CN115087871A - 脂肪酸量化装置和方法 - Google Patents

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Abstract

本文描述了微流控装置和用于在微流控装置上量化流体样品中存在的脂肪酸和/或特异性促消退介质和/或脂肪酸代谢物的方法。该方法包括从流体样品中提取含有脂肪酸的脂肪酸酯，将提取的脂肪酸酯与水解剂结合以从提取的脂肪酸酯中裂解脂肪酸并形成游离脂肪酸，以及通过对游离脂肪酸进行特定的生物测定来量化游离脂肪酸。本文还描述了微流控装置和在微流控装置上量化流体样品中存在的脂肪酸代谢物的方法。

Description

脂肪酸量化装置和方法
技术领域
本文公开的实施例涉及量化流体样品中分子的装置和方法，更具体地说，涉及在微流控装置上量化流体样品中ω-3脂肪酸和/或脂肪酸代谢物的装置和方法。
背景技术
两大主要的不饱和脂肪酸类是ω-3脂肪酸和ω-6脂肪酸。与所有脂肪酸一样，ω-3和ω-6脂肪酸由碳原子长链组成，链的一端带有羧基，另一端带有甲基。ω-3和ω-6脂肪酸与饱和及单不饱和脂肪酸的区别在于脂肪酸链中碳之间存在两个或多个双键。ω-3脂肪酸的碳-碳双键位于链的甲基端的第三个碳，而ω-6脂肪酸的碳-碳双键位于链的甲基端的第六个碳。
某些食物(如亚麻籽和鱼)以及膳食补充剂(如鱼油)中存在ω-3脂肪酸。虽然存在多种不同的ω-3脂肪酸，但大多数科学研究集中在三种特定的ω-3脂肪酸：α-亚麻酸(ALA)、二十碳五烯酸(EPA)和二十二碳六烯酸(DHA)。ALA包含18个碳原子，EPA包含20个碳原子，DHA包含22个碳原子。DHA的分子结构如式1所示：
Figure BDA0003796029680000011
ω-3脂肪酸在人类饮食和人体生理中起着重要作用。具体来说，ω-3脂肪酸作为形成细胞膜结构的磷脂成分在体内发挥重要作用。尤其是DHA，在视网膜、大脑和睾丸中的浓度特别高。
除此结构作用外，ω-3脂肪酸还为身体提供能量，并用于形成二十烷酸，二十烷酸是细胞信号传导中的重要分子。也有报道称，消退素(如RvD1)是ω-3脂肪酸的代谢副产物，参与炎症消退。炎症与许多慢性疾病有关，例如但不限于癌症和阿尔茨海默病。
一些研究表明，体内低水平的ω-3脂肪酸可能是癌症、心力衰竭、心血管疾病以及孕妇早产风险的指标。ω-3脂肪酸水平也与患者抑郁、关节炎疼痛、糖尿病和体重减轻的风险有关。因此，能够准确测量和量化体内ω-3脂肪酸的水平非常重要。
人体内ω-3脂肪酸水平的量化通常通过测量血浆或血清磷脂中的脂肪酸水平，或通过分析红细胞(红细胞)脂肪酸来完成。传统上，血浆和血清脂肪酸水平更难量化。通过分析红细胞脂肪酸来量化ω-3脂肪酸水平通常需要复杂的实验室分析，并且通常需要很长时间才能收到结果。
护理点诊断测试，定义为在护理点或附近(即在患者护理的时间和地点)进行的医疗诊断测试，与传统的基于实验室的诊断测试相比，为医生和患者提供了方便、快速的结果和低成本。与传统的基于实验室的诊断测试相比，在家测试(即患者直接进行的测试)提供了上述护理点诊断测试的优势，同时具有隐私。
因此，需要在护理点设备中实施用于量化液体中ω-3脂肪酸水平的方法。
发明内容
本文描述了在微流控装置上量化流体样品中存在的脂肪酸的方法。该方法包括从流体样品中提取含有脂肪酸的磷脂；将提取的磷脂与微流控装置上的水解剂结合，从提取的磷脂中裂解脂肪酸并形成游离脂肪酸；通过在微流控装置上执行针对游离脂肪酸的生物测定来量化游离脂肪酸。
本文还描述了在微流控装置上量化流体样品中存在的特异性促消退介质的方法。所述方法包括从流体样品中提取含有脂肪酸的脂肪酸酯；将提取的脂肪酸酯与微流控装置上的水解剂结合，从提取的脂肪酸酯中裂解脂肪酸并形成游离脂肪酸；将游离脂肪酸转化为待在生物测定中检测的特异性促消退介质；通过在微流控设备上执行针对该特异性促消退介质的生物测定来量化特异性促消退介质。
在微流控装置上对流体样品中存在的脂肪酸代谢物进行量化的方法。方法包括从流体样品中提取脂肪酸酯；将提取的脂肪酸酯与微流控装置上的水解剂结合，从提取的脂肪酸酯中裂解脂肪酸；将游离脂肪酸转化为待在生物测定中检测的脂肪酸代谢物；以及通过在微流控装置上执行针对该脂肪酸代谢物的生物测定来量化脂肪酸代谢物。
在一些实施例中，从流体样品中提取脂肪酸酯包括将流体样品与存储在微流控装置上的萃取剂结合。
在一些实施例中，萃取剂是有机溶剂。
在一些实施例中，在微流控装置上将提取的脂肪酸酯与水解剂结合以形成游离脂肪酸后；将游离脂肪酸转化为待在生物测定中检测的脂肪酸代谢物；并且通过使用脂肪酸代谢产物特有的抗体检测脂肪酸代谢产物来量化游离脂肪酸。
在一些实施例中，游离脂肪酸包括DHA，DHA转化为RvD1。
在一些实施例中，通过将DHA与酶结合，将DHA转化为RvD1。
在一些实施例中，酶选自以下组：5-脂氧合酶(5-LOX)、大豆脂氧合酶、12-脂氧合酶(12-LOX)、15-脂氧合酶(15-LOX)、人源ALOX15-2、环氧合酶-1(COX-1)、环氧合酶-2(COX-2)、CyP450、15-LOX和5-LOX的组合，12-LOX和15-LOX的组合以及环氧合酶-2(COX-2)和乙酰水杨酸(ASA)的组合。
在一些实施例中，该方法进一步包括，在微流控装置上将提取的脂肪酸酯与水解剂结合以形成游离脂肪酸后：将生物测定中要检测的游离脂肪酸偶联；以及通过使用共轭脂肪酸特有的抗体检测共轭脂肪酸来量化游离脂肪酸。
在一些实施例中，水解剂是化学水解剂。
在一些实施例中，化学水解剂包含以下一种或多种：氢氧化钾(KOH)、氢氧化钠(NaOH)、氯仿-甲醇中用氢氧化锂脱酰化和/或盐酸(HCl)。
在一些实施例中，水解剂是酶水解剂。
在一些实施例中，酶水解剂选自以下组：脂肪酶、磷脂酶、磷脂酶A(PLA)、磷脂酶A2(PLA2s)、非钙依赖性磷脂酶A2(iPLA2β)、胞质磷脂酶A2(cPLA2s)、脂氧素相关磷脂酶A2(lp-PLAs2)、分泌磷脂酶(sPLA2s)、磷脂酶D，洋葱伯克霍尔德菌(BC)脂肪酶、粘色杆菌脂肪酶、南极假丝酵母脂肪酶A、米根霉(RO)脂肪酶、胰酶以及上述任意两种或多种酶的组合。
在一些实施例中，这些方法还包括在将流体样品与有机溶剂结合之前，使流体样品的体积归一化。
在一些实施例中，将流体样品与萃取剂结合后，使含有萃取脂肪酸酯的样品体积归一化。
在一些实施例中，所述方法包括在使所述流体样品的体积归一化之前将所述流体样品过滤成红细胞和血浆。
在一些实施例中，所述方法包括在使所述流体样品的体积归一化后将所述流体样品过滤成红细胞和血浆。
在一些实施例中，生物测定发生比色反应，以量化游离脂肪酸、特异性促消退介质或脂肪酸代谢产物。
在一些实施例中，生物测定产生电化学响应，以量化游离脂肪酸、特异性促消退介质或脂肪酸代谢产物。
在一些实施例中，生物测定发生可由手机分光光度计检测的响应。
根据另一个广义方面，本文描述了一种用于量化流体样品中脂肪酸的微流控装置。该微流控装置包括：样品制备模块，配置为用于接收流体样品，样品制备模块被配置为：从流体样品中提取含有一种或多种脂肪酸的脂肪酸酯；以及保持有水解剂以从所提取的脂肪酸酯中裂解所述一种或多种脂肪酸并形成游离脂肪酸；以及检测模块，检测模块流体联接至样品制备模块，并配置为从样品制备模块接收游离脂肪酸；其中，样品制备模块和检测模块之一保持有与游离脂肪酸结合的分析试剂，以量化流体样品中的游离脂肪酸。
根据另一个广义方面，本文描述了一种用于量化流体样品中的特异性促消退介质的微流控装置。该微流控装置包括：样品制备模块，其配置为接收流体样品，样品制备模块具有储液器，其配置为：从流体样品中提取含有一种或多种脂肪酸的脂肪酸酯；以及保持有水解剂以从所提取的脂肪酸酯中裂解所述一种或多种脂肪酸并形成游离脂肪酸；以及检测模块，检测模块流体联接至样品制备模块，并配置为从样品制备模块接收游离脂肪酸；其中，样品制备模块和检测模块之一保持有与游离脂肪酸结合的分析试剂，以量化流体样品中的特异性促消退介质。
根据另一个广泛方面，本文描述了一种用于量化流体样品中脂肪酸代谢物的微流控装置。该微流控装置包括用于接收流体样品的样品制备模块，该样品制备模块具有储液罐，配置为：从流体样品中提取含有一种或多种脂肪酸的脂肪酸酯；以及保持有水解剂以从所提取的脂肪酸酯中裂解所述一种或多种脂肪酸并形成游离脂肪酸；以及检测模块，检测模块流体联接至样品制备模块，并设置为从样品制备模块接收游离脂肪酸；其中，样品制备模块和检测模块之一保持有与脂肪酸代谢物结合的分析试剂，以量化流体样品中的脂肪酸代谢物。
在一些实施例中，样品制备模块进一步设置为保持有用于从流体样品中提取脂肪酸酯的萃取剂。
在一些实施例中，萃取剂是有机溶剂。
在一些实施例中，样品制备模块包括血液过滤单元，配置为将全血分离为红细胞(RBC)和血浆。
在一些实施例中，样品制备模块包括归一化模块用于使流体样品的体积归一化。
在一些实施例中，样品制备模块包括配置为接收流体样品的反应室，反应室流体联接至所述储液器，并配置为从所述储液器接收一种或多种有机溶剂和水解剂以与所述流体样品结合。
在一些实施例中，储液器配置为接收流体样品，以将一种或多种有机溶剂和水解剂与流体样品合并。
在一些实施例中，样品制备模块配置为保持一种试剂，该试剂配置为：将游离脂肪酸转化为脂肪酸代谢物，以在生物测定中检测。
在一些实施例中，检测模块配置为保持有一种药剂，该药剂配置为：将游离脂肪酸转化为脂肪酸代谢物，以在生物测定中检测。
在一些实施例中，游离脂肪酸包括DHA，DHA转化为RvD1。
在一些实施例中，通过将DHA与酶结合，将DHA转化为RvD1。
在一些实施例中，酶选自以下组：COX-1、5-脂氧合酶(5-LOX)、12-脂氧合酶(12-LOX)、15-脂氧合酶(15-LOX)、COX-2和5-LOX的组合、环氧合酶-2(COX-2)、15-LOX和5-LOX的组合、12-LOX和15-LOX的组合以及环氧合酶-2(COX-2)和乙酰水杨酸(ASA)的组合。
在一些实施例中，水解剂是化学水解剂。
在一些实施例中，化学水解剂包含以下一种或多种：氢氧化钾(KOH)、氢氧化钠(NaOH)、在氯仿-甲醇中与氢氧化锂脱酰基和/或盐酸(HCl)。
在一些实施例中，水解剂是酶水解剂。
在一些实施例中，酶水解剂选自以下组：脂肪酶、磷脂酶、磷脂酶A(PLA)、磷脂酶A2(PLA2s)、胞质磷脂酶A2(cPLA2s)、iPLA2、非钙依赖性磷脂酶A2(iPLA2β)、脂蛋白相关磷脂酶A2(lp-PLAs2)、分泌磷脂酶(sPLA2s)、磷脂酶D，洋葱伯克霍尔德菌(BC)脂肪酶、粘色杆菌脂肪酶、南极假丝酵母脂肪酶A、米根霉(RO)脂肪酶、胰酶以及上述任意两种或多种酶的组合。
在一些实施例中，归一化模块是一个微通道，配置为在流体样本进入样本制备模块之前将流体样本的体积归一化。
在一些实施例中，微流控装置是横向流动装置。
在一些实施例中，向微流控装置添加流体样品的用户能够期望在大约两小时或更短的时间内收到脂肪酸或SPM或脂肪酸代谢物的量的指示信号。
在一些实施例中，用户将流体样品添加到微流控装置和从微流控装置接收游离脂肪酸或SPM数量指示信号之间的时间段在小于约1分钟到约30分钟的范围内。
在一些实施例中，用户将流体样品添加到微流控装置和从微流控装置接收游离脂肪酸或SPM数量指示信号之间的时间段约为20分钟。
在一些实施例中，脂肪酸为ω-3脂肪酸。
在一些实施例中，脂肪酸为ω-6脂肪酸。
在一些实施例中，脂肪酸代谢产物包括以下一种或多种：脂氧素(Lx)、消退素(Rv)、保护素(PD)、神经保护素(NP)、异呋喃、异前列腺素、maresins(MaR)、促消退介质(例如14-HDHA、17-HDHA、18-HEPE和内源性大麻素)。
在一些实施例中，脂肪酸为ω-3脂肪酸。
在一些实施例中，脂肪酸为ω-6脂肪酸。
在一些实施例中，脂肪酸代谢产物包括一种或多种：脂氧素(Lx)、消退素(Rv)、保护素(PD)、神经保护素(NP)、异呋喃、异前列腺素、促消退介质(例如14-HDHA、17-HDHA、18-HEPE)和maresins(MaR)。
附图简要说明
为了更好地理解本文中描述的各种实施例，并更清楚地显示这些各种实施例可以如何实施，将通过示例的方式参考附图，附图显示了至少一个示例实施例，并且对其进行了描述。附图并不旨在限制本文所教导的范围。
图1显示了根据一个实施例的用于量化ω-3脂肪酸的微流控装置的透视图；
图2A-2D分别显示了根据一个实施例的用于量化ω-3脂肪酸的微流控装置的样品收集区域的俯视图、侧视图、第一透视图和第二透视图；
图3A-C显示放置在各种材料上的流体样品的图像，以确定材料的表面性质(例如亲水性和疏水性)；
图4A和4B显示了证明填充图1的微通道的图像；
图4C显示了从图1装置的样品收集区域去除残余液体的图像；
图4D显示了图1装置的填充的微通道；
图4E显示了倾斜图1的装置以驱动流体穿过疏水部分；
图5A和5B分别示出了根据一个实施例的用于量化ω-3脂肪酸的微流控装置中保持流体的泡罩的侧视图和透视图；和
图6显示了量化液体样品中ω-3脂肪酸的方法的流程图。
本领域技术人员将理解，下文进一步描述的附图仅用于说明目的。这些附图不旨在以任何方式限制申请人的教导范围。此外，应当理解，为了说明的简单和清晰，图中所示的部件不一定按比例绘制。例如，为了清晰起见，一些元件的尺寸可能相对于其他元件被放大。本文描述的示例实施例的其他方面和特征将从以下描述和附图中出现。
具体实施方式
下文将描述不同的设备和方法，以提供每个权利要求实施例的示例。下面描述的任何实施例都不限制任何要求保护的实施例，并且任何要求保护的实施例可以涵盖与下面描述的不同的设备或方法。所要求的实施例不限于具有下文所述任何一个设备或方法的所有特征的设备或方法，也不限于下文所述的多个或所有设备或方法的共同特征。
此外，为了说明的简单和清晰，在认为合适的情况下，可以在附图中重复元件符号，以指示对应的或类似的元件。此外，阐述了许多具体细节，以提供对本文所述示例实施例的透彻理解。然而，本领域技术人员将理解，可以在没有这些具体细节的情况下实践本文描述的示例实施例。在其他情况下，未详细描述众所周知的方法、过程和组件，以避免混淆本文所述的示例实施例。此外，该描述不应被视为限制本文所述示例实施例的范围。
通常，本文描述了用于量化脂肪酸和/或特异性促消退介质(SPM)和/或其他脂肪酸代谢物的装置和方法。SPM已被证明是脂肪酸存在的良好生物标记物，因为SPM是特定母体脂肪酸的脂肪酸代谢产物。例如，促消退介质D1(RVD1)是一种D系列消退素，仅为母体ω-3脂肪酸DHA的脂肪酸代谢产物。因此，如果在样本中测量任何RVD1，则已知在某些情况下，RVD1起源于母体ω-3DHA。
SPM是配体结合分析的优良靶点，因为当亲本脂肪酸被酶转化为SPM时，存在添加到亲本脂肪酸的羟基。脂肪酸向代谢产物SPM的代谢涉及向脂肪酸的碳尾添加羟基。在脂肪酸的碳尾上添加羟基使分子更具立体特异性。也就是说，与形状和结构旋转、折叠和变化的母体脂肪酸分子相比，SPM更有可能具有脊状和不变的3D结构。已经证明，很难开发针对小而灵活的分子的特异和选择性结合机制。然而，开发针对立体特异性分子(例如SPM)的结合机制(例如抗体、适配体等)更有信心。
应注意，本文所述系统、方法和装置可用于测量生理游离脂肪酸、SPM(结合或未结合)或其他脂肪酸代谢物(结合或未结合)的量(例如，通过血液直接检测到生物测定(即无需转化化学))或通过生成游离脂肪酸的化学测定总脂肪酸的量。在此，术语“游离脂肪酸”是指具有生物活性的非结合脂肪酸，而术语“总脂肪酸”是指非结合脂肪酸和结合脂肪酸。
本文所述设备通常被称为微流控设备和/或芯片实验室设备，可在非实验室环境中使用，并简化量化体内脂肪酸和/或脂肪酸代谢物的分析过程。在此，术语“微流控装置”通常指具有一个或多个流体通道、腔室或导管的装置，其具有至少一个内部横截面尺寸，例如深度宽度、长度、直径等，其小于5000μm，并且通常在0.1μm和200μm之间。在一些实施例中，脂肪酸为ω-3脂肪酸或ω-6脂肪酸。
在一些实施例中，本文所述的设备也可以被描述为护理点设备。在此，术语“护理点设备”通常指在患者护理时间和地点或附近使用的设备。
在一些实施例中，本文所述的装置也可以被描述为横向流动装置。在此，术语“横向流动装置”通常指包括一个或多个流体通道、腔室或导管的装置，这些流体通道、腔室或导管自发地驱动流体穿过装置(例如通过毛细管力)。
在一些实施例中，在一个或多个微流控设备上或使用一个或多个微流控设备执行流体样品中脂肪酸和/或脂肪酸代谢物的量化方法。在一些实施例中，向微流控装置添加流体样品的用户能够期望在大约一小时内收到装置的响应，例如但不限于装置上组件的颜色变化和/或基于悬臂生物传感器的电子读数。在一些实施例中，用户向设备添加流体和用户从设备接收响应之间的时间段在小于1分钟到约30分钟的范围内。在一些实施例中，用户向设备添加流体和用户从设备接收响应之间的时间段约为20分钟。在一些实施例中，用户向设备添加流体和用户从设备接收响应之间的时间段小于约20分钟。
应当注意，尽管本文所述的示例和实施例是指提供给微流控设备的样本，并且本文所述方法中使用的样本是血液样本，但其他流体样本可以在本文所述设备和方法中用于测量脂肪酸、游离脂肪酸、SPM或其他脂肪酸代谢物的总量。本文所述方法可用于分析来自任何含有脂肪酸或其衍生物的生物样品的脂肪酸组成。例如，生物样品可以是血液成分，例如全血、血浆、血清、红细胞、血小板、白细胞、胆固醇酯、甘油三酯、游离脂肪酸、血浆磷脂或其混合物。待分析的脂肪酸、SPM或脂肪酸代谢产物可能以各种形式存在于生物样品中，例如甘油三酯、甘油二酯、单甘酯、甾醇酯、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰胆碱、游离脂肪酸等。在本文中，术语“脂肪酸酯”用于指代脂肪酸的来源，包括但不限于甘油三酯、磷脂和胆固醇酯。脂肪酸通常不是以独立的形式存在于生物体中，而是以三大类酯的形式存在：甘油三酯、磷脂和胆固醇酯。在任何一种形式中，脂肪酸都是动物重要为身体提供能量的食物来源，也是细胞的重要结构成分。
微流控装置上流体样品中脂肪酸和/或脂肪酸代谢产物的量化可以通过许多潜在的量化机制之一(下文进一步描述)。例如，流体样品中脂肪酸和/或脂肪酸代谢产物的量化可以基于但不限于可检测信号的产生。可检测信号可以响应，例如，流体样品内电阻率/电化学的变化，当发生结合事件(例如DHA结合)时发生变化的电响应，当材料电阻变化(基于材料结构的变化或改变电性能的化学品的产生)时发生变化，微电极检测流体样品电导率的变化等)、化学发光、磁条读取器、电化学检测或光学检测方法(例如，通过酶联免疫吸附试验(ELISA)或荧光测量产生的比色反应(颜色变化)等)。
现在参考图1，其中所示为根据一个实施例的用于量化流体样品中的脂肪酸(例如但不限于ω-3脂肪酸或ω-6脂肪酸)和/或脂肪酸代谢物的微流控装置100。流体样品可以是任何预期含有脂肪酸和/或相关脂肪酸代谢产物的流体样品。
例如，微流控装置100可配置为量化全血中的脂肪酸水平和/或脂肪酸代谢物水平。在一些实施例中，微流控设备100可配置为在量化ω-3脂肪酸水平和/或脂肪酸代谢物水平之前将全血分离为红细胞(RBC)和血浆。然后，微流控设备100可以量化血清(例如，不含凝血因子的血浆(即纤维蛋白原))中的ω-3脂肪酸水平和/或脂肪酸代谢物水平。
在其他实施例中，微流控设备100可配置为量化除全血外的液体样本中的脂肪酸水平和/或脂肪酸代谢物水平。例如，微流控设备100可配置为量化液体样本(例如但不限于唾液、母乳和/或精液)中的ω-3脂肪酸和/或脂肪酸代谢物水平。
通常，本文描述的微流控设备包括两个模块：样品制备模块120和检测模块130。在一些实施例中，样品制备模块120和检测模块130可以组合成单个单元(如下所述)。在一些实施例中，本文所述的微流控设备可以包括两个以上的模块。例如，本文所述的微流控装置可包括剂量单元(或样品归一化)模块110，用于在流体样品进入样品制备模块120之前归一化流体样品的体积。在图1所示的实施例中，微流控设备100包括剂量单元模块110。此外，在一些实施例中。此外，本文所述的微流控设备可以包括样品制备模块120和/或检测模块130的子模块。这些子模块可用于在不同步骤中对流体样品进行化学处理。
图1所示的微流控设备100包括基板102，其中形成至少一个微通道104，例如但不限于通过微加工工艺。微流控设备100可以由一种或多种材料制成。例如，通常在实验室环境中使用的玻璃载玻片可以用作基板102。玻璃载玻片通常价格低廉，常用于各种其他分析设备中。此外，玻璃载玻片通常具有亲水性表面处理，以增强流体在至少一个表面上的扩散。为了在玻璃物体载玻片中形成微通道104，玻璃载玻片可以经过微加工过程，例如但不限于蚀刻过程。
在另一个示例中，压敏胶带(PSA)也可用于形成微流控装置100的微通道104。可能使用的特定PSA示例包括但不限于ARcare
Figure BDA0003796029680000101
(粘合剂研究)、ARcare
Figure BDA0003796029680000104
(粘合剂研究)、ARcare
Figure BDA0003796029680000102
(粘合剂研究)和
Figure BDA0003796029680000103
(粘合剂研究)。
在另一个示例中，聚二甲基硅氧烷(PDMS)可单独或通过与一个或多个PDMS和/或一个或多个玻璃结构结合在一起用于形成基板102和微通道104。在该示例中，PDM形成基板102可经历等离子体激活以改变PDM的一个或多个表面性质，例如从疏水性改变为亲水性。等离子体激活可促使流体流过PDM表面。等离子体处理也可用于在微流控装置100中的一个材料表面内具有不同的表面渲染(例如亲水和疏水部分)，例如，以提供对流体流过材料表面的控制程度。
在一些实施例中，基板102也可由吸收膜材料制成，流体样品放置在基板102的顶面上后，可吸收到基板102中，并横向穿过基板102。
在一些实施例中，剂量单元模块110包括样本收集区域115，见图2A至2C，位于微流控装置100的第一端101。样本收集区域115被配置为接收流体样本并将流体样本提供给剂量单元110(即微通道104)。流体样本可在样本收集区域115以任何适当方式接收，例如但不限于直接从注射器接收。在其他实施例中，例如但不限于图2A和2B所示的实施例，样品收集区域115可配置为刺穿用户的手指，以直接从用户接收流体样品。
在一些实施例中，样本收集区域115可配置为通过在膜(例如，结合玻璃纤维或不对称聚砜)上表面施加血液来执行血液分离。在一些实施例中，可能需要用物质预处理样品收集区域115的表面，以抑制样品收集区域115中的凝结。常用的抑制凝血的化合物包括但不限于乙二胺四乙酸(EDTA)和肝素。应了解，样品收集区域115中抑制凝血的物质不应与液体样品中的DHA和/或EPA发生反应。图2D示出了一个示例实施例，其中膜116包围样品收集区域115。膜116的一个或多个表面可以用抗凝剂预处理以抑制流体样品的凝结。
在一些实施例中，担心DHA可能在样品收集区域115上氧化，例如在一些实施例中，液体样品在进行生物测定之前临时储存，可在样品收集区域115中包括一种或多种抗氧化剂，以抑制DHA的氧化。例如，丁基羟基甲苯(BHT)等可用于抑制DHA氧化。
样本收集区域115在微通道104的入口105处耦合到微通道104。微通道104在入口105和出口107之间提供流体样品的流体通道。例如，在图1所示的实施例中，微通道104被配置为将流体从样品收集区域115吸入微通道104，并沿着微通道104朝向出口107。在至少一个实施例中，微通道104具有长度为L1的亲水部分106，并且通过毛细力将流体从样品收集区域115吸入微通道104。
微通道104是在流体样品进入样品制备模块120之前使流体样品体积归一化的结构的一个实施例(即，向样品制备模块120提供规定体积的流体样品)。流体样品归一化对于准确量化流体样品中分析物的浓度非常重要。例如，流体归一化很重要，以便可以将以下分析(例如光学、比色或电化学分析)的量化响应与校准标尺进行准确比较。
在图1所示的实施例中，在微通道104中实现流体样品体积的归一化。微通道104具有长度L2的疏水部分108(见图1)，其与亲水部分106相邻。亲水部分106和疏水部分108一起延伸在样品收集区域(未示出)和样品制备模块120之间。当流体进入微通道104的入口105时，流体沿着微通道104被吸入，直到流体到达微通道104的疏水部分108。一旦流体的至少一部分到达疏水部分108，流体停止沿着微通道104移动。当流体样品充满微通道104的亲水部分106时，可以从样本收集区域中去除多余的流体，并且留在微通道104的亲水部分106中的流体可以称为流体样本的定义体积(即充满微通道104的亲水部分106的流体体积)或流体的归一化体积。
微通道104在图中显示为沿入口105和出口107之间的长度L具有一般的直线形式，然而，应当理解，微通道104可以具有不同的尺寸和/或形状。
参考图3A-3C，其中所示为放置在各种材料上的流体样品的图像，以确定用于微流控装置100的材料的表面性质(例如亲水性和疏水性)。在这些实验中，测量了具有不同表面处理(未处理、清洗和等离子体处理)(图3A)、四种不同胶带(图3B)和三种不同聚合物(COC、COP和PMMA)的三种不同PDMS样品上10μl液滴的接触角，每个样品具有两种不同的表面处理(未处理和等离子体处理)(图3C)。在这些实验中，液体样本是经过EDTA处理以防止样本内凝结的血液。
如图3A-3C所示，当比较未处理和处理的(等离子体)表面时，PDMS、不同的胶带和不同的聚合物在接触角上表现出变化。当在微流控装置100中使用这些材料时，接触角差对微通道104内的毛细管力有影响，并且从亲水表面到疏水表面的变化可以用作流动屏障，以使流体样品的体积归一化。
在一些实施例中，过滤器(未显示)可位于样品收集区域115和微通道104之间，以在流体样品进入微通道104之前过滤流体样品中的碎屑和/或其他杂质。在一些实施例中，过滤器可以定位在样本归一化模块110之前。在这些实施例中，被归一化的流体样本可以是血浆，并且过滤器可以接收全血样本并将血浆提供给样本归一化模块110。在其他实施例中，过滤器可定位在样品归一化模块110之后和样品制备模块120之前。在这些实施例中，被归一化的流体样品可以是全血。过滤器可以将血浆直接提供给样品制备模块120。
例如，在一些实施例中，流体样品为血液样本(即全血)，可以通过过滤器将全血中的红细胞(RBC)与全血中的血浆(即血液的液体部分)分离。一旦红细胞从血浆中去除，血浆通常是一种更清洁的溶液，具有更少的生物碎屑，脂肪酸可以更容易地从中提取并更准确地捕获(如下所述)。过滤是一种成熟的方法，用于从全血中分离红细胞以生成血浆，过滤器可在市场上买到。例如，可使用的商用过滤器包括但不限于LF1玻璃纤维过滤器(通用电气医疗集团)和Vivid血浆分离GF/GX/GR膜(颇尔公司)。
在一些实施例中，一旦微通道104已充满流体，并且任何多余的流体已从样品收集区域移除，或以其他方式被禁止进入微通道104，则机械力或另一种力(例如重力)，可应用于微流控装置100以驱动微通道104内的流体样本从亲水部分106通过疏水部分108进入样本制备模块120。例如，在一些实施例中，微流控装置100可以倾斜，使得亲水部分106中包含的流体样本通过疏水部分108并进入样本制备模块120。这一示例如图4所示，其中图4A和4B示出了微通道104的填充，图4C示出了去除残余流体，图4D示出了倾斜之前填充的微通道104，图4E示出了倾斜微流控设备100以驱动流体穿过疏水部分108以进行进一步处理。
应该理解，也可以使用其他合适的方法进行流体归一化。例如，在不限制前述内容的情况下，可以通过基板102(例如膜)的最大浸泡容量来控制血浆体积的归一化。在此示例中，基板102可包含一个或多个膜。当基板102包括一个以上的膜时，膜可以相对彼此横向定位，并从样品收集区域115(例如样品垫)向下层叠至吸收垫。当流体样品被样品垫吸收时，它可能会横向穿过一个或多个其他膜(例如共轭垫、检测膜等)向吸收垫移动。当流体样品被吸收垫吸收时，一旦达到吸收垫的浸泡能力，流体进入吸收垫的横向流动将停止，靠近吸收垫的垫将充满流体。重复该过程，直到包含基板102的每个膜达到其浸泡能力，并且流体停止横向流动。多余的液体随后可在样品收集区域115的上表面上干燥。因此，例如，通过检测区域的流体体积与添加的血液体积无关。
在图1所示的实施例中，样品制备模块120和检测模块130显示为两个单独的单元。然而，应当理解，在一些实施例中，样品制备模块120和检测模块130可以组合成一个单元，以接收流体样品和一个或多个用于保持反应物(例如，但不限于有机溶剂和/或水解剂，如下所述)的储液器。在一些实施例中，样品制备模块120包括用于保持例如萃取剂(例如有机溶剂)和/或其他试剂的储存器。在一些实施例中，有机溶剂和/或其他试剂(例如水解和SPM酶)不包含在储液器中，而是结晶或冻干，或以其他方式存储在基板102(例如膜)中或其上，然后在暴露于样品时重组或激活。在其他实施例中，样品制备模块120可包括两个或多个子模块，每个子模块包括零个、一个或多个用于保持有机溶剂和/或水解剂或其他试剂的储液器。
在图1所示的实施例中，样品制备模块120包括储液器122和将储液器122连接到检测模块130的微通道124。同样，可以以先前关于微通道104讨论的任何方式将储液器122和微通道124形成到基板102中。在样品制备模块120内，流体样品可经历一个或多个过程以形成准备好的流体样品。一个或多个过程可以包括但不限于提取过程、水解过程和将准备好的流体样品提供给检测模块130的转化过程。下面更详细地描述用于形成所述准备好的流体样品的提取过程、水解过程和转化过程中的每一个。提取过程、水解过程和转化过程中的每一个都可以在样品制备模块的单个储液器中、在具有一个或多个其他过程的储液器中或在独立储液器中进行。在一些实施例中，样品制备模块120可以包括用于将要发生的提取过程、水解过程和转化过程中的一个或多个的子模块。
在一些实施例中，准备好的流体样品包括消退素D1(RvD1)。因此，样本制备模块120的储液器(例如但不限于储液器122)可配置为保持一种或多种流体，以与从微通道104接收的流体样本相结合，以进行一种或多种制备所述准备好的流体样本的过程。如上所述，基板102还可以配置为保持一种或多种与流体样品结合的流体，以进行一种或多种制备所准备好的流体样品的过程。
在某一实施例中，可以通过使用泡罩125来存储和保持样本制备模块120的储液器122(以及检测模块130，如下所述)中的流体，以与流体样本结合以形成准备好的流体样本。泡罩125的示例如图5A和5B所示。通常，泡罩125是一个单独的腔室，其中包含规定体积的流体126，该流体126与微流控设备100的其余部分流体连接(例如，与储液器122的反应室129流体连接)，但连接被屏障127阻碍。通过破坏流体126和反应室129之间的屏障127，可以恢复流体126与反应室129的连接。在一些实施例中，屏障127可以是薄铝箔。
在另一个示例中，将流体保持在储液器122中的另一种方法是降低样品流体的流速。这可以通过改变微通道的直径或应用具有不同性质(例如孔隙率)的膜来实现。
在另一个示例中，可能适合将一些化学品作为冻干剂直接储存在储液器122中。冻干物也可储存在储液器122内的表面(例如膜)上。冻干剂与液体样品(或其他液体)接触时可以溶解。
回到图1所示的微流控装置100的实施例，如图1所示，检测模块130与样品制备模块120流体联接，并从样品制备模块120接收至少一部分准备好的流体样品。在检测模块130中，对准备好的流体样品进行生物测定，以量化该准备好的流体样品的成分(例如RvD1)。例如，在一些实施例中，生物测定可包括在竞争ELISA(或夹心ELISA)中使用RvD1抗体来量化液体样本中的RvD1。在其他实施例中，生物测定可包括使用RvD1适体来量化流体样品中的RvD1。在其他实施例中，生物测定可包括使用功能化到悬臂生物传感器上的RvD1抗体或适体来量化流体样品中的RvD1。
在一些实施例中，在检测模块130中执行的生物测定可导致检测模块130内组件的颜色变化。微流控设备100的用户可以看到颜色变化，并用于量化流体样品中的脂肪酸。例如，在一些实施例中，链霉亲和素(streptavin)可与报告分子(例如辣根过氧化物酶)结合并与生物素结合以诱导微流控设备100的用户可以看到的颜色变化。在一些实施例中，可以使用标签，例如纳米金珠、纤维素纳米珠或乳胶纳米珠。
在一些实施例中，可以使用其他机制来量化液体样品中的脂肪酸和/或脂肪酸代谢产物。例如，可以使用基于RvD1抗体覆盖的悬臂生物传感器的电读数。电读数可以基于悬臂生物传感器的压阻效应，例如在施加机械应变(例如，游离脂肪酸与之结合)时形成悬臂生物传感器的半导体或金属的电阻率变化。
现在参考图6，其中所示为量化液体样品中脂肪酸和/或脂肪酸代谢物的方法400。方法400包括，在步骤405，从流体样品中提取具有脂肪酸的脂肪酸酯(例如甘油三酯、磷脂和/或胆固醇酯)，在步骤410，从提取的脂肪酸酯中水解(即裂解)脂肪酸以形成游离脂肪酸；并且，在步骤420，使用微量生物测定法对游离脂肪酸进行量化。在一些实施例中，方法400还包括在步骤415，将游离脂肪酸转化为将使用生物测定检测的脂肪酸代谢产物。以下详细描述了这些步骤中的每一步。
应当理解，在一些实施例中，本文所述的流体样品中脂肪酸的量化方法可以包括从脂肪酸酯水解脂肪酸，并将游离脂肪酸转化为脂肪酸代谢产物(例如RvD1)，而无需从流体样品中提取脂肪酸酯。
还应理解，在一些实施例中，本文所述的方法也可用于量化液体中的脂肪酸代谢产物水平，脂肪酸代谢产物包括但不限于存在于以下代谢产物组中的脂肪酸代谢产物：SPM、前列腺素、内源性大麻素、类花生酸、白三烯和脂氧素。
还应了解，在一些实施例中，本文所述方法也可用于量化DHA代谢产物，包括但不限于DHA衍生的SPM、DHA环氧化物、DHA的亲电子含氧衍生物(EFOX)、神经前列烷、乙醇胺、酰基甘油、氨基酸或神经递质的二十二碳六烯酰胺和羟基脂肪酸的支链DHA酯。
还应理解，在一些实施例中，本文所述方法还可用于量化脂肪酸代谢产物，包括可用作ω-3脂肪酸水平的生物标记物或独立于ω-3脂肪酸水平检测自身的ω-3介体(例如测量内源性大麻素水平，并根据内源性大麻素水平而不是ω-3水平做出健康声明)，通过直接检测或酶或化学转化。这些脂肪酸代谢产物，包括ω-3介体，可能包括但不限于：2-花生四烯酸甘油(2-AG)、2-花生四烯酸甘油溶血磷脂酸(2-AG-LPA)、2-花生四烯酸溶血磷脂酰肌醇(2-AG-LPI)、2-二十二碳六烯酸甘油(2-DHG)、2-环氧二十碳三烯酸甘油(2-EET-EG)、2-二十碳五烯醇甘油(2-EPG)、肾上腺素(AdA)、花生四烯酰胺(anandamide)(AEA)、N-二十二碳六烯醇乙醇胺(synaptamide)(DHEA)、二羟基二十二碳六烯酸(DiHDoHE)、二羟基二十二碳五烯酸(DiHDPE)、二羟基二十碳五烯酸(DiHEPE)、二羟基二十碳四烯酸(DiHETE)、二羟基二十碳三烯酸(DiHETrE)，环氧二十二碳五烯酸(EDP)、环氧二十碳三烯酸(EET)、环氧二十碳三烯酸乙醇酰胺(EET-EA)、环氧二十碳四烯酸(EETeTr)、亲电脂肪酸氧代衍生物(EFOX)、二十碳五烯酸(EPA)、环氧二十碳五烯酸(EpDPE)、正二十碳五烯醇胺(EPEA)、环氧二十碳五烯酸(EpETE(EEQ))，环氧二十碳三烯酸(EpETrE)、甘油磷酸花生四烯酸乙醇酰胺(GP-NAPE)、羟基二十二碳六烯酸(HDoHE)、羟基环氧二十二碳五烯醇乙醇酰胺(HEDPEA)、羟基环氧二十碳三烯酸乙醇酰胺(HEET-EA)、羟基二十碳五烯酸(HEPE)、羟基二十碳四烯酸(HETE)、羟基二十碳四烯酸乙醇酰胺(HETE-EA)，羟基七碳三烯酸(HHTrE)、4-羟基己烯醛(HHE)、氢过氧二十二碳六烯酸(HpDoHE)、氢过氧二十碳五烯酸(HpEPE)、氢过氧二十碳四烯酸(HpETE)、肝素(Hx)、Maresin(MaR)、(神经)保护D1((N)PD1)、N-酰基磷脂酰乙醇胺-选择性磷脂酶D(NAPE-PLD)、N-花生四烯醇磷脂酰乙醇胺(NArPE)，氧代二十碳四烯酸(oxo-EET)、磷烷酰胺(PAEA)、保护蛋白(PD)、磷酸二酯酶(PDE)、磷脂酰乙醇胺(PE)、前列腺素D代谢物(PGD)、前列腺素E代谢物(PGE)、前列腺素F代谢物(PGF)、前列腺素E、D或F或前列环素合酶(PGS)、消退素D系列(RvD)、消退素E系列(RvE)和硬脂酸(SDA)。
提取
为了量化流体样品中的脂肪酸(例如ω-3或ω-6脂肪酸)和/或脂肪酸代谢产物，在一些实施例中，流体样品可在步骤405暴露于(即结合)萃取剂(例如但不限于有机溶剂iPLA2、iPLA2-β等)从流体样品中提取(即去除)含有脂肪酸的脂肪酸酯。在一些实施例中，流体样品是血液样本，并将血液样本与萃取剂结合从血液样本的血浆中萃取脂肪酸酯。
在一些实施例中，可将萃取溶剂和流体样品混合以进行萃取。可通过被动混合(例如在微通道中)或主动混合来混合萃取溶剂和流体样品。
在一些实施例中，萃取过程的效率和可靠性以及完成萃取过程所需的时间可以通过在萃取过程中加热或冷却流体来控制。因此，样品制备模块120可以配置为在提取步骤405期间加热和/或冷却。
在一些实施例中，在微通道104中的流体样品体积已归一化后发生步骤405。
在步骤405中，流体样本由微流控装置100的样本制备模块120接收。在样品制备模块120中，将流体样品(例如血浆)与保持在样品制备模块120(例如储液器122)中的提取溶液结合，以提取包含流体样品中存在的一种或多种脂肪酸的脂肪酸酯。
在一些实施例中，提取溶液包括有机溶剂以提取包含脂肪酸的脂肪酸酯。可以使用各种溶剂，包括但不限于有机溶剂，例如Folch提取法中适用/使用的有机溶剂(例如，氯仿和甲醇的混合物，其比例约为氯仿的两份与甲醇的一份(例如，按重量计)或二氯甲烷和甲醇的类似比例的混合物)和Bligh Dyer提取法中适用/使用的有机溶剂(例如，约一份氯仿与约两份甲醇的混合物(例如，按重量计))。
应注意，上述Folch提取法和Bligh Dyer提取法均通过破坏蛋白质和脂质之间的氢键或静电力，从基于氯仿和甲醇(MeOH)的溶液中提取脂质。因此，任何能够以这种方式提取脂质的有机溶剂也可适用于从流体(例如血浆)中提取脂肪酸(例如ω3或ω-6脂肪酸)，例如但不限于：酸化Bligh Dyer提取法；Dole法(例如，1mL血浆到5mL Dole试剂(例如，40mL异丙醇、10mL庚烷和1mL 1M硫酸)、3mL庚烷、2mL水)；氯仿：甲醇约为2:1的混合物；己烷：二氯甲烷：2-丙醇约为20:10:1的混合物；BF3-甲醇的混合物；丁醇；乙酸乙酯；甲醇钠；Radin’s法(例如，约3:2己烷：异丙醇)；甲醇叔丁基甲醚(MTBE)；甲醇一步法(例如，将2μL血浆或血清添加到1mL甲醇中)；正己烷；Sigma-Aldrich脂肪酸提取试剂盒应用于芯片；一步法(例如Lapage和Roy在甲醇-苯4:1和乙酰氯中进行的1小时直接酯交换过程绕过了所有这些步骤，适用于简单(甘油三酯)和复合脂质(胆固醇酯、磷脂和鞘磷脂)的分析)。
在一些实施例中，使用渗透压、等渗萃取、酶辅助萃取和/或离子液体或一种或多种方法的任何组合等方法，在不使用有机溶剂的情况下实现对含有脂肪酸的脂肪酸酯的萃取。
在一些实施例中，在提取步骤405之后，可对流体样品进行富集，以获得含有更多脂肪酸酯和来自血浆/血液/流体样品的更少生物碎片的样品。可使用嵌入微流控装置100中的磷脂盒实现萃取后流体样品的富集。例如，可以使用
Figure BDA0003796029680000171
-磷脂技术。在该示例中，根据一个实施例，可使用以下方法来富集流体样品：i)可使用乙腈中的甲酸溶液(例如1wt％)调节滤筒；ii)流体样品可与1wt％甲酸溶液在乙腈中混合；iii)可以将100微升血浆添加到与300微升沉淀溶剂组合的富集过滤器中；iv)混合或搅拌溶液；v)混合或搅拌的溶液通过过滤器抽出，以从溶液中分离脂肪酸酯；vi)用络合剂和/或碱(例如但不限于5％氢氧化铵溶液)从过滤器中洗出脂肪酸酯；向脂肪酸酯中加入甲醇。
水解
一旦从流体样品中提取出含有脂肪酸的脂肪酸酯，在步骤410，水解提取的脂肪酸酯以从脂肪酸酯中裂解脂肪酸并生成游离脂肪酸。在一些实施例中，步骤410和步骤405均发生在样品制备模块120的反应室中。在一些实施例中，步骤410和步骤405发生在样品制备模块120的单独反应室中。
在一些实施例中，提取的脂肪酸酯由水解剂水解，以从脂肪酸酯中裂解脂肪酸。在一些实施例中，水解剂可以从脂肪酸酯中选择性地裂解脂肪酸。例如，水解剂可以从提取的脂肪酸酯中选择性地裂解一个或多个ω-3脂肪酸。例如，水解剂可以从提取的脂肪酸酯中选择性地裂解AA、EPA和DHA中的一种或多种。
在一些实施例中，水解剂可以是酶水解剂，以从提取的脂肪酸酯中酶切一个或多个脂肪酸。酶水解剂也可保持在微流控装置100的样品制备模块120中。例如，酶水解剂可保持在微流控装置100的储液器122中。
应当理解，基于脂肪酸在磷脂上的位置和不同磷脂酶攻击不同磷脂键的趋势，可以从脂肪酸酯中选择性地裂解ω-3脂肪酸。例如，ω-3脂肪酸通常位于脂肪酸酯的sn-2位置。磷脂酶A根据其攻击的酰基酯键进行分类。由于ω-3往往位于磷脂的sn-2位置，PLA2酶可用于生成游离ω-3脂肪酸。也可以使用磷脂酶B(PLB)，也称为溶血磷脂酶，因为它们可以攻击两种磷脂键。
脂肪酶是一种天然存在的酶(与人体中一样)，也能水解脂肪酸酯。在一些实施例中，脂肪酶可与磷脂酶组合使用或单独使用以生成游离脂肪酸。
在一些实施例中，可通过在样品制备模块120内酶解提取的脂肪酸酯，从提取的脂肪酸酯中裂解游离脂肪酸。这可以通过将酶水解剂与提取的脂肪酸酯结合以及可选地混合来实现。
在这些实施例中，可在高温下对提取的脂肪酸进行酶水解。例如，化学水解可在约10℃至约100℃的范围内，或在约20℃至约50℃的范围内，或在约30℃至约40℃的范围内，或在约37℃的温度下发生。
在一些实施例中，可能适合在酶水解剂中使用的酶包括但不限于：脂肪酶、磷脂酶、磷脂酶A、磷脂酶A2、cPLA2、iPLA2、sPLA2、来自蜂毒的磷脂酶A2、磷脂酶D、洋葱伯克霍尔德菌(BC)脂肪酶粘色杆菌脂肪酶、南极假丝酵母脂肪酶A、米根霉(RO)脂肪酶，根据Diteba实验，胰脂肪酶、脂氧合酶(例如LOX)，例如5-LOX-5、12-LOX、15-LOX(ALOX15或ALOX15B)、人源ALOX15-2以及胰酶脂肪酶和PLA2(1:1)的组合。其他酶可能包括但不限于CYp450细胞色素P450酶，特别是细胞色素P450酶的Cyp1家族。这包括但不限于CYP1A2、CYP2C8、CYP2C9、CYP2D6、CYP2E1和/或CYP3A4。其他酶可包括但不限于水解酶，包括可溶性环氧化物水解酶(sEH)、谷胱甘肽S-转移酶(GST)和细胞色素P450超家族的几个成员(环氧酶、u-水解酶)、15-羟基前列腺素脱氢酶、15PGDH、脂肪酸酰胺水解酶(FAAH)，
在一些实施例中，可能适合用于酶水解剂的酶包括但不限于：环氧合酶(例如COX)，例如环氧合酶-2、环氧合酶-1。
在一些实施例中，胰酶脂肪酶和磷脂酶A2的组合可适合包括在本文所述方法和装置中的水解剂中。例如，通过以下方法制备的酶混合物可能适合作为本文所述方法和装置中的水解剂：通过以下方法制备胰酶脂肪酶混合物：i)向小瓶中添加20mg胰脂肪酶；ii)向小瓶中添加500微升缓冲液；和iii)混合小瓶的内容物；以及通过以下方法制备磷脂酶A2混合物：i)称取约5mg磷脂酶A2到小瓶中；ii)向小瓶中添加500微升缓冲液；和iii)混合小瓶内容物。由此产生的酶混合物可以是1:1磷脂酶A2混合物：胰酶脂肪酶混合物(例如，混合200微升胰酶脂肪酶溶液和200微升磷脂酶A2)。
制备上述酶混合物后，可将水解剂制备血浆：缓冲溶液：酶混合物为100uL:100uL:50uL(即2:2:1)的混合物。在一些实施例中，水解剂的缓冲溶液可以是消化缓冲液：0.1MTris-HCl，pH值为9.0。
在一些实施例中，水解剂可以是化学水解剂，以从提取的脂肪酸酯中化学裂解一个或多个脂肪酸。化学水解剂可保持在微流控装置100的样品制备模块120中。例如，化学水解剂可保持在微流控装置100的储液器122中。
在这些实施例中，萃取脂肪酸的化学水解可在高温下发生。例如，化学水解可在约10℃至约100℃的范围内，或在约20℃至约50℃的范围内，或在约30℃至约40℃的范围内，或在约36℃的温度下发生。
在一些实施例中，微流控装置100可包括一个或多个微加热器，以提高用于化学水解的装置的温度。
在其他实施例中，可以使用外部加热器向微流控设备100提供热量，或者可以将加热电阻器或电磁辐射的使用集成到微流控设备100中，以提高微流控设备100的温度。例如，帕尔贴元件可以集成到微流控设备100中。在另一个示例中，可以使用焦耳加热温度控制方法，例如但不限于使用交流电流对离子液体进行焦耳加热。
在另一个实施例中，可以使用微波加热微流控装置100。
在另一个实施例中，微流控装置100可包括一个或多个储液器(例如，位于样品制备模块附近和/或下方)，用于给一个或多个放热化学反应提供场所，以向微流控装置100提供热量。例如，97wt％硫酸(试剂1)在水中(试剂2)的溶解可用于向微流控装置100提供热量。
类似地，在一些实施例中，提取的脂肪酸的化学水解可包括借助以下一种或多种的水解：氢氧化钾(KOH)、氢氧化钠(NaOH)、与氯仿-甲醇(例如比例在2:8左右)中的氢氧化锂脱酰基、弱碱和/或盐酸(HCl)。
在一些实施例中，化学水解剂可以是氯仿和甲醇的比例分别为4:6的混合物，碱约为0.1M(例如0.01-1M)。碱可以是但不限于以下碱之一：氢氧化钾、磷酸酯、氢氧化钠、氢氧化锂、碳酸氢钠、甲醇锂和氢氧化四乙胺。
在一些实施例中，化学水解剂可以是在0.1M氢氧化钠中甲醇和水的比例为2:3的混合物。
在一些实施例中，化学水解剂可以是在0.1M氢氧化钠中氯仿和乙醇比例为2:3的混合物。
酶水解剂通常需要比化学水解剂更温和的条件，化学水解剂可用于从提取的脂肪酸酯中裂解脂肪酸。此外，酶水解剂可以更准确地从提取的脂肪酸酯中选择性地裂解多不饱和脂肪酸，如ω-3脂肪酸。
转化
在一些实施例中，在步骤405提取脂肪酸酯并在步骤410水解脂肪酸后，可能需要将游离脂肪酸转化为脂肪酸代谢产物，该代谢产物可在步骤415使用生物测定进行量化。
例如，在一些实施例中，当步骤410期间形成的游离脂肪酸为DHA时，DHA可在步骤415转化为消退素D1(RvD1)、17(R)-羟基或17(S)-羟基。
在其他实施例中，当步骤410期间形成的游离脂肪酸为DHA时，可在步骤415将游离DHA转化为可使用生物测定进行量化的另一脂肪酸代谢产物，例如但不限于：17-羟基DHA、14-羟基DHA-消退素D2(RvD2)、消退素D3、消退素D4、消退素D5、消退素D6、Maresin 1(Mar1)、Maresin 2、异呋喃、异前列腺素和PDX，神经保护素D1(NPD1)、PD1n-3(10,17-二羟基-7,11,13,15,19-DPA)、PD2n-3(16,17-二羟基-7,10,12,14,19-DPA)或这些SPM的阿司匹林触发形式(例如At-RvD1或类似物)。应该理解的是，如果在ASA和Cox-2存在的情况下产生SPM，它们就会形成阿司匹林触发的SPM。在一些实施例中，阿司匹林触发的SPM比非阿司匹林触发的SPM更稳定。所有消退素(例如D和E系列消退素)可能以其阿司匹林触发形式存在。
在其他实施例中，步骤410期间形成的游离脂肪酸可能不需要转化为脂肪酸代谢物，以通过生物测定进行检测。例如，当游离脂肪酸是AA、DHA、DPA或EPA中的一种或多种，或其代谢产物之一时，可能没有必要转换AA、DHA、DPA或EPA以通过生物测定进行检测。在一些实施例中，EPA的靶点可包括但不限于消退素E1、消退素E2、消退素E3或18-HEPE，或这些SPM的阿司匹林触发形式(例如At-RvE1)。
在一些实施例中，步骤410期间形成的游离脂肪酸可与另一分子共轭，以促进脂肪酸的检测和量化。
在一些实施例中，脂肪酸(例如DHA)可与辅酶A(例如CoA)、视紫红质、槟榔碱或共轭DHA(例如CDHA-共轭脂肪酸是具有共轭双键的位置和几何异构体)等共轭。在一些实施例中，脂肪酸共轭可通过酰基辅酶A合成酶6(Acsl6)进行。
在一些实施例中，可将含有游离DHA的溶液暴露于酶溶液中，以将游离DHA转化为RvD1。在一些实施例中，含有游离DHA的溶液移动到微流控装置100上的后续储液器中，以暴露于酶溶液中，以将游离DHA转化为RvD1。在其他实施例中，含有游离DHA的溶液可与微流控装置100的储液器122内的酶溶液结合，以将游离DHA转化为RvD1。
应注意，步骤415的转化可在与上述萃取和水解过程相同的反应室中发生。或者，水解和转化过程可能发生在同一反应室中，提取可能需要单独的反应室。或者，提取和水解过程可能发生在同一反应室中，转化过程可能需要单独的反应室。或者，所有三个提取、水解和转化过程都可以在单独的反应室中进行。
此外，如上所述，关于样品制备模块120，在任何一个或多个提取、水解和/或转换过程中使用的化学品可以封装并存储在反应室中，或者可以存储在与反应室流体耦合并与反应室中的样品结合的储液器中。
在一些实施例中，可以使用“一锅”反应将液体样品中的DHA转化为RvD1。在本文中，“一锅”反应是指两种酶在同一反应室中发生转化的反应(例如，两种酶同时存在)。应注意的是，液体样品中的DHA在变为RvD1时在同一反应室中经历多次反应。
例如，液体样品中的DHA可以使用：马铃薯5-LOX或大豆LOX(IV型；来自Sigma)转化为RvD1。在一些实施例中，当使用大豆LOX时，DHA(例如2mg)可与大豆LOX(100千单位，701千单位/mg蛋白质，3.6mg蛋白质/mL)在4℃的硼酸盐缓冲液(5mL，pH 9.3)中孵育，以将DHA转化为RvD1。
生物测定
在一些实施例中，不需要将溶液中的游离脂肪酸转化为待量化的脂肪酸代谢物，可通过执行生物测定直接量化游离脂肪酸。
在一些实施例中，SPM或脂肪酸代谢物可直接量化，而无需转化ω-3脂肪酸。该方法可能不需要样品储液器和反应室。该实施例可能只需要样品归一化，然后将归一化样品、全血或血浆暴露于SPM生物测定。该机制可用于直接量化SPM或将ω-3量化为生物标记物。
在需要将溶液中的游离脂肪酸转化为待量化的脂肪酸代谢产物的一些实施例中，可通过执行生物测定来量化游离脂肪酸的脂肪酸代谢产物。
例如，在一些实施例中，为了检测溶液中的游离EPA和游离AA，可以使用EPA或AA特有的抗体检测溶液中的每个相应脂肪酸。在其他实施例中，可使用EPA或AA代谢产物特有的抗体来检测溶液中的每个相应脂肪酸。此类代谢物可能包括但不限于：消退素E系列(即RvE是EPA的二羟基或三羟基代谢物；迄今为止已描述了四种RvE：RvE1(5S、12R、18R三羟基EPA)、18S-Rv1(5S、12R、18S三羟基EPA)、RvE2(5S、18R二羟基EPA)和RvE3(17R、18R/S二羟基EPA)、18-HEPE(EFOX、白三烯、血栓素、前列腺素和前列环素)。
在其他实施例中，除抗体外的其他潜在生物识别方法可用于检测溶液中的每个相应脂肪酸。例如，这些其他潜在的生物识别方法可能包括使用适体来检测和/或量化溶液中各自的脂肪酸。
在其他实施例中，在步骤415将游离脂肪酸(例如DHA)共轭(自身或另一分子)后，可在420将含有共轭DHA的溶液暴露于微生物测定中，以量化共轭DHA的量，从而量化DHA的量。
在一些实施例中，SPM或脂肪酸代谢物可结合以检测和/或量化SPM或脂肪酸(例如ω-3脂肪酸)。
在其他实施例中，在步骤415将游离脂肪酸(例如DHA)转化为待量化的脂肪酸代谢物(例如RvD1)后，可将含有脂肪酸代谢物的溶液暴露于微量生物测定以在420量化脂肪酸代谢物。在一些实施例中，微生物测定包含针对待量化脂肪酸代谢物的市售抗体。例如，当脂肪酸代谢物为RvD1时，微生物测定包括捕获游离RvD1的抗体，并根据样品中存在的RvD1的量成比例产生比色反应。
在一些实施例中，在微生物测定期间，根据样品中存在的脂肪酸(或脂肪酸代谢物)的量成比例产生比色反应。
例如，在检测RvD1的示例中，可以执行ELISA测试以产生比色反应。执行的ELISA测试类型可能取决于微生物测定。
例如，可执行竞争ELISA以产生比色反应，其中来自流体样品的RvD1将取代生物测定中预加载的RvD1，并用荧光或比色标记。在本例中，流体样本中的RvD1水平与信号成反比(即，用户血样中的RvD1越多，信号越低(标记的RvD1越少))。
在另一个示例中，可以执行夹心ELISA以产生比色反应，其中来自流体样本的RvD1将结合到RvD1抗体。结合的RvD1将结合到标记的第二抗体(例如生物素)。在该实例中，可视比色诱导试剂，例如但不限于辣根过氧化物酶(HRP)-链霉亲和素，与生物测定结合的RvD1量成比例地与生物素反应。
在另一个示例中，可以执行等离子体ELISA以产生比色反应，其中辣根过氧化物酶(HRP)和过氧化氢(H2O2)和酪胺(TYR)诱导的纳米金(AuNP)聚集可以用作信号输出。AuNP聚集可能是通过酪氨酸的苯酚聚合引发的，这可能是由HRP催化的H2O2产生的羟基自由基引起的。DHA标记的过氧化氢酶(CAT)可以用作消耗过氧化氢的竞争性抗原。
在另一个示例中，可以执行多色比色免疫测定。这里是浓度-基于纳米金粒子(AuNP)的相关多色转换策略-可以使用介导的铜沉积用于信号放大，普鲁士蓝用于颜色生成。
在另一个示例中，二级抗体可以用纳米金、乳胶纳米珠或纤维素纳米珠进行标记，其产生肉眼可见和/或可通过手机光谱仪量化的色度响应。
用户可以解释比色反应期间产生的颜色，以量化液体样品中的脂肪酸量。在一些实施例中，颜色变化可能反映液体样品是否具有高/中/低DHA水平(半量化)。在一些实施例中，颜色变化可以是基于色阶的全量化读出或使用生物传感器技术的数字读出。
在另一个示例中，颜色变化可能反映一个分界点(定性)。该分界点可能代表充足/不足或特定浓度(例如SPM或ω-3脂肪酸或脂肪酸代谢产物，例如但不限于约40克/毫升的浓度)。
虽然出于说明目的，本文所述申请人的教导与各种实施例结合，但申请人的教导并不限于本文所述旨在作为示例的实施例的实施例。相反，在不脱离本文所述实施例的情况下，本文所描述和说明的申请人的教导包括各种备选方案、修改和等效方案，其一般范围在所附的权利要求中有所界定。

Claims (52)

1.一种在微流控装置上量化流体样品中存在的脂肪酸的方法，所述方法包括：
从流体样品中提取含有脂肪酸的脂肪酸酯；
将提取的脂肪酸酯与微流控装置上的水解剂结合，以从提取的脂肪酸酯中裂解脂肪酸并形成游离脂肪酸；和
通过在所述微流控装置上执行针对游离脂肪酸的生物测定来量化游离脂肪酸。
2.一种在微流控装置上量化流体样品中存在的特异性促消退介质的方法，所述方法包括：
从流体样品中提取含有脂肪酸的脂肪酸酯；
将提取的脂肪酸酯与微流控装置上的水解剂结合，以从提取的脂肪酸酯中裂解脂肪酸并形成游离脂肪酸；
将游离脂肪酸转化为待在生物测定中检测的特异性促消退介质；和
通过在所述微流控装置上执行针对特异性促消退介质的生物测定来量化特异性促消退介质。
3.一种在微流控装置上量化流体样品中存在的脂肪酸代谢物的方法，所述方法包括：从流体样品中提取脂肪酸酯；
将提取的脂肪酸酯与微流控装置上的水解剂结合，以从提取的脂肪酸酯中裂解脂肪酸；将游离脂肪酸转化为待在生物测定中检测的脂肪酸代谢物；和
通过在所述微流控装置上执行针对脂肪酸代谢产物的生物测定来量化脂肪酸代谢产物。
4.根据权利要求1-3任一权利要求所述的方法，其中所述从流体样品中提取脂肪酸酯包括将所述流体样品与存储在所述微流控装置上的萃取剂结合。
5.根据权利要求4所述的方法，所述萃取剂为有机溶剂。
6.根据权利要求1所述的方法，进一步包括在所述微流控装置上将提取的脂肪酸酯与水解剂结合以形成游离脂肪酸后：
将所述游离脂肪酸转化为待在生物测定中检测的脂肪酸代谢物；和
通过使用脂肪酸代谢产物特有的抗体检测脂肪酸代谢产物来量化所述游离脂肪酸。
7.根据权利要求6所述的方法，其中所述游离脂肪酸包括DHA，并且所述DHA转化为RvD1。
8.根据权利要求7所述的方法，其中通过将DHA与酶结合将DHA转化为RvD1。
9.根据权利要求8所述的方法，其中所述酶选自以下组：5-脂氧合酶(5-LOX)、大豆脂氧合酶、12-脂氧合酶(12-LOX)、15-脂氧合酶(15-LOX)、人源ALOX15-2、环氧合酶-1(COX-1)、环氧合酶-2(COX-2)、CyP450、15-LOX和5-LOX的组合，12-LOX和15-LOX的组合以及环氧合酶-2(COX-2)和乙酰水杨酸(ASA)的组合。
10.根据权利要求1所述的方法，进一步包括在所述微流控装置上将提取的脂肪酸酯与水解剂结合以形成游离脂肪酸后：
将待在生物测定中检测的游离脂肪酸偶联；和
通过使用共轭脂肪酸特有的抗体检测共轭脂肪酸来量化所述游离脂肪酸。
11.根据权利要求1-10任一权利要求所述的方法，所述水解剂为化学水解剂。
12.根据权利要求11所述的方法，其中所述化学水解剂包括以下一种或多种：氢氧化钾(KOH)、氢氧化钠(NaOH)、氯仿-甲醇中用氢氧化锂脱酰化和/或盐酸(HCl)。
13.根据权利要求1-10任一权利要求所述的方法，所述水解剂为酶水解剂。
14.根据权利要求13所述的方法，其中所述酶水解剂选自以下组：脂肪酶、磷脂酶、磷脂酶A(PLA)、磷脂酶A2(PLA2s)、非钙依赖性磷脂酶A2(iPLA2β)、胞质磷脂酶A2(cPLA2s)、脂氧素相关磷脂酶A2(lp-PLAs2)、分泌磷脂酶(sPLA2s)、磷脂酶D，洋葱伯克霍尔德菌(BC)脂肪酶粘色杆菌脂肪酶、南极假丝酵母脂肪酶A、米根霉(RO)脂肪酶、胰酶以及上述两种或多种酶的组合。
15.根据权利要求1至14中任一项权利要求所述的方法，进一步包括在将所述流体样品与有机溶剂结合之前，使所述流体样品的体积归一化。
16.根据权利要求4所述的方法，进一步包括将所述流体样品与萃取剂结合后，将含有萃取脂肪酸酯的样品体积归一化。
17.根据权利要求1至16中任一项权利要求所述的方法，进一步包括在使所述流体样品的体积归一化之前将所述流体样品过滤成红细胞和血浆。
18.根据权利要求1至16中任一项权利要求所述的方法，进一步包括在使所述流体样品的体积归一化后将所述流体样品过滤成红细胞和血浆。
19.根据权利要求1至18中任一项权利要求所述的方法，所述生物测定发生比色反应以量化游离脂肪酸、特异性促消退介质或代谢物。
20.根据权利要求1至18中任一项权利要求所述的方法，所述生物测定发生电化学反应以量化游离脂肪酸、促消退介质或代谢物。
21.根据权利要求1至18中任一项权利要求所述的方法，其中所述生物测定发生可由手机分光光度计检测的响应。
22.一种用于量化流体样品中脂肪酸的微流控装置，所述微流控装置包括：
配置为接收流体样品的样品制备模块，所述样品制备模块配置为:
从所述流体样品中提取含有脂肪酸的脂肪酸酯；和
保持有水解剂以从提取的脂肪酸酯中裂解一种或多种脂肪酸并形成游离脂肪酸；和
检测模块，流体联接至所述样品制备模块，并配置为从所述样品制备模块接收所述游离脂肪酸；
其中，所述样品制备模块和所述检测模块之一保持有待与所述游离脂肪酸结合的分析试剂，以量化所述流体样品中的所述游离脂肪酸。
23.一种用于量化流体样品中的特异性促消退介质的微流控装置，所述微流控装置包括：样品制备模块，配置为接收流体样品，所述样品制备模块具有储液器，配置为：
从所述流体样品中提取含有一种或多种脂肪酸的脂肪酸酯；和
保持有水解剂以从提取的脂肪酸酯中裂解一种或多种脂肪酸并形成游离脂肪酸；和
检测模块，流体联接至所述样品制备模块，并配置为从所述样品制备模块接收所述游离脂肪酸；
其中，所述样品制备模块和所述检测模块之一保持有待与所述游离脂肪酸结合的分析试剂，以量化所述流体样品中的特异性促消退介质。
24.一种用于量化液体样品中脂肪酸代谢物的微流控装置，所述微流控装置包括：
样品制备模块，配置为接收流体样品，所述样品制备模块具有储液器，配置为：
从所述流体样品中提取含有一种或多种脂肪酸的脂肪酸酯；和
保持有水解剂以从提取的脂肪酸酯中裂解一种或多种脂肪酸并形成游离脂肪酸；和
检测模块，流体联接至所述样品制备模块，并配置为从所述样品制备模块接收所述游离脂肪酸；
其中，所述样品制备模块和所述检测模块之一保持有待与脂肪酸代谢物结合的分析试剂，以量化所述流体样品中的脂肪酸代谢物。
25.根据权利要求22-24中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述样品制备模块进一步配置为保持有用于从所述流体样品中提取所述脂肪酸酯的萃取剂。
26.根据权利要求25所述的微流控装置，其中所述萃取剂是有机溶剂。
27.根据权利要求22-26中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述样本制备模块包括血液过滤单元，其配置为将全血分离为红细胞(RBCs)和血浆。
28.根据权利要求22-27中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述样品制备模块包括归一化模块，所述归一化模块被配置为使所述流体样品的体积归一化。
29.根据权利要求22-28中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述样品制备模块包括配置为接收所述流体样品的反应室，所述反应室流体联接至所述储液器，并配置为从所述储液器接收一种或多种有机溶剂和水解剂以与所述流体样品结合。
30.根据权利要求22-28中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述储液器配置为接收所述流体样品，以将一种或多种有机溶剂和水解剂与所述流体样品结合。
31.根据权利要求22-30中任一权利要求所述的微流控装置，其中，所述样品制备模块配置为保持有试剂，所述试剂配置为：
将所述游离脂肪酸转化为脂肪酸代谢物，以便在生物测定中检测。
32.根据权利要求22-30中任一权利要求所述的微流控装置，其中，所述检测模块被配置为保持有试剂，所述试剂被配置为：
将所述游离脂肪酸转化为脂肪酸代谢物，以便在生物测定中检测。
33.根据权利要求22-32中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述游离脂肪酸包括DHA，并且所述DHA转化为RvD1。
34.根据权利要求33所述的微流控装置，其中通过将DHA与酶结合将DHA转化为RvD1。
35.根据权利要求34所述的微流控装置，其中所述酶选自以下组：COX-1、5-脂氧合酶(5-LOX)、12-脂氧合酶(12-LOX)、15-脂氧合酶(15-LOX)、COX-2和5-LOX的组合、环氧合酶-2(COX-2)、15-LOX和5-LOX的组合、12-LOX和15-LOX的组合以及环氧合酶-2(COX-2)和乙酰水杨酸(ASA)的组合。
36.根据权利要求22-36任一权利要求所述的微流控装置，其中所述水解剂是化学水解剂。
37.根据权利要求36所述的微流控装置，其中所述化学水解剂包含以下一种或多种：氢氧化钾(KOH)、氢氧化钠(NaOH)、氯仿-甲醇中用氢氧化锂脱酰化和/或盐酸(HCl)。
38.根据权利要求22-36任一项所述的微流控装置，其中所述水解剂为酶水解剂。
39.根据权利要求38所述的微流控装置，其中所述酶水解剂选自以下组：脂肪酶、磷脂酶、磷脂酶A(PLA)、磷脂酶A2(PLA2s)、胞质磷脂酶A2(cPLA2s)、iPLA2、非钙依赖性磷脂酶A2(iPLA2β)、脂氧素相关磷脂酶A2(lp-PLAs2)、分泌磷脂酶(sPLA2s)、磷脂酶D，洋葱伯克霍尔德菌(BC)脂肪酶、粘色杆菌脂肪酶、南极假丝酵母脂肪酶A、米根霉(RO)脂肪酶、胰酶以及上述两种或多种酶的组合。
40.根据权利要求28所述的微流控装置，其中所述归一化模块是微通道，配置为在所述流体样本进入所述样本制备模块之前归一化所述流体样本的体积。
41.根据权利要求22-40中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述微流控装置是横向流动装置。
42.根据权利要求22-41中任一权利要求所述的微流控装置，其中向所述微流控装置添加流体样品的用户能够期望在大约两小时或更短的时间内收到脂肪酸或SPM或脂肪酸代谢物的量的指示信号。
43.根据权利要求22-42中任一权利要求所述的微流控装置，其中用户将流体样品添加到所述微流控装置和从所述微流控装置接收游离脂肪酸或SPM或脂肪酸代谢物的量的指示信号之间的时间段在约1分钟到约30分钟的范围内。
44.根据权利要求43所述的微流控装置，其中，用户将流体样品添加到所述微流控装置和从所述微流控装置接收游离脂肪酸或SPM或脂肪酸代谢物的量的指示信号之间的时间段约为20分钟。
45.根据权利要求1-21中任一权利要求所述的方法，其中所述脂肪酸为ω-3脂肪酸。
46.根据权利要求1-21中任一权利要求所述的方法，其中所述脂肪酸为ω-6脂肪酸。
47.根据权利要求1或2所述的方法，其中所述脂肪酸代谢物包括以下至少一种：脂氧素(Lx)、溶血素(Rv)、保护素(PD)、神经保护素(NP)、异氟醚、异前列腺素、maresins(MaR)、SPM中间体和内源性大麻素。
48.根据权利要求22至44中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述脂肪酸为ω-3脂肪酸。
49.根据权利要求22至44中任一权利要求所述的微流控装置，其中所述脂肪酸为ω-6脂肪酸。
50.根据权利要求22所述的微流控装置，其中所述代谢物包括以下一种或多种：脂氧素(Lx)、消退素(Rv)、保护素(PD)、神经保护素(NP)、异呋喃、异前列腺素、SPM中间体和maresins(MaR)。
51.一种在微流控装置上量化流体样品中存在的脂肪酸代谢物的方法，所述方法包括：在所述微流控装置上执行针对所述脂肪酸代谢物的生物测定。
52.一种用于量化流体样品中脂肪酸代谢物的微流控装置，所述微流控装置包括：
样品制备模块，配置为接收流体样品；和
与所述样品制备模块流体联接的检测模块，所述检测模块配置为从所述样品制备模块接收游离脂肪酸；
其中，所述样品制备模块和所述检测模块之一保持有待与所述肪酸代谢物结合的分析试剂以量化所述流体样品中的脂肪酸代谢物。
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