CN117065089B - 一种载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及医用植入体材料制备技术领域,提供了一种载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层。包括:S1:制备载药二氧化钛纳米管TA;S2:制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合涂层。有益效果在于:将经超声、无水乙醇及升温处理的丝素蛋白SF溶液与介孔二氧化硅MSN混合,在TA表面制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合药物控释涂层,可提高药物的缓释效果。且,将经超声、无水乙醇及升温处理的丝素蛋白SF溶液与介孔二氧化硅MSA混合,即在介孔二氧化硅MSN中载药,在TA表面制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSA复合药物控释涂层,进一步增加药物加载量的同时,也提高了药物缓释效果。
Description
技术领域
本发明涉及医用植入体材料制备技术领域,具体涉及一种载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层。
背景技术
钛及钛合金具有优异的生物相容性和力学性能,在临床上被广泛应用于口腔种植体。通过阳极氧化的方式可以在钛及钛合金表面构建二氧化钛纳米管,该微纳形貌能够提高材料的粗糙度和亲水性,促进成骨。
纳米管的中空结构可以作为药物载体,通过钛种植体携带如钙(Ca)、锶(Sr)、锌(Zn)等无机离子,或地塞米松、雷洛昔芬、骨形态发生蛋白-2(BMP-2)等生物大分子实现种植体与骨组织间有效药物输送,能够进一步促进成骨。对比传统的系统给药方式(如口服、静脉注射、肌肉注射等),局部载药可以精准作用于种植体和组织界面、药物用量少、副作用低。
现有技术中,种植体从植入骨内到获得完全的骨整合需要2-3个月的时间,由于钛存在一定的生物惰性,在获得良好早期骨整合方面仍然存在一定的局限,容易导致种植体松动甚至脱落。此外,二氧化钛纳米管载药后的药物释放存在突释情况,材料表面能会随药物释放降低,短期内药物浓度的升高也容易导致细胞毒性,无法与时间较长的骨结合需求相适应。
鉴于此,提出本发明。
发明内容
本发明的目的在于提供一种载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层,以解决现有技术中存在的技术问题。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案是:一种载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层,包括:
S1:制备载药二氧化钛纳米管TA;
S2:制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合涂层。
可选实施例中,所述S1包括:
S11:采用纯钛片制备所述二氧化钛纳米管TNTs;
S12:采用所述二氧化钛纳米管TNTs载药制备TA。
可选实施例中,所述S2包括:
S21:制备丝素蛋白SF溶液;
S22:制备介孔二氧化硅MSN;
S23:制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合涂层。
可选实施例中,
S22中:采用所述介孔二氧化硅MSN载药制备MSA。
可选实施例中,
S23中,将所述MSN与所述丝素蛋白SF混合溶液在载药二氧化钛纳米管TA表面制备涂层,获得TAM。
可选实施例中,
S23中,将所述MSA与所述丝素蛋白SF混合溶液在载药二氧化钛纳米管TA表面制备涂层,获得TAMA。
可选实施例中,所述S21包括:
S211:天然家蚕蚕茧剪碎后置于0.02mM的NaCO3溶液中煮30分钟脱去丝胶蛋白,用去离子水充分洗涤,完全干燥;
S212:将脱胶后蚕丝在60℃条件下,置于9.3M的LiBr溶液中溶解4小时:
S213:溶解完成后将溶液置于去离子水中透析48小时,每4小时换水一次;
S214:收集丝素蛋白SF溶液,离心取上清,检测质量体积分数,置于4℃保存;
所述S22包括:
S221:将10mM CTAB、80mM TEOs、2M NaON、261mM KH2PO4在80℃条件下反应8小时;
S222:收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤沉淀,将沉淀完全干燥后获得MSN-CTAB
S223:将MSN-CTAB、浓盐酸、无水乙醇以1:100:1的体积比在80℃条件下反应8小时;
S224:收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤,将沉淀完全干燥后获得MSN。
可选实施例中,所述S22还包括:
S225:将5mg MSN加入浓度为5μM的AZD2858溶液2ml中搅拌24小时后收集溶液,以转速为12000r/min离心12min,弃上清后用去离子水洗涤2次,将沉淀完全干燥后获得MSA。
可选实施例中,所述S23包括:
S231:将质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液超声处理30s;
S232:将MSN以0.5mg/ml的比例与经超声处理的质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液混合均匀;
S233:采用滴加法在TA表面进行涂层制备,向每片所述TA的材料表面滴加20μl涂层液,60℃干燥;
S234:向每片涂层材料表面滴加20μl无水乙醇处理10min,经去离子水洗涤2次后,37℃下完全烘干,获得TAM。
可选实施例中,所述S23包括:
所述S23包括:
S231:将质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液超声处理30s;
S232:将MSA以0.5mg/ml的比例与经超声处理的质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液混合均匀;
S233:采用滴加法在TA表面进行涂层制备,向每片所述TA的材料表面滴加20μl涂层液,60℃干燥;
S234:向每片涂层材料表面滴加20μl无水乙醇处理10min,经去离子水洗涤2次后,37℃下完全烘干,获得TAMA。
本发明的有益效果在于:
将经超声、无水乙醇及升温处理的丝素蛋白SF溶液与介孔二氧化硅MSN混合,在TA表面制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合药物控释涂层,可提高药物的缓释效果。且,将经超声、无水乙醇及升温处理的丝素蛋白SF溶液与介孔二氧化硅MSA混合,即在介孔二氧化硅MSN中载药,在TA表面制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSA复合药物控释涂层,进一步增加药物加载量的同时,也提高了药物缓释效果。
通过对丝素蛋白SF进行超声、无水乙醇及升温处理,改变丝素蛋白SF的二级结构,改善涂层的机械性能及降解性能,以实现药物控释,介孔二氧化硅MSN的加入可进一步改善涂层机械性能和控释效果。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其它的附图。
图1为本发明一实施例中提供的MSN透射电镜(TEM)结果;
图2为本发明一实施例中提供的MSA透射电镜(TEM)结果;
图3为本发明一实施例中提供的Ti、TNTs、TA、TAS、TAM扫描电镜(SEM)结果;
图4为本发明一实施例中提供的FTIR分析涂层二级结构对比图;
图5为本发明一实施例中提供的涂层降解速度对比图。
图6为本发明一实施例中提供的药物释放情况对比图。
具体实施方式
为了使本发明所要解决的技术问题、技术方案及有益效果更加清楚明白,以下结合附图及实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
需要说明的是,当部件被称为“固定于”或“设置于”另一个部件,它可以直接或者间接位于该另一个部件上。当一个部件被称为“连接于”另一个部件,它可以是直接或者间接连接至该另一个部件上。术语“上”、“下”、“左”、“右”、“前”、“后”、“竖直”、“水平”、“顶”、“底”、“内”、“外”等指示的方位或位置为基于附图所示的方位或位置,仅是为了便于描述,不能理解为对本技术方案的限制。术语“第一”、“第二”仅用于便于描述目的,而不能理解为指示或暗示相对重要性或者隐含指明技术特征的数量。“多个”的含义是两个或两个以上,除非另有明确具体的限定。
实施例1
本实施例的目的在于提供了一种TA表面丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合药物控释涂层,包括:
首先,采用机械抛光纯钛片试件;所述试件依次用丙酮、无水乙醇、去离子水超声清洗10分钟,备用;采用由2.25g氟化铵、40ml去离子水、358ml乙二醇和1.5-2ml氢氟酸组成的阳极氧化电解液及铂片阴极,接通直流电源对所述试件进行阳极氧化;阳极氧化处理后的所述试件置于管式炉内,在干燥空气条件下进行退火处理,120分钟升温至500℃,保温2小时,然后随炉自然冷却至室温,所得试件TNTs。
向每片所述TNTs的材料表面滴加20μl,浓度为2.5μM的AZD2858溶液,均匀涂布,负压干燥2小时;每片所述材料均用去离子水清洗2次,再次负压下完全干燥后4℃保存备用,所得试件标TA。
本文中,TNTs表示未载药的二氧化钛纳米管,TA表示载药的二氧化钛纳米管,TNTs所载药物为AZD2858。
丝素蛋白SF溶液制备:
天然家蚕蚕茧剪碎后置于0.02mM的NaCO3溶液中煮30分钟脱去丝胶蛋白,用去离子水充分洗涤,完全干燥;将脱胶后蚕丝在60℃条件下,置于9.3M的LiBr溶液中溶解4小时:溶解完成后将溶液置于去离子水中透析48小时,每4小时换水一次;收集丝素蛋白SF溶液,离心取上清,检测质量体积分数,置于4℃保存。
介孔二氧化硅MSN制备:
将10mM CTAB、80mM TEOs、2M NaON、261mM KH2PO4在80℃条件下反应8小时;收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤沉淀,将沉淀完全干燥后获得MSN-CTAB将MSN-CTAB、浓盐酸、无水乙醇以1:100:1的体积比在80℃条件下反应8小时;收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤,将沉淀完全干燥后获得MSN。
建立丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合涂层:
将质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液超声处理30s(功率80w);将MSN以0.5mg/ml的比例与经超声处理的质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液混合均匀;采用滴加法在TA表面进行涂层制备,向每片所述TA的材料表面滴加20μl涂层液,60℃干燥;向每片涂层材料表面滴加20μl无水乙醇处理10min,经去离子水洗涤2次后,37℃下完全烘干,获得TAM。
实施例2
本实施例的目的在于提供了一种TA表面丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSA复合药物控释涂层,包括:
首先,采用机械抛光纯钛片试件;所述试件依次用丙酮、无水乙醇、去离子水超声清洗10分钟,备用;采用由2.25g氟化铵、40ml去离子水、358ml乙二醇和1.5-2ml氢氟酸组成的阳极氧化电解液及铂片阴极,接通直流电源对所述试件进行阳极氧化;阳极氧化处理后的所述试件置于管式炉内,在干燥空气条件下进行退火处理,120分钟升温至500℃,保温2小时,然后随炉自然冷却至室温,所得试件TNTs。
向每片所述TNTs的材料表面滴加20μl,浓度为2.5μM的AZD2858溶液,均匀涂布,负压干燥2小时;每片所述材料均用去离子水清洗2次,再次负压下完全干燥后4℃保存备用,所得试件标TA。
丝素蛋白SF溶液制备:
天然家蚕蚕茧剪碎后置于0.02mM的NaCO3溶液中煮30分钟脱去丝胶蛋白,用去离子水充分洗涤,完全干燥;将脱胶后蚕丝在60℃条件下,置于9.3M的LiBr溶液中溶解4小时:溶解完成后将溶液置于去离子水中透析48小时,每4小时换水一次;收集丝素蛋白SF溶液,离心取上清,检测质量体积分数,置于4℃保存。
介孔二氧化硅MSA制备:
将10mM CTAB、80mM TEOs、2M NaON、261mM KH2PO4在80℃条件下反应8小时;收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤沉淀,将沉淀完全干燥后获得MSN-CTAB将MSN-CTAB、浓盐酸、无水乙醇以1:100:1的体积比在80℃条件下反应8小时;收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤,将沉淀完全干燥后获得MSN。
将5mg MSN加入浓度为5μM的AZD2858溶液2ml中搅拌24小时后收集溶液,以转速为12000r/min离心12min,弃上清后用去离子水洗涤2次,将沉淀完全干燥后获得MSA。
本文中,MSA表示载药的MSN,MSN所载药物为AZD2858。
建立丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSA复合涂层:
将质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液超声处理30s(功率80w);将MSA以0.5mg/ml的比例与经超声处理的质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液混合均匀;采用滴加法在TA表面进行涂层制备,向每片所述TA的材料表面滴加20μl涂层液,60℃干燥;向每片涂层材料表面滴加20μl无水乙醇处理10min,经去离子水洗涤2次后,37℃下完全烘干,获得TAMA。
对比例1
制备无涂层TA:
采用机械抛光纯钛片试件;所述试件依次用丙酮、无水乙醇、去离子水超声清洗10分钟,备用;采用由2.25g氟化铵、40ml去离子水、358ml乙二醇和1.5-2ml氢氟酸组成的阳极氧化电解液及铂片阴极,接通直流电源对所述试件进行阳极氧化;阳极氧化处理后的所述试件置于管式炉内,在干燥空气条件下进行退火处理,120分钟升温至500℃,保温2小时,然后随炉自然冷却至室温,所得试件TNTs。
向每片所述TNTs的材料表面滴加20μl,浓度为2.5μM的AZD2858溶液,均匀涂布,负压干燥2小时;每片所述材料均用去离子水清洗2次,再次负压下完全干燥后4℃保存备用,所得试件标TA。
对比例2
在TA表面制备不含MSN的涂层:
首先,采用机械抛光纯钛片试件;所述试件依次用丙酮、无水乙醇、去离子水超声清洗10分钟,备用;采用由2.25g氟化铵、40ml去离子水、358ml乙二醇和1.5-2ml氢氟酸组成的阳极氧化电解液及铂片阴极,接通直流电源对所述试件进行阳极氧化;阳极氧化处理后的所述试件置于管式炉内,在干燥空气条件下进行退火处理,120分钟升温至500℃,保温2小时,然后随炉自然冷却至室温,所得试件TNTs。
向每片所述TNTs的材料表面滴加20μl,浓度为2.5μM的AZD2858溶液,均匀涂布,负压干燥2小时;每片所述材料均用去离子水清洗2次,再次负压下完全干燥后4℃保存备用,所得试件标TA。
丝素蛋白SF溶液制备:
天然家蚕蚕茧剪碎后置于0.02mM的NaCO3溶液中煮30分钟脱去丝胶蛋白,用去离子水充分洗涤,完全干燥;将脱胶后蚕丝在60℃条件下,置于9.3M的LiBr溶液中溶解4小时:溶解完成后将溶液置于去离子水中透析48小时,每4小时换水一次;收集丝素蛋白SF溶液,离心取上清,检测质量体积分数,置于4℃保存。
制备丝素蛋白SF涂层:
将质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液超声处理30s(功率80w);采用滴加法在TA表面进行涂层制备,向每片所述TA的材料表面滴加20μl涂层液,60℃干燥;向每片涂层材料表面滴加20μl无水乙醇处理10min,经去离子水洗涤2次后,37℃下完全烘干,获得TAS。
对比例3
在未载药TNTs表面制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合涂层。
首先,采用机械抛光纯钛片试件;所述试件依次用丙酮、无水乙醇、去离子水超声清洗10分钟,备用;采用由2.25g氟化铵、40ml去离子水、358ml乙二醇和1.5-2ml氢氟酸组成的阳极氧化电解液及铂片阴极,接通直流电源对所述试件进行阳极氧化;阳极氧化处理后的所述试件置于管式炉内,在干燥空气条件下进行退火处理,120分钟升温至500℃,保温2小时,然后随炉自然冷却至室温,所得试件TNTs。
丝素蛋白SF溶液制备:
天然家蚕蚕茧剪碎后置于0.02mM的NaCO3溶液中煮30分钟脱去丝胶蛋白,用去离子水充分洗涤,完全干燥;将脱胶后蚕丝在60℃条件下,置于9.3M的LiBr溶液中溶解4小时:溶解完成后将溶液置于去离子水中透析48小时,每4小时换水一次;收集丝素蛋白SF溶液,离心取上清,检测质量体积分数,置于4℃保存。
介孔二氧化硅MSN制备:
将10mM CTAB、80mM TEOs、2M NaON、261mM KH2PO4在80℃条件下反应8小时;收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤沉淀,将沉淀完全干燥后获得MSN-CTAB将MSN-CTAB、浓盐酸、无水乙醇以1:100:1的体积比在80℃条件下反应8小时;收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤,将沉淀完全干燥后获得MSN。
建立丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合涂层:
将质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液超声处理30s(功率80w);将MSN以0.5mg/ml的比例与经超声处理的质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液混合均匀;采用滴加法在TNTs表面进行涂层制备,向每片所述TNTs的材料表面滴加20μl涂层液,60℃干燥;向每片涂层材料表面滴加20μl无水乙醇处理10min,经去离子水洗涤2次后,37℃下完全烘干,获得TM。
对比例4
在未载药TNTs表面制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSA复合涂层。
首先,采用机械抛光纯钛片试件;所述试件依次用丙酮、无水乙醇、去离子水超声清洗10分钟,备用;采用由2.25g氟化铵、40ml去离子水、358ml乙二醇和1.5-2ml氢氟酸组成的阳极氧化电解液及铂片阴极,接通直流电源对所述试件进行阳极氧化;阳极氧化处理后的所述试件置于管式炉内,在干燥空气条件下进行退火处理,120分钟升温至500℃,保温2小时,然后随炉自然冷却至室温,所得试件TNTs。
丝素蛋白SF溶液制备:
天然家蚕蚕茧剪碎后置于0.02mM的NaCO3溶液中煮30分钟脱去丝胶蛋白,用去离子水充分洗涤,完全干燥;将脱胶后蚕丝在60℃条件下,置于9.3M的LiBr溶液中溶解4小时:溶解完成后将溶液置于去离子水中透析48小时,每4小时换水一次;收集丝素蛋白SF溶液,离心取上清,检测质量体积分数,置于4℃保存。
介孔二氧化硅MSN制备:
将10mM CTAB、80mM TEOs、2M NaON、261mM KH2PO4在80℃条件下反应8小时;收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤沉淀,将沉淀完全干燥后获得MSN-CTAB将MSN-CTAB、浓盐酸、无水乙醇以1:100:1的体积比在80℃条件下反应8小时;收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤,将沉淀完全干燥后获得MSN。
将5mg MSN加入浓度为5μM的AZD2858溶液2ml中搅拌24小时后收集溶液,以转速为12000r/min离心12min,弃上清后用去离子水洗涤2次,将沉淀完全干燥后获得MSA。
建立丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSA复合涂层:
将质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液超声处理30s(功率80w);将MSA以0.5mg/ml的比例与经超声处理的质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液混合均匀;采用滴加法在TNTs表面进行涂层制备,向每片所述TNTs的材料表面滴加20μl涂层液,60℃干燥;向每片涂层材料表面滴加20μl无水乙醇处理10min,经去离子水洗涤2次后,37℃下完全烘干,获得TMA。
实验结果:
请参阅附图1-2,透射电镜可观察到介孔二氧化硅MSN呈圆球形,直径约180nm-210nm。加载AZD2858后,MSA表面可观察到硅球边缘有所变化。
如下表1所示,Zeta电位结果显示MSN及MSA均带负电荷,载药后MSN所带负电减少,粒径分析结果显示载药后MSN粒径增大。
表1
ZetaPotential(mV) | Eff.Diam.(nm) | |
MSN | -23.79±3.53 | 194.7±15.98 |
MSA | -12.87±1.69 | 236.82±11.25 |
请参阅附图3,扫描电镜下可观察到,纯Ti片表面光滑,仅有少量机械划痕,TNTs及TA组纳米管排列均一稳定,管径约100nm,长度约1μm.,两组间形貌未见明显差异。纯丝素蛋白涂层组TAS表面相对光滑,加载MSN后涂层表面可见球形颗粒,厚度约1.31μm。
请参阅附图4,FTIR结果显示,与未经超声、无水乙醇级及升温处理的纯丝素蛋白涂层SF相比,各实验组的丝素蛋白SF二级结构特征峰基本重叠,在酰胺I区(1600cm-1-1700cm-1),特征峰从1640cm-1移动至1622cm-1,即涂层出现显著的β-折叠特征峰,而未加入MSN的TAS组在酰胺I区、酰胺II区和酰胺III区的特征峰更加尖锐。丝素蛋白SF的二级结构影响其降解速度,其中是β-折叠的含量起主要影响因素,β-折叠含量越多,丝素蛋白SF降解速度越慢。
请参阅附图5,在1U/ml的蛋白酶XIV溶液中,未处理丝素SF组的涂层在第二天就完全降解,各实验组涂层均在第12天完全降解,其中TAS组在前8天降解速度相对较慢。
请参阅附图6,通过液相测谱仪对各载药组中AZD2858的释放情况进行检测。结果显示,无涂层组TA明显存在突释情况,在12小时达到完全释放。TMA组在第24小时药物释放完毕。TAS组将药物释放延长至96小时,且早期释放速度较缓慢。TAM组进一步实现药物缓释,以缓慢速率释放至120小时,而TAMA组的药物缓释效果最佳,以最慢释放速率使得药物在168小时尚未完全释放结束。
本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (3)
1.一种载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层,其特征在于,所述载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层的制备方法包括如下步骤:
S1:采用纯钛片制备二氧化钛纳米管TNTs,采用二氧化钛纳米管TNTs载药制备TA,所载药物为AZD2858;
S2:制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSN复合涂层;
所述步骤S2包括:
S21:制备丝素蛋白SF溶液;
S22:制备介孔二氧化硅MSN,采用所述介孔二氧化硅MSN载药制备MSA,所载药物为AZD2858;
S23:制备丝素蛋白SF/介孔二氧化硅MSA复合涂层;
所述步骤S23包括:
S231:将质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液超声处理30s;
S232:将MSA以0.5mg/ml的比例与经超声处理的质量体积分数为5w/v%的丝素蛋白SF溶液混合均匀;
S233:采用滴加法在TA表面进行涂层制备,向每片所述TA的材料表面滴加20μl涂层液,60℃干燥;
S234:向每片涂层材料表面滴加20μl无水乙醇处理10min,经去离子水洗涤2次后,37℃下完全烘干,获得TAMA。
2.根据权利要求1所述的载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层,其特征在于,所述S21包括:
S211:天然家蚕蚕茧剪碎后置于0.02mM的NaCO3溶液中煮30分钟脱去丝胶蛋白,用去离子水充分洗涤,完全干燥;
S212:将脱胶后蚕丝在60℃条件下,置于9.3M的LiBr溶液中溶解4小时:
S213:溶解完成后将溶液置于去离子水中透析48小时,每4小时换水一次;
S214:收集丝素蛋白SF溶液,离心取上清,检测质量体积分数,置于4℃保存;
所述S22包括:
S221:将10mM CTAB、80mM TEOs、2M NaON、261mM KH2PO4在80℃条件下反应8小时;
S222:收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤沉淀,将沉淀完全干燥后获得MSN-CTAB;
S223:将MSN-CTAB、浓盐酸、无水乙醇以1:100:1的体积比在80℃条件下反应8小时;
S224:收集反应溶液,以转速为12000r/min离心12min,用无水乙醇和去离子水反复洗涤,将沉淀完全干燥后获得MSN。
3.根据权利要求1所述的载药TNTs表面SF/MSN复合药物控释涂层,其特征在于,所述S22还包括:
S225:将5 mg MSN加入浓度为5μM的AZD2858溶液2ml中搅拌24小时后收集溶液,以转速为12000r/min离心12min,弃上清后用去离子水洗涤2次,将沉淀完全干燥后获得MSA。
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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