CN114262704A - 一种固定化载体、d-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶及制备方法 - Google Patents

一种固定化载体、d-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶及制备方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种固定化载体、D‑乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶及制备方法。本发明所述的固定化载体包括质量比为1~3:2~4:4~6的甘草酸二钾、脱乙酰壳多糖以及硅藻土制备的载体;所述载体置于质量浓度为4.5~5.5%的戊二醛溶液中固定8~12h得到固定化载体。本发明以甘草酸二钾与脱乙酰壳多糖、硅藻土共絮凝吸附,形成的复合壳聚糖载体,具有较好的机械强度,固定化载体过滤可操作性好。本发明制备的D‑乙酰亮氨酸脱乙酰酶具有较好的稳定性,可反复使用20次以上。

Description

一种固定化载体、D-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶及制备方法
技术领域
本发明属于涉及生化工程技术领域,具体涉及一种固定化载体、D-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶及制备方法。
背景技术
D-亮氨酸的制备采用发酵-消旋-酰化酶法拆分法,该路线需要使用发酵生产的L-亮氨酸作为原料,经消旋,然后再乙酰化工序,得到N-乙酰-DL-亮氨酸,后经过D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶选择性水解后可以得到D-亮氨酸。D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶固定化后可以提高酶的稳定性,使得催化过程容易控制,且极易与反应体系分离,产品的收率高、质量好;同时,固定化酶可以重复使用使得使用效率提高而成本降低。固定化酶所用的材料,多为卡拉胶、聚乙烯亚胺、聚丙烯酰胺等材料,而对于采用壳聚糖交联戊二醛固定化酶多有使用,但脱乙酰程度不完全,交联酶的载量和强度不够。
发明内容
发明目的:针对上述现有技术存在的不足,本发明提供了固定化载体、D-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶及制备方法。本发明采用甘草酸二钾与脱乙酰壳多糖、硅藻土共絮凝吸附,形成的复合壳聚糖载体,具有较好的机械强度和比表面积,再经戊二醛交联后形成固定化目标酶的固定载体。本发明的固定化酶载体用于固定D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶,使得D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶具有较好的稳定性,并促进甘草提取物的应用。
技术方案:本发明所述的一种固定化载体,包括质量比为1~3:2~4:4~6的甘草酸二钾、脱乙酰壳多糖以及硅藻土制备的载体;所述载体置于质量浓度为4.5~5.5%的戊二醛溶液中固定8~12h得到固定化载体。
作为本发明的一种优选实施方式,所述载体通过以下方法制备:配置1~3%甘草酸二钾溶液,室温条件下将1~3%甘草酸二钾溶液滴入2~4%脱乙酰壳多糖和4~6%硅藻土的混合液中,搅拌2~4小时,过滤,清洗后得到载体。
本发明所述的固定化载体的制备方法,包括以下步骤:
(S1):配置1~3%甘草酸二钾溶液,室温条件下将1~3%甘草酸二钾溶液滴入2~4%脱乙酰壳多糖和4~6%硅藻土的混合液中,搅拌2~4小时,过滤,清洗后得到载体;
(S2):取步骤(S1)制备的载体,加入到4~8倍质量比的4.5~5.5%的戊二醛溶液中,室温条件下150~200r/min搅拌反应8~12h,以蒸馏水充分清洗,过滤得到固定化载体。
本发明所述的D-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶的制备方法,包括以下步骤:
(SS1):配置1~3%甘草酸二钾溶液,室温条件下将1~3%甘草酸二钾溶液滴入2~4%脱乙酰壳多糖和4~6%硅藻土的混合液中,搅拌2~4小时,过滤,清洗后得到载体;
(SS2):取步骤(S1)制备的载体,加入到4~8倍质量比的4.5~5.5%的戊二醛溶液中,室温条件下150~200r/min搅拌反应8~12h,以蒸馏水充分清洗,过滤得到固定化载体;
(SS3):取步骤(SS2)制备的固定化载体,加入D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶溶液,4~10℃条件下150~200r/min搅拌8~12h,过滤,并用蒸馏水充分清洗后得到固定化酶。
作为本发明的一种优选实施方式,所述D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶溶液通过以下方法制备:将重组表达D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶的工程菌发酵液离心,收集得到菌泥,将菌泥混悬于6~10倍质量比的磷酸盐缓冲液溶液中,进行高压均质,制备得到破壁粗酶溶液。
作为本发明的一种优选实施方式,步骤(SS1)中,所述脱乙酰甲壳素的分子量为50w~100W。
作为本发明的一种优选实施方式,所述高压均质的条件为:压力500~600Mpa,时间3~5分钟。
作为本发明的一种优选实施方式,固定化载体通过以下方法制备:配置2%甘草酸二钾溶液,通过匀速多管路滴加设备,室温条件滴入3%脱乙酰壳多糖和5%硅藻土的混合液中,搅拌2小时,过滤,以蒸馏水充分清洗后得到到固定化载体。
作为本发明的一种优选实施方式,戊二醛活化的固定化载体通过以下方法制备:取上述载体,加入到4~8倍质量比的5%的戊二醛溶液中,室温条件下150r/min搅拌反应8~12h,以蒸馏水充分清洗,过滤得到活化固定化载体。
本发明中选择戊二醛为活化剂,发现温度对固定化酶活性的影响很大。室温条件下固定化固定化酶活和回收率最高,当温度再升高时,游离酶在较高的温度下失活严重,引起固定化酶活和回收率的降低。活化剂戊二醛的质量分数也决定着脱乙酰壳多糖上氨基的活化程度,即决定着酶与载体结合的活性中心的多少,从而影响固定化酶活的高低。因此,活化剂的质量分数是影响酶活的关键因素。戊二醛溶液质量分数为5%时的酶活和回收率最好。固定化时间以8~12h时效果为宜。固定化时间太短时,酶结合量小,酶活性不高,而且稳定性差;但若固定化时间太长,酶长期暴露在戊二醛溶液里,容易造成酶的失活,影响回收率。
(4)作为本发明的一种优选实施方式,本发明的固定载体与酶通过以下方法交联固定:取上述预处理的固定化载体,加入5~10倍质量比的破壁粗酶溶液,4~10℃条件下150r/min搅拌12h,过滤,并用蒸馏水充分清洗后得到固定化酶,测固定化酶酶活和残余酶液的酶活。
作为本发明的一种优选实施方式,所述的D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶溶液通过以下方法制备:制备菌泥:将重组表达D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶的工程菌发酵液离心,收集得到菌泥;破壁:将菌泥混悬于6~10倍质量比的30mM磷酸盐缓冲液(pH7.0)溶液中,进行高压均质,均质机条件为压力600Mpa,时间5分钟,循环均质,制备得到破壁粗酶溶液。
活化载体和破壁粗酶溶液的质量比也影响固定化酶的酶活和回收率。固定化酶的酶活性随着酶用量的增加而升高,但回收率随着酶用量的增加反而下降。综合了酶活、回收率两个因素,载体和酶液5~10倍质量比为最佳。
有益效果:(1)本发明以甘草酸二钾与脱乙酰壳多糖、硅藻土共絮凝吸附,形成的复合壳聚糖载体,具有较好的机械强度,固定化载体过滤可操作性好。(2)本发明固定载体具有较大的比表面积,经戊二醛交联后形成固定化目标酶,酶的活力和回收率高。酶活力达到80U/g以上,酶回收率达到80%以上。(3)本发明将D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶固定化,具有较好的固定化强度,具有较好的稳定性和酶催化活性,使得其在D-亮氨酸生过程中能够重复利用,本发明制备的D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶具有较好的稳定性,可反复使用20次以上。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步阐述,但本发明的保护范围不仅限于此。
实施例1:酶活测定:
(1)HPLC条件:Cosmosil 5C18-AR(150mm×4.6mm)柱温40℃;流动相A:乙腈流动相B:TFA(0.01M)水溶液;梯度洗脱:15%流动相A——45%流动相A流速1mL/min,340nm。
(2)标准品溶液的配置:精确称取0.1g N-乙酰-DL-亮氨酸标准品(99%含量),用蒸馏水溶解,容量瓶定容到25mL,计算ρ标(单位g/L)。取10uL标准品溶液进样,采集色谱数据,峰面积记为S标。
(3)配制质量分数11%左右的底物N-乙酰-DL-亮氨酸水溶液,用单点外标法标定底物含量。
称11g N-乙酰-DL-亮氨酸,加89g蒸馏水溶解,得到质量分数11%N-乙酰-DL-亮氨酸水溶液100g。称取1g配制的N-乙酰-DL-亮氨酸水溶液(精确记录重量m1,单位g)于25mL容量瓶中,用蒸馏水定容至25mL。取10uL稀释后的N-乙酰-DL-亮氨酸水溶液进样,采集色谱数据,峰面积记为S1,则标定后的底物水溶液质量分数:
Figure BDA0003385221200000041
(4)菌泥或固定化酶比活力检测
1)酶活定义:在最适条件下,每分钟内催化1微摩尔(μmol)底物N-乙酰-DL-亮氨酸转化为D-亮氨酸所需的酶量定为一个活力单位,即1IU=1μmol/min。
2)配制0.2mol/L Tris-HCl缓冲液(pH 7.3),备用。
3)配制0.2mol/L磷酸二氢钾缓冲液(磷酸调pH 3.0),备用。
4)称取1g菌泥或固定化酶平摊于玻璃皿中,于105℃烘箱中烘至恒重,测算菌泥或固定化酶含水量。
5)称取5g质量分数为ω1的N-乙酰-DL-亮氨酸水溶液(精确记录重量m2,单位g)于100mL锥形瓶中,加0.2mol/L Tris-HCl缓冲液(pH 7.3)至锥形瓶内溶液总重50g左右(精确记录重量m3,单位g),加入湿重0.1g菌泥或湿重0.5g固定化酶(精确记录重量m4,单位g),加搅拌子,瓶口密封,30℃水浴搅拌60min。立即取5g上述反应液(精确记录重量m5,单位g)于10mL容量瓶中,用磷酸二氢钾缓冲液(pH=3.0)定容至10mL。取少量稀释液用0.22um滤膜过滤,取10uL进样,采集色谱数据,峰面积记为S2,则稀释后的反应液质量分数:
Figure BDA0003385221200000042
Figure BDA0003385221200000043
酶回收率(%)=100*固定化酶比活力*固定化酶重量/菌泥酶活力*菌泥重量
实施例2:D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶固定化酶的制备
(1)本发明所用的D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶是采用构建的D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶的工程菌发酵制备,具体制备方法为,将重组大肠杆菌pET28a-D-aceDElase/E.coli BL21接种至含50μg/mL卡那霉素的LB培养基(蛋白胨10g/L,酵母膏5g/L,NaC1 10g/L,pH7.0)中,37℃振荡培养过夜,按1%(v/v)的接种量转接到装有600mL LB培养基的2L三角烧瓶中,置于37℃、180rpm摇床振荡培养,当培养液的OD600达到1.2时,加入终浓度为0.1mmol/L的IPTG作为诱导剂,16℃诱导24h后得到发酵液,按以下步骤进行固定化:
(2)将重组表达D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶的工程菌发酵液离心,收集得到菌泥;测定菌泥酶活力为1021U/g。将菌泥混悬于6倍质量比的30mM磷酸盐缓冲液(pH7.0)溶液中,进行高压均质,均质机条件为压力600Mpa,时间5分钟,循环均质,制备得到破壁粗酶溶液。
(3)配置2%甘草酸二钾溶液,通过匀速多管路滴加设备,室温条件滴入3%脱乙酰壳多糖和5%硅藻土的混合液中,(三者质量比为2:3:5)搅拌2小时,过滤,以蒸馏水充分清洗后得到到固定化载体。取上述固定化载体,加入到5倍质量比的5%的戊二醛溶液中(以固定化载体的质量为标准,下同),室温条件下150r/min搅拌反应8~12h,以蒸馏水充分清洗,过滤得到活化固定化载体。
(4)取上述预处理的活化载体,加入5倍质量比的破壁粗酶溶液,4℃条件下150r/min搅拌12h,过滤,并用蒸馏水充分清洗后得到固定化酶,测固定化酶酶活为106U/g和酶回收率为88.2%。
实施例3:D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶固定化酶的制备
(1)将重组表达D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶的工程菌发酵液离心,收集得到菌泥;测定菌泥酶活力为920U/g。将菌泥混悬于8倍质量比的30mM磷酸盐缓冲液(pH7.0)溶液中,进行高压均质,均质机条件为压力600Mpa,时间5分钟,循环均质,制备得到破壁粗酶溶液。
(2)配置1%甘草酸二钾溶液,通过匀速多管路滴加设备,室温条件滴入4%脱乙酰壳多糖和5%硅藻土的混合液中,(三者质量比为1:4:5)搅拌2小时,过滤,以蒸馏水充分清洗后得到到固定化载体。取上述固定化载体,加入到8倍质量比的5%的戊二醛溶液中,室温条件下150r/min搅拌反应8h,以蒸馏水充分清洗,过滤得到活化固定化载体。
(3)取上述预处理的活化载体,加入8倍质量比的破壁粗酶溶液,4℃条件下150r/min搅拌12h,过滤,并用蒸馏水充分清洗后得到固定化酶,测固定化酶酶活为115U/g和酶回收率为86.2%。
实施例4:D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶固定化酶的制备
(1)将重组表达D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶的工程菌发酵液离心,收集得到菌泥;测定菌泥酶活力为920U/g。将菌泥混悬于10倍质量比的30mM磷酸盐缓冲液(pH7.0)溶液中,进行高压均质,均质机条件为压力600Mpa,时间5分钟,循环均质,制备得到破壁粗酶溶液。
(2)配置3%甘草酸二钾溶液,通过匀速多管路滴加设备,室温条件滴入2%脱乙酰壳多糖和4%硅藻土的混合液中,(三者质量比为3:2:4)搅拌2小时,过滤,以蒸馏水充分清洗后得到到固定化载体。取上述固定化载体,加入到4倍质量比的5%的戊二醛溶液中,室温条件下150r/min搅拌反应8h,以蒸馏水充分清洗,过滤得到活化固定化载体。
(3)取上述预处理的活化载体,加入8倍质量比的破壁粗酶溶液,4℃条件下150r/min搅拌12h,过滤,并用蒸馏水充分清洗后得到固定化酶,测固定化酶酶活为122U/g和酶回收率为90.2%。
实施例5:固定化D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶使用稳定性测试:称取50g质量分数为10%的N-乙酰-DL-亮氨酸水溶液于1000mL锥形瓶中,加0.2mol/L Tris-HCl缓冲液(pH7.3)至锥形瓶内溶液总重500g左右,加入实施例2制备得到的5g固定化酶,加搅拌子,瓶口密封,30℃水浴搅拌60min。过滤回收固定化酶,反复上述步骤20次后,测定固定化酶活力为82.5U/g,损失率为22%。
此外,应当理解,本发明不受上述实施例的限制,上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理,任何不经过创造性劳动想到的变化或替换,都应涵盖在本发明的保护范围之内。因此,本发明的保护范围应该以权利要求书所限定的保护范围为准。

Claims (7)

1.一种固定化载体,其特征在于,包括质量比为1~3:2~4:4~6的甘草酸二钾、脱乙酰壳多糖以及硅藻土制备的载体;所述载体置于质量浓度为4.5~5.5%的戊二醛溶液中固定8~12h得到固定化载体。
2.根据权利要求1所述的固定化载体,其特征在于,所述载体通过以下方法制备:配置1~3%甘草酸二钾溶液,室温条件下将1~3%甘草酸二钾溶液滴入2~4%脱乙酰壳多糖和4~6%硅藻土的混合液中,搅拌2~4小时,过滤,清洗后得到载体。
3.一种如权利要求1所述的固定化载体的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(S1):配置1~3%甘草酸二钾溶液,室温条件下将1~3%甘草酸二钾溶液滴入2~4%脱乙酰壳多糖和4~6%硅藻土的混合液中,搅拌2~4小时,过滤,清洗后得到载体;
(S2):取步骤(S1)制备的载体,加入到4~8倍质量比的4.5~5.5%的戊二醛溶液中,室温条件下150~200r/min搅拌反应8~12h,以蒸馏水充分清洗,过滤得到固定化载体。
4.一种D-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(SS1):配置1~3%甘草酸二钾溶液,室温条件下将1~3%甘草酸二钾溶液滴入2~4%脱乙酰壳多糖和4~6%硅藻土的混合液中,搅拌2~4小时,过滤,清洗后得到载体;
(SS2):取步骤(S1)制备的载体,加入到4~8倍质量比的4.5~5.5%的戊二醛溶液中,室温条件下150~200r/min搅拌反应8~12h,以蒸馏水充分清洗,过滤得到固定化载体;
(SS3)::取步骤(SS2)制备的固定化载体,加入D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶溶液,4~10℃条件下150~200r/min搅拌8~12h,过滤,并用蒸馏水充分清洗后得到固定化酶。
5.根据权利要求4所述的D-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶的制备方法,其特征在于,所述D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶溶液通过以下方法制备:将重组表达D-乙酰亮氨酸脱乙酰酶的工程菌发酵液离心,收集得到菌泥,将菌泥混悬于6~10倍质量比的磷酸盐缓冲液溶液中,进行高压均质,制备得到破壁粗酶溶液。
6.根据权利要求4所述的D-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶的制备方法,其特征在于,步骤(SS1)中,所述脱乙酰壳多糖的分子量为50w~100w。
7.根据权利要求所述的D-乙酰亮氨酸脱乙酰固定化酶的制备方法,其特征在于,所述高压均质的条件为:压力500~600Mpa,时间3~5分钟。
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