮下,用裂解液吹打几下,收集裂解后的样品14000g离心5分钟,取上清,取10-20μL左右上清至新管中,作为实验input组。
5)BCA测定蛋白浓度。
2、磁珠和RNA结合
1)磁珠混匀
2)取3个50μL置于磁力架上,去除上清
3)用50μL 20mM Tris(pH7.5)洗一遍,重悬磁珠,置于磁力架上,弃上清。
4)重复步骤3)一次。
5)加入50μL RNACapture Buffer,重悬磁珠。
6)加入10μL RNA(Biotin-ARE、Biotin-polyA、无酶水)于磁珠中,用移液枪轻轻混匀。
7)室温下震荡孵育30min。
3、HuR蛋白结合RNA-磁珠
1)将磁珠和RNA混合液置于磁力架上,弃上清。
2)用50uL 20mM Tris(pH7.5)洗一遍,重悬磁珠,置于磁力架上,弃上清。
3)重复步骤3)一次。
4)稀释10×protein RNAbinding buffer。
5)加入100μL 1×protein RNAbinding buffer于磁珠中混匀,置于磁力架上,弃上清。
6)准备细胞裂解液混合物。
7)加入100μL细胞裂解液混合物于已结合了RNA的磁珠中,用移液枪轻轻混匀。
8)4℃,震荡孵育30-60min。
4、洗脱RNA结合蛋白复合物
1)磁珠置于磁力架上,弃上清。
2)用100μL 1×wash buffer洗涤磁珠,置于磁力架上,弃上清。
3)重复步骤2)一次。
4)加50μL 1×SDS loading buffer煮沸5-10min。
5)后置于置于磁力架上,收集上清用于Western blot分析,剩余样品可以-20℃保存。
十四、Western blot结果如图7所示。
由图7的结果可知,ARE结合了蛋白HuR,从而提高了蛋白质的表达量。
因此,本发明采用上述的一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,HuR蛋白通过ARE元件特异性地结合mRNA,从而提高蛋白质的表达量,能够解决因mRNA分子不稳定,容易降解,从而导致蛋白表达量低的问题。
最后应说明的是:以上实施例仅用以说明本发明的技术方案而非对其进行限制,尽管参照较佳实施例对本发明进行了详细的说明,本领域的普通技术人员应当理解:其依然可以对本发明的技术方案进行修改或者等同替换,而这些修改或者等同替换亦不能使修改后的技术方案脱离本发明技术方案的精神和范围。
Claims (7)
1.一种提高蛋白质表达和增强mRNA稳定性的ARE,其特征在于,包括如下的一种:
ARE-0,其核苷酸序列如SEQ ID NO.44所示;
ARE-5,其核苷酸序列如SEQ ID NO.8所示;
ARE-9,其核苷酸序列如SEQ ID NO.12所示;
ARE-V8,其核苷酸序列为ATTTATTTA;
ARE-T8,其核苷酸序列如SEQ ID NO.31所示。
2.mRNA,其特征在于:在其DNA模板序列的3’UTR的前面、中间或后面插入如权利要求1所述的ARE得到所述mRNA。
3.包含如权利要求1所述的ARE的质粒载体。
4.如权利要求1所述的ARE,在提高蛋白质表达和增强mRNA稳定性中的应用。
5.一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1、设计如权利要求2中所述的mRNA的DNA模板序列,构建表达荧光素酶的质粒;
S2、设计引物,应用PCR反应,从质粒上扩增出载体的线状基因片段,应用Gibson反应,连接线性载体和ARE,使载体内插入ARE,在已设计质粒的基础上,应用定点突变,变换不同的ARE或对ARE进行截短和设计;
S3、提取质粒,酶切线性化,加入酶、核苷酶、缓冲液等原料体外转录出mRNA;
S4、mRNA和脂质体以一定比例混合,合成脂质纳米粒;
S5、转染细胞,mRNA在细胞内翻译出蛋白质;
S6、添加荧光素底物试剂,充分裂解细胞,酶标仪检测化学发光;
S7、RNA pull down验证ARE是否结合HuR蛋白。
6.根据权利要求5所述的一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,其特征在于:所述mRNA与脂质体的体积比为3:1。
7.根据权利要求6所述的一种利用RNA结合蛋白增强mRNA蛋白表达的序列优化方法,其特征在于:所述脂质体中各组分摩尔比为阳离子脂质体:辅助脂质:胆固醇:聚乙二醇=50:10:38.5:1.5。
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