CN115247175A - 构建setdb1基因突变的表观遗传失调模型猪核移植供体细胞的基因编辑系统及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了构建SETDB1基因突变的表观遗传失调模型猪核移植供体细胞的基因编辑系统及其应用。本发明提供了SEQ ID NO:16所示SETDB1‑gRNA1、SEQ ID NO:17所示SETDB1‑gRNA4和NCN蛋白在制备试剂盒中的应用。本发明还提供了制备重组细胞的方法:将SETDB1‑gRNA1、SETDB1‑gRNA4和NCN蛋白共转染猪细胞,得到重组细胞。所述重组细胞为SETDB1基因发生突变的重组细胞。试剂盒的用途为:制备重组细胞;制备表观遗传失调模型猪;制备表观遗传失调细胞模型或表观遗传失调组织模型或表观遗传失调器官模型。本发明对于表观遗传失调相关疾病药物的研发及揭示该类疾病的发病机制具有重大应用价值。

Description

构建SETDB1基因突变的表观遗传失调模型猪核移植供体细胞 的基因编辑系统及其应用
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体属于基因编辑技术领域,更具体涉及构建SETDB1基因突变的表观遗传失调模型猪核移植供体细胞的基因编辑系统及其应用。
背景技术
基因的表观修饰是生物调控基因表达的一种重要手段,其主要包括DNA的表观修饰和组蛋白的表观修饰。在人类疾病中,除了部分由于单基因缺陷造成的遗传性疾病,大部分疾病的发生都离不开基因的表观遗传调控,例如常见的癌症,心血管疾病和精神类疾病等。
组蛋白甲基转移酶SETDB1主要包含三个结构域:N端两个串联的Tudor结构域、MBD结构域和C端保守的SET结构域。一方面,SETDB1能够通过其C端SET结构域催化组蛋白H3上第9位赖氨酸残基发生一甲基化、二甲基化或三甲基化修饰,调控染色质开放程度和异染色质的形成,从而抑制基因的表达;另一方面,SETDB1能够通过其N端MBD结构域与DNA甲基转移酶DNMT3A的PHD结构域结合,并定位于基因的启动子区域,从而协同发挥DNA甲基化修饰的转录抑制作用;此外,SETDB1还能够催化非组蛋白发生甲基化修饰从而进行基因转录活性的调控。因此,SETDB1基因是影响生物表观遗传调控的重要基因,敲除SETDB1基因将能够造成生物体的表观遗传失调。
为了研究表观遗传调控对人类各种疾病发生发展的影响,并进行相应药物的研发,有必要建立表观遗传失调的动物模型来进行研究。目前常用的动物模型为小鼠模型,然而小鼠不论从体型、器官大小、生理、病理等方面都与人相差巨大,不能真实地模拟人类正常的生理、病理状态。而猪作为大动物,其体型大小和生理功能与人类近似,易于大规模繁殖饲养,而且在伦理道德及动物保护等方面要求较低,是人类理想的模型动物。
基因编辑是近年来不断取得重大发展的一种生物技术,其包括从基于同源重组的基因编辑到基于核酸酶的ZFN、TALEN、CRISPR/Cas9等编辑技术,其中CRISPR/Cas9技术是当前最先进的基因编辑技术。目前,基因编辑技术被越来越多地应用到动物模型的制作上。
发明内容
本发明的目的是提供构建SETDB1基因突变的表观遗传失调模型猪核移植供体细胞的基因编辑系统及其应用。
本发明提供了SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白在制备试剂盒中的应用。
本发明还提供了SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和PRONCN蛋白在制备试剂盒中的应用。
本发明还提供了SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和特异质粒在制备试剂盒中的应用。
本发明提供了一种制备重组细胞的方法,包括如下步骤:将SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白共转染猪细胞,得到重组细胞。
所述共转染具体采用电击转染的方式。
电击转染的参数设置具体可为:1450V、10ms、3pulse。
所述共转染具体可采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与NeonTM transfection system电转仪。
本发明提供了一种试剂盒,包括SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白。
本发明还提供了一种试剂盒,包括SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和PRONCN蛋白。
本发明还提供了一种试剂盒,包括SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和特异质粒。
以上任一所述试剂盒还包括猪细胞。
以上任一所述试剂盒的用途为如下(a)或(b)或(c):(a)制备重组细胞;(b)制备表观遗传失调模型猪;(c)制备表观遗传失调细胞模型或表观遗传失调组织模型或表观遗传失调器官模型。
SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白的配比依次为:0.8-1.2μg SETDB1-gRNA1:0.8-1.2μg SETDB1-gRNA4:3-5μg NCN蛋白。
SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白的配比依次为:1μg SETDB1-gRNA1:1μgSETDB1-gRNA4:4μg NCN蛋白。
猪细胞、SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白的配比依次为:10万个猪细胞:0.8-1.2μg SETDB1-gRNA1:0.8-1.2μg SETDB1-gRNA4:3-5μg NCN蛋白。
猪细胞、SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白的配比依次为:10万个猪细胞:1μg SETDB1-gRNA1:1μg SETDB1-gRNA4:4μg NCN蛋白。
以上任一所述SETDB1-gRNA1为sgRNA,其靶序列结合区如SEQ ID NO:16中第3-22位核苷酸所示。
具体的,所述SETDB1-gRNA1如SEQ ID NO:16所示。
具体的,所述SETDB1-gRNA1如SEQ ID NO:10所示。
以上任一所述SETDB1-gRNA4为sgRNA,其靶序列结合区如SEQ ID NO:17中第3-22位核苷酸所示。
具体的,所述SETDB1-gRNA4如SEQ ID NO:17所示。
具体的,所述SETDB1-gRNA4如SEQ ID NO:13所示。
以上任一所述NCN蛋白为Cas9蛋白或具有Cas9蛋白的融合蛋白。
具体的,所述NCN蛋白如SEQ ID NO:3所示。
以上任一所述猪细胞为猪成纤维细胞。
以上任一所述猪细胞为猪原代成纤维细胞。
以上任一所述猪细胞为获自初生猪的猪原代成纤维细胞。
所述NCN蛋白的制备方法包括如下步骤:
(1)将质粒pKG-GE4导入大肠杆菌BL21(DE3),得到重组菌;
(2)采用液体培养基30℃培养所述重组菌,然后加入IPTG并进行25℃诱导培养,然后收集菌体;
(3)将收集的菌体进行菌体破碎,收集粗蛋白溶液;
(4)采用亲和层析从所述粗蛋白溶液中纯化具有His6标签的融合蛋白;
(5)采用具有His6标签的肠激酶酶切具有His6标签的融合蛋白,然后采用Ni-NTA树脂去除具有His6标签的蛋白,得到纯化的NCN蛋白;
质粒pKG-GE4中具有SEQ ID NO:1中第5209-9852位核苷酸所示的融合基因。
所述NCN蛋白的制备方法具体包括如下步骤:
(1)将质粒pKG-GE4导入大肠杆菌BL21(DE3),得到重组菌。
(2)将步骤(1)得到的重组菌接种至含氨苄青霉素的液体LB培养基,振荡培养;
(3)将步骤(2)得到的菌液接种至液体LB培养基,30℃、230rpm振荡培养至OD600nm值=1.0,然后加入IPTG并使其在体系中的浓度为0.5mM,然后25℃、230rpm振荡培养12小时,然后离心收集菌体;
(4)取步骤(3)得到的菌体,用PBS缓冲液洗涤;
(5)取步骤(4)得到的菌体,加入粗提缓冲液并悬浮菌体,然后进行菌体破碎,然后离心收集上清液,采用0.22μm孔径滤膜过滤,收集滤液;
(6)采用亲和层析从步骤(5)得到的滤液中纯化具有His6标签的融合蛋白(SEQ IDNO:2所示的融合蛋白);
(7)取步骤(6)收集的过柱后溶液,使用超滤管浓缩,然后用25mM Tris-HCl(pH8.0)稀释;
(8)将具有His6标签的重组牛肠激酶加入到步骤(7)得到的溶液中,酶切;
(9)将完成步骤(8)的溶液与Ni-NTA树脂混匀,孵育,然后离心收集上清液;
(10)取步骤(9)得到的上清液,使用超滤管浓缩,然后加入酶贮存液中,即为NCN蛋白溶液。
采用亲和层析从步骤(5)得到的滤液中纯化具有His6标签的融合蛋白的具体方法如下:
首先采用5个柱体积的平衡液平衡Ni-NTA琼脂糖柱(流速为1ml/min);然后上样50ml步骤(5)得到的滤液(流速为0.5-1ml/min);然后用5个柱体积的平衡液洗涤柱子(流速为1ml/min);然后用5个柱体积的缓冲液洗涤柱子(流速为1ml/min),以去除杂蛋白;然后用10个柱体积的洗脱液以0.5-1ml/min的流速洗脱,收集过柱后溶液(90-100ml)。
以上任一所述PRONCN蛋白自上游至下游依次包括如下元件:信号肽、分子伴侣蛋白、蛋白标签、蛋白酶酶切位点、核定位信号、Cas9蛋白、核定位信号。
所述信号肽的功能为促进蛋白分泌表达。所述信号肽可选自大肠杆菌碱性磷酸酶(phoA)信号肽、金黄色葡萄球菌蛋白A信号肽、大肠杆菌外膜蛋白(ompa)信号肽或任何其他原核基因的信号肽,优选为碱性磷酸酶信号肽(phoA signal peptide)。碱性磷酸酶信号肽用来引导目的蛋白分泌表达至细菌周质腔中,从而与细菌胞内蛋白分离,且分泌到细菌周质腔中的目的蛋白为可溶性表达,可被细菌周质腔中的信号肽酶裂解。
所述分子伴侣蛋白的功能为增加蛋白的可溶性。所述分子伴侣可为任何帮助形成二硫键的蛋白,优选为硫氧还原蛋白(TrxA蛋白)。硫氧还原蛋白,其能作为分子伴侣帮助所共表达的目的蛋白(例如Cas9蛋白)形成二硫键,提高蛋白的稳定性、折叠的正确性,增加目的蛋白的溶解性及活性。
所述蛋白标签的功能为用于蛋白纯化。所述标签可为His标签(His-Tag,His6蛋白标签)、GST标签、Flag标签、HA标签、c-Myc标签或其他任何蛋白标签,进一步优选为His标签。His标签能与Ni柱结合,可以通过一步法Ni柱亲和层析纯化目的蛋白,可极大地简化目的蛋白的纯化流程。
所述蛋白酶酶切位点的功能为纯化后用于切除非功能区段,以释放天然形式Cas9蛋白。所述蛋白酶可选自肠激酶(Enterokinase)、因子Xa(Factor Xa)、凝血酶(Thrombin)、TEV蛋白酶(TEV protease)、HRV 3C蛋白酶(HRV 3C protease)、WELQut蛋白酶或任何其他内切蛋白酶,进一步优选为肠激酶。EK为肠激酶酶切位点,便于使用肠激酶切除所融合的TrxA-His区段,得到天然形式的Cas9蛋白。本申请使用带His标签的商品肠激酶酶切融合蛋白后,可通过一次亲和层析除去TrxA-His区段及带His标签的肠激酶,得到天然形式的Cas9蛋白,避免了多次纯化透析对目的蛋白的伤害和损耗。
所述核定位信号可为任何核定位信号,优选为SV40核定位信号和/或nucleoplasmin核定位信号。NLS为核定位信号,在Cas9的N端及C端分别设计了一个NLS位点,使Cas9能更有效地进入细胞核进行基因编辑。
所述Cas9蛋白可为saCas9或spCas9,优选为spCas9蛋白。
PRONCN蛋白具体如SEQ ID NO:2所示。
以上任一所述特异质粒自上游至下游依次包括如下元件:启动子、操纵子、核糖体结合位点、PRONCN蛋白的编码基因、终止子。
所述启动子具体可为T7启动子。T7启动子为原核表达强启动子,能高效驱动外源基因的表达。
所述操纵子具体可为Lac操纵子。Lac操纵子为乳糖诱导表达的调控元件,可在细菌生长至一定数量后,再用IPTG在低温下诱导目的蛋白的表达,可避免目的蛋白过早表达对宿主菌生长的影响,低温下诱导表达也显著提高所表达的目的蛋白的可溶性。
所述核糖体结合位点是蛋白翻译时的核糖体结合位点,对蛋白质的翻译是必要的。
所述终止子具体可为T7终止子。T7终止子可在目的基因的末端有效终止基因转录,避免目的基因之外的其他下游序列得到转录和翻译。
对于spCas9蛋白的密码子,本申请对其密码子进行了优化,使之完全适应本申请所选用的大肠杆菌高效表达菌株E.coli BL21(DE3)的密码子偏好,从而提高Cas9蛋白的表达水平。
T7启动子如SEQ ID NO:1中第5121-5139位核苷酸所示。
Lac操纵子如SEQ ID NO:1中第5140-5164位核苷酸所示。
核糖体结合位点如SEQ ID NO:1中第5178-5201位核苷酸所示。
碱性磷酸酶信号肽的编码序列如SEQ ID NO:1中第5209-5271位核苷酸所示。
TrxA蛋白的编码序列如SEQ ID NO:1中第5272-5598位核苷酸所示。
His-Tag的编码序列如SEQ ID NO:1中第5620-5637位核苷酸所示。
肠激酶酶切位点的编码序列如SEQ ID NO:1中第5638-5652位核苷酸所示。
核定位信号的编码序列如SEQ ID NO:1中第5656-5670位核苷酸所示。
spCas9蛋白的编码序列如SEQ ID NO:1中第5701-9801位核苷酸所示。
核定位信号的编码序列如SEQ ID NO:1中第9802-9849位核苷酸所示。
T7终止子如SEQ ID NO:1中第9902-9949位核苷酸。
具体的,所述特异质粒为质粒pKG-GE4。
质粒pKG-GE4中具有SEQ ID NO:1中第5121-9949位核苷酸所示的DNA分子。
具体的,以上任一所述质粒pKG-GE4如SEQ ID NO:1所示。
本发明还保护以上任一所述方法制备得到的重组细胞。
所述重组细胞为SETDB1基因发生突变的重组细胞。
所述重组细胞具体可为表1中杂合型、双等位基因相同突变型或双等位基因不同突变型的各个单细胞克隆。
本发明还保护所述重组细胞在制备表观遗传失调模型猪中的应用。
将所述重组细胞作为核移植供体细胞进行体细胞克隆,可以得到克隆猪,即为表观遗传失调模型猪。
本发明还保护利用所述重组细胞制备的模型猪的猪组织,即表观遗传失调组织模型。
本发明还保护利用所述重组细胞制备的模型猪的猪器官,即表观遗传失调器官模型。
本发明还保护利用所述重组细胞制备的模型猪的猪细胞,即表观遗传失调细胞模型。
本发明还保护所述重组细胞、所述表观遗传失调组织模型、所述表观遗传失调器官模型、所述表观遗传失调细胞模型或者所述表观遗传失调模型猪的应用,为如下(d1)或(d2)或(d3)或(d4):
(d1)筛选治疗表观遗传失调相关疾病的药物;
(d2)进行表观遗传失调相关疾病药物的药效评价;
(d3)进行表观遗传失调相关疾病的基因治疗和/或细胞治疗的疗效评价;
(d4)研究表观遗传失调相关疾病的发病机制。
以上任一所述猪具体可为从江香猪。
以上任一所述猪具体可为初生从江香猪。
以上任一所述表观遗传失调是由SETDB1基因突变引起的。
猪SETDB1基因信息:编码组蛋白赖氨酸甲基转移酶SET结构域分支型1;位于4号染色体;Gene ID为100157920,Sus scrofa。
猪SETDB1基因编码的氨基酸序列如SEQ ID NO:8所示。
猪SETDB1基因具有SEQ ID NO:9所示的DNA区段。
以上任一所述突变为一个或多个核苷酸的缺失和/或插入和/或替换。
以上任一所述突变为一个或多个核苷酸的缺失。
以上任一所述突变为一个或多个核苷酸的插入。
以上任一所述突变为一个或多个核苷酸的缺失和插入。
与现有技术相比,本发明至少具有如下有益效果:
(1)本发明研究对象(猪)比其他动物(大小鼠、灵长类)具有更好的应用性。
大小鼠等啮齿类动物不论从体型、器官大小、生理、病理等方面都与人相差巨大,无法真实地模拟人类正常的生理、病理状态。研究表明,95%以上在大小鼠中验证有效的药物在人类临床试验中是无效的。就大动物而言,灵长类是与人亲缘关系最近的动物,但其体型小、性成熟晚(6-7岁开始交配),且为单胎动物,群体扩繁速度极慢,饲养成本很高。另外,灵长类动物克隆效率低、难度大、成本高。
而猪作为模型动物就没有上述缺点,猪是除灵长类外与人亲缘关系最近的动物,其体型、体重、器官大小等与人相近,在解剖学、生理学、免疫学、营养代谢、疾病发病机制等方面与人类极为相似。同时,猪的性成熟早(4-6个月),繁殖力高,一胎多仔,在2-3年内即可形成一个较大群体。另外,猪的克隆技术非常成熟,克隆及饲养成本也较灵长类低得多。因此猪是非常适合作为人类疾病模型的动物。
(2)本发明所构建的载体,使用了能够高效表达目的蛋白的强启动子T7-lac来进行目的蛋白的表达,用细菌周质蛋白碱性磷酸酶(phoA)的信号肽来引导目的蛋白分泌表达至细菌周质腔中,从而与细菌胞内蛋白分离,且分泌到细菌周质腔中的目的蛋白为可溶性表达。同时还采用硫氧还原蛋白TrxA与Cas9蛋白融合表达,TrxA能帮助所共表达的目的蛋白形成二硫键,提高蛋白的稳定性、折叠的正确性,增加目的蛋白的溶解性及活性。为了方便目的蛋白的纯化,设计了His标签,可以通过一步法Ni柱亲和层析纯化目的蛋白,极大地简化了目的蛋白的纯化流程。同时在His标签后设计了一个肠激酶酶切位点,便于切除所融合的TrxA-His多肽片段,得到天然形式的Cas9蛋白。利用带His标签的肠激酶酶切融合蛋白后,可通过一次亲和层析除去TrxA-His多肽片段及带His标签的肠激酶,得到天然形式的Cas9蛋白,避免了多次纯化透析对目的蛋白的伤害和损耗。同时,本发明也在Cas9的N端及C端分别设计了一个NLS位点,使Cas9能更有效地进入细胞核进行基因编辑。另外,本发明选择了E.coli BL21(DE3)菌株为目的蛋白表达菌株,该菌株可高效表达克隆于含有噬菌体T7启动子的表达载体(如pET-32a)的外源基因。同时,对于Cas9蛋白的密码子,本发明进行了密码子优化,使之完全适应表达菌株的密码子偏好,从而提高目的蛋白的表达水平。另外,本发明在细菌生长至一定数量后,再用IPTG在低温下诱导目的蛋白的表达,可避免目的蛋白过早表达对宿主菌生长的影响,低温下诱导表达也显著提高所表达的目的蛋白的可溶性。经过上述各项优化设计及实验实施,所得到的Cas9蛋白活性比商品Cas9蛋白有了极显著的提高。
(3)采用本发明构建并表达的Cas9高效蛋白联合体外转录的gRNA进行基因编辑,并对Cas9和gRNA的最佳用量配比进行了优化,最终获得基因编辑单细胞克隆的比率高达97%,远高于常规的基因编辑效率(10-30%)。
(4)利用本发明所得到的靶基因敲除单细胞克隆株进行体细胞核移植动物克隆可直接得到靶基因敲除的克隆猪,并且该基因变异可稳定遗传。
在小鼠模型制作中采用的受精卵显微注射基因编辑材料后再进行胚胎移植的方法,因其直接获得基因突变后代的概率比较低,需要进行后代的杂交选育,不太适用于妊娠期较长的大动物(如猪)模型制作。因此,本发明采用技术难度大、挑战性高的原代细胞体外编辑以及Cas9蛋白和双gRNA切割并筛选阳性编辑单细胞克隆的方法,后期再通过体细胞核移植动物克隆技术直接获得相应疾病模型猪,可大大缩短模型猪制作周期并节省人力、物力、财力。
本发明采用CRISPR/Cas9技术联合双gRNA编辑进行了SETDB1基因的敲除,模拟表观遗传失调的遗传特征,并获得了SETDB1基因敲除的单细胞克隆,为后期通过体细胞核移植动物克隆技术培育表观遗传失调模型猪奠定了基础。本发明将有助于研究并揭示由SETDB1基因功能异常所导致的表观遗传失调相关疾病的发病机制,也可用于进行药物筛选、药效评价、基因治疗及细胞治疗等研究,能够为进一步的临床应用提供有效的实验数据,进而为成功治疗人类表观遗传失调相关疾病提供有力的实验手段。本发明对于表观遗传失调相关疾病药物的研发及揭示该类疾病的发病机制具有重大应用价值。
附图说明
图1为实施例1中用命名为1的猪的耳组织提取基因组作为模板采用不同引物对进行PCR扩增的电泳图。
图2为实施例1中分别以18只猪的基因组DNA为模板采用SETDB1-E4-JDF246和SETDB1-E4-JDR626组成的引物对进行PCR扩增的电泳图。
图3为编号为19的单细胞克隆的正向测序与野生型序列的比对结果。
图4为编号为6的单细胞克隆的正向测序与野生型序列的比对结果。
图5为编号为10的单细胞克隆的正向测序与野生型序列的比对结果。
图6为编号为1的单细胞克隆的正向测序与野生型序列的比对结果。
图7为质粒pET-32a的结构示意图。
图8为质粒pKG-GE4的结构示意图。
图9为实施例3中gRNA与NCN蛋白用量配比优化的电泳图。
图10为实施例3中NCN蛋白与商品Cas9蛋白的基因编辑效率比较的电泳图。
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本发明进行进一步的详细描述,给出的实施例仅为了阐明本发明,而不是为了限制本发明的范围。以下提供的实施例可作为本技术领域普通技术人员进行进一步改进的指南,并不以任何方式构成对本发明的限制。
下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法,按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。实施例中构建的重组质粒,均已进行测序验证。商品Cas9-A蛋白为市售的效果好的Cas9蛋白。商品Cas9-B蛋白为市售的效果好的Cas9蛋白。完全培养液(%为体积比):15%胎牛血清(Gibco)+83%DMEM培养基(Gibco)+1%Penicillin-Streptomycin(Gibco)+1%HEPES(Solarbio)。细胞培养条件:37℃,5%CO2、5%O2的恒温培养箱。
实施例中采用的猪原代成纤维细胞均是用初生从江香猪耳组织制备得到的。制备猪原代成纤维细胞的方法:①取猪耳组织0.5g,去除毛发及骨组织,然后用75%酒精浸泡30-40s,然后用含5%(体积比)Penicillin-Streptomycin(Gibco)的PBS缓冲液洗涤5次,然后用PBS缓冲液洗涤一次;②用剪刀将组织剪碎,采用5mL 0.1%胶原酶溶液(Sigma),37℃消化1h,然后500g离心5min,弃上清;③将沉淀用1mL完全培养液重悬,然后铺入含10mL完全培养液并已用0.2%明胶(VWR)封盘的直径为10cm的细胞培养皿中,培养至细胞长满皿底60%左右;④完成步骤③后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,然后重悬于完全培养液。用于进行后续电转实验。
质粒pKG-GE3,为环形质粒,如专利申请202010084343.6中的SEQ ID NO:2所示。专利申请202010084343.6中的SEQ ID NO:2中,第395-680位核苷酸组成CMV增强子,第682-890位核苷酸组成EF1a启动子,第986-1006位核苷酸编码核定位信号(NLS),第1016-1036位核苷酸编码核定位信号(NLS),第1037-5161位核苷酸编码Cas9蛋白,第5162-5209位核苷酸编码核定位信号(NLS),第5219-5266位核苷酸编码核定位信号(NLS),第5276-5332位核苷酸编码自剪切多肽P2A(自剪切多肽P2A的氨基酸序列为“ATNFSLLKQAGDVEENPGP”,发生自剪切的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间),第5333-6046位核苷酸编码EGFP蛋白,第6056-6109位核苷酸编码自裂解多肽T2A(自裂解多肽T2A的氨基酸序列为“EGRGSLLTCGDVEENPGP”,发生自裂解的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间),第6110-6703位核苷酸编码Puromycin蛋白(简称Puro蛋白),第6722-7310位核苷酸组成WPRE序列元件,第7382-7615位核苷酸组成3’LTR序列元件,第7647-7871位核苷酸组成bGH poly(A)signal序列元件。专利申请202010084343.6中的SEQ ID NO:2中,第911-6706位核苷酸形成融合基因,表达融合蛋白。由于自剪切多肽P2A和自裂解多肽T2A的存在,融合蛋白自发形成如下三个蛋白:具有Cas9蛋白的蛋白、具有EGFP蛋白的蛋白和具有Puro蛋白的蛋白。
pKG-U6gRNA载体即质粒pKG-U6gRNA,为环形质粒,如专利申请202010084343.6中的SEQ ID NO:3所示。专利申请202010084343.6中的SEQ ID NO:3中,第2280-2539位核苷酸组成hU6启动子,第2558-2637位核苷酸用于转录形成gRNA骨架。使用时,将20bp左右的DNA分子(用于转录形成gRNA的靶序列结合区)插入质粒pKG-U6gRNA,形成重组质粒,在细胞中重组质粒转录得到gRNA。
实施例1、SETDB1基因高效gRNA靶点的筛选
猪SETDB1基因信息:编码组蛋白赖氨酸甲基转移酶SET结构域分支型1;位于4号染色体;Gene ID为100157920,Sus scrofa。猪SETDB1基因编码的蛋白质的氨基酸序列如SEQID NO:8所示。猪基因组DNA中,SETDB1基因共有23个外显子,其中编码外显子21个,SETDB1基因第4编码外显子及其上下游各300bp如SEQ ID NO:9所示。
一、SETDB1基因预设缺失区域及邻近基因组序列保守性分析
18只初生从江香猪,其中雌性10只(分别命名为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)、雄性8只(分别命名为A、B、C、D、E、F、G、H)。
SETDB1-E4-JDF276:ATTTCCCTCATCCCCTTCATTACAG;
SETDB1-E4-JDR570:GGAAACCGAGCAGACAAAAGAC;
SETDB1-E4-JDF235:TTATTCACAAACTGTTTTTAGCCCG;
SETDB1-E4-JDR581:AAACGGTATTTGGAAACCGAGC;
SETDB1-E4-JDF246:CTGTTTTTAGCCCGTGCTATTTT;
SETDB1-E4-JDR626:CTCTCTAACCTGCACCTGGAA;
SETDB1-E4-JDF245:ACTGTTTTTAGCCCGTGCTATTTTA;
SETDB1-E4-JDR625:TCTCTAACCTGCACCTGGAA;
SETDB1-E4-JDF236:TATTCACAAACTGTTTTTAGCCCG;
SETDB1-E4-JDR626:CTCTCTAACCTGCACCTGGAAG。
用命名为1的猪的耳组织提取基因组作为模板,采用不同引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。电泳图见图1。图1中:组1:采用SETDB1-E4-JDF276和SETDB1-E4-JDR570组成的引物对;组2:采用SETDB1-E4-JDF235和SETDB1-E4-JDR581组成的引物对;组3:采用SETDB1-E4-JDF246和SETDB1-E4-JDR626组成的引物对;组4:采用SETDB1-E4-JDF245和SETDB1-E4-JDR625组成的引物对;组5:采用SETDB1-E4-JDF236和SETDB1-E4-JDR626组成的引物对。结果表明,优选采用SETDB1-E4-JDF246和SETDB1-E4-JDR626组成的引物对进行目的片段扩增。
分别以18只猪的基因组DNA为模板,采用SETDB1-E4-JDF246和SETDB1-E4-JDR626组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。电泳图见图2。回收PCR扩增产物并进行测序,将测序结果与公共数据库中的SETDB1基因序列进行比对分析。选择18只猪中共有的保守区进行gRNA靶点的设计。
二、筛选靶点
通过筛选NGG(避开可能的突变位点)初步筛选到若干靶点,经过预实验进一步从中筛选到4个靶点。
4个靶点分别如下:
SETDB1-E4-gRNA1:TATGGCTGCCTTAAGAAAGT;
SETDB1-E4-gRNA2:TCAAGATGTCCAGAAGTTCA;
SETDB1-E4-gRNA3:CAACAAGAAGAGCAGTTCCC;
SETDB1-E4-gRNA4:GGAACTGCTCTTCTTGTTGA。
三、制备gRNA
取质粒pKG-U6gRNA,用限制性内切酶BbsI进行酶切,回收载体骨架(约3kb的线性大片段)。
分别合成SETDB1-E4-gRNA1-S和SETDB1-E4-gRNA1-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA1)。质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA1)表达SEQ ID NO:10所示的sgRNASETDB1-E4-gRNA1
sgRNASETDB1-E4-gRNA1(SEQ ID NO:10):
UAUGGCUGCCUUAAGAAAGUguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu
分别合成SETDB1-E4-gRNA2-S和SETDB1-E4-gRNA2-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA2)。质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA2)表达SEQ ID NO:11所示的sgRNASETDB1-E4-gRNA2
sgRNASETDB1-E4-gRNA2(SEQ ID NO:11):
UCAAGAUGUCCAGAAGUUCAguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu
分别合成SETDB1-E4-gRNA3-S和SETDB1-E4-gRNA3-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA3)。质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA3)表达SEQ ID NO:12所示的sgRNASETDB1-E4-gRNA3
sgRNASETDB1-E4-gRNA3(SEQ ID NO:12):
CAACAAGAAGAGCAGUUCCCguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu
分别合成SETDB1-E4-gRNA4-S和SETDB1-E4-gRNA4-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA4)。质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA4)表达SEQ ID NO:13所示的sgRNASETDB1-E4-gRNA4
sgRNASETDB1-E4-gRNA4(SEQ ID NO:13):
GGAACUGCUCUUCUUGUUGAguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu
SETDB1-E4-gRNA1-S:caccgTATGGCTGCCTTAAGAAAGT;
SETDB1-E4-gRNA1-A:aaacACTTTCTTAAGGCAGCCATAc;
SETDB1-E4-gRNA2-S:caccgTCAAGATGTCCAGAAGTTCA;
SETDB1-E4-gRNA2-A:aaacTGAACTTCTGGACATCTTGAc;
SETDB1-E4-gRNA3-S:caccgCAACAAGAAGAGCAGTTCCC;
SETDB1-E4-gRNA3-A:aaacGGGAACTGCTCTTCTTGTTGc;
SETDB1-E4-gRNA4-S:caccGGAACTGCTCTTCTTGTTGA;
SETDB1-E4-gRNA4-A:aaacTCAACAAGAAGAGCAGTTCC。
SETDB1-E4-gRNA1-S、SETDB1-E4-gRNA1-A、SETDB1-E4-gRNA2-S、SETDB1-E4-gRNA2-A、SETDB1-E4-gRNA3-S、SETDB1-E4-gRNA3-A、SETDB1-E4-gRNA4-S、SETDB1-E4-gRNA4-A均为单链DNA分子。
四、不同靶点组合的编辑效率比较
1、共转染
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA1)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA1):1.08μg质粒pKG-GE3。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA2)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA2):1.08μg质粒pKG-GE3。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA3)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA3):1.08μg质粒pKG-GE3。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA4)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(SETDB1-E4-gRNA4):1.08μg质粒pKG-GE3。
第五组:猪原代成纤维细胞,同等电转参数不加质粒进行电转操作。
共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TM transfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)。
2、完成步骤1后,采用完全培养液培养12-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。电转后培养总时间为48小时。
3、完成步骤2后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,裂解细胞,提取基因组DNA,采用SETDB1-E4-JDF246和SETDB1-E4-JDR626组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。检测细胞靶基因突变情况。
将目的产物切胶回收后送测序公司进行测序,然后将测序结果利用网页版Synthego ICE工具分析测序峰图得出不同靶点的基因编辑效率。第一组至第四组的基因编辑效率依次为55%、14%、52%、54%,第五组未发生基因编辑。结果表明,SETDB1-E4-gRNA1和SETDB1-E4-gRNA4编辑效率较高。
实施例2、制备SETDB1基因敲除的从江香猪单细胞克隆
选用实施例4中筛到的两个高效gRNA靶点(SETDB1-E4-gRNA1和SETDB1-E4-gRNA4)。
一、制备gRNA
1、制备SETDB1-T7-gRNA1转录模板和SETDB1-T7-gRNA4转录模板
SETDB1-T7-gRNA1转录模板为双链DNA分子,如SEQ ID NO:14所示。
SETDB1-T7-gRNA4转录模板为双链DNA分子,如SEQ ID NO:15所示。
2、体外转录得到gRNA
取SETDB1-T7-gRNA1转录模板,采用Transcript Aid T7 High YieldTranscription Kit(Fermentas,K0441)进行体外转录,然后用MEGA clearTMTranscriptionClean-Up Kit(Thermo,AM1908)进行回收纯化,得到SETDB1-gRNA1。SETDB1-gRNA1为单链RNA,如SEQ ID NO:16所示。
SETDB1-gRNA1(SEQ ID NO:16):
GGUAUGGCUGCCUUAAGAAAGUGUUUUAGAGCUAGAAAUAGCAAGUUAAAAUAAGGCUAGUCCGUUAUCAACUUGAAAAAGUGGCACCGAGUCGGUGCUUUU
取SETDB1-T7-gRNA4转录模板,采用Transcript Aid T7 High YieldTranscription Kit(Fermentas,K0441)进行体外转录,然后用MEGA clearTMTranscriptionClean-Up Kit(Thermo,AM1908)进行回收纯化,得到SETDB1-gRNA4。SETDB1-gRNA4为单链RNA,如SEQ ID NO:17所示。
SETDB1-gRNA4(SEQ ID NO:17):
GGGGAACUGCUCUUCUUGUUGAGUUUUAGAGCUAGAAAUAGCAAGUUAAAAUAAGGCUAGUCCGUUAUCAACUUGAAAAAGUGGCACCGAGUCGGUGCUUUU
二、转染猪原代成纤维细胞
1、将SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:1μg SETDB1-gRNA1:1μg SETDB1-gRNA4:4μg NCN蛋白。共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TMtransfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)。NCN蛋白为实施例3制备的。
2、完成步骤1后,采用完全培养液培养16-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。电转后培养总时间为48小时。
3、完成步骤2后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,然后用完全培养液洗涤,然后用完全培养液重悬,然后分别挑取各个单克隆转移到96孔板中(每个孔1个细胞,每个孔中装有100μl完全培养液),培养2周(每2-3天更换新的完全培养液)。
4、完成步骤3后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞(每孔得到的细胞,约2/3接种到装有完全培养液的6孔板中,剩余的1/3收集在1.5mL离心管中)。
5、取步骤4的6孔板,培养直至细胞长至80%汇合度,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,使用细胞冻存液(90%完全培养基+10%DMSO,体积比)将细胞冻存。
6、取步骤4的离心管,取细胞,进行细胞裂解并提取基因组DNA,采用SETDB1-E4-JDF246和SETDB1-E4-JDR626组成的引物对进行PCR扩增,然后进行电泳。将猪原代成纤维细胞作为野生型对照(WT)。
7、完成步骤6后,回收PCR扩增产物并测序。
猪原代成纤维细胞的测序结果只有一种,其基因型为野生型(也可称为纯合野生型)。如果某一单细胞克隆的测序结果有两种,一种与猪原代成纤维细胞的测序结果一致,另一种与猪原代成纤维细胞的测序结果相比发生了突变(突变包括一个或多个核苷酸的缺失、插入或替换),该单细胞克隆的基因型为杂合型;如果某一单细胞克隆的测序结果为两种,均与猪原代成纤维细胞的测序结果相比发生了突变(突变包括一个或多个核苷酸的缺失、插入或替换),该单细胞克隆的基因型为双等位基因不同突变型;如果某一单细胞克隆的测序结果为一种,且与猪原代成纤维细胞的测序结果相比发生了突变(突变包括一个或多个核苷酸的缺失、插入或替换),该单细胞克隆的基因型为双等位基因相同突变型;如果某一单细胞克隆的测序结果为一种,且与猪原代成纤维细胞的测序结果一致,该单细胞克隆的基因型为野生型(也可称为纯合野生型)。
结果见表1。编号为19的单细胞克隆的基因型为野生型。编号为6、22、26、29、31、32的单细胞克隆的基因型为杂合型。编号为2、4、5、10、12、14、21、23、25、28、34的单细胞克隆的基因型为双等位基因不同突变型。编号为1、3、7、8、9、11、13、15、16、17、18、20、24、27、30、33的单细胞克隆的基因型为双等位基因相同突变型。得到SETDB1基因编辑单细胞克隆的比率为97%。
示例性的测序比对结果见图3至图6。图3是克隆号为19的正向测序与野生型序列的比对结果,判定为野生型。图4是克隆号为6的反向测序与野生型序列的比对结果,判定为杂合型。图5是克隆号为10的反向测序与野生型序列的比对结果,为双等位基因不同突变型。图6是克隆号为1的正向测序与野生型序列的比对结果,为双等位基因相同突变型。
表1 SETDB1基因编辑单细胞克隆的基因型测定结果
Figure BDA0003374524890000121
Figure BDA0003374524890000131
上述杂合型、双等位基因相同突变型及双等位基因不同突变型的单细胞克隆均为目标单细胞克隆。将细胞作为核移植供体细胞进行体细胞克隆,可以得到克隆猪,即为表观遗传失调模型猪。
实施例3、NCN蛋白的制备、纯化和性能
一、原核Cas9高效表达载体的构建
质粒pET-32a的结构示意图见图7。
质粒pKG-GE4是以质粒pET-32a为出发质粒进行改造得到的。质粒pET32a-T7lac-phoA:SP-TrxA-His-EK-NLS-spCas9-NLS-T7ter(简称质粒pKG-GE4),如SEQ ID NO:1所示,为环形质粒,结构示意图见图8。
SEQ ID NO:1中,第5121-5139位核苷酸组成T7启动子,第5140-5164位核苷酸编码Lac操纵子(lac operator),第5178-5201位核苷酸组成核糖体结合位点(RBS),第5209-5271位核苷酸编码碱性磷酸酶信号肽(phoA signal peptide),第5272-5598位核苷酸编码TrxA蛋白,第5620-5637位核苷酸编码His-Tag(又称为His6标签),第5638-5652位核苷酸编码肠激酶酶切位点(EK酶切位点),第5656-5670位核苷酸编码核定位信号,第5701-9801位核苷酸编码spCas9蛋白,第9802-9849位核苷酸编码核定位信号,第9902-9949位核苷酸组成T7终止子。编码spCas9蛋白的核苷酸已进行针对大肠杆菌BL21(DE3)菌株的密码子优化。
质粒pKG-GE4的主要改造如下:①保留了TrxA蛋白的编码区域,TrxA蛋白可以帮助所表达的目的蛋白形成二硫键、增加目的蛋白的溶解性及活性;在TrxA蛋白的编码区域之前加入碱性磷酸酶信号肽的编码序列,碱性磷酸酶信号肽可以引导所表达的目的蛋白分泌至细菌的膜周质腔中并可被原核周质信号肽酶酶切;②在TrxA蛋白的编码序列之后增加His-Tag的编码序列,His-Tag可用于所表达的目的蛋白的富集;③在His-Tag的编码序列下游增加肠激酶酶切位点DDDDK(Asp-Asp-Asp-Asp-Lys)的编码序列,纯化出的蛋白将在肠激酶作用下去除His-Tag和上游所融合的TrxA蛋白;④插入密码子优化后的适宜大肠杆菌BL21(DE3)菌株表达的Cas9基因,同时在该基因的上游和下游均增加核定位信号编码序列,增加后期纯化出的Cas9蛋白的核定位能力。
质粒pKG-GE4中的融合基因如SEQ ID NO:1中第5209-9852位核苷酸所示,编码SEQID NO:2所示的融合蛋白(融合蛋白TrxA-His-EK-NLS-spCas9-NLS,简称为PRONCN蛋白)。由于碱性磷酸酶信号肽以及肠激酶酶切位点的存在,融合蛋白被肠激酶酶切后形成SEQ IDNO:3所示的蛋白质,将SEQ ID NO:3所示的蛋白质命名为NCN蛋白。
二、诱导表达
1、将质粒pKG-GE4导入大肠杆菌BL21(DE3),得到重组菌。
2、将步骤1得到的重组菌接种至含100μg/ml氨苄青霉素的液体LB培养基,37℃、200rpm振荡培养过夜。
3、将步骤2得到的菌液接种至液体LB培养基,30℃、230rpm振荡培养至OD600nm值=1.0,然后加入异丙基硫代半乳糖苷(IPTG)并使其在体系中的浓度为0.5mM,然后25℃、230rpm振荡培养12小时,然后4℃、10000g离心15分钟,收集菌体。
4、取步骤3得到的菌体,用PBS缓冲液洗涤。
三、融合蛋白TrxA-His-EK-NLS-spCas9-NLS的纯化
1、取步骤二得到的菌体,加入粗提缓冲液并悬浮菌体,然后采用均质机进行菌体破碎(1000par循环三次),然后4℃、15000g离心30min,收集上清液,上清液采用0.22μm孔径滤膜过滤,收集滤液。本步骤中,每g湿重的菌体配比10ml粗提缓冲液。
粗提缓冲液:含20mM Tris-HCl(pH8.0)、0.5M NaCl、5mM Imidazole、1mM PMSF,余量为ddH2O。
2、采用亲和层析纯化融合蛋白。
首先采用5个柱体积的平衡液平衡Ni-NTA琼脂糖柱(流速为1ml/min);然后上样50ml步骤1得到的滤液(流速为0.5-1ml/min);然后用5个柱体积的平衡液洗涤柱子(流速为1ml/min);然后用5个柱体积的缓冲液洗涤柱子(流速为1ml/min),以去除杂蛋白;然后用10个柱体积的洗脱液以0.5-1ml/min的流速洗脱,收集过柱后溶液(90-100ml)。
Ni-NTA琼脂糖柱:金斯瑞,L00250/L00250-C,填料为10ml。
平衡液:含20mM Tris-HCl(pH 8.0)、0.5M NaCl、5mM Imidazole,余量为ddH2O。
缓冲液:含20mM Tris-HCl(pH 8.0)、0.5M NaCl、50mM Imidazole,余量为ddH2O。
洗脱液:含20mM Tris-HCl(pH 8.0)、0.5M NaCl、500mM Imidazole,余量为ddH2O。
四、融合蛋白TrxA-His-EK-NLS-spCas9-NLS的酶切与NCN蛋白的纯化
1、取15ml步骤三收集的过柱后溶液,使用Amicon超滤管(Sigma,UFC9100,容量为15ml)将其浓缩至200μl,然后用25mM Tris-HCl(pH8.0)稀释至1ml。采用6个超滤管,共得到6ml。
2、将商品来源的具有His6标签的重组牛肠激酶(生工生物,C620031,重组牛肠激酶轻链,带His6标签,Recombinant Bovine Enterokinase Light Chain,His)加入到步骤1得到的溶液(约6ml)中,25℃酶切16小时。每50μg蛋白量配比加入2个单位的肠激酶。
3、取完成步骤2的溶液(约6ml),与480μl Ni-NTA树脂(金斯瑞,L00250/L00250-C)混匀,在室温下旋转混匀15min,然后7000g离心3min,收集上清液(4-5.5ml)。
4、取步骤3得到的上清液,使用Amicon超滤管(Sigma,UFC9100,容量为15ml)将其浓缩至200μl,然后加入酶贮存液中,调整蛋白浓度为5mg/ml,即为NCN蛋白溶液。
经测序,NCN蛋白溶液中的蛋白质,N端15个氨基酸残基如SEQ ID NO:3第1至15位所示,即NCN蛋白。
用于实施例2的NCN蛋白由NCN蛋白溶液提供。
酶贮存液(pH7.4):含10mM Tris,300mM NaCl,0.1mM EDTA,1mM DTT,50%(体积比)甘油,余量为ddH2O。
五、NCN蛋白的性能
选择靶向TTN基因的2个gRNA靶点如下:
TTN-gRNA1:AGAGCACAGTCAGCCTGGCG;
TTN-gRNA2:CTTCCAGAATTGGATCTCCG。
用于鉴定包含TTN基因中gRNA的靶点片段的引物如下:
TTN-F55:TACGGAATTGGGGAGCCAGCGGA;
TTN-R560:CAAAGTTAACTCTCTGTGTCT。
1、制备gRNA
(1)制备TTN-T7-gRNA1转录模板和TTN-T7-gRNA2转录模板
TTN-T7-gRNA1转录模板为双链DNA分子,如SEQ ID NO:4所示。
TTN-T7-gRNA2转录模板为双链DNA分子,如SEQ ID NO:5所示。
(2)体外转录得到gRNA
取TTN-T7-gRNA1转录模板,采用Transcript Aid T7 High Yield TranscriptionKit(Fermentas,K0441)进行体外转录,然后用MEGA clearTMTranscription Clean-Up Kit(Thermo,AM1908)进行回收纯化,得到TTN-gRNA1。TTN-gRNA1为单链RNA,如SEQ ID NO:6所示。
取TTN-T7-gRNA2转录模板,采用Transcript Aid T7 High Yield TranscriptionKit(Fermentas,K0441)进行体外转录,然后用MEGA clearTMTranscription Clean-Up Kit(Thermo,AM1908)进行回收纯化,得到TTN-gRNA2。TTN-gRNA2为单链RNA,如SEQ ID NO:7所示。
2、gRNA与NCN蛋白用量配比优化
(1)共转染猪原代成纤维细胞
第一组:将TTN-gRNA1、TTN-gRNA2和NCN蛋白共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:0.5μg TTN-gRNA1:0.5μg TTN-gRNA2:4μg NCN蛋白。
第二组:将TTN-gRNA1、TTN-gRNA2和NCN蛋白共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:0.75μg TTN-gRNA1:0.75μg TTN-gRNA2:4μg NCN蛋白。
第三组:将TTN-gRNA1、TTN-gRNA2和NCN蛋白共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:1μg TTN-gRNA1:1μg TTN-gRNA2:4μg NCN蛋白。
第四组:将TTN-gRNA1、TTN-gRNA2和NCN蛋白共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:1.25μg TTN-gRNA1:1.25μg TTN-gRNA2:4μg NCN蛋白。
第五组:将TTN-gRNA1和TTN-gRNA2共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:1μg TTN-gRNA1:1μg TTN-gRNA2。
共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TM transfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)。
(2)完成步骤(1)后,采用完全培养液培养12-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。电转后培养总时间为48小时。
(3)完成步骤(2)后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,提取基因组DNA,采用TTN-F55和TTN-R560组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。
电泳图见图9。505bp条带为野生型条带(WT),254bp左右(野生型条带505bp理论缺失251bp)为缺失突变条带(MT)。
基因缺失突变效率=(MT灰度/MT条带bp数)/(WT灰度/WT条带bp数+MT灰度/MT条带bp数)×100%。第一组基因缺失突变效率为19.9%,第二组基因缺失突变效率为39.9%,第三组基因缺失突变效率为79.9%,第四组基因缺失突变效率为44.3%。第五组未发生突变。
结果表明,当两个gRNA与NCN蛋白的质量配比为1:1:4,实际用量为1μg:1μg:4μg时基因编辑效率最高。因此,确定两个gRNA与NCN蛋白的最适用量为1μg:1μg:4μg。
3、NCN蛋白与商品Cas9蛋白的基因编辑效率比较
(1)共转染猪原代成纤维细胞
Cas9-A组:将TTN-gRNA1、TTN-gRNA2和商品Cas9-A蛋白共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:1μg TTN-gRNA1:1μg TTN-gRNA2:4μg Cas9-A蛋白。
pKG-GE4组:将TTN-gRNA1、TTN-gRNA2和NCN蛋白共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:1μg TTN-gRNA1:1μg TTN-gRNA2:4μg NCN蛋白。
Cas9-B组:将TTN-gRNA1、TTN-gRNA2和商品Cas9-B蛋白共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:1μg TTN-gRNA1:1μg TTN-gRNA2:4μg Cas9-B蛋白。
Control组:将TTN-gRNA1、TTN-gRNA2共转染猪原代成纤维细胞。配比:约10万个猪原代成纤维细胞:1μg TTN-gRNA1:1μg TTN-gRNA2。
共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TM transfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)。
(2)完成步骤(1)后,采用完全培养液培养12-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。电转后培养总时间为48小时。
(3)完成步骤(2)后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,提取基因组DNA,采用TTN-F55和TTN-R560组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。
电泳图见图10。采用商品Cas9-A蛋白的基因缺失突变效率为28.5%,采用NCN蛋白的基因缺失突变效率为85.6%,采用商品Cas9-B蛋白的基因缺失突变效率为16.6%。
结果表明,与采用商品的Cas9蛋白相比,采用本发明制备的NCN蛋白使得基因编辑效率显著提高。
以上对本发明进行了详述。对于本领域技术人员来说,在不脱离本发明的宗旨和范围,以及无需进行不必要的实验情况下,可在等同参数、浓度和条件下,在较宽范围内实施本发明。虽然本发明给出了特殊的实施例,应该理解为,可以对本发明作进一步的改进。总之,按本发明的原理,本申请欲包括任何变更、用途或对本发明的改进,包括脱离了本申请中已公开范围,而用本领域已知的常规技术进行的改变。按以下附带的权利要求的范围,可以进行一些基本特征的应用。
序列表
<110> 南京启真基因工程有限公司
<120> 构建SETDB1基因突变的表观遗传失调模型猪核移植供体细胞的基因编辑系统及其应用
<130> GNCYX213212
<160> 17
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 9974
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
tggcgaatgg gacgcgccct gtagcggcgc attaagcgcg gcgggtgtgg tggttacgcg 60
cagcgtgacc gctacacttg ccagcgccct agcgcccgct cctttcgctt tcttcccttc 120
ctttctcgcc acgttcgccg gctttccccg tcaagctcta aatcgggggc tccctttagg 180
gttccgattt agtgctttac ggcacctcga ccccaaaaaa cttgattagg gtgatggttc 240
acgtagtggg ccatcgccct gatagacggt ttttcgccct ttgacgttgg agtccacgtt 300
ctttaatagt ggactcttgt tccaaactgg aacaacactc aaccctatct cggtctattc 360
ttttgattta taagggattt tgccgatttc ggcctattgg ttaaaaaatg agctgattta 420
acaaaaattt aacgcgaatt ttaacaaaat attaacgttt acaatttcag gtggcacttt 480
tcggggaaat gtgcgcggaa cccctatttg tttatttttc taaatacatt caaatatgta 540
tccgctcatg agacaataac cctgataaat gcttcaataa tattgaaaaa ggaagagtat 600
gagtattcaa catttccgtg tcgcccttat tccctttttt gcggcatttt gccttcctgt 660
ttttgctcac ccagaaacgc tggtgaaagt aaaagatgct gaagatcagt tgggtgcacg 720
agtgggttac atcgaactgg atctcaacag cggtaagatc cttgagagtt ttcgccccga 780
agaacgtttt ccaatgatga gcacttttaa agttctgcta tgtggcgcgg tattatcccg 840
tattgacgcc gggcaagagc aactcggtcg ccgcatacac tattctcaga atgacttggt 900
tgagtactca ccagtcacag aaaagcatct tacggatggc atgacagtaa gagaattatg 960
cagtgctgcc ataaccatga gtgataacac tgcggccaac ttacttctga caacgatcgg 1020
aggaccgaag gagctaaccg cttttttgca caacatgggg gatcatgtaa ctcgccttga 1080
tcgttgggaa ccggagctga atgaagccat accaaacgac gagcgtgaca ccacgatgcc 1140
tgcagcaatg gcaacaacgt tgcgcaaact attaactggc gaactactta ctctagcttc 1200
ccggcaacaa ttaatagact ggatggaggc ggataaagtt gcaggaccac ttctgcgctc 1260
ggcccttccg gctggctggt ttattgctga taaatctgga gccggtgagc gtgggtctcg 1320
cggtatcatt gcagcactgg ggccagatgg taagccctcc cgtatcgtag ttatctacac 1380
gacggggagt caggcaacta tggatgaacg aaatagacag atcgctgaga taggtgcctc 1440
actgattaag cattggtaac tgtcagacca agtttactca tatatacttt agattgattt 1500
aaaacttcat ttttaattta aaaggatcta ggtgaagatc ctttttgata atctcatgac 1560
caaaatccct taacgtgagt tttcgttcca ctgagcgtca gaccccgtag aaaagatcaa 1620
aggatcttct tgagatcctt tttttctgcg cgtaatctgc tgcttgcaaa caaaaaaacc 1680
accgctacca gcggtggttt gtttgccgga tcaagagcta ccaactcttt ttccgaaggt 1740
aactggcttc agcagagcgc agataccaaa tactgtcctt ctagtgtagc cgtagttagg 1800
ccaccacttc aagaactctg tagcaccgcc tacatacctc gctctgctaa tcctgttacc 1860
agtggctgct gccagtggcg ataagtcgtg tcttaccggg ttggactcaa gacgatagtt 1920
accggataag gcgcagcggt cgggctgaac ggggggttcg tgcacacagc ccagcttgga 1980
gcgaacgacc tacaccgaac tgagatacct acagcgtgag ctatgagaaa gcgccacgct 2040
tcccgaaggg agaaaggcgg acaggtatcc ggtaagcggc agggtcggaa caggagagcg 2100
cacgagggag cttccagggg gaaacgcctg gtatctttat agtcctgtcg ggtttcgcca 2160
cctctgactt gagcgtcgat ttttgtgatg ctcgtcaggg gggcggagcc tatggaaaaa 2220
cgccagcaac gcggcctttt tacggttcct ggccttttgc tggccttttg ctcacatgtt 2280
ctttcctgcg ttatcccctg attctgtgga taaccgtatt accgcctttg agtgagctga 2340
taccgctcgc cgcagccgaa cgaccgagcg cagcgagtca gtgagcgagg aagcggaaga 2400
gcgcctgatg cggtattttc tccttacgca tctgtgcggt atttcacacc gcatatatgg 2460
tgcactctca gtacaatctg ctctgatgcc gcatagttaa gccagtatac actccgctat 2520
cgctacgtga ctgggtcatg gctgcgcccc gacacccgcc aacacccgct gacgcgccct 2580
gacgggcttg tctgctcccg gcatccgctt acagacaagc tgtgaccgtc tccgggagct 2640
gcatgtgtca gaggttttca ccgtcatcac cgaaacgcgc gaggcagctg cggtaaagct 2700
catcagcgtg gtcgtgaagc gattcacaga tgtctgcctg ttcatccgcg tccagctcgt 2760
tgagtttctc cagaagcgtt aatgtctggc ttctgataaa gcgggccatg ttaagggcgg 2820
ttttttcctg tttggtcact gatgcctccg tgtaaggggg atttctgttc atgggggtaa 2880
tgataccgat gaaacgagag aggatgctca cgatacgggt tactgatgat gaacatgccc 2940
ggttactgga acgttgtgag ggtaaacaac tggcggtatg gatgcggcgg gaccagagaa 3000
aaatcactca gggtcaatgc cagcgcttcg ttaatacaga tgtaggtgtt ccacagggta 3060
gccagcagca tcctgcgatg cagatccgga acataatggt gcagggcgct gacttccgcg 3120
tttccagact ttacgaaaca cggaaaccga agaccattca tgttgttgct caggtcgcag 3180
acgttttgca gcagcagtcg cttcacgttc gctcgcgtat cggtgattca ttctgctaac 3240
cagtaaggca accccgccag cctagccggg tcctcaacga caggagcacg atcatgcgca 3300
cccgtggggc cgccatgccg gcgataatgg cctgcttctc gccgaaacgt ttggtggcgg 3360
gaccagtgac gaaggcttga gcgagggcgt gcaagattcc gaataccgca agcgacaggc 3420
cgatcatcgt cgcgctccag cgaaagcggt cctcgccgaa aatgacccag agcgctgccg 3480
gcacctgtcc tacgagttgc atgataaaga agacagtcat aagtgcggcg acgatagtca 3540
tgccccgcgc ccaccggaag gagctgactg ggttgaaggc tctcaagggc atcggtcgag 3600
atcccggtgc ctaatgagtg agctaactta cattaattgc gttgcgctca ctgcccgctt 3660
tccagtcggg aaacctgtcg tgccagctgc attaatgaat cggccaacgc gcggggagag 3720
gcggtttgcg tattgggcgc cagggtggtt tttcttttca ccagtgagac gggcaacagc 3780
tgattgccct tcaccgcctg gccctgagag agttgcagca agcggtccac gctggtttgc 3840
cccagcaggc gaaaatcctg tttgatggtg gttaacggcg ggatataaca tgagctgtct 3900
tcggtatcgt cgtatcccac taccgagatg tccgcaccaa cgcgcagccc ggactcggta 3960
atggcgcgca ttgcgcccag cgccatctga tcgttggcaa ccagcatcgc agtgggaacg 4020
atgccctcat tcagcatttg catggtttgt tgaaaaccgg acatggcact ccagtcgcct 4080
tcccgttccg ctatcggctg aatttgattg cgagtgagat atttatgcca gccagccaga 4140
cgcagacgcg ccgagacaga acttaatggg cccgctaaca gcgcgatttg ctggtgaccc 4200
aatgcgacca gatgctccac gcccagtcgc gtaccgtctt catgggagaa aataatactg 4260
ttgatgggtg tctggtcaga gacatcaaga aataacgccg gaacattagt gcaggcagct 4320
tccacagcaa tggcatcctg gtcatccagc ggatagttaa tgatcagccc actgacgcgt 4380
tgcgcgagaa gattgtgcac cgccgcttta caggcttcga cgccgcttcg ttctaccatc 4440
gacaccacca cgctggcacc cagttgatcg gcgcgagatt taatcgccgc gacaatttgc 4500
gacggcgcgt gcagggccag actggaggtg gcaacgccaa tcagcaacga ctgtttgccc 4560
gccagttgtt gtgccacgcg gttgggaatg taattcagct ccgccatcgc cgcttccact 4620
ttttcccgcg ttttcgcaga aacgtggctg gcctggttca ccacgcggga aacggtctga 4680
taagagacac cggcatactc tgcgacatcg tataacgtta ctggtttcac attcaccacc 4740
ctgaattgac tctcttccgg gcgctatcat gccataccgc gaaaggtttt gcgccattcg 4800
atggtgtccg ggatctcgac gctctccctt atgcgactcc tgcattagga agcagcccag 4860
tagtaggttg aggccgttga gcaccgccgc cgcaaggaat ggtgcatgca aggagatggc 4920
gcccaacagt cccccggcca cggggcctgc caccataccc acgccgaaac aagcgctcat 4980
gagcccgaag tggcgagccc gatcttcccc atcggtgatg tcggcgatat aggcgccagc 5040
aaccgcacct gtggcgccgg tgatgccggc cacgatgcgt ccggcgtaga ggatcgagat 5100
cgatctcgat cccgcgaaat taatacgact cactataggg gaattgtgag cggataacaa 5160
ttcccctcta gaaataattt tgtttaactt taagaaggag atatacatat gaaacaaagc 5220
actattgcac tggcactctt accgttactg tttacccctg tgacaaaagc catgagcgat 5280
aaaattattc acctgactga cgacagtttt gacacggatg tactcaaagc ggacggggcg 5340
atcctcgtcg atttctgggc agagtggtgc ggtccgtgca aaatgatcgc cccgattctg 5400
gatgaaatcg ctgacgaata tcagggcaaa ctgaccgttg caaaactgaa catcgatcaa 5460
aaccctggca ctgcgccgaa atatggcatc cgtggtatcc cgactctgct gctgttcaaa 5520
aacggtgaag tggcggcaac caaagtgggt gcactgtcta aaggtcagtt gaaagagttc 5580
ctcgacgcta acctggccgg ttctggttct ggccatatgc accatcatca tcatcatgac 5640
gatgacgata agatgcccaa aaagaaacga aaggtgggta tccacggagt cccagcagcc 5700
gacaaaaaat atagcatcgg cctggacatc ggtaccaaca gcgttggctg ggcagtgatc 5760
actgatgaat acaaagttcc atccaaaaaa tttaaagtac tgggcaacac cgaccgtcac 5820
tctatcaaaa aaaacctgat tggtgctctg ctgtttgaca gcggcgaaac tgctgaggct 5880
acccgtctga aacgtacggc tcgccgtcgc tacactcgtc gtaaaaaccg catctgttat 5940
ctgcaggaaa ttttctctaa cgaaatggca aaagttgatg atagcttctt tcatcgtctg 6000
gaagagagct tcctggtgga agaagataaa aaacacgaac gtcacccgat tttcggtaac 6060
attgtggatg aggttgccta ccacgagaaa tatccgacca tctaccatct gcgtaaaaaa 6120
ctggttgata gcactgacaa agcggatctg cgtctgatct acctggctct ggcacacatg 6180
atcaaattcc gtggtcactt cctgatcgaa ggtgatctga accctgataa ctccgacgtg 6240
gacaaactgt tcattcagct ggttcagacc tataaccagc tgttcgaaga aaacccgatc 6300
aacgcgtccg gtgtagacgc taaggcaatt ctgtctgcgc gtctgtctaa gtctcgtcgt 6360
ctggaaaacc tgattgcgca actgccaggt gaaaagaaaa acggcctgtt cggcaatctg 6420
atcgccctgt ccctgggtct gactccgaac tttaaatcca actttgacct ggcggaagat 6480
gccaagctgc agctgagcaa agatacctat gacgatgacc tggataacct gctggcacag 6540
atcggtgatc agtatgccga tctgttcctg gccgcgaaaa acctgtctga tgcgattctg 6600
ctgtctgata tcctgcgcgt taacactgaa attactaaag cgccgctgag cgcatccatg 6660
attaaacgtt acgatgaaca ccaccaggat ctgaccctgc tgaaagcgct ggtgcgtcag 6720
cagctgccgg aaaaatacaa ggagatcttc ttcgaccaga gcaaaaacgg ttacgcgggc 6780
tacattgatg gtggtgcatc tcaggaggaa ttctacaaat tcattaaacc gatcctggaa 6840
aaaatggatg gtactgaaga gctgctggtt aaactgaatc gtgaagatct gctgcgcaaa 6900
cagcgtacct tcgataacgg ttccatcccg catcagattc atctgggcga actgcacgct 6960
atcctgcgcc gtcaggaaga cttttatccg ttcctgaaag acaaccgtga gaaaattgaa 7020
aaaatcctga ccttccgtat tccgtactat gtaggtccgc tggcgcgtgg taactcccgt 7080
ttcgcttgga tgacccgcaa aagcgaagaa accatcaccc cgtggaattt cgaagaagtc 7140
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ctgccgaacg agaaagtgct gccgaaacac tctctgctgt acgagtactt cactgtgtac 7260
aacgaactga ccaaagtgaa atacgtcacc gaaggtatgc gtaaaccggc attcctgtcc 7320
ggtgagcaaa aaaaagcaat cgtggatctg ctgttcaaaa ccaaccgtaa agtaaccgtg 7380
aaacagctga aggaagacta tttcaagaaa atcgaatgtt ttgattctgt tgaaatctcc 7440
ggcgtggaag atcgcttcaa tgcgtccctg ggtacgtatc acgacctgct gaaaattatc 7500
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ctgactttca aagaagacat ccagaaagca caggtttccg gccagggtga ctctctgcac 7860
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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Val Pro Ala Ala Asp Lys Lys Tyr Ser Ile Gly Leu Asp Ile Gly Thr
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<400> 3
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Leu Asp Glu Ile Ile Glu Gln Ile Ser Glu Phe Ser Lys Arg Val Ile
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ataggagagc acagtcagcc tggcggtttt agagctagaa atagcaagtt aaaataaggc 180
tagtccgtta tcaacttgaa aaagtggcac cgagtcggtg ctttt 225
<210> 5
<211> 225
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
ggcttgtcgg actcttcgct attacgccag ctggcgaagg gggatgtgct gcaaggcgat 60
taagttgggt aacgccaggg ttttcccagt cacgacgtta ggaaattaat acgactcact 120
ataggcttcc agaattggat ctccggtttt agagctagaa atagcaagtt aaaataaggc 180
tagtccgtta tcaacttgaa aaagtggcac cgagtcggtg ctttt 225
<210> 6
<211> 102
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
ggagagcaca gucagccugg cgguuuuaga gcuagaaaua gcaaguuaaa auaaggcuag 60
uccguuauca acuugaaaaa guggcaccga gucggugcuu uu 102
<210> 7
<211> 102
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
ggcuuccaga auuggaucuc cgguuuuaga gcuagaaaua gcaaguuaaa auaaggcuag 60
uccguuauca acuugaaaaa guggcaccga gucggugcuu uu 102
<210> 8
<211> 1292
<212> PRT
<213> Sus scrofa
<400> 8
Met Ser Ser Leu Pro Gly Cys Ile Gly Leu Asp Ala Ala Ala Ala Ala
1 5 10 15
Met Glu Ser Glu Glu Ile Ala Glu Leu Gln Gln Ala Val Val Glu Glu
20 25 30
Leu Gly Ile Ser Met Glu Glu Leu Arg Gln Phe Ile Asp Glu Glu Leu
35 40 45
Glu Lys Met Asp Cys Val Gln Gln Arg Lys Lys Gln Leu Ala Glu Leu
50 55 60
Glu Thr Trp Val Ile Gln Lys Glu Ser Glu Val Ala His Val Asp Gln
65 70 75 80
Leu Phe Asp Asp Ala Ser Lys Ala Val Thr Asn Cys Glu Ser Leu Val
85 90 95
Lys Asp Phe Tyr Ser Lys Leu Gly Leu Gln Tyr Arg Asp Ser Ser Ser
100 105 110
Glu Asp Glu Ala Ser Arg Pro Thr Glu Ile Ile Glu Ile Pro Asp Glu
115 120 125
Asp Asp Asp Val Leu Ser Ile Asp Ser Gly Asp Ala Gly Ser Arg Thr
130 135 140
Pro Lys Asp Gln Lys Leu Arg Glu Ala Met Ala Ala Leu Arg Lys Ser
145 150 155 160
Ala Gln Asp Val Gln Lys Phe Met Asp Ala Val Asn Lys Lys Ser Ser
165 170 175
Ser Gln Asp Leu His Lys Gly Thr Leu Ser Gln Met Thr Gly Glu Leu
180 185 190
Thr Lys Asp Gly Asp Leu Thr Val Gly Met Arg Ile Leu Gly Lys Lys
195 200 205
Arg Thr Lys Thr Trp His Lys Gly Thr Leu Ile Ala Ile Gln Thr Val
210 215 220
Gly Pro Gly Lys Lys Tyr Lys Val Lys Phe Asp Asn Lys Gly Lys Ser
225 230 235 240
Leu Leu Ser Gly Asn His Ile Ala Tyr Asp His His Pro Pro Val Asp
245 250 255
Lys Leu Tyr Val Gly Ser Arg Val Val Ala Lys Tyr Lys Asp Gly Asn
260 265 270
Gln Val Trp Leu Tyr Ala Gly Ile Val Ala Glu Thr Pro Asn Val Lys
275 280 285
Asn Lys Asn Arg Phe Leu Ile Phe Phe Asp Asp Gly Tyr Ala Ser Tyr
290 295 300
Val Thr Glu Ser Glu Leu Tyr Pro Ile Cys Arg Pro Leu Lys Lys Thr
305 310 315 320
Trp Glu Asp Ile Glu Asp Ile Ser Cys Arg Asp Phe Ile Glu Glu Tyr
325 330 335
Ile Thr Ala Tyr Pro Asn Arg Pro Met Val Leu Leu Lys Ser Gly Gln
340 345 350
Leu Ile Lys Thr Glu Trp Glu Gly Thr Trp Trp Lys Ser Arg Val Glu
355 360 365
Glu Val Asp Gly Ser Leu Val Arg Ile Leu Phe Leu Asp Asp Lys Arg
370 375 380
Cys Glu Trp Ile Tyr Arg Gly Ser Thr Arg Leu Glu Pro Met Phe Ser
385 390 395 400
Met Lys Thr Ser Ser Ala Ser Ala Leu Glu Lys Lys Gln Gly Gly Gln
405 410 415
Leu Arg Thr Arg Pro Asn Met Gly Ala Val Arg Ser Lys Gly Pro Val
420 425 430
Val Gln Tyr Thr Gln Asp Leu Thr Ser Thr Gly Thr Gln Phe Lys Pro
435 440 445
Leu Glu Pro Pro Gln Pro Thr Ala Ser Pro Val Pro Pro Ala Pro Ala
450 455 460
Pro Pro Gly Pro Pro Leu Ser Pro Gln Ala Gly Asp Asn Glu Ser Leu
465 470 475 480
Glu Ser Gln Leu Ala Gln Ser Arg Lys Gln Val Ala Lys Lys Ser Thr
485 490 495
Ser Phe Arg Pro Gly Ser Val Gly Ser Gly His Ser Ser Pro Thr Ser
500 505 510
Pro Ala Leu Ser Glu Thr Ala Pro Val Gly Lys Pro Gly Ile Asn Gln
515 520 525
Thr Tyr Arg Ser Pro Leu Gly Ser Thr Thr Ser Ala Pro Thr Pro Pro
530 535 540
Ala Pro Pro Ala Pro Pro Ala Phe His Gly Met Leu Glu Arg Ala Pro
545 550 555 560
Ala Glu Pro Ser Tyr Arg Ala Pro Met Glu Lys Leu Phe Tyr Leu Pro
565 570 575
His Val Cys Ser Tyr Thr Cys Leu Ser Arg Val Arg Pro Met Arg Asn
580 585 590
Glu Gln Tyr Arg Gly Lys Asn Pro Leu Leu Val Pro Leu Leu Tyr Asp
595 600 605
Phe Arg Arg Met Thr Ala Arg Arg Arg Val Asn Arg Lys Met Gly Phe
610 615 620
His Val Ile Tyr Lys Thr Pro Cys Gly Leu Cys Leu Arg Thr Met Gln
625 630 635 640
Glu Ile Glu Arg Tyr Leu Phe Glu Thr Gly Cys Asp Phe Leu Phe Leu
645 650 655
Glu Met Phe Cys Leu Asp Pro Tyr Val Leu Val Asp Arg Lys Phe Gln
660 665 670
Pro Tyr Lys Pro Phe Tyr Tyr Ile Leu Asp Ile Thr Tyr Gly Lys Glu
675 680 685
Asp Val Pro Leu Ser Cys Val Asn Glu Ile Asp Thr Thr Pro Pro Pro
690 695 700
Gln Val Ala Tyr Ser Lys Glu Arg Ile Pro Gly Lys Gly Val Phe Ile
705 710 715 720
Asn Thr Gly Pro Glu Phe Leu Val Gly Cys Asp Cys Lys Asp Gly Cys
725 730 735
Arg Asp Lys Ser Lys Cys Ala Cys His Gln Leu Thr Ile Gln Ala Thr
740 745 750
Ala Cys Thr Pro Gly Gly Gln Ile Asn Pro Asn Ser Gly Tyr Gln Tyr
755 760 765
Lys Arg Leu Glu Glu Cys Leu Pro Thr Gly Val Tyr Glu Cys Asn Lys
770 775 780
Arg Cys Lys Cys Asp Pro Asn Met Cys Thr Asn Arg Leu Val Gln His
785 790 795 800
Gly Leu Gln Val Arg Leu Gln Leu Phe Lys Thr Gln Asn Lys Gly Trp
805 810 815
Gly Ile Arg Cys Leu Asp Asp Ile Ala Lys Gly Ser Phe Val Cys Ile
820 825 830
Tyr Ala Gly Lys Ile Leu Thr Asp Asp Phe Ala Asp Lys Glu Gly Leu
835 840 845
Glu Met Gly Asp Glu Tyr Phe Ala Asn Leu Asp His Ile Glu Ser Val
850 855 860
Glu Asn Phe Lys Glu Gly Tyr Glu Ser Asp Ala Pro Cys Ser Ser Asp
865 870 875 880
Ser Ser Gly Val Asp Leu Lys Asp Gln Glu Asp Gly Asn Ser Gly Thr
885 890 895
Glu Asp Pro Glu Glu Ser Asn Asp Asp Ser Ser Asp Asp Asn Phe Cys
900 905 910
Lys Asp Glu Asp Phe Ser Thr Ser Ser Val Trp Arg Ser Tyr Ala Thr
915 920 925
Arg Arg Gln Thr Arg Gly Gln Lys Glu Asn Gly Leu Ser Glu Met Pro
930 935 940
Ser Lys Asp Ser Arg Pro Pro Asp Leu Gly Pro Pro His Ile Pro Val
945 950 955 960
Ser Pro Ser Ile Pro Val Gly Ser Cys Asn Pro Pro Ser Ser Glu Glu
965 970 975
Thr Pro Lys Asn Lys Val Ala Ser Trp Leu Ser Cys Asn Ser Val Asn
980 985 990
Glu Gly Gly Phe Ala Asp Ser Asp Ser Arg Ser Ser Phe Lys Thr Ser
995 1000 1005
Glu Gly Gly Glu Gly Arg Ala Gly Gly Ser Arg Gly Glu Ala Glu Lys
1010 1015 1020
Ala Ser Ser Ser Gly Leu Gly Phe Lys Asp Glu Gly Asp Ile Lys Gln
1025 1030 1035 1040
Ala Lys Lys Glu Asp Pro Asp Asp Arg Ser Lys Met Ser Ile Val Thr
1045 1050 1055
Glu Ser Ser Arg Asn Tyr Gly Tyr Asn Pro Ser Pro Val Lys Ile Glu
1060 1065 1070
Gly Leu Arg Arg Pro Pro Ser Lys Thr Ser Met His Gln Ser Arg Arg
1075 1080 1085
Leu Leu Ala Phe Ala Gln Ser Asn Pro Asp Asp Ile Leu Thr Leu Ser
1090 1095 1100
Ser Ser Thr Glu Ser Glu Gly Glu Ser Gly Thr Ser Arg Lys Pro Thr
1105 1110 1115 1120
Ala Gly Gln Thr Ser Ala Thr Ala Val Asp Ser Asp Asp Ile Gln Thr
1125 1130 1135
Ile Ser Ser Gly Ser Glu Gly Asp Asp Phe Glu Asp Lys Lys Asn Met
1140 1145 1150
Ser Gly Pro Val Lys Arg Gln Val Ala Val Lys Ser Thr Arg Gly Phe
1155 1160 1165
Ala Leu Lys Ser Thr His Gly Ile Ala Ile Lys Ser Thr Asn Met Ala
1170 1175 1180
Ser Val Glu Lys Gly Glu Ser Ala Pro Val Arg Lys Asn Thr Arg Gln
1185 1190 1195 1200
Phe Tyr Asp Gly Glu Glu Ser Cys Tyr Ile Ile Asp Ala Lys Leu Glu
1205 1210 1215
Gly Asn Leu Gly Arg Tyr Leu Asn His Ser Cys Ser Pro Asn Leu Phe
1220 1225 1230
Val Gln Asn Val Phe Val Asp Thr His Asp Leu Arg Phe Pro Trp Val
1235 1240 1245
Ala Phe Phe Ala Ser Lys Arg Ile Arg Ala Gly Thr Glu Leu Thr Trp
1250 1255 1260
Asp Tyr Asn Tyr Glu Val Gly Ser Val Glu Gly Lys Glu Leu Leu Cys
1265 1270 1275 1280
Cys Cys Gly Ala Ile Glu Cys Arg Gly Arg Leu Leu
1285 1290
<210> 9
<211> 700
<212> DNA
<213> Sus scrofa
<400> 9
tttacttttg aaaagaagag ggtttttatt gtttaggctt ttgagggggg gcaatggggg 60
gttggtttgt ttttatggcc agccacccct gcacatggaa gttcctgggc cagcagttga 120
atctgagcca cagcttcagc aacgcaggat cctttaaccc actgcgctgg gctggggttc 180
gaacctgcgc ctccacagca acccaagctg ctgcagtcag aaaaagaaaa attcttattc 240
acaaactgtt tttagcccgt gctattttaa aatttatttc cctcatcccc ttcattacag 300
cttcgtgaag ctatggctgc cttaagaaag tcggctcaag atgtccagaa gttcatggat 360
gccgtcaaca agaagagcag ttcccaggat cttcacaaag gttagggtca agaggttcct 420
aagtataggg aggggtcatg aattcctaca gagatttcat gggtgactgg ttttgttttg 480
gcatttcaga atccttcacc tctcttgagt tcttttaaca ccacaggttt tccttgctat 540
ctacttaagt cttttgtctg ctcggtttcc aaataccgtt ttagctccat gtttatgatc 600
tcttcttcca ggtgcaggtt agagagaaga cagtgactca aaactcttaa aaagaggtgt 660
ggcaaagctt tgtagaatgg tgctgttaag agatctctct 700
<210> 10
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
uauggcugcc uuaagaaagu guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 11
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
ucaagauguc cagaaguuca guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 12
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
caacaagaag agcaguuccc guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 13
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
ggaacugcuc uucuuguuga guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 14
<211> 225
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 14
ggcttgtcgg actcttcgct attacgccag ctggcgaagg gggatgtgct gcaaggcgat 60
taagttgggt aacgccaggg ttttcccagt cacgacgtta ggaaattaat acgactcact 120
ataggtatgg ctgccttaag aaagtgtttt agagctagaa atagcaagtt aaaataaggc 180
tagtccgtta tcaacttgaa aaagtggcac cgagtcggtg ctttt 225
<210> 15
<211> 225
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 15
ggcttgtcgg actcttcgct attacgccag ctggcgaagg gggatgtgct gcaaggcgat 60
taagttgggt aacgccaggg ttttcccagt cacgacgtta ggaaattaat acgactcact 120
ataggggaac tgctcttctt gttgagtttt agagctagaa atagcaagtt aaaataaggc 180
tagtccgtta tcaacttgaa aaagtggcac cgagtcggtg ctttt 225
<210> 16
<211> 102
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 16
gguauggcug ccuuaagaaa guguuuuaga gcuagaaaua gcaaguuaaa auaaggcuag 60
uccguuauca acuugaaaaa guggcaccga gucggugcuu uu 102
<210> 17
<211> 102
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 17
ggggaacugc ucuucuuguu gaguuuuaga gcuagaaaua gcaaguuaaa auaaggcuag 60
uccguuauca acuugaaaaa guggcaccga gucggugcuu uu 102

Claims (13)

1.SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白在制备试剂盒中的应用;
所述SETDB1-gRNA1为sgRNA,其靶序列结合区如SEQ ID NO:16中第3-22位核苷酸所示;所述SETDB1-gRNA4为sgRNA,其靶序列结合区如SEQ ID NO:17中第3-22位核苷酸所示;所述NCN蛋白为Cas9蛋白或具有Cas9蛋白的融合蛋白;
所述试剂盒的用途为如下(a)或(b)或(c):(a)制备重组细胞;(b)制备表观遗传失调模型猪;(c)制备表观遗传失调细胞模型或表观遗传失调组织模型或表观遗传失调器官模型。
2.SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和PRONCN蛋白在制备试剂盒中的应用;
SETDB1-gRNA1为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA1;SETDB1-gRNA4为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA4;
所述PRONCN蛋白自上游至下游依次包括如下元件:信号肽、分子伴侣蛋白、蛋白标签、蛋白酶酶切位点、核定位信号、Cas9蛋白、核定位信号;
所述试剂盒的用途为如下(a)或(b)或(c):(a)制备重组细胞;(b)制备表观遗传失调模型猪;(c)制备表观遗传失调细胞模型或表观遗传失调组织模型或表观遗传失调器官模型。
3.SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和特异质粒在制备试剂盒中的应用;
SETDB1-gRNA1为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA1;SETDB1-gRNA4为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA4;
所述特异质粒自上游至下游依次包括如下元件:启动子、操纵子、核糖体结合位点、PRONCN蛋白的编码基因、终止子;所述PRONCN蛋白自上游至下游依次包括如下元件:信号肽、分子伴侣蛋白、蛋白标签、蛋白酶酶切位点、核定位信号、Cas9蛋白、核定位信号;
所述试剂盒的用途为如下(a)或(b)或(c):(a)制备重组细胞;(b)制备表观遗传失调模型猪;(c)制备表观遗传失调细胞模型或表观遗传失调组织模型或表观遗传失调器官模型。
4.一种制备重组细胞的方法,包括如下步骤:将SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白共转染猪细胞,得到重组细胞;SETDB1-gRNA1为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA1;SETDB1-gRNA4为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA4;NCN蛋白为权利要求1中所述的NCN蛋白。
5.一种试剂盒,包括SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和NCN蛋白;
SETDB1-gRNA1为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA1;SETDB1-gRNA4为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA4;NCN蛋白为权利要求1中所述的NCN蛋白;
所述试剂盒的用途为如下(a)或(b)或(c):(a)制备重组细胞;(b)制备表观遗传失调模型猪;(c)制备表观遗传失调细胞模型或表观遗传失调组织模型或表观遗传失调器官模型。
6.一种试剂盒,包括SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和PRONCN蛋白;
SETDB1-gRNA1为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA1;SETDB1-gRNA4为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA4;PRONCN蛋白为权利要求2中所述的PRONCN蛋白;
所述试剂盒的用途为如下(a)或(b)或(c):(a)制备重组细胞;(b)制备表观遗传失调模型猪;(c)制备表观遗传失调细胞模型或表观遗传失调组织模型或表观遗传失调器官模型。
7.一种试剂盒,包括SETDB1-gRNA1、SETDB1-gRNA4和特异质粒;
SETDB1-gRNA1为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA1;SETDB1-gRNA4为权利要求1中所述的SETDB1-gRNA4;特异质粒为权利要求3中所述的特异质粒;
所述试剂盒的用途为如下(a)或(b)或(c):(a)制备重组细胞;(b)制备表观遗传失调模型猪;(c)制备表观遗传失调细胞模型或表观遗传失调组织模型或表观遗传失调器官模型。
8.如权利要求1所述的应用或如权利要求4所述的方法或如权利要求5所述的试剂盒,其特征在于:所述NCN蛋白如SEQ ID NO:3所示。
9.如权利要求8所述的应用或方法或试剂盒,其特征在于:
所述NCN蛋白的制备方法包括如下步骤:
(1)将质粒pKG-GE4导入大肠杆菌BL21(DE3),得到重组菌;
(2)采用液体培养基30℃培养所述重组菌,然后加入IPTG并25℃诱导培养,然后收集菌体;
(3)将收集的菌体进行菌体破碎,收集粗蛋白溶液;
(4)采用亲和层析从所述粗蛋白溶液中纯化具有His6标签的融合蛋白;
(5)采用具有His6标签的肠激酶酶切具有His6标签的融合蛋白,然后采用Ni-NTA树脂去除具有His6标签的蛋白,得到纯化的NCN蛋白;
质粒pKG-GE4中具有SEQ ID NO:1中第5209-9852位核苷酸所示的融合基因。
10.权利要求4或8或9所述方法制备得到的重组细胞。
11.权利要求10所述重组细胞在制备表观遗传失调模型猪中的应用。
12.利用权利要求10所述重组细胞所制备的表观遗传失调模型猪的猪组织、猪器官或猪细胞。
13.权利要求10所述重组细胞、权利要求12所述猪组织、权利要求12所述猪器官、权利要求12所述猪细胞或者利用权利要求10所述重组细胞所制备的表观遗传失调模型猪的应用,为如下(d1)或(d2)或(d3)或(d4):
(d1)筛选治疗表观遗传失调相关疾病的药物;
(d2)进行表观遗传失调相关疾病药物的药效评价;
(d3)进行表观遗传失调相关疾病的基因治疗和/或细胞治疗的疗效评价;
(d4)研究表观遗传失调相关疾病的发病机制。
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