CN115851684A - 一种腈水解酶及其在蛋氨酸合成中的应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种腈水解酶及其在蛋氨酸合成中的应用。本发明公开的腈水解酶的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示，其突变体的氨基酸序列如SEQ ID NO:6所示。本发明的腈水解酶能够高效催化2‑氨基‑4‑甲硫基丁腈生成2‑氨基‑4‑甲硫基丁酸，尤其是突变体ScNLE‑F188A底物转化率达到99％，2‑氨基‑4‑甲硫基丁酸的生产效率高达29.8kg_蛋氨酸/kg_DCW/h，对于绿色高效地制备蛋氨酸具有重要的工业应用价值。

Description

一种腈水解酶及其在蛋氨酸合成中的应用

技术领域

本发明属于生物催化技术领域，涉及一种来源于珊瑚希瓦氏菌(Shewanellacorallii)的腈水解酶及其突变体、编码它们的核酸分子、含有这些核酸分子的载体和细胞，以及它们的制备方法及其在制备2-氨基-4-甲硫基丁酸中的应用。

背景技术

蛋氨酸是构成蛋白质的基本单位之一，是动物生长所需氨基酸中唯一含硫的必需氨基酸，是家禽玉米-豆粕型饲粮中的第一限制性氨基酸。

制备蛋氨酸的方法主要有化学合成法、生物酶拆分法和微生物发酵法。生物酶拆分法的生产经济指标低、排污大；发酵法的生产工艺收率低，欠缺工业化生产价值；目前全球蛋氨酸的生产主要采用化学合成法，相关专利由全球主要化工巨头发起，例如杜邦、陶氏化学、住友株式会社等。

目前，氰醇法是运行成本最低的蛋氨酸生产工艺之一，优点在于既能用来生产蛋氨酸，又能用来生产蛋氨酸羟基类似物及其钙盐，因而被美国杜邦公司、孟山都公司等采用。氰醇法中间体2-氨基-4-甲硫基丁腈采用硫酸在高温高压条件下水解，存在反应条件苛刻、副产三废多等问题。

利用生物催化法来进行腈的转化，其优势不仅在于反应条件温和、环境污染少，副产物少，并且符合原子经济性、绿色环保和可持续发展的要求。

曹达公司和罗纳-普朗克公司等都对腈水解酶催化的2-氨基-4-甲硫基丁腈水解制备2-氨基-4-甲硫基丁酸工艺进行了研究，其反应如式(I)所示。采用Alcaligenesfaecalis、Gordaon terrae、Rhodococcus sp.等来源的腈水解酶生物催化剂的生产效率仅为0.6-0.9kg蛋氨酸/kg_DCW/h，仍处于较低水平。

综上所述，在现有的腈水解酶参与的生物催化法制备蛋氨酸技术路线中，仍然存在关键酶腈水解酶水解反应生产效率较低的问题，限制了其在工业规模的应用。因此，通过基因组数据挖掘等方法开发高催化效率的腈水解酶，绿色高效地制备蛋氨酸具有重要的工业应用价值。

发明内容

本发明的目的在于提供一种腈水解酶及其突变体、编码它们的核酸分子、含有这些核酸分子的载体和细胞，以及它们的制备方法以及利用其作为催化剂，绿色高效水解制备蛋氨酸的应用，从而解决现有的腈水解酶催化合成蛋氨酸的技术存在的产品生产效率不高的问题。

本发明的发明人从德国微生物菌种保藏中心(DSMZ)的菌株保藏编号为DSM 21332的珊瑚希瓦氏菌(Shewanella corallii)中获得可以催化2-氨基-4-甲硫基丁腈水解制备2-氨基-4-甲硫基丁酸的腈水解酶ScNLE，其氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示，核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示；通过进一步对腈水解酶ScNLE进行分子手段的改造，得到一种将其第188位苯丙氨酸替换为丙氨酸的突变体ScNLE-F188A，其氨基酸序列如SEQ ID NO:6所示，核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示；与ScNLE相比，ScNLE-F188A的2-氨基-4-甲硫基丁酸的生产效率显著提高，达29.8kg_蛋氨酸/kg_DCW/h。

在第一方面，本发明提供一种腈水解酶ScNLE，其氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示，其可以催化2-氨基-4-甲硫基丁腈水解制备2-氨基-4-甲硫基丁酸。

本发明提供的上述腈水解酶ScNLE可以是天然、重组或合成的活性多肽，具体地，该活性多肽可以是天然纯化的产物、化学合成的产物，或是使用重组技术从原核宿主(例如大肠杆菌)或真核宿主(例如酵母、高等植物)中产生的产物。

在一些实施方案中，上述腈水解酶是通过将含有其编码基因的重组载体转化导入大肠杆菌表达宿主(例如E.coli BL21(DE3))构建的重组基因工程菌株，然后培养该菌株，并添加诱导剂诱导表达得到腈水解酶。

在第二方面，本发明提供一种编码上述腈水解酶的核酸分子，其核苷酸序列如SEQIDNO:1所示。

本发明提供的上述核酸分子通常可以通过使用PCR仪扩增或人工合成的方法获得。

在第三方面，本发明提供上述腈水解酶的突变体，其氨基酸序列如SEQ ID NO:6所示，与SEQ ID NO:2所示的氨基酸序列相比，第188位苯丙氨酸突变为丙氨酸，其在2-氨基-4-甲硫基丁酸的生产效率方面与上述腈水解酶相比有显著提高。

本发明提供的上述突变体可人工合成，也可以先合成其编码基因，再进行生物表达得到，如使用重组技术从原核生物(大肠杆菌)中表达获得。

在一些实施方案中，上述突变体是通过将含有其编码基因的重组载体转化进入大肠杆菌表达宿主(例如E.coli BL21(DE3))构建重组基因工程菌，然后培养该菌株，并添加诱导剂诱导表达得到突变体。

在第四方面，本发明提供一种编码上述突变体的核酸分子，其核苷酸序列如SEQID NO:5所示。

本发明提供的上述核酸分子通常可以通过使用PCR仪扩增或人工合成的方法获得。

第五方面，本发明提供一种重组载体，其包含上述任一所述的核酸分子。

在一些实施方案中，上述重组载体为pET-26b(+)-ScNLE或pET-26b(+)-ScNLE-F188A，分别是将编码上述腈水解酶的核酸分子或上述突变体的核酸分子替换pET-26b(+)的EcoRI和HindIII酶切位点间序列，其余序列保持不变得到的。

在第六方面，本发明提供一种重组细胞，其包含上述任一所述的重组载体。

在一些实施方案中，所述重组细胞经诱导后表达上述腈水解酶或突变体。

在一些实施方案中，所述重组细胞的构建方法包括如下：

将所述重组载体转化到表达宿主细胞中，经培养并添加诱导剂诱导表达，得到上述腈水解酶或突变体。

进一步地，所述重组载体为上述任一所述的重组载体，所述表达宿主细胞为本领域常规的宿主细胞，只要能满足重组载体可稳定地自行复制，并且其所携带的基因可被有效表达即可，可以为原核生物生物细胞或真核生物细胞，例如大肠杆菌、酵母等，优选大肠杆菌表达宿主E.coli BL21(DE3)。

在一些实施方案中，所述重组细胞为重组菌E.coli BL21(DE3)/pET-26b(+)-ScNLE和重组菌E.coli BL21(DE3)/pET-26b(+)-ScNLE-F188A，重组细胞可以是重组基因工程菌。重组基因工程菌表达腈水解酶或其突变体时所使用的培养基可以是本领域可以使重组基因工程菌生长并表达本发明的腈水解酶或其突变体的培养基，例如LB培养基。

培养方法和培养条件没有特殊要求，保证重组基因工程菌株正常生长即可，并在适当温度条件下诱导表达腈水解酶及其突变体。优选的培养方法为：将重组菌E.coli BL21(DE3)/pET-26b(+)-ScNLE或重组菌E.coli BL21(DE3)/pET-26b(+)-ScNLE-F188A接种至含有卡那霉素的LB液体培养基的试管中，37℃、220rpm培养12小时，按1-2％(v/v)的接种量转接至装有100mL含卡那霉素的LB液体培养基的500mL三角摇瓶中，置于37℃、220rpm培养，当培养液的OD₆₀₀达到0.6-0.8时，加入终浓度为100-500μM的异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)作为诱导剂，16℃条件下诱导16-24小时后，将培养液离心，收集菌体沉淀，使用生理盐水洗涤，获得重组细胞。

更具体地，上述重组细胞的构建方法，可以包含如下步骤：

(1)腈水解酶ScNLE的基因的扩增；

(2)重组表达质粒pET-26b(+)-ScNLE的构建；

(3)重组表达质粒pET-26b(+)-ScNLE-F188A的获得；

(4)重组表达质粒pET-26b(+)-ScNLE和pET-26b(+)-ScNLE-F188A转化进入宿主细胞；

(5)平板抗性培养基筛选得到阳性克隆菌株。

在第七方面，本发明提供一种腈水解酶或其突变体的制备方法，包括：

对上述任一所述的重组细胞进行培养并加入诱导剂诱导，得到培养物；

从所述培养物中分离上述腈水解酶或其突变体；

其中，对重组细胞进行培养并诱导的方法、将腈水解酶及其突变体从培养物中分离出来的方法均为本领域的常规方法。

在第八方面，本发明提供上述腈水解酶、上述核酸分子、上述突变体、上述任一所述的重组载体、上述任一所述的重组细胞和/或上述方法制备得到的腈水解酶或其突变体在制备2-氨基-4-甲硫基丁酸中的应用。

在第九方面，本发明提供一种2-氨基-4-甲硫基丁酸的制备方法，包括以下步骤：以上述腈水解酶、上述突变体、上述任一所述的重组细胞和/或上述方法制备得到的腈水解酶或其突变体作为催化剂，催化2-氨基-4-甲硫基丁腈进行水解反应，制备2-氨基-4-甲硫基丁酸。

在一些实施方案中，上述方法中，所述水解反应的温度为30-50℃，例如30℃、40℃、50℃，或这些数值中的任意二者之间的数值或范围，其中优选40℃；所述水解反应的pH为5-9，例如pH5、pH6、pH7、pH8、pH9，或这些数值中的任意二者之间的数值或范围，其中优选pH8；所述反应投料包括：2-氨基-4-甲硫基丁腈、氨；

2-氨基-4-甲硫基丁腈的终浓度为30-300mM，例如30mM、40mM、50mM、60mM、70mM、80mM、90mM、100mM、200mM、300mM，或这些数值中的任意二者之间的数值或范围，其中优选300mM；

氨的添加量为2-氨基-4-甲硫基丁酸理论产量的1.5-10倍当量，例如1.5、2、2.5、3、3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、8.5、9、9.5、10倍当量，优选3倍当量。

在一些实施方案中，上述任一所述的方法中，所述水解反应使用的缓冲液为本领域常规缓冲液，如Tris-HCl缓冲液，其浓度较佳为100mM。

在一些实施方案中，上述任一所述的方法中，包括用上述任一所述的重组细胞催化2-氨基-4-甲硫基丁腈进行水解反应，制备2-氨基-4-甲硫基丁酸；

具体地，可以以上述重组细胞的冻干细胞或冻干粉作为催化剂进行全细胞催化生产2-氨基-4-甲硫基丁酸，冻干细胞或冻干粉的用量为0.01-0.05g/g 2-氨基-4-甲硫基丁腈，可以为0.026g/g 2-氨基-4-甲硫基丁腈。其中，冻干粉是将上述任一所述的重组细胞进行破碎，获得细胞破碎液，再将细胞破碎液经冷冻干燥而得到的冻干酶粉，冻干细胞是将重组细胞不经破碎直接冻干得到的。

应当理解的是，本发明所述的腈水解酶ScNLE或其突变体ScNLE-F188A可以以工程菌全细胞形式使用，也可以是未经纯化的粗酶形式使用，也可以是部分纯化的或完全纯化的酶的形式使用。还可以利用本领域已知的固定化技术将本发明的腈水解酶ScNLE或其突变体ScNLE-F188A制备成固定化酶或固定化细胞形式的催化剂。

在一些实施方案中，上述任一所述的方法中，所述水解反应在搅拌或者振荡的环境下进行，例如在100-500rpm搅拌下反应。

本发明的有益效果如下：

本发明提供的腈水解酶能够高效催化2-氨基-4-甲硫基丁腈生成2-氨基-4-甲硫基丁酸，尤其是突变体ScNLE-F188A底物转化率达到99％，2-氨基-4-甲硫基丁酸的生产效率高达29.8kg_蛋氨酸/kg_DCW/h，对于绿色高效地制备蛋氨酸具有重要的工业应用价值。

具体实施方式

以下结合具体实施例，对本发明作进一步说明。应理解，以下实施例仅用于说明本发明而非用于限制本发明的范围。如非特殊说明，实施例中所用的技术手段均为本领域常规操作，或按照试剂盒及仪器设备厂商所建议的实验方法。实施例中使用的试剂和生物材料如无特殊说明均可从商业途径获得。

珊瑚希瓦氏菌(Shewanella corallii)来源于德国微生物菌种保藏中心(DSMZ)，菌株保藏编号为DSM 21332。

pET-26b(+)为Novagen公司产品，产品目录号为69862-3CN。

实施例1:来源于珊瑚希瓦氏菌(Shewanella corallii)DSM 21332的腈水解酶ScNLE的基因序列的获得

1、提取珊瑚希瓦氏菌(Shewanella corallii)DSM 21332的基因组DNA。

2、以珊瑚希瓦氏菌DSM 21332的基因组DNA为模板，以ScNLE-FP和ScNLE-RP为引物进行PCR扩增，得到含有腈水解酶基因的片段，其中，腈水解酶基因的核苷酸序列如SEQ IDNO:1所示，其编码的腈水解酶ScNLE的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。

ScNLE-FP：5’-CCGGAATTCATGTCAGTTAAATTCAAAGCA-3’(SEQ ID NO:3)；

ScNLE-RP：5’-CCCAAGCTTTTAACTGACTGATGCCGGTTC-3’(SEQ ID NO:4)。

实施例2：腈水解酶ScNLE表达菌株的构建

1、EcoRI和HindIII双酶切实施例1获得的含有腈水解酶基因的片段，得到基因片段；EcoRI和HindIII双酶切pET-26b(+)，得到载体片段；将基因片段和载体片段连接得到重组表达质粒，将其命名为pET26b(+)-ScNLE，将该质粒送测序，结果与预期一致。

2、将步骤1获得的重组表达质粒pET26b(+)-ScNLE通过化学转化的方式转入表达宿主E.coli BL21(DE3)中，涂布含有50μg/mL卡那霉素的LB固体培养基进行筛选，得到表达腈水解酶ScNLE的重组菌E.coli BL21(DE3)/pET-26b(+)-ScNLE。

实施例3：突变体ScNLE-F188A的基因序列的获得

以实施例2获得的重组表达质粒pET-26b(+)-ScNLE作为模板，以ScNLE-F188A-FP和ScNLE-F188A-RP为引物进行全质粒PCR，引入定点突变，得到突变体重组表达质粒pET26b(+)-ScNLE-F188A，其中，腈水解酶突变体的核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示，其编码的腈水解酶突变体ScNLE-F188A的氨基酸序列如SEQ ID NO:6所示。

ScNLE-F188A-FP：5’-GCTGCCTGGCCTTCTGCGAGCACCTACCCTCAA-3’(SEQ IDNO:7)；

ScNLE-F188A-RP：5’-TTGAGGGTAGGTGCTCGCAGAAGGCCAGGCAGC-3’(SEQ IDNO:8)。

实施例4：突变体ScNLE-F188A表达菌株的构建

将实施例3获得的突变体重组表达质粒pET26b(+)-ScNLE-F188A，通过化学转化的方式转入表达宿主E.coli BL21(DE3)中，涂布含有50μg/mL卡那霉素的LB固体培养基进行筛选，得到表达突变体ScNLE-F188A的重组菌E.coli BL21(DE3)/pET-26b(+)-ScNLE-F188A。

实施例5：酶的制备

分别将实施例2获得的重组菌E.coli BL21(DE3)/pET-26b(+)-ScNLE和实施例4获得的重组菌E.coli BL21(DE3)/pET-26b(+)-ScNLE-F188A接种至含有50μg/mL卡那霉素的LB试管培养基中，于37℃、220rpm培养12小时，之后按1％(v/v)的接种量转接至100mL含有50μg/mL卡那霉素的LB摇瓶培养基中，于37℃、220rpm培养至OD₆₀₀＝0.6-0.8，加入终浓度为300μM的诱导剂IPTG，于16℃诱导培养20小时，将诱导培养的菌液于9000rpm离心10分钟，收集菌体沉淀，使用生理盐水洗涤，得到静息细胞。将静息细胞直接冻干得到冻干细胞，或经超声破碎后冻干得到冻干粉，并于4℃保存。

实施例6：酶催化2-氨基-4-甲硫基丁酸的制备

将实施例5中制得的原始酶ScNLE和突变体酶ScNLE-F188A作为生物催化剂应用于2-氨基-4-甲硫基丁酸的制备反应。

200mL反应体系：300mM底物2-氨基-4-甲硫基丁腈，0.2g冻干细胞(相当于0.026g/g2-氨基-4-甲硫基丁腈)，以氨水形式流加终浓度为2-氨基-4-甲硫基丁酸理论产量3倍当量的氨，缓冲液为100mM Tris-HCl缓冲液，于40℃、pH 8.0条件下200rpm搅拌反应1.5小时。

反应结束后，取1mL反应液离心除去生物催化剂，取上清液经高效液相色谱分析，检测2-氨基-4-甲硫基丁酸的浓度。经计算，当采用原始酶ScNLE作为生物催化剂时，底物2-氨基-4-甲硫基丁腈转化率(转化率＝(反应物初始的量-反应物剩余的量)/反应物初始的量×100％)为5％，产物2-氨基-4-甲硫基丁酸的生产效率(生产效率＝反应生成的产物的量/(反应时间*催化剂的量))为1.5kg_蛋氨酸/kg_DCW/h，相比之下，采用突变体酶ScNLE-F188A作为生物催化剂时，底物2-氨基-4-甲硫基丁腈转化率达99％，产物2-氨基-4-甲硫基丁酸的生产效率达29.8kg_蛋氨酸/kg_DCW/h。

高效液相色谱检测方法为：

采用安捷伦高效液相色谱仪，Aglient ZORBAX SB-Aq色谱柱(规格4.6×150mm)；流动相：乙醇:水:三氟乙酸＝5:95:0.04(体积比)；流速：1.0mL/min；荧光检测器激发和发射波长分别为330nm和465nm；柱温：20℃；所有样品均经10000rpm离心，并经0.22μm有机滤膜过滤，上样量：10μL。

2-氨基-4-甲硫基丁腈标准品的出峰时间为8.9min，2-氨基-4-甲硫基丁酸标准品的出峰时间为3.1min。

反应液中2-氨基-4-甲硫基丁腈的出峰时间为8.9min，2-氨基-4-甲硫基丁酸的出峰时间为3.1min。

以上所述，仅为本发明较佳的具体实施方式，但本发明的保护范围并不局限于此，任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内，根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变，都应涵盖在本发明的保护范围之内。

序列

SEQ ID NO:1

ATGTCAGTTAAATTCAAAGCAGCCGTAGTACAAGCCGCTCCAGTGTTCATGGACTTAG

ACGCCTCAATCGACAAAGCTATCAAACTTATCGAAAAGGCATCTCAAGAAGGCGCAA

ATATAGTTGCGTTCTCCGAAACATGGTTTCCCGGATACCCATGGTGGATATGGTTGTCA

CCAACCGCTCACAATATTCAATACTTTCAGCGTTACCATGAAAACAGCTTAGTGGTTG

GTAGCGATCAGTTTCAGCGCCTGAGCGATGCTGCCCGCGAGAACAACATCTACCTCTC

GGTTGGAGCCAGTGAGCGCGACTATGGCTCACTCTATATTGCACAATTCTTATTTAGCA

ATACTGGCGAATTAATTCAGGCTCGCCGCAAGCTAAAACCTACACATATGGAGCGAAC

GGTTTTTGGAGATGGCGACGGTAGCGACTTCGGAGTATTTGAAACCGAGGTTGGACGT

ATCGGTCAACTTTGCTGCTGGGAACATCTTCAGCCGCTCAGTAAATACGCGATGTTTA

GCATGCATGAGCAGGTTCATATTGCTGCCTGGCCTTCTTTTAGCACCTACCCTCAAGCA

TACTCACTTGGACCACAAGCCAACCTGGCGGCTTCGAGTGTTTACGCAGTAGAAGGA

CAGTGTTTTGTTTTGGCACCCACAGCGATCGTCGATCAAGACATGTATGACGTGTTGG

TTGATAACGATCAAAAAGCAGCGCTGATAAAATTGGGAGGGGGCTACGCTCAAATATT

CGGCCCCGATGGACAACCCTTATGTGAACGGCTCCCAGAAAATGAAGAGGGGTTACT

ATTTGCCGAAATTGACCTTGGCGAAATAGCAATTGCCAAATCATTTATCGATCCAGTAG

GACATTACTCTCGCCCCGATGTGCTGCGCTTAATGATCAACAAAGCCCCTCAGCATCG

AACTGAGCCTATGTTCAATGTCGAAGTTGAAAGCATAGGTGAGCTCAGTGACGATGAT

ACAGAACCGGCATCAGTCAGTTAA

SEQ ID NO:2

MSVKFKAAVVQAAPVFMDLDASIDKAIKLIEKASQEGANIVAFSETWFPGYPWWIWLSP

TAHNIQYFQRYHENSLVVGSDQFQRLSDAARENNIYLSVGASERDYGSLYIAQFLFSNTG

ELIQARRKLKPTHMERTVFGDGDGSDFGVFETEVGRIGQLCCWEHLQPLSKYAMFSMHE

QVHIAAWPSFSTYPQAYSLGPQANLAASSVYAVEGQCFVLAPTAIVDQDMYDVLVDNDQ

KAALIKLGGGYAQIFGPDGQPLCERLPENEEGLLFAEIDLGEIAIAKSFIDPVGHYSRPDVL

RLMINKAPQHRTEPMFNVEVESIGELSDDDTEPASVS

SEQ ID NO:5

ATGTCAGTTAAATTCAAAGCAGCCGTAGTACAAGCCGCTCCAGTGTTCATGGACTTAG

ACGCCTCAATCGACAAAGCTATCAAACTTATCGAAAAGGCATCTCAAGAAGGCGCAA

ATATAGTTGCGTTCTCCGAAACATGGTTTCCCGGATACCCATGGTGGATATGGTTGTCA

CCAACCGCTCACAATATTCAATACTTTCAGCGTTACCATGAAAACAGCTTAGTGGTTG

GTAGCGATCAGTTTCAGCGCCTGAGCGATGCTGCCCGCGAGAACAACATCTACCTCTC

GGTTGGAGCCAGTGAGCGCGACTATGGCTCACTCTATATTGCACAATTCTTATTTAGCA

ATACTGGCGAATTAATTCAGGCTCGCCGCAAGCTAAAACCTACACATATGGAGCGAAC

GGTTTTTGGAGATGGCGACGGTAGCGACTTCGGAGTATTTGAAACCGAGGTTGGACGT

ATCGGTCAACTTTGCTGCTGGGAACATCTTCAGCCGCTCAGTAAATACGCGATGTTTA

GCATGCATGAGCAGGTTCATATTGCTGCCTGGCCTTCTGCGAGCACCTACCCTCAAGC

ATACTCACTTGGACCACAAGCCAACCTGGCGGCTTCGAGTGTTTACGCAGTAGAAGG

ACAGTGTTTTGTTTTGGCACCCACAGCGATCGTCGATCAAGACATGTATGACGTGTTG

GTTGATAACGATCAAAAAGCAGCGCTGATAAAATTGGGAGGGGGCTACGCTCAAATAT

TCGGCCCCGATGGACAACCCTTATGTGAACGGCTCCCAGAAAATGAAGAGGGGTTAC

TATTTGCCGAAATTGACCTTGGCGAAATAGCAATTGCCAAATCATTTATCGATCCAGTA

GGACATTACTCTCGCCCCGATGTGCTGCGCTTAATGATCAACAAAGCCCCTCAGCATC

GAACTGAGCCTATGTTCAATGTCGAAGTTGAAAGCATAGGTGAGCTCAGTGACGATGA

TACAGAACCGGCATCAGTCAGTTAA

SEQ ID NO:6

MSVKFKAAVVQAAPVFMDLDASIDKAIKLIEKASQEGANIVAFSETWFPGYPWWIWLSP

TAHNIQYFQRYHENSLVVGSDQFQRLSDAARENNIYLSVGASERDYGSLYIAQFLFSNTG

ELIQARRKLKPTHMERTVFGDGDGSDFGVFETEVGRIGQLCCWEHLQPLSKYAMFSMHE

QVHIAAWPSASTYPQAYSLGPQANLAASSVYAVEGQCFVLAPTAIVDQDMYDVLVDNDQ

KAALIKLGGGYAQIFGPDGQPLCERLPENEEGLLFAEIDLGEIAIAKSFIDPVGHYSRPDVL

RLMINKAPQHRTEPMFNVEVESIGELSDDDTEPASVS

Claims (10)

1.一种腈水解酶，其氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。

2.编码权利要求1所述的腈水解酶的核酸分子，其核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。

3.权利要求1所述的腈水解酶的突变体，其氨基酸序列如SEQ ID NO:6所示。

4.编码权利要求3所述的突变体的核酸分子，其核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示。

5.一种重组载体，其包含权利要求2或4所述的核酸分子。

6.一种重组细胞，其包含权利要求5所述的重组载体。

7.一种腈水解酶或其突变体的制备方法，其包括以下步骤：

1)对权利要求6所述的重组细胞进行培养，并诱导腈水解酶或其突变体表达；

2)从1)得到的培养物中分离权利要求1所述的腈水解酶或权利要求3所述的突变体。

8.权利要求1所述的腈水解酶、权利要求2所述的核酸分子、权利要求3所述的突变体、权利要求4所述的核酸分子、权利要求5所述的重组载体、权利要求6所述的重组细胞和/或权利要求7所述的方法制备得到的腈水解酶或其突变体在制备2-氨基-4-甲硫基丁酸中的应用。

9.一种2-氨基-4-甲硫基丁酸的制备方法，包括以下步骤：以权利要求1所述的腈水解酶、权利要求3所述的突变体、权利要求6所述的重组细胞和/或权利要求7所述的方法制备得到的腈水解酶或其突变体作为催化剂，催化2-氨基-4-甲硫基丁腈进行水解反应，制备2-氨基-4-甲硫基丁酸。

10.根据权利要求9所述的制备方法，其特征在于：所述水解反应的温度为30-50℃，pH为5-9，底物2-氨基-4-甲硫基丁腈的终浓度为30-300mM。