CN114958840B - miR-206-3p海绵及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开miR‑206‑3p海绵及其应用,其将miR‑206‑3p海绵应用于对腹主动脉瘤(AAA)的破裂的预防或治疗中,可为腹主动脉瘤(AAA)的破裂的预防和治疗提供新的思路。本发明的的miR‑206‑3p海绵可通过功能性敲低miR‑206‑3p,增强VSMC的增殖能力而增加主动脉中膜厚度,限制腹主动脉瘤的进一步扩张,来实现对腹主动脉瘤破裂的预防或治疗。
Description
技术领域
本发明涉及生物医药技术领域,尤其涉及miR-206-3p海绵及其应用。
背景技术
腹主动脉瘤(AAA)是主动脉的横膈膜至髂总动脉分支段直径超过正常直径50%或大于3cm 的永久性局限性扩张。AAA 致死率极高,一旦破裂仅有50%的患者有机会进入医院接受紧急治疗。目前普遍认为AAA的发病机制是多因素的,与环境、遗传和生化因素有关。主要病理表现为平滑肌细胞凋亡、细胞外基质(ECM)降解、免疫细胞浸润和动脉粥样硬化血栓形成。
主动脉中层主要由弹性膜和环形排列的血管平滑肌细胞(VSMC)构成,VSMC数量将直接影响动脉收缩能力及动脉顺应性,VSMC数量减少、增殖能力减弱使得动脉易于扩张形成AAA。相关研究表明,主动脉壁中膜VSMC增殖有利于减少动脉瘤的进一步扩张,降低动脉瘤破裂风险。miR-206-3p是一种长度为22nt的小RNA,其在细胞内具有调节基因表达的作用。之前有研究发现miR-206-3p在骨骼肌细胞中高表达,并具有抑制细胞增殖,促进骨骼肌细胞表型转化的作用,但在VSMC中的作用目前还未见研究。
发明内容
因此,基于以上背景,本发明提供miR-206-3p海绵及其应用,其将miR-206-3p海绵应用于对腹主动脉瘤(AAA)的破裂的预防或治疗中,可为腹主动脉瘤(AAA)的破裂的预防和治疗提供新的思路。
本发明的目的之一,是提供一种miR-206-3p海绵,所述miR-206-3p海绵的核苷酸序列如SEQ NO.1所示。
本发明的目的之二,是提供上述的miR-206-3p海绵的应用,所述miR-206-3p海绵可用于制备预防或治疗腹主动脉瘤破裂的药物。
进一步地,上述的miR-206-3p海绵是通过功能性敲低miR-206-3p,增强VSMC的增殖能力而增加主动脉中膜厚度,限制腹主动脉瘤的进一步扩张,来实现对腹主动脉瘤破裂的预防或治疗。
本发明的目的之三,是提供一种miR-206-3p海绵载体质粒,其包括表达载体和与所述表达载体有效连接的miR-206-3p海绵。
进一步地,所述表达载体为腺相关病毒表达载体pHBAAV-CMV-MCS-T2A-ZsGreen。
本发明的目的之四,是提供上述的miR-206-3p海绵载体质粒的应用,所述miR-206-3p海绵载体质粒可用于制备预防或治疗腹主动脉瘤破裂的药物。
本发明的目的之五,是提供一种腺相关病毒,制备所述腺相关病毒采用的穿梭质粒是上述的miR-206-3p海绵载体质粒。
进一步地,所述腺相关病毒的制备方法包含以下步骤:采用上述的miR-206-3p海绵载体质粒、pAAV-RC载体质粒、pHelper载体质粒共转染AAV-293细胞。
本发明的目的之六,是提供上述的腺相关病毒的应用,所述腺相关病毒可用于制备预防或治疗腹主动脉瘤破裂的药物。
采用上述技术方案,具有的有益效果如下:
通过动物实验验证,本发明的miR-206-3p海绵通过功能性敲低miR-206-3p,VSMC去分化,使得VSMC具有更强的增殖能力进而可增加主动脉中膜厚度,可进一步地限制腹主动脉瘤的进一步扩张,从而降低腹主动脉瘤破裂的风险,从而实现对腹主动脉瘤破裂的预防或治疗,可为腹主动脉瘤及其腹主动脉瘤破裂的防治提供新的思路,具有非常高的临床应用价值。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为本发明实施例1基本表达载体pHBAAV-CMV-MCS-T2A-ZsGreen的图谱示意图;
图2为本发明实施例1构建的miR-206-3p海绵载体质粒的图谱示意图;
图3为本发明实施例2中小鼠AAA模型中的miR-206-3p表达水平示意图;
图4为本发明实施例3中的空转染组和miR-206-3p-sponge转染组的免疫荧光照片;
图5为本发明实施例3中的各组小鼠病理切片及免疫荧光照片;
图6为本发明实施例3中的各组小鼠动脉瘤中最大中膜厚度、最小中膜厚度、内膜周长的柱状示意图;
图7为本发明实施例3的各组小鼠收缩型平滑肌标志物CNN1、ACTA2的表达量柱状示意图。
具体实施方式
为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚,下面将结合本发明实施例,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
实施例1:腺相关病毒的制备
(1)miR-206-3p海绵载体质粒制备
1)目的基因序列信息:
mmu-miR-206-3p,
UGGAAUGUAAGGAAGUGUGUGG ;
U变为T:TGGAATGTAAGGAAGTGTGTGG;
反向互补序列:CCACACACTTCCTTACATTCCA ;
突变后的反向互补序列:CCACACACTTAAGACATTCCA;
mmu-miR-206-3p-sponge: CCACACACTTAAGACATTCCATATACCCACACACTTAAGACATTCCAACATCCCACACACTTAAGACATTCCATCTTCACCACACACTTAAGACATTCCA(SEQ NO.1)
2)采用腺相关病毒表达载体pHBAAV-CMV-MCS-T2A-ZsGreen为基本载体(其质粒图谱见图1),对基本载体进行酶切。
配置载体酶切体系(见表1)后,置于37℃水浴锅中反应1-2h;酶切结束之后进行琼脂糖凝胶电泳,回收载体;
表1:载体酶切体系
试剂 | 体积(μL) |
载体DNA(1ug/uL) | 1 |
10*buffer | 4 |
<![CDATA[DdH<sub>2</sub>O]]> | 32 |
EcoRI | 1.5 |
HindIII | 1.5 |
total | 40 |
3)目的片段的获取
①引物设计:
AAV-mmu-miR-206-3p-sponge-Eco-F:
ACAGAATTCCCACACACTTAAGACATTCCATATACCCACACACTTAAGACATTCCAACATCCCACACAC(SEQ NO.2);
AAV-mmu-miR-206-3p-sponge-Hin-R:
ACAAAGCTTTGGAATGTCTTAAGTGTGTGGTGAAGATGGAATGTCTTAAGTGTGTGGGATGTTGGAATG(SEQ NO.3)。
②PCR扩增
配制PCR扩增体系(见表2),轻轻混匀,置于PCR仪中进行反应;
表2:PCR扩增体系
组分名称 | 体积(μL) |
2X PCR Buffer | 25 |
dNTPs mix(10mM each) | 1 |
F引物 (10 μM) | 2 |
R引物(10 μM) | 2 |
模板DNA(200ng/uL) | 1 |
<![CDATA[ddH<sub>2</sub>O]]> | 18 |
phanta Super-Fidelity DNA Polymerase | 1 |
总体积 | 50 |
4)目的片段与载体连接
HB infusionTM一步克隆连接体系:
于冰水浴中配制表3所示反应体系,接反应液在50℃反应30min后,置于冰上5min,立即转化。
表3:反应体系
组分名称 | 体积(μL) |
目的基因片段 | X(≥100ng) |
线性化载体 | Y(≥50ng) |
2×HB infusionTM Mastermix | 10 |
<![CDATA[ddH<sub>2</sub>O]]> | Z(=10-X-Y) |
总体积 | 20 |
5)转化
①DH5α感受态细胞从-80℃冰箱拿出来之后,要立刻放到冰上融化,感受态分装过程操作轻柔,减轻对其机械破坏;
②待感受态融化后,以每管50 μL的体积分装(对于质粒转化,20 μL就足够了),分装之后以不超过感受态体积1/10的量加入连接产物(目前加5 μL连接产物),冰上放置20-30min;
③42℃热激90 s(这个时间要非常严格),热激完之后立刻插入冰上冰育2-3 min;
在超净台中,加入500μL LB培养基(注意一定是无抗的LB培养基),轻柔的上下颠倒3-5次;
④37℃、230rpm震荡培养45-60 min;
⑤将菌液涂到相应抗性的固体平板上,涂布均匀,然后将板子倒放37℃恒温箱培养12-16h。
6)菌液PCR鉴定
7)测序
将筛选出来的阳性克隆,选择两个克隆进行测序,测序结果显示其具有SEQ NO.1所示序列,则说明miR-206-3p海绵载体质粒构建成功,其图谱如图2所示。
(2)将miR-206-3p海绵载体质粒、pAAV-RC载体质粒、pHelper载体质粒进行高纯无内毒素抽提后,采用汉恒的LipofiterTM转染试剂将三质粒共转染AAV-293T细胞,转染后72h收集细胞沉淀,采用柱纯化方式得到高滴度的腺相关病毒保存液(即AAV-miR206 sponge-zsGreen病毒溶液)。
实施例2:
本实施例主要构建小鼠AAA模型并且qPCR检测小鼠AAA模型AAA中miR-206-3p的表达水平。
材料:
C57/BL6小黑鼠(雄性,8-10周,30-40g):购自山西医科大学实验动物中心(合格证号scxk(晋)2019-0004)。
小鼠饲养环境为18~22℃,湿度50~60%。每笼饲养两只小鼠,食物为大小鼠维持饲料:购自山西医科大学实验动物中心,每次每笼供应30g,每2天供应一次;带金属饮水管的塑料瓶(250ml/500ml)装满清水供小鼠饮用,每2天更换一次。
实验所需材料为小鼠手术器械,可吸收明胶海绵,弹性蛋白酶溶液(0.5%),8-0可吸收缝合线。
取小鼠吸入乙醚麻妥后,碘伏棉球消毒小鼠腹部皮肤3遍,沿C57小鼠腹中线分别切开腹部皮肤及腹部肌层,打开腹腔,将肠管移动至两侧以暴露腹主动筋膜。找到包裹下腔静脉和腹主动脉的筋膜,小心将之剥离。随后将浸润弹性蛋白酶溶液(100mg/ml)的明胶海绵(1mm * 1mm * 5mm)放置于肾下腹主动脉上15min,取出海绵,随后使用37℃生理盐水灌洗小鼠腹腔3次。对照组则使用生理盐水浸润的明胶海绵,其余同上。还纳腹腔器官后使用6-0尼龙线缝合腹肌层及皮肤,随后使用碘伏棉球再次消毒。术后将小鼠放置于加热垫上苏醒,21d后开腹观察AAA形成情况,若直径扩大超过50%则视为造模成功。
小鼠AAA模型造模21d后处死,心脏灌注大量生理盐水后分离腹主动脉,用于总RNA提取。RNA提取使用M5 HiPer纤维类组织RNA快速提取试剂盒(MF168-01,聚合美,北京)。来源于AAA和正常腹主动脉的总RNA(1ug)使用Bulge-Loop miRNAqRT-PCR Starter Kit(锐博生物,广州)进行逆转录及qPCR。内参基因为U6。引物如下:
-206-3p RT Primer
GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACCCACAC
-206-3p Forward GCGCGTGGAATGTAAGGAAGT
-206-3p Reverse AGTGCAGGGTCCGAGGTATT
结果见附图3,显示小鼠AAA模型的miR-206-3p表达水平显著升高约5倍(p<0.05)。
实施例3:对比实验验证
C57/BL6小黑鼠(雄性,8-10周,30-40g):购自山西医科大学实验动物中心(合格证号scxk(晋)2019-0004)。
小鼠饲养环境为18~22℃,湿度50~60%。每笼饲养两只小鼠,食物为大小鼠维持饲料:购自山西医科大学实验动物中心,每次每笼供应30g,每2天供应一次;带金属饮水管的塑料瓶(250ml/500ml)装满清水供小鼠饮用,每2天更换一次。
实验所需材料为小鼠手术器械,可吸收明胶海绵,弹性蛋白酶溶液(0.5%),8-0可吸收缝合线;
AAV-zsGreen空载病毒溶液20ul,AAV-miR206-3p-sponge-zsGreen病毒溶液20ul。
①弹性蛋白酶处理+AAV-miR-206-3p-sponge转染组(转染组)
转染组小鼠吸入乙醚麻妥后,碘伏棉球消毒小鼠腹部皮肤3遍,沿C57小鼠腹中线分别切开腹部皮肤及腹部肌层,打开腹腔,将肠管移动至两侧以暴露腹主动筋膜。随后从左侧钝性分离腹主动脉筋膜,暴露腹主动脉,此过程注意不要损伤腹主动脉筋膜完整性。将浸润0.5%弹性蛋白酶的明胶海绵(5mm*2mm*2mm)敷在肾下腹主动脉上15分钟(破坏弹性蛋白层,使腹主动脉在血压下扩张形成动脉瘤)。生理盐水冲洗3次,随后将浸润20uL AAV-miR206-3p-sponge-zsGreen溶液的可吸收明胶海绵(5mm*2mm*2mm,大小可视AAV溶液体积而定)放置于腹主动脉旁,使用主动脉鞘膜包裹可吸收明胶海绵,并使用8-0可吸收缝合线缝合3-5针,还纳腹腔器官后使用6-0尼龙线缝合腹肌层及皮肤,随后使用碘伏棉球再次消毒。术后将小鼠放置于加热垫上苏醒。
②弹性蛋白酶处理+AAV-空转染组(空转染组)
空转染组小鼠在进行腹主动脉暴露后,使用浸润0.5%弹性蛋白酶的明胶海绵敷在腹主动脉上15分钟,生理盐水冲洗3次(此步骤之前均同上)。随后将浸润 20uL AAV-zsGreen空载病毒溶液的可吸收明胶海绵(5mm*2mm*2mm)放置于腹主动脉旁,使用主动脉鞘膜包裹可吸收明胶海绵,并使用8-0可吸收缝合线缝合3-5针,还纳腹腔器官后使用6-0尼龙线缝合腹肌层及皮肤,随后使用碘伏棉球再次消毒。术后将小鼠放置于加热垫上苏醒。
③弹性蛋白处理组
小鼠在进行腹主动脉暴露后,使用浸润0.5%弹性蛋白酶的明胶海绵敷在腹主动脉上15分钟,生理盐水冲洗3次(此步骤之前均同上),还纳腹腔器官后使用6-0尼龙线缝合腹肌层及皮肤,随后使用碘伏棉球再次消毒。术后将小鼠放置于加热垫上苏醒。
上述三组加假手术组的小鼠在造模21d后处死,进行相关指标检测。免疫荧光所需试剂及抗体均由赛维尔生物科技有限公司(武汉)提供。使用GraphPad Prism 8进行统计分析。Kolmogorov-Smirnov检验数据正态性(所有数据均服从正态分布),使用单因素方差分析(One-way Anova)鉴别各组间中膜厚度,内膜周长,收缩型标记物相对表达量是否有组间差异,以P<0.05为差异有统计学意义。中膜厚度,内膜周长通过CaseViewer2.4.0 于免疫荧光切片上采集。
结果如图4所示,图4的左图为空转染组免疫荧光图片,右图为转染组免疫荧光图片,从图中可以看出转染组的小鼠在转染AAV-miR-206-3p-sponge后,腹主动脉直径增粗,每组样本数(n=4);
图5的左图为各组小鼠的病理切片图片,右图为各组小鼠的免疫荧光结果,显示AAV-miR-206-3p sponge转染后,α-SMA阳性的VSMC显著增殖,动脉中膜增厚(箭头处),每组样本数(n=3),本组样本显示敲除miR-206-3p会使动脉瘤中最大中膜厚度与最小中膜厚度均显著增加,而内膜周长无显著差异,总直径增加。
图6为收缩型平滑肌标志物CNN1、ACTA2的检测结果,从图中可以明显看出AAV-miR-206-3p sponge转染后,VSMC收缩型标记calponin1(CNN1)和αSMA(ACTA2)转录水平表达量进一步降低,表明VSMC发生了去分化。每组样本数(n=6)。
腹主动脉瘤的药物治疗一直是难点和热点,目前尚无有效的药物治疗可防止腹主动脉瘤进一步扩张。而本发明通过实验验证了miR-206-3p海绵功能性敲低miR-206-3p,可通过去分化VSMC来增加VSMC的增殖能力,进而增加主动脉中膜厚度,限制腹主动脉瘤的进一步扩张,从而降低主动脉瘤破裂的风险。miR-206-3p具有促进VSMC分化,降低其增殖能力的作用。腹主动脉瘤中miR-206-3p为高表达,将其敲低,收缩性标记物(CNN1,ACTA2)表达降低,α-SMA(+)细胞数量增多。说明敲除miR-206-3p后VSMC由分化程度高、增殖能力弱的收缩型转换为分化程度低、增殖能力强的表型,中止了VSMC数量减少导致的主动脉瘤形成,可降低了主动脉破裂的风险,可对主动脉瘤破裂起到防治的效果。本发明以miR-206-3p可作为治疗腹主动脉瘤的靶点,并在小鼠腹主动脉瘤模型上进行了实验验证,为进一步的临床治疗腹主动脉瘤提供了新思路及新靶点。
以上对本发明及其实施方式进行了描述,这种描述没有限制性,实施例中所示的也只是本发明的实施方式之一,实际的结构并不局限于此。总而言之如果本领域的普通技术人员受其启示,在不脱离本发明创造宗旨的情况下,不经创造性的设计出与该技术方案相似的结构方式及实施例,均应属于本发明的保护范围。
序列表
<110> 山西医科大学第二医院
<120> miR-206-3p海绵及其应用
<130> 2022
<160> 3
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 100
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 1
ccacacactt aagacattcc atatacccac acacttaaga cattccaaca tcccacacac 60
ttaagacatt ccatcttcac cacacactta agacattcca 100
<210> 2
<211> 69
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 2
acagaattcc cacacactta agacattcca tatacccaca cacttaagac attccaacat 60
cccacacac 69
<210> 3
<211> 69
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 3
acaaagcttt ggaatgtctt aagtgtgtgg tgaagatgga atgtcttaag tgtgtgggat 60
gttggaatg 69
Claims (6)
1.miR-206-3p海绵在制备预防或治疗腹主动脉瘤破裂的药物中的应用,其特征在于,所述miR-206-3p海绵的核苷酸序列如SEQ NO.1所示。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述miR-206-3p海绵通过功能性敲低miR-206-3p,增强VSMC的增殖能力而增加主动脉中膜厚度,限制腹主动脉瘤的进一步扩张,来实现对腹主动脉瘤破裂的预防或治疗。
3.一种miR-206-3p海绵载体质粒在制备预防或治疗腹主动脉瘤破裂的药物中的应用,其特征在于,所述miR-206-3p海绵载体质粒包括表达载体和与所述表达载体有效连接的miR-206-3p海绵,所述miR-206-3p海绵的核苷酸序列如SEQ NO.1所示。
4.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述表达载体为腺相关病毒表达载体pHBAAV-CMV-MCS-T2A-ZsGreen。
5.一种腺相关病毒在制备预防或治疗腹主动脉瘤破裂的药物中的应用,其特征在于,制备所述腺相关病毒采用的穿梭质粒是权利要求3或4所述的miR-206-3p海绵载体质粒。
6.根据权利要求5所述的应用,其特征在于,所述腺相关病毒的制备方法包含以下步骤:采用权利要求3或4所述的miR-206-3p海绵载体质粒、pAAV-RC载体质粒、pHelper载体质粒共转染AAV-293细胞。
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