CN115266985B - 一种基于uhplc-qtof-ms的喉癌患者血清脂质组学检测方法 - Google Patents
一种基于uhplc-qtof-ms的喉癌患者血清脂质组学检测方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种基于UHPLC‑QTOF‑MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,该方法包括以下步骤:1)取样,采集志愿者血清;2)12种脂质标准品分析方法的建立;3)血清样品前处理及非靶向脂质组学检测;4)差异脂质的鉴定及统计学分析。本发明通过12种脂质标准品为探针以优化分析方法并利用该方法完成了喉癌患者血清中的脂质检测,从脂质组学的角度阐明了喉癌脂质代谢通路网络变化,筛选到了关键差异代谢物,为喉癌候选生物标志提供了新的可能。
Description
技术领域
本发明属于脂质组学研究领域,具体而言是一种基于超高效液相色谱-四极杆-飞行时间-质谱联用(UHPLC-QTOF-MS)技术对喉癌患者血清的脂质组学检测方法。
背景技术
喉癌是仅次于肺癌的第二大呼吸道肿瘤,其临床诊断主要包括病史和体格检查、临床常规化验、喉镜观察、组织活检以及临床成像等。近年来,在喉癌初步诊断中也会采用一些辅助性的肿瘤标志物如鳞状细胞癌相关性抗原,但其灵敏度差且不具备特异性,在肺癌和子宫颈癌等其他类型癌症中同样存在异常表达。脂质、氨基酸等在内的小分子代谢物类的生物标志物是最接近表型的生化指标,具有非入侵、灵敏的特点,近年来被广泛关注。由于晚期喉癌患者多次放化疗后免疫功能受损严重,喉癌切除手术后生活质量会严重降低,面临复发危险,所以挖掘新的生物标志物对于喉癌早期诊断、监测治疗反应和复发趋势是十分必要的。
脂质作为人体中重要的内源性代谢物之一,因其丰富的生物学功能而备受关注,脂质可以参与生物膜的构成和跨膜蛋白的功能形成,以及作为信号分子参与肿瘤的生长调控等,具有重要的生物学意义。脂质代谢在喉癌中具有一定的研究基础,但是已有的研究大多聚焦的是喉癌组织中脂质代谢相关酶和蛋白的表达,并且集中于脂肪酸代谢,针对其他脂类代谢如磷脂、鞘脂、甘油酯类的相关研究严重不足,机体整体脂质代谢谱的变化并不清楚。
脂质组学是代谢组学的一个重要分支,它是研究生物体、组织、细胞或体液中脂质的结构、功能及代谢途径的一门学科。利用脂质组学可以全面研究脂质的异常代谢与疾病之间的联系,进行高通量、整体性的脂质变化分析,找到与疾病相关的早期特征性生物标志物。
但脂质分析具有一定的挑战性,主要由于脂质种类繁多、结构具有复杂多样性。进行脂质组学检测时需要一步完成不同类别不同脂质的分析,也需要在有限的时间内完成脂质定性定量,这对于分析低含量、离子化程度低以及具有同分异构体的脂质而言是极具挑战的,需要不断进行分析方法的改进。
脂质组学检测中脂质的定性定量过程会产生大量多维的数据信息,其数据处理流程包括:自动化数据处理、数据的统计分析、信号通路及网络的分析和数学建模。脂质谱图数据处理过程通常包括:谱图筛选、质谱峰检测、校准、基线校正等,有许多常用的自动化处理软件,其中Metascope 4.0是bruker公司开发的一款处理非靶向代谢组学数据的商业化软件,能够进行大批量的LC-QTOF-MS数据处理,如质谱峰检测、校准、基线校正、谱图筛选等。其包含的Lipidblast数据库,是目前最全面的脂质数据库之一,有超过45000种脂质化合物的MS/MS图谱,可以实现脂质定性。为了获取更为直观、有深度的数据信息,还应进行可视化和生物统计分析。单变量分析和多变量分析相结合的策略有助于建立稳健、准确的模型帮助筛选差异代谢物。
发明内容
本发明提供一种基于UHPLC-QTOF-MS技术的喉癌患者血清的脂质组学检测方法,该方法为进行疾病脂质组学检测,建立喉癌与脂质异常代谢间的联系,筛选喉癌早期潜在的生物标志物提供了一定的参考意义。
本发明的目的是通过以下技术方案来实现的:
一种基于UHPLC-QTOF-MS技术的喉癌患者血清的脂质组学检测方法,其特征在于,该方法包括以下步骤:
步骤一:取样,获取志愿者血清:招募喉癌患者、喉良性肿瘤患者和健康人群,对志愿者进行筛选,采集所有受试者的空腹血液。将新鲜血液经预处理离心得到血清,分离与分装过程在冰上进行,所有样品通过液氮速冻后于超低温冰箱﹣80℃保存。
步骤二:针对12种脂质标准品建立分析方法:将12种脂质标准品作为探针进行液相色谱-质谱串联(LC-MS)分析方法优化,并完成方法学考察。
步骤三:血清样品前处理及非靶向脂质组学检测:对不同组别的所有入选志愿者血清进行样品前处理,并通过已建立的脂质分析方法,用UHPLC-QTOF-MS进行非靶向血清脂质组学检测:
步骤四:差异脂质的鉴定及统计学分析:进行多变量分析:建立主成分分析(PCA)分析模型,观察样本和质控样本的分布。建立正交偏最小二乘法判别分析(OPLS-DA)模型,通过置换分析观察模型的拟合程度,并筛选出VIP>1的变量。对样本中的代谢物的显著性进行单变量分析,结合多变量分析结果筛选出VIP>1,P<0.05的变量。对可能的差异脂质逐一完成定性、注释和生物学意义分析。
进一步地,步骤一中征集的志愿者分组包括三组:喉癌患者、喉良性肿瘤患者和健康人群。
进一步地,步骤二中12种脂质标准品作为探针进行LC-MS分析方法优化的具体步骤如下:
(1)质控(QC)样本前处理:QC样本是挑选喉癌患者、喉良性肿瘤患者和健康人群三类受试者各5例样品,每例样品吸取100μL进行混合,分别按照加标样品前处理流程和不加标前处理流程进行处理。
(2)配制脂质I级储备液、混合脂质标准储备液、混合内标溶液、脂质II级储备液与标曲工作液。
(3)利用脂质标准品溶液进行色谱柱类型、柱温、流速和流动相梯度条件优化以及质谱条件优化。
(4)LC-MS测定加标QC样品和不加标QC样品,完成检出限、定量限、线性范围、精密度、准确度和回收率的方法学考察。
进一步地,步骤(1)中QC样本为喉癌患者、喉良性肿瘤患者和健康人群三组志愿者的混合血清样本。
进一步地,步骤二中12种脂质标准品为:三肉豆蔻酸甘油酯(TAG 14:0/14:0/14:0)、1-油酰基-rac-甘油(MAG 18:1/0:0/0:0)、1,2-二油酰基-sn-甘油(DAG 18:1/18:1/0:0)、二氢神经鞘氨醇(SA d18:0)、N-硬脂酰-D-神经鞘磷脂(SM d18:1/18:0)、1,2-二(6Z-油酰基)-sn-甘油-3-磷酸胆碱(PC 18:1(6Z)/18:1(6Z))、1-棕榈酰-2-(9Z-油酰基)-sn甘油-3-磷酸胆碱(PC 16:0/18:1(9Z))、1-棕榈酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC 16:0/0:0)、1-葵酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC 19:0/0:0)、1-肉豆蔻酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱(LysoPC 14:0/0:0)、1-(9Z-油酰)-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC 18:1(9Z)/0:0)、1-油酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC 18:0/0:0)
进一步地,步骤(2)中12种脂质标准品I级储备液的配制溶剂为二氯甲烷-甲醇(2:1,v/v)混合溶液,所有标准品浓度均为1mg/mL。
进一步地,步骤(2)中混合内标溶液采用的是Avanti Polar Lipids公司开发的氘化标准混合物产品EquiSPLASHTM 该内标混合物是商业化的单个浓度为100μg/mL的13种氘化脂质内标的混合物(含15:0-18:1(d7)PC、18:1(d7)Lyso PC、15:0-18:1(d7)-15:0TAG、15:0-18:1(d7)DAG、18:1(d7)MAG、d18:1-18:1(d9)SM、15:0-18:1(d7)PE、18:1(d7)Lyso PE、15:0-18:1(d7)PG(钠盐)、15:0-18:1(d7)PI(铵盐)、15:0-18:1(d7)PS(钠盐)、18:1(d7)固醇酯、C15神经酰胺-d7),溶剂为甲醇溶液。
进一步地,步骤(2)中12种脂质标准品II级储备液与标曲工作液的配制溶剂为异丙醇溶液。
进一步地,步骤一及步骤三中有10例喉癌患者、10例喉良性肿瘤患者和10例健康患者入组。
进一步地,步骤三中血清样本前处理过程为:血清样品在4℃条件下解冻2h,将120μL异丙醇加至40μL血清中,涡旋样品后在室温下孵育10min,将样品放置﹣20℃下储存过夜,以改善蛋白质沉淀,然后于4℃,14000g离心20min。收集上清液100μL加入100μL乙腈:水(2:98,v/v)溶液将水含量调整为50%,涡旋60s,然后4℃,14000g离心10min后取上清进行仪器分析,所有前处理过程均在冰上操作。
进一步地,步骤三中非靶向脂质组学检测中色谱条件为:流动相A为乙腈/水(60:40,v/v)加10mM甲酸铵和0.1%甲酸,流动相B为异丙醇/乙腈(90:10,v/v)加10mM甲酸铵和0.1%甲酸。梯度时长为20min,流速为0.4mL/min。采用反相色谱柱Waters CSH C18色谱柱(2.1×100mm,1.7μm)进行分离,色谱柱温度为55℃。进样体积为2μL。
进一步地,步骤三中非靶向脂质组学检测中质谱条件为:采用配备了电喷雾离子源的Bruker impact II四极杆飞行时间质谱,正离子模式。碰撞气体:氩气。质谱参数设置如下:离子源温度220℃;喷雾电压,4500V;干燥气8L/min;雾化器气1.8Bar;碰撞能量为7eV,传输时间为80μs。在Auto MSn模式下进行二级碎片扫描,扫描质量范围50-1300Da,扫描频率为10Hz。质量精度由甲酸钠溶液校正。
进一步地,步骤四中差异脂质的鉴定及统计学分析过程中:利用SIMCA软件进行多变量分析,采用SPSS 22.0软件的非参数检验Mann-Whitney U分析对样本中的代谢物进行单变量分析。根据4.0分析软件对可能的差异脂质完成逐一定性及注释。
本发明的优点在于:
喉癌是仅次于肺癌的第二大呼吸道肿瘤,晚期喉癌患者多次放化疗后免疫功能受损严重,喉癌切除手术后生活质量会严重降低,面临复发危险。现有的生物标志物灵敏度、特异性不佳。脂质代谢在喉癌进展中具有重要的意义,本研究通过12种脂质标准品完成分析方法的优化并将其应用于脂质组学检测中。基于UHPLC-QTOF-MS技术利用脂质组学技术阐明了喉癌进展中脂质代谢的变化,揭示了脂质在喉癌发生发展中的生物学意义,挖掘喉癌早期潜在的生物标志物,以获取相关的中间信息,对于喉癌早期诊断、监测治疗反应和复发趋势是十分有意义。
附图说明
图1为正离子模式最佳分析条件下12种物质的总离子流图;
图2是喉癌、喉良性肿瘤及健康人群血清样品脂质分析的PCA分析图;
图3是喉癌、喉良性肿瘤及健康人群血清样品脂质分析OPLS-DA图;
图4是正离子模式下,不同色谱柱条件下脂质化合物总离子流图;
图5是正离子模式下,不同流速条件下脂质化合物总离子流图;
图6是正离子模式下,不同色谱柱柱温条件下脂质化合物总离子流图;
图7是正离子模式下,不同梯度条件下脂质化合物总离子流图。
具体实施方式
以下结合具体实施的方式对本发明的技术方案作进一步的说明。
实施例1:一种基于UHPLC-QTOF-MS技术的喉癌患者血清的脂质组学检测方法。
(1)仪器与试剂
仪器:高效液相色谱串联质谱仪,由美国Agilent公司1290高效液相色谱仪(包括G7129B自动进样器、G7120A二元溶剂泵、G7130A柱温箱)及AB SCIEX 5500三重四极杆质谱仪(配ESI离子源)组成,数据采集与处理软件为Analyst 1.5.1Software;高效液相色谱-四极杆飞行时间质谱仪,由美国Thermo Fisher Scientific公司Ultimate 3000UHPLC高效液相色谱仪(包括HPG-3400 SD泵、WPS-3000 SL自动取样器和TCC-3000SD柱温箱),质谱检测采用德国Bruker公司的impact II四极杆飞行时间质谱仪(配ESI源);微量移液枪(10、20、100、200、1000μL,德国Eppendorf公司);电子天平(ME104/02,瑞士Mettler公司);超声波清洗机(YM-100S,深圳方奥微电子有限公司);高速冷冻离心机(Heraeus Megafuge 8R,美国赛默飞世尔科技);小型涡旋振荡仪(Vortex-Genie2,美国Scientific Industry公司)。
试剂:氯化钠(纯度≥99.99%)、氢氧化钠(纯度≥98.0%)甲酸铵(纯度≥99.99%)和色谱级甲酸(纯度≥98.0%),购买自美国Sigma-Aldrich公司;色谱级二氯甲烷、乙腈、甲醇、异丙醇购买自德国Merck公司;甲酸铵标准品购买自美国Sigma-Aldrich公司和美国Advanti Polar Lipids公司;实验用水均为去离子水,由Millipore纯水仪制得。12种脂质标准品为:三肉豆蔻酸甘油酯(TAG(14:0/14:0/14:0),>99%,Sigma-Aldrich公司)、1-油酰基-rac-甘油(MAG(18:1)/0:0/0:0),>99%,Sigma-Aldrich公司)、1,2-二油酰基-sn-甘油(DAG(18:1/18:1/0:0),>99%,Sigma-Aldrich公司)、二氢神经鞘氨醇(SA(d18:0),>99%,Sigma-Aldrich公司)、N-硬脂酰-D-神经鞘磷脂(SM(d18:1/18:0),>99%,Sigma-Aldrich公司)、1,2-二(6Z-油酰基)-sn-甘油-3-磷酸胆碱(PC(18:1(6Z)/18:1(6Z)),>99%,Advanti Polar Lipids公司)、1-棕榈酰-2-(9Z-油酰基)-sn甘油-3-磷酸胆碱(PC(16:0/18:1(9Z)),>99%,Advanti Polar Lipids公司)、1-棕榈酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC(16:0/0:0),>99%,Sigma-Aldrich公司)、1-葵酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC(19:0/0:0),>99%,Advanti Polar Lipids公司)、1-肉豆蔻酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC(14:0/0:0),>99%,Advanti Polar Lipids公司)、1-(9Z-油酰)-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC(18:1(9Z)/0:0),>99%,Advanti Polar Lipids公司)、1-油酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱(Lyso PC(18:0/0:0),>99%,Advanti Polar Lipids公司)。
(2)12种脂质标准品分析仪器工作条件
12种脂质标准品的LC-MS/MS分析在Aglient 1290II系统和配备ESI源的AB SCIEX5500三重四极杆质谱仪上进行。
液相条件:流动相A为乙腈/水(60:40,v/v)加10mM甲酸铵和0.1%甲酸,流动相B为异丙醇/乙腈(90:10,v/v)加10mM甲酸铵和0.1%甲酸。梯度洗脱程序如下:0-2min,45%-60%B;2-4min,60%B;4-4.1min,60%-80%B;4.1-7min,80%-85%B;7-7.1min,85%-45%B;7.1-10min,45%B。流速为0.4mL/min。采用反相色谱柱Waters CSH C18色谱柱2.1×100mm,1.7μm)进行分离,色谱柱温度为55℃。进样体积为2μL。
质谱条件:为进行方法学验证采用三重四级杆质谱仪作为检测器。质谱检测模式;正离子模式,气帘气为25psi,离子源温度为450℃,离子化电压为5500V,碰撞气为7psi,雾化气55psi,干燥气为65psi。入口电压10V,碰撞单元出口电压10V。通过对12种脂质标准品进行Q1母离子扫描、子离子扫描、MRM扫描进行DP优化、CE优化,得到的12种脂质的MRM参数如下:
注:*为定量离子对
(3)标准工作溶液配制
①脂质I级储备液的配制:分别称取适量12种标准品,分别溶于二氯甲烷-甲醇(2:1,v/v)混合溶液中,制备脂质标准储备液,所有标准品浓度均为1mg/mL,保存于﹣20℃。
②混合脂质标准储备液的配制:分别取适量的12种脂质标准储备液,用异丙醇定容至10mL,配制成含有不同脂质标准品浓度的混合溶液,轻轻摇匀,超声5min,静置30min得到混合脂质标准储备溶液(含48μg/mL TAG(14:0/14:0/14:0)、400μg/mL MAG(18:1/0:0/0:0)、12.8μg/mL DAG(18:1/18:1/0:0)、32μg/mL SA(d18:0)、16μg/mL SM(d18:1/18:0)、160μg/mL PC(18:1(6Z)/18:1(6Z))、128μg/mL PC(16:0/18:1(9Z))、64μg/mL Lyso PC(16:0/0:0)、1.6μg/mL Lyso PC(19:0/0:0)、1.6μg/mLLyso PC(14:0/0:0)、16μg/mL Lyso PC(18:1(9Z)/0:0)、32μg/mL Lyso PC(18:0/0:0)),保存于﹣20℃。
③混合内标溶液采用的是Avanti Polar Lipids公司开发的氘化标准混合物产品,即EquiSPLASHTM 该内标混合物是商业化的单个浓度为100μg/mL的13种氘化脂质内标的混合物(含15:0-18:1(d7)PC、18:1(d7)Lyso PC、15:0-18:1(d7)-15:0TAG、15:0-18:1(d7)DAG、18:1(d7)MAG、d18:1-18:1(d9)SM、15:0-18:1(d7)PE、18:1(d7)LysoPE、15:0-18:1(d7)PG(钠盐)、15:0-18:1(d7)PI(铵盐)、15:0-18:1(d7)PS(钠盐)、18:1(d7)固醇酯、C15神经酰胺-d7),溶剂为甲醇溶液,其浓度已经过验证可以用作定量标准品,保存于﹣20℃。
④脂质II级储备液与标曲工作液的配制:分别吸取5mL、2.5mL、1.25mL储备液I,用异丙醇定容至10mL,配制成脂质II级储备液1、II级储备液2、II级储备液3。取0.5mL脂质II级储备液3,用异丙醇定容至10mL,配制为表1浓度8的标准工作溶液,对该浓度进行逐级稀释,即得到浓度1-浓度7的标曲工作溶液如下表:
表1标准曲线浓度表(ng/mL)
(4)QC样品前处理
QC样品是挑选喉癌患者、喉良性肿瘤患者和健康人群三类受试者各5例样品按相同体积混合而成,用于方法学评价。
不加标空白样品前处理流程:血清样品在4℃条件下解冻2h,取40μL血清于1.5mL离心管中,加入120μL异丙醇,加入16μL 100μg/mL混合内标溶液,涡旋60s,在室温下孵育10min后,将样品在﹣20℃下储存过夜,以改善蛋白质沉淀,然后于4℃,14 000g离心20min。收集上清液100μL,加入稀释剂3900μL(乙腈-水溶液=2:98,v/v),涡旋60s,然后4℃以14000g离心10min,取上清液在色谱瓶中进行仪器分析。
加标样品前处理流程:血清样品在4℃条件下解冻2h,取40μL血清于1.5mL离心管中,加入40μL异丙醇,80μL三种已知浓度的脂质II级储备液,16μL 100μg/mL混合内标溶液,涡旋60s,后续操作同上。
(5)样品测定
将(3)所得标准工作溶液和(4)所得的血清样品分别进行LC-MS/MS分析,在(2)条件下,标准工作溶液中目标物色谱总离子流图如图1所示。以各标准工作溶液中目标物与内标物的定量离子峰面积比为纵坐标,以各标准工作溶液中目标物的含量为横坐标制作标准工作曲线。
(6)方法学验证
根据最低级标准工作溶液,按照3倍信噪比计算该方法的检出限,该方法的线性范围、线性系数、检出限如表2所示。
表2 12种脂质标准品的检测限、最低定量限、标曲线性范围及线性方程
采用II级储备液1、II级储备液2、II级储备液3分别配制低、中、高3个浓度梯度的QC样品,每个浓度重复六个样品。单日内进样一遍,计算日内精密度,重复3天,计算日间精密度。12种脂质标准品的日内精密度、日间精密度和准确度见表3。
表3 12种脂质标准品的日内精密度、日间精密度和准确度
(7)脂质组学分析仪器工作条件
色谱条件:由于非靶向脂质组学检测过程中实际样品在10min内不能出峰完全,原梯度优化20min与10min分离效果同样较佳,因此选用20min的梯度1,即0~2min,40%~43%B;2~2.1min,50%B;2.1~12min,50%~54%B;12~12.1min,54%~70%B;12.1~18min,70%~99%B;18~18.1min,40%B。流动相、色谱柱、柱温、流速采用已建立的脂质分析方法,参照(2)。质谱条件如下:为获取更为广泛准确的定性信息采用飞行时间质谱。质谱测定模式:正离子模式。碰撞气体:氩气。质谱参数设置如下:离子源温度220℃;喷雾电压,4500V;干燥气8L/min;雾化器气1.8Bar;碰撞能量为7eV,传输时间为80μs。采用数据依赖采集方法(DDA,data dependence acquisition)进行二级碎片扫描获得代谢物的MS/MS信息,扫描质量范围50-1300Da,扫描频率为10Hz。质量精度由甲酸钠校正。
(8)脂质组学检测的样品前处理
选取10例喉癌患者、10例喉良性肿瘤患者和10例健康受试者为入组志愿者,将其血清样品在4℃条件下解冻2h,取40μL血清于1.5mL离心管中,加入120μL异丙醇,加入16μL100μg/mL混合内标溶液,涡旋60s,在室温下孵育10min后,将样品在﹣20℃下储存过夜,以改善蛋白质沉淀,然后于4℃,14 000g离心20min。收集上清液100μL,加入稀释剂3900μL(乙腈-水溶液=2:98,v/v),涡旋60s,然后4℃以14 000g离心10min,取上清液在色谱瓶中进行仪器分析。
(9)统计分析
获取所有样本非靶向脂质组学原始数据后,将每个样本的数据上传到4.0(Bruker,德国),软件根据特征峰信息及二级谱数据进行搜库(lipidblast数据库)及碎片匹配,完成定性。将所有鉴定到的脂质原始峰面积导出到Microsoft Excel,得到峰表。对峰表采用R语言stattarget包对数据进行正态检验、缺失值补充和数据校正,根据校正后的峰表进行统计学分析。经预处理后的数据矩阵导入SIMCA-P 14.0,进行多变量统计分析。通过PCA对组间分离度进行观察,由图2可以看出QC样本聚集较好,因此批次间系统稳定性较好。健康组和喉癌组、喉良性肿瘤组间分类趋势明显,说明其中一定有能够对组别进行区分的脂质标志物。由图3可以看出,癌症组与健康组、良性肿瘤组与健康组、癌症组和良性肿瘤组的OPLS-DA模型预测能力非常好;200次置换检验的结果表明所建立的三个OPLS-DA模型不存在过拟合,模型可靠。采用SPSS 22.0软件进行单变量分析,采用非参数检验(MannWhitney U检验),根据显著性差异筛选出满足P<0.05的变量,单变量与多变量相结合的分析能够有效筛选出差异性脂质,共筛选出57种满足VIP>1且P<0.05的差异性脂质,见表4。
差异性脂质的代谢变化主要聚焦磷脂酰胆碱(PC)、溶血磷脂酰胆碱(LPC)和鞘磷脂(SM)代谢。磷脂酶A2(PLA2)、溶血磷脂酰胆碱酰基转移酶(LPCAT)可能是喉癌脂质代谢调控的关键酶,其高表达会促进喉癌的发生发展。差异性脂质中,SM 42:2_2O和SM 42:3_2O在三组人群间均存在显著性差异,其浓度水平与疾病发展具有相关性,可以作为喉癌早期诊断的潜在生物标志物。
以上对本发明具体实施方式的描述并不限制本发明,本领域技术人员可以根据本发明作出各种改变或变形,只要不脱离本发明的精神,均应属于本发明所附权利要求的范围。
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实施例2:色谱柱的选择实验
本研究利用混合脂质标准溶液进行色谱条件的优化:主要对BEH C18、CSH C18和HSS T3三种不同色谱柱进行比较。在正离子模式下的总离子流色谱图显示(图4),对比脂质标准品的峰响应和分离度,可以看出CSH C18色谱柱分离效果稍好,且色谱柱材料适合甲酸氨水体系,与本研究使用的流动相体系较为一致,因此选择最适色谱柱为CSH C18(2.1×100mm,1.7μm)。
实施例3:流速的选择实验
流速对化合物的保留属性和色谱柱的柱效的变化有一定的影响。本实验在相同洗脱条件的前提下,以出峰时间和色谱峰形为指标,考察三种流速(0.26mL/min,0.3mL/min,0.4mL/min)对LC-MS/MS分析脂质的影响。在正离子模式下的总离子流色谱图显示(图5),流速升高至0.4mL/min时,整个出峰时间缩短了约0.5min。由此说明,提高流速,可以加快化合物的出峰时间而缩短分析时间,减少流动相的使用,节约分析成本。当流速为0.5mL/min时柱压会超出仪器最高耐压值,色谱柱的柱效会受影响,故没有列入进行对比。因此综合考虑,将色谱柱的流速设为0.4mL/min。
实施例4:色谱柱柱温的选择实验
温度会对化合物的保留时间和选择性产生影响,随着柱温的升高,化合物出峰提前,而色谱峰半峰宽会变窄,峰高变高,而对定量产生影响。因此,需要实际考察哪种影响对脂质化合物的保留占主导地位,故比较了45℃、50℃和55℃条件下脂质响应所受的影响。结果表明(图6),55℃条件下,色谱柱对物质的选择性更好,分离度有所改善,且出峰提前,峰响应增强。
实施例5:流动相梯度的选择实验
流动相梯度的变化能引起流动相极性的变化,从而调节样品中各组分在流动相中的分配系数,以达到各组分良好的洗脱和分离的目的。本实验以液相色谱的总离子流图为指标,对三种梯度洗脱条件下LC-MS/MS的检测能力的影响进行考察。梯度1:0~2min,40%~43%B;2~2.1min,50%B;2.1~12min,50%~54%B;12~12.1min,54%~70%B;12.1~18min,70%~99%B;18~18.1min,40%B;18.1~20min,40%B。梯度2:0~4min,60%B;4~4.1min,60%~80%B;4.1~8min,80%~90%B;8~8.1min,90%~60%B;8.1~10min,60%B。梯度3:0~2min,45%~60%B;2~4min,60%B;4~4.1min,60%~80%B;4.1~7min,80%~85%B;7~7.1min,85%~45%B;7.1~10min,45%B。
在正离子模式下的总离子流色谱图显示(图7),脂质化合物在梯度1和3下能够得到更好的分离。但是梯度1需要20min,而梯度3需要10min,为了提高分析效率,综合考虑,选择梯度3进行下一步优化。
Claims (8)
1.一种基于UHPLC-QTOF-MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,其特征在于:包括以下具体过程:
步骤一:取样,获取志愿者血清:招募喉癌患者、喉良性肿瘤患者和健康人群,对志愿者进行筛选,采集所有受试者的空腹血液;将新鲜血液经预处理离心得到血清,分离与分装过程在冰上进行,所有样品通过液氮速冻后于超低温冰箱﹣80 ℃保存;
步骤二:针对 12 种脂质标准品建立分析方法:将 12 种脂质标准品作为探针进行高效液相色谱-三重四级杆质谱LC-MS分析方法优化,并完成方法学考察;12 种脂质标准品作为探针进行 LC-MS 分析方法优化的具体步骤如下:
(1)质控QC样本前处理: QC样本是挑选喉癌患者、喉良性肿瘤患者和健康人群三类受试者各 5 例样品,每例样品吸取100μL进行混合,分别按照加标样品前处理流程和不加标前处理流程进行处理;
(2)配制12种脂质标准品 I 级储备液、混合脂质标准储备液、混合内标溶液、12种脂质标准品II 级储备液与标曲工作液;
(3)利用脂质标准品溶液进行色谱柱类型、柱温、流速和流动相梯度条件优化以及质谱条件优化;
(4) LC-MS测定加标QC样品和不加标QC样品,完成检出限、定量限、线性范围、精密度、准确度和回收率的方法学考察;
步骤三:血清样品前处理及非靶向脂质组学检测:对不同组别的所有入选志愿者血清进行样品前处理,并通过步骤二已建立的分析方法,用高效液相色谱-飞行时间质谱UHPLC-QTOF-MS平台进行更为广泛的非靶向血清脂质组学检测;
步骤四:差异脂质的鉴定及统计学分析:进行多变量分析:建立主成分分析PCA分析模型,观察样本和质控样本的分布;建立正交偏最小二乘法判别分析OPLS-DA模型,通过置换分析观察模型的拟合程度,并筛选出变量重要性投影VIP>1的变量;对样本中的代谢物的显著性进行单变量分析,结合多变量分析结果筛选出 VIP>1,P<0.05 的变量;对可能的差异脂质完成定性、注释和生物学意义分析。
2.根据权利要求1所述的基于UHPLC-QTOF-MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,其特征在于,征集的志愿者分组包括三组:喉癌患者、喉良性肿瘤患者和健康人群。
3.根据权利要求1所述的基于UHPLC-QTOF-MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,其特征在于,12种脂质标准品I级储备液的配制溶剂为二氯甲烷-甲醇体积比2:1混合溶液,所有标准品浓度均为 1 mg/mL;12种脂质标准品II 级储备液与标曲工作液的配制溶剂为异丙醇溶液。
4.根据权利要求1所述的基于UHPLC-QTOF-MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,其特征在于,混合内标溶液采用的是 Avanti Polar Lipids 公司开发的氘化标准混合物产品EquiSPLASH™ LIPIDOMIX®。
5.根据权利要求1所述的基于UHPLC-QTOF-MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,其特征在于,步骤一中10例喉癌患者、10例喉良性肿瘤患者和10例健康患者入组。
6.根据权利要求1所述的基于UHPLC-QTOF-MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,其特征在于,血清样本前处理过程为:血清样品在4 ℃条件下解冻2 h,将120 μL异丙醇加至40μL 血清中,涡旋样品后在室温下孵育10 min,将样品放置﹣20 ℃ 下储存过夜,以改善蛋白质沉淀,然后于4 ℃,14000 g 离心20 min;收集上清液100 μL 加入100 μL 2:98, v/v的乙腈/水溶液将水含量调整为50%,涡旋60 s,然后4 ℃,14000 g 离心10 min后取上清进行仪器分析,所有前处理过程均在冰上操作。
7.根据权利要求1所述的基于UHPLC-QTOF-MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,其特征在于,
非靶向脂质组学检测中色谱条件为:流动相 A 为60:40,v/v的乙腈/水、加 10 mM 甲酸铵和 0.1%甲酸,流动相 B 为90:10, v/v的异丙醇/乙腈、加 10 mM 甲酸铵和 0.1%甲酸;梯度时长为20 min,流速为 0.4 mL/min;采用规格2.1×100 mm,1.7μm的反相色谱柱Waters CSH C18 色谱柱,进行分离,色谱柱温度为 55 ˚C,进样体积为 2μL;
非靶向脂质组学检测中质谱条件为:采用配备了电喷雾离子源的 Bruker impact II四极杆飞行时间质谱,正离子模式;碰撞气体:氩气;质谱参数设置如下:离子源温度 220℃;喷雾电压,4500 V;干燥气 8 L/min;雾化器气 1.8 Bar;碰撞能量为 7 eV,传输时间为80 μs;在 Auto MSn 模式下进行二级碎片扫描,扫描质量范围 50-1300 Da,扫描频率为10Hz;质量精度由甲酸钠溶液校正。
8.根据权利要求1所述的基于UHPLC-QTOF-MS的喉癌患者血清脂质组学检测方法,其特征在于,差异脂质的鉴定及统计学分析过程中:利用SIMCA软件进行多变量分析,采用 SPSS22.0 软件的非参数检验 Mann-Whitney U 分析对样本中的代谢物进行单变量分析,根据Metaboscape® 4.0 分析软件对可能的差异脂质完成定性及注释。
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