CN115057831B - 噻二唑类化合物及其在制备kklc1蛋白抑制剂中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明属于医药领域,具体涉及噻二唑类化合物或其药学上可接受的盐及其在制备KKLC1蛋白抑制剂中的应用。所述噻二唑类化合物结构式如式I所示,其合成工艺简单易于实现,经活性实验验证,本发明制得的噻二唑类化合物与KKLC1靶蛋白具有特异性的结合,对乳腺癌细胞系MDA‑MB‑231细胞及MDA‑MB‑468细胞的活性具备较明显的抑制作用,有望成为新的治疗癌症的候选药物,具有良好的应用前景。

Description

噻二唑类化合物及其在制备KKLC1蛋白抑制剂中的应用
技术领域
本发明属于医药领域,涉及一类新型噻二唑类化合物及其医药用途,具体 涉及噻二唑类化合物及其在制备KKLC1蛋白抑制剂中的应用。
背景技术
KKLC1(Kita-Kyushu Lung Cancer Antigen-1)是由CT83基因表达的蛋白 质,又称为睾丸抗原83蛋白。目前有相关研究表明,KKLC1蛋白的表达量和多 种肿瘤如胃癌、肺癌、乳腺癌等的发生发展密切相关。我们在前期研究中发 现,KKLC蛋白是促进肿瘤细胞生长增殖的分子靶标。
噻二唑类化合物具有多种生物活性,包括抗虫、除草、调节植物生长、抗 菌、抗炎、抗肿瘤、抗结核和酶抑制作用。在抗肿瘤药物研究方面,噻二唑类 化合物也有报道,其中4-芳基-5-(3,4,5-三甲氧基苯基)-1,2,3-噻二唑与5- 芳基-4-(3,4,5-三甲氧基苯基)-1,2,3-噻二唑活性良好(参见:Mao jiang Wu,et al.Bioorganic&Medicinal ChemistryLetters,2007,17,869-873; Boga Ramesh Babu,et al.Biochemistry,1997,36,7209-7216)。中国专利 CN114195735A中公开了一种1,2,3-噻二唑类化合物及其用途,确切地说,涉及5-苯基-4-(4-苯基哌嗪基-1-羰基)-1,2,3-噻二唑类化合物及其作为肿瘤细 胞增殖抑制剂在制备抗肿瘤的药物方面的应用。但上述噻二唑类化合物抗肿瘤 的作用机制尚未明确。
本发明人近来设计出了一类能够作为KKLC1蛋白抑制剂的新型噻二唑类化 合物,现有技术中尚未有此类噻二唑类化合物用作KKLC1蛋白抑制剂以及抗肿 瘤方面的相关报道。
发明内容
本发明的目的在于克服了现有技术中存在的技术缺陷,设计出了一类能够 作为KKLC1蛋白抑制剂的新型噻二唑类化合物,并将其作为新型癌症治疗候选 物。
为实现上述目的,本发明采用以下技术方案。
在第一个方面中,本发明提供了一种噻二唑类化合物或其药学上可接受的 盐,其结构式如式I所示:
上述式I中,Ar表示C2-C60的取代或未取代的芳环或杂芳环;
所述取代为单取代或多取代;
所述取代的取代基各自独立地为C1-C30烷基、C1-C30烷氧基、卤素取代 的C1-C30烷基、卤素取代的C1-C30烷氧基、卤素、至少含一个杂原子的三元 -六元环取代的C1-C30烷基。
优选地,式I所示噻二唑类化合物或其药学上可接受的盐的结构式如下所 示:
其中,R表示单取代或多取代;
R独立地选自如下基团中的任一种:C1-C6烷基、C1-C6烷氧基、卤素取代 的C1-C6烷基、卤素取代的C1-C6烷氧基、卤素、至少含一个杂原子的三元- 六元环取代的C1-C6烷基;
优选地,上述结构式中,R独立地选自如下基团中的任一种:氟取代的C1-C6 烷基(如三氟甲基)、甲氧基、氟、氯、溴、甲基、-OCF3
更优选地,式I所示噻二唑类化合物为如下化合物中的任一种:
在第二个方面中,本发明提供了上述式I所示噻二唑类化合物或其药学上 可接受的盐的制备方法,其通过包括如下步骤的方法制备得到:
将1-茚醇经溴代反应制得1-溴茚中间体1,再与肌氨酸乙酯反应得到中间 体2,中间体2经氢氧化锂处理制得中间体3,中间体3再与草酸单乙酯酰肼 发生酰化反应得到中间体4,中间体4用Lawesson试剂处理制得噻二唑中间体 5,中间体5经氢氧化锂处理制得中间体6,最后与不同的苄胺化合物反应得到 通式I的化合物。
反应式如下:
反应试剂和反应条件:(a)PBr3,DCM,0℃,overnight;(b)Et3N or K2CO3,DMF,60-70℃,overnight;(c)LiOH,THF, H2O,40℃-60℃,overnight;(d)HBTU,DIPEA,DMF,r.t.,3h-5h;(e)Lawesson reagent,THF,40℃,8h-10h;(f)LiOH, THF,H2O,40℃-60℃,overnight;(g)HBTU,DIPEA,DMF,r.t.,3-5h.
其中,Ar的定义同式I中Ar的定义。
在第三个方面中,式I所示噻二唑类化合物或其药学上可接受的盐在制备 如下功能的产品中的应用也属于本发明的保护范围;
1)在制备体外或体内KKLC1蛋白抑制剂中的应用;
2)在制备真核生物肿瘤细胞增殖抑制剂中的应用;或
3)在制备预防和/或治疗肿瘤的药物中的应用。
1)中,所述真核生物为哺乳动物;优选地,所述哺乳动物为人或非人灵 长类。
所述肿瘤选自头颈部肿瘤、乳腺癌、胃肠道肿瘤、肺癌、肝癌、胰腺癌、 宫颈癌、卵巢癌、肾癌、胆囊癌、甲状腺癌、神经母细胞瘤、膀胱癌、鼻咽癌、 喉癌、结直肠癌、黑色素瘤、横纹肌肉瘤、尤因肉瘤、骨肉瘤或血液系统肿瘤;
优选地,所述肿瘤为乳腺癌、肺癌、结直肠癌或肝癌。
更优选地,所述肿瘤为乳腺癌,特别是三阴性乳腺癌。
所述肿瘤细胞优选为乳腺癌细胞,更优选为MDA-MB-231细胞或MDA-MB-468 细胞。
在第四个方面中,本发明还提供一种作为KKLC1蛋白抑制剂或真核生物肿 瘤细胞增殖抑制剂或预防和/或治疗肿瘤的药物。
本发明所提供的作为KKLC1蛋白抑制剂或真核生物肿瘤细胞增殖抑制剂或 预防和/或治疗肿瘤的药物,以上述式I所示噻二唑类化合物或其药学上可接受的盐为活性成分。
与现有技术比,本发明的有益效果如下:
本发明提供一种全新结构的噻二唑类化合物,其合成工艺简单易于实现, 经活性实验验证,本发明制得的噻二唑类化合物与KKLC1靶蛋白具有特异性的 结合,且化合物TF-1与TF-6小分子药物对MDA-MB-231细胞及MDA-MB-468细 胞的活性具备较明显的抑制作用,有望成为新的治疗乳腺癌的候选药物,具有 良好的应用前景。
附图说明
图1A-J为本发明实施例11中TF-1-TF-10系列化合物对目标靶蛋白的多 浓度梯度结合、解离曲线。
图2A-J为本发明实施例12中TF-1-TF-10系列化合物对MDA-MB-231/468 细胞的活性抑制曲线。
图3A-K为TF-1-TF-10系列化合物裸鼠皮下成瘤后对肿瘤增长的抑制曲 线,L为对照组与应用TF-1化合物组在观察终点时的肿瘤组织大体图片。
具体实施方式
以下结合附图对本发明的优选实施例进行说明,应当理解,此处所描述的 优选实施例仅用于说明和解释本发明,并不用于限定本发明。
联系如下实施例,将更好地理解本发明的化合物和他们的制备,这些实施 例旨在阐述而不是限制本发明的范围。
实施例1:化合物TF-1的制备
步骤a:将1-茚醇(10g,74.53mmol,1eq)溶于100mL二氯甲烷, 冰浴条件下逐滴加入三溴化磷(17.5mL,186.33mmol,2.5eq),滴加完成 后冰浴反应4小时。反应液用饱和碳酸氢钠溶液(50mL)淬灭,用二氯甲烷萃取(50mL×2),合并有机相用饱和食盐水洗涤(30mL×2),无水硫酸钠 干燥。减压浓缩除去溶剂后,得黄色油状液体即中间体1(12.46g,85.3%yield)。直接用于下一步反应。
步骤b:将中间体1(10g,51.02mmol,1eq)溶于N,N-二甲基甲酰胺(80 mL),加入肌氨酸乙酯盐酸盐(9.40g,61.22mmol,1.2eq)和碳酸钾(14.21 g,102.04mmol,2eq),70℃搅拌过夜。反应结束后加40mL水稀释,并用 乙酸乙酯萃取(40mL×2),合并有机相后用饱和食盐水洗涤(30mL×2), 无水硫酸钠干燥。减压浓缩除去溶剂后经硅胶柱层析(石油醚:乙酸乙酯=6:1) 纯化分离得淡黄色油状物即中间体2(9.33g,78.4%yield)。
步骤c:将中间体2(8g,34.31mmol,1eq)溶于四氢呋喃(80mL) 和水(8mL)的混合溶液,加入氢氧化锂(1.24g,51.47mmol,1.5eq),40℃搅拌过夜。反应结束后减压浓缩移除溶剂,残余物使用乙酸乙酯打浆(30 mL×2),过滤干燥得淡黄色固体即中间体3(6.37g,87.9%yield)。
步骤d:将中间体3(5g,23.68mmol,1eq)与HBTU(13.47g,35.52 mmol,1.5eq)分散于N,N-二甲基甲酰胺(50mL),室温条件下搅拌10分钟。 加入草酸单乙酯酰肼(3.44g,26.05mmol,1.1eq)和N,N-二异丙基乙基胺 (6.20mL,35.52mmol,1.5eq),室温搅拌4小时。反应结束后使用乙酸 乙酯萃取(40mL×3),合并有机相后用饱和食盐水洗涤(30mL×2),无水 硫酸钠干燥。减压浓缩除去溶剂后经硅胶柱层析(石油醚:乙酸乙酯=2:1)纯 化分离得淡黄色固体即中间体4(6.17g,81.7%yield)。
步骤e:将中间体4(5g,15.67mmol,1eq)溶于THF(50mL),加入 Lawesson试剂(9.51g,23.51mmol,1.5eq),加热回流反应8h。反应结 束后将溶剂减压蒸除,经硅胶柱层析(石油醚:乙酸乙酯=10:1)纯化分离得 淡黄色固体即中间体5(3.82g,76.8%yield)。
步骤f:将中间体5(5g,15.77mmol,1eq)溶于四氢呋喃(60mL) 和水(8mL)的混合溶液,加入氢氧化锂(0.57g,23.66mmol,1.5eq), 40℃搅拌过夜。反应结束后减压浓缩移除溶剂,残余物使用乙酸乙酯打浆(30 mL×2),过滤干燥得淡黄色固体中间体6(3.88g,83.4%yield)。
步骤g:将中间体6(5g,16.94mmol,1eq)与HBTU(9.64g,25.41mmol, 1.5eq)分散于N,N-二甲基甲酰胺(50mL),室温条件下搅拌10分钟。加入 4-三氟甲基苄胺(2.89mL,20.33mmol,1.2eq)和N,N-二异丙基乙基胺(4.44 mL,25.41mmol,1.5eq),室温搅拌4小时。反应结束后使用乙酸乙酯萃取 (40mL×3),合并有机相后用饱和食盐水洗涤(30mL×2),无水硫酸钠干 燥。减压浓缩除去溶剂后经硅胶柱层析(石油醚:乙酸乙酯=3:1)纯化分离得淡黄色固体即化合物TF-1(5.93g,78.5%yield)。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C22H21F3N4OS 447.1388[M+H]+,found,447.1325.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.26(s,1H),7.54(m,2H),7.22-7.26 (m,2H),7.17(m,2H),7.06-7.13(m,2H),4.11(d,J=6.5Hz,2H),4.04 (m,1H),3.62(s,2H),3.11-3.21(m,2H),2.26(s,3H),1.98-2.23(m, 2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9, 129.0,128.5,126.1,124.9,124.5,124.1,75.9,55.6,43.1,42.9,34.3, 27.7.
实施例2、化合物TF-2的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为4-甲氧基苄胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C22H24N4O2S 409.1620[M+H]+,found,409.1767.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.27(s,1H),7.54(m,2H),7.22-7.28 (m,2H),7.15(m,2H),7.04-7.14(m,2H),4.11(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.81(s,3H),3.63(s,2H),3.11-3.24(m,2H),2.26(s,3H), 1.99-2.25(m,2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.5,168.2,158.9,143.4,141.5,139.1, 129.0,127.5,126.1,124.9,124.4,75.9,55.8,55.6,43.1,42.6,34.3, 27.5.
实施例3、化合物TF-3的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为4-氟苄胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C21H21FN4OS 397.1420[M+H]+,found,397.1525.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.26(s,1H),7.54(m,2H),7.25-7.28 (m,2H),7.17(m,2H),7.06-7.13(m,2H),4.11(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.62(s,2H),3.11-3.21(m,2H),2.26(s,3H),1.98-2.23(m, 2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9, 129.0,128.5,126.1,124.9,124.5,75.9,55.6,43.1,42.9,34.3,27.7.
实施例4、化合物TF-4的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为4-氯苄胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C21H21ClN4OS 413.1125[M+H]+,found, 413.1235.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.26(s,1H),7.54(m,2H),7.25-7.28 (m,2H),7.17(m,2H),7.06-7.13(m,2H),4.12(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.62(s,2H),3.11-3.21(m,2H),2.26(s,3H),1.98-2.23(m, 2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9, 129.0,128.5,126.1,124.9,124.5,75.9,55.6,43.1,42.9,34.3,27.7.
实施例5、化合物TF-5的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为4-溴苄胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C21H21BrN4OS 457.0619[M+H]+,found, 457.0668.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.26(s,1H),7.54(m,2H),7.25-7.28 (m,2H),7.17(m,2H),7.06-7.13(m,2H),4.11(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.62(s,2H),3.11-3.21(m,2H),2.26(s,3H),1.98-2.23(m, 2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9, 129.0,128.5,126.1,124.9,124.5,75.9,55.6,43.1,42.9,34.3,27.7.
实施例6、化合物TF-6的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为4-甲基苄胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C22H24N4OS 393.1671[M+H]+,found,393.1660.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.27(s,1H),7.54(m,2H),7.25-7.28 (m,2H),7.17(m,2H),7.06-7.13(m,2H),4.12(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.62(s,2H),3.11-3.21(m,2H),2.26(s,3H),2.03(s,3H), 1.98-2.23(m,2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9, 129.0,128.5,126.1,124.9,124.5,75.9,55.6,43.1,42.9,36.5,34.3, 27.7.
实施例7、化合物TF-7的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为4-三氟甲基醚苄胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C22H21F3N4O2S 463.1337[M+H]+,found, 463.1638.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.27(s,1H),7.54(m,2H),7.25-7.28 (m,2H),7.17(m,2H),7.06-7.13(m,2H),4.12(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.62(s,2H),3.11-3.21(m,2H),2.26(s,3H),1.98-2.23(m, 2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9, 129.0,128.5,126.7,126.1,124.9,124.5,75.9,55.6,43.1,42.9,34.3, 27.7.
实施例8、化合物TF-8的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为4-(吗啉-4-基甲基)苄 胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C26H31N5O2S 478.2198[M+H]+,found,478.2265.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.27(s,1H),7.54(m,2H),7.25-7.28 (m,2H),7.17(m,2H),7.06-7.13(m,2H),4.12(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.66(s,2H),3.62(s,2H),3.57(m,4H)3.11-3.21(m,2H), 2.42(m,4H),2.26(s,3H),1.98-2.23(m,2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9, 129.0,128.5,126.7,126.1,124.9,124.5,75.9,66.7,55.7,55.6,43.1, 42.9,34.3,27.7.
实施例9、化合物TF-9的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为2,4-二甲氧基苄胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C23H26N4O3S 439.1726[M+H]+,found,439.1754.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.27(s,1H),7.54(m,2H),7.25-7.28 (m,2H),7.17(m,1H),7.06-7.13(m,2H),4.12(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.84(s,3H),3.72(s,3H),3.62(s,2H),3.11-3.21(m,2H), 2.26(s,3H),1.98-2.23(m,2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9,129.0,128.5,126.7,126.1,124.9,124.5,75.9,56.1,55.8,55.6,43.1, 42.9,34.3,27.7.
实施例10、化合物TF-10的制备
参照实施例1的操作,将最后一步的反应物替换为2,4,5-三氟苄胺。
所得目标产物的结构确证数据如下:
HRMS(ESI):m/zcalcd for C21H19F3N4OS 433.1232[M+H]+,found,433.1309.
1H NMR(DMSO-d6,600MHz)δ9.27(s,1H),7.54(m,2H),7.25-7.28 (m,2H),7.17(m,1H),7.06-7.13(m,1H),4.12(d,J=6.5Hz,2H),4.04(m,1H),3.62(s,2H),3.11-3.21(m,2H),2.26(s,3H),1.98-2.23(m, 2H);
13C NMR(DMSO-d6,150MHz)168.2,168.0,158.9,143.4,141.2,139.9, 129.0,128.5,126.7,126.1,124.9,124.5,75.9,56.1,43.1,42.9,34.3, 27.7.
实施例11、小分子化合物与靶蛋白的亲和力检测
TF-1-TF-10系列化合物对靶蛋白KKLC1的亲和性的检测采用生物膜干涉 法(BLI,Biolayer interference)进行。K2系统(Molecular Device, ForteBIO,USA)适用于蛋白质-蛋白质或蛋白质-小分子结合动力学和结合亲和 力的表征,该方法由以下步骤组成:1.首先是蛋白质和BLI传感器制备:重组 蛋白KKLC1(50μg/mL)在生物素的作用下室温生物素化45min;然后,通过重 力脱盐柱去除多余的生物素;而后将重组蛋白KKLC1固定在超级链霉亲和素传 感器(SSA,super streptavidin,ForteBIO,USA)上并将固化了蛋白的传感器 预先用PBS润湿;2.BLI实验过程:使用/>K2系统(Molecular DevicesForteBIO,USA)进行自动检测。首先用动态缓冲液将TF-1-TF-10小分子分别 制备成20μm、10μm、5μm、2.5μm、1.25μm浓度的待检测溶液,体系均为200μL。将不同浓度梯度的小分子药物加入96孔板中,在25℃下连续运行,振荡速度 为1000rpm,随后带有KKLC1蛋白的固化探头会依次通过不同浓度小分子药物孔及缓冲液孔。在缓冲液中获得基线读数(60s),在含化合物的孔中获得结合 读数(180s),在缓冲液中获得解离读数(120s)。3.数据处理:首先,会在4 个探针上得到4组读数:(a)固定蛋白的传感器在含药物的动力学缓冲液的读 数;(b)未固定蛋白的参比传感器在含药物的动力学缓冲液中的读数;(c)固定 蛋白的传感器在不含药物的动力学缓冲液的读数和(d)未固定蛋白的参比传感 器在不含药物的动力学缓冲液的读数。最后的值用公式(a-c)-(b-d)计算。这 种方法消除了传感器和含药缓冲液体的干扰。利用/>HT V10.0软件对结 合信号进行识别和分析,最终求出每个药物的是否与靶蛋白存在特异性结合及 结合-解离常数(KD)。数据展示的纵坐标为仪器在每个监测时间点的Response 信号值,横坐标为结合/解离反应的时间(s)。
实验结果如图1所示:其中小分子药物TF-1,TF-3,TF-4,TF-6与靶蛋 白具有特异性的结合(结合信号高度大于0.02nm,且具有浓度依赖性的信号升 高,图1A,C,D,F),结合信号强度分别为2.9×10-6mol/L,9.3×10-6mol/L, 4.9×10-5mol/L,4.4×10-6mol/L。其中TF-1与靶蛋白的结合能力最佳。
实施例12、小分子化合物对MDA-MB-231与MDA-MB-468细胞的活性影响的 检测
将MDA-MB-231细胞与MDA-MB-468细胞(购买于美国模式培养物保藏所 (AmericanType Culture Collection,ATCC))铺于96孔板中,每孔5000 个细胞。将小分子药物溶解于含2%血清及0.1%DMSO的L15或DMEM培养基中, 配置成浓度梯度分别为25μm、12.5μm、6.25μm、3.125μm、1.5625μm,对照孔 使用2%血清及0.1%DMSO的L15或DMEM培养基,每种浓度梯度设置3个复孔。 加入药物后,处理48h,随后弃掉培养基,随后加入与无血清L15或DMEM培养 基1:10混合的CCK8试剂(Takara),避光37℃孵育2h后,用酶标仪检测在 450nm波长下的吸光度值。经过各个浓度孔与对照孔的比值,求出各个药物浓 度下的细胞相对活性。随后将每个小分子药物在不同浓度下的相对活性,在GraphPad Prism(Version8.0)中用非线性拟合的方式进行IC50值的计算。数 据展示为均值±标准差,纵坐标为相对活性值,横坐标为Log(浓度μm+1)。
实验结果如图2所示:TF-1与TF-6小分子药物对MDA-MB-231细胞及 MDA-MB-468细胞的活性具备较明显的抑制作用,其中TF-1对MDA-MB-231细胞 及MDA-MB-468细胞的IC50浓度分别约为9.5μm,12.3μm(图2A)。TF-6对 MDA-MB-231细胞及MDA-MB-468细胞的IC50浓度分别约为26.0μm,20.1μm(图 2F)。其余小分子化合物对MDA-MB-231细胞及MDA-MB-468细胞未见明显的活 性抑制作用(图2B-E,G-J)。
实施例13、小分子化合物对MDA-MB-231所形成肿瘤的在体抑制作用检测
消化MDA-MB-231肿瘤细胞,将1×106个细胞重悬于100μL PBS中,通过 0.5mm注射器接种与4周龄雌性裸鼠(购自辽宁长生生物技术股份有限公司) 左侧腋窝后皮下,制作原位成瘤模型。每个化合物的检测使用10只裸鼠,其 中5只用于腹腔注射对照药物,5只腹腔注射小分子化合物。待皮下肿物的平 均体积达到50mm3时开始给药。对照组注射含有1%DMSO的生理盐水100μL;应 用小分子药物组,腹腔注射溶解于含1%DMSO生理盐水的小分子药物100μL,所 有小分子化合物浓度均在20mg/kg,给药间隔为每2天给药一次。随着给药,每隔4天进行一次肿瘤体积监测,测量肿物的长(a)短(b)径,共给药观察 32天,肿瘤的体积按照a×b2/2进行计算。数据展示为均值±标准差,纵坐标 为肿瘤体积(mm3),横坐标为开始监测的时间(天),统计学差异由卡方检验 进行判定。
实验结果如图3所示:肿瘤生长曲线显示,当用药剂量为20mg/kg时,TF-1 与TF-6可在体内实验抑制MDA-MB-231所形成肿瘤的增长(图3A,F,K),其 中TF-1小分子的抑制效果最好(图3A,K),其余小分子药物对MDA-MB-231 细胞所形成肿瘤的增长无明显抑制作用(图3B-E,G-J)。
显然,本领域的技术人员可以对本发明进行各种改动和变型而不脱离本发 明的精神和范围。这样,倘若本发明的这些修改和变型属于本发明权利要求及 其等同技术的范围之内,则本发明也意图包含这些改动和变型在内。

Claims (6)

1.如下任一种噻二唑类化合物在制备如下功能的产品中的应用;
1)在制备体外或体内KKLC1蛋白抑制剂中的应用;
2)在制备真核生物肿瘤细胞增殖抑制剂中的应用;或
3)在制备预防和/或治疗肿瘤的药物中的应用;
所述肿瘤由KKLC1蛋白表达引发;
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述真核生物为哺乳动物,
所述肿瘤选自头颈部肿瘤、乳腺癌、胃肠道肿瘤、肺癌、肝癌、胰腺癌、宫颈癌、卵巢癌、肾癌、胆囊癌、甲状腺癌、神经母细胞瘤、膀胱癌、鼻咽癌、喉癌、结直肠癌、黑色素瘤、横纹肌肉瘤、尤因肉瘤、骨肉瘤或血液系统肿瘤。
3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于:所述肿瘤为乳腺癌、肺癌、结直肠癌或肝癌。
4.根据权利要求3所述的应用,其特征在于:所述肿瘤为乳腺癌。
5.根据权利要求4所述的应用,其特征在于:所述肿瘤为三阴性乳腺癌。
6.制备权利要求1中噻二唑类化合物的方法,包括如下步骤:将1-茚醇经溴代反应制得1-溴茚中间体1,再与肌氨酸乙酯反应得到中间体2,中间体2经氢氧化锂处理制得中间体3,中间体3再与草酸单乙酯酰肼发生酰化反应得到中间体4,中间体4用Lawesson试剂处理制得噻二唑中间体5,中间体5经氢氧化锂处理制得中间体6,最后与化合物Ar-CH2-NH2反应,即得;
反应式如下:
其中,Ar为如下任意一种:
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