CN114250239A - 甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建方法及应用 - Google Patents

甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建方法及应用 Download PDF

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Abstract

本发明涉及甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建方法及应用;通过在野生型的甘氨酸核糖开关元件序列上进行突变,从文库高通量筛选出性能提升,甘氨酸响应范围增加和振幅值增加的甘氨酸‑ON的突变体和构象改变的甘氨酸核糖开关突变体,从而可以实现基因的表达调控。本发明同时将野生型甘氨酸‑ON转变为甘氨酸‑OFF核糖开关,同时也增加了核糖开关的振幅值。本发明还提供了筛选性能提升与构象改变的甘氨酸突变体方法以及含有这些突变体的表达载体和宿主细胞。本发明的甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建及性能提升与构象改变的突变体是目前在大肠杆菌内首次报道基于甘氨酸核糖开关线路和性能提升的有效突变体。

Description

甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建方法及应用
技术领域
本发明属于合成生物学领域,具体地涉及基因调控线路的构建方法,甘氨酸核糖开关突变体的筛选及应用。
背景技术
代谢工程是生物合成化学品和生物材料重要的方法。但是传统代谢工程方法通常是通过简单的过表达或者敲除途径基因来实现目标产品的生产,这不可避免导致细胞生长受到影响,代谢不平衡以及资源不充分利用等问题。与此相比,天然的细胞能够有效的平衡细胞生长和胞内代谢物之间的平衡,从而实现细胞生长,产品生产以及能源有效利用之间的最佳效果。
为了解决以上问题,一些启动子、RBS和基因间区域的组合文库被广泛设计用来调控基因的表达水平。这些文库的筛选需要花费很大的人力物力,效率相对较低,而且在复杂的微生物代谢环境中,通常基因在一种环境下的最优表达条件可能很难适用于另一种代谢环境中。一些诱导型的启动子也被开发应用于途径基因的调控,但是诱导剂本身昂贵的价格会增加生产成本,而且诱导剂本身对细胞的生长代谢也有影响。
核糖开关,位于mRNA的非翻译区(untranslated regions,UTR),可以直接感应信号分子并引起自身二级结构构象变化,从而在转录或者翻译水平实现对下游相关基因的表达调控。作为生物传感器的一种,核糖开关响应信号分子的过程不依赖蛋白质或其他任何因子的相互作用,相对简单迅捷,在细胞动态代谢调控,提升底物利用效率,提升目标酶的性能以及提升产品的产量和得率等方面具有重要的应用价值。
在2002年Breaker课题组首次报道了核糖开关可用于基因的表达调控,之后约有40种核糖开关被确认,包括辅酶、核苷酸衍生物、信号分子、金属离子、氨基酸和其他代谢物等类型的核糖开关。然而,相比于种类众多的代谢物分子,目前可用的核糖开关仍然有限,这极大地限制了其在代谢工程中的潜在应用。
氨基酸广泛参与许多细胞代谢反应,因此,氨基酸类核糖开关对于细胞动态代谢调控具有重要意义。其中赖氨酸核糖开关已经被广泛应用于代谢工程领域。例如,2013年,为了加快微生物的进化,基于赖氨酸核糖开关高通量筛选模块被用于筛选最优代谢通路的大肠杆菌,经过四轮富集筛选,通路优化菌株占总菌群的75%(Yang J,et al.(2013),NatCommun4(1413):1-7.);2015年,赖氨酸核糖开关被应用于进化天冬氨酸激酶的高通量筛选。最好的突变体BT3显示出160%的体外活性增加,在含有BT3的菌株在分批培养中产生674mg/L的L-赖氨酸(Wang JM,Gao DF,Yu XL,Li W,&Qi QS(2015).Appl MicrobiolBiot99(20):8527-8536.);同年,天然大肠杆菌来源的赖氨酸核糖开关(ECRS)和枯草芽孢杆菌来源的赖氨酸核糖开关(BSRS)被用于动态控制产赖氨酸菌株中柠檬酸合酶的表达和三羧酸循环活性。结果表明,突变体ECRS-gltA中的赖氨酸产量增加了63%,突变体BSRS-gltA中的赖氨酸产量增加了38%(Zhou LB&Zeng AP(2015).ACS Synth Biol 4(6):729-734.);此外,来源于大肠杆菌的天然赖氨酸-OFF核糖开关和合成赖氨酸-ON核糖开关分别用于动态控制柠檬酸合酶和赖氨酸转运蛋白。在含有赖氨酸-ON核糖开关用于lysE控制的菌株的赖氨酸产量与对照菌株相比增加了21%,与天冬氨酸激酶失调的菌株相比,赖氨酸产量甚至增加了89%(Zhou LB&Zeng AP(2015).ACS Synth Biol 4(12):1335-1340.)。2021年,一种合成的色氨酸核糖开关也被用于通过提高色氨酸在大肠杆菌中的耐受性,从而增加工程大肠杆菌的Trp产量(Liu Y,et al.(2021).ACS Synth.Biol.10(6):1-10.)。
虽然以上研究表明天然氨基酸类核糖开关可以很容易地用于代谢途径的动态调控,甚至可以设计为“合成开关”,以增强其他微生物所需代谢途径的代谢通量。与传统的代谢工程方法相比,基于核糖开关的动态调控策略能够有效缓解由于外源蛋白引入导致的代谢负担,平衡细胞生长和胞内的代谢物水平的变化,实现目标产物的生产。但是天然的甘氨酸核糖开关对甘氨酸的感应十分灵敏,而且感应范围较窄仍然是亟需解决的问题。以甘氨酸核糖开关为例,当前许多天然来源或合成的甘氨酸核糖开关感应范围均较低(大约0-30mM);同时当前的核糖开关数量远远小于感应小分子的数量,每一种可被应用于代谢工程或合成生物学的感应元件,都是对其扩大和发展。因此,开发或发现新的核糖元件或提升现有的核糖元件性能对于其在代谢工程领域的广泛应用具有重要意义。
本发明通过从文库高通量筛选出性能提升,甘氨酸响应范围增加和振幅值增加的甘氨酸-ON的突变体和构象改变的甘氨酸核糖开关突变体。这不仅提升了当前甘氨酸核糖开关的性能,也丰富了核糖开关的数量,从而解决了天然核糖开关感应范围较低的问题。通过添加廉价的甘氨酸即可实现菌株的动态表达,既不影响菌株的生长,也避免了使用高价诱导剂增加成本的问题。
发明内容
根据现有技术的问题,本发明提出了甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建及性能提升与构象改变的突变体的应用。
本发明的技术方案概述如下:
发明人经过广泛而深入的研究,出乎意料地发现通过在野生型的甘氨酸核糖开关元件序列上进行突变,从文库高通量筛选出性能提升,甘氨酸响应范围增加和振幅值增加的甘氨酸-ON的突变体和构象改变的甘氨酸核糖开关突变体,从而可以实现基因的表达调控。在此基础上完成了本发明。
术语定义
本文中的术语“甘氨酸核糖开关”是指非编码氨基酸的调控元件可用于构建基因线路调控的甘氨酸核糖开关,关于本发明的目的,它来源于枯草芽孢杆菌,其核酸序列如SEQ ID NO:4所示。此外,具有与SEQ ID NO:4的功能等同的任何突变体序列,虽然他们来源相同,但是这些核酸序列已经经过双重筛选表现出性能提升和/或构象改变的突变体甘氨酸核糖开关性能提升的突变体。其中,表现为甘氨酸响应范围和振幅值增加的突变体有BSglyON3、BSglyON4、BSglyON9、BSglyON10、BSglyON13、BSglyON14,其特征是,核酸序列为SEQ ID NO.4(该序列不编码氨基酸)的第19位的腺嘌呤A突变为鸟嘌呤G、第47位的腺嘌呤A突变为胞嘧啶C、第73位的尿嘧啶U突变为腺嘌呤A、第106位的胞嘧啶C突变为尿嘧啶U,和/或第4位的腺嘌呤A突变为胞嘧啶C、和/或第5位的腺嘌呤A突变为鸟嘌呤G、和/或第8位的腺嘌呤A突变为尿嘧啶U、和/或第179位的尿嘧啶U突变为腺嘌呤A。
甘氨酸核糖开关构象改变的突变体BSglyOFF5、BSglyOFF6、BSglyOFF8、BSglyOFF11、BSglyOFF12、BSglyOFF35,表现为野生型的甘氨酸-ON构象突变为甘氨酸-OFF构象,并且振幅值增加,其特征是,核酸序列为SEQ ID NO.4(该序列不编码氨基酸)的第42位的鸟嘌呤G突变为胞嘧啶C、第62位的腺嘌呤A突变为尿嘧啶U、第79位的尿嘧啶U突变为胞嘧啶C、第92位的腺嘌呤A突变为鸟嘌呤G、第120位的尿嘧啶U突变为腺嘌呤A、和/或第56位的腺嘌呤A突变为鸟嘌呤G、和/或第64位的腺嘌呤A突变为尿嘧啶U、和/或第108位的腺嘌呤A突变为鸟嘌呤G、和/或第128位的胞嘧啶C突变为尿嘧啶U、和/或第143位的胞嘧啶C突变为腺嘌呤A、和/或第177位的尿嘧啶U突变为胞嘧啶C、和/或第177位的尿嘧啶U突变为腺嘌呤A。
以上突变体的详细特征如下表1:(突变位点信息栏中,数字代表突变位点,横杠前的字母表示突变前的核苷酸,横杠后的字母表示突变后的核苷酸)
Figure BDA0003435021840000031
Figure BDA0003435021840000041
本文所用的术语“甘氨酸-OFF核糖开关”或“glycine-OFF核糖开关”或“glycine-OFF核糖开关基因线路”指的是甘氨酸核糖开关序列具有在未结合甘氨酸时表现出激活下游基因的表达,当结合甘氨酸时表现出抑制下游基因表达功能的元件或基因线路。“甘氨酸-ON核糖开关”或“glycine-ON核糖开关”或“glycine-ON核糖开关基因线路”指的是甘氨酸核糖开关序列具有当未结合甘氨酸时表现出抑制下游基因的表达,当结合甘氨酸时表现出激活下游基因表达功能的元件或基因线路。
本文所用的术语“感应范围”指的是甘氨酸核糖开关在激活状态到抑制状态对应的甘氨酸浓度或者在抑制状态到激活状态的浓度。
本文所用的术语“振幅值”指的是甘氨酸核糖开关在激活状态到抑制状态对应的输出值的差。
本文所用的术语“构象改变”指的是甘氨酸核糖开关的二级结构通过突变等方式在同样甘氨酸浓度从“ON”改变为“OFF”或从“OFF”改变为“ON”的转变。
本发明的甘氨酸核糖开关调控基因线路质粒的构建方法,包括如下步骤:
1):以SEQ ID No.1所示BSGlyRS-F和以SEQ ID No.2所示BSGlyRS-R为引物,以SEQID No.3所示pUC-BSGlyRS为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.4所示BSGlyRS片段;
2):以SEQ ID No.5所示tetA-F和以SEQ ID No.6所示tetA-R为引物,以SEQ IDNo.7所示pUC-TETA为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.8所示tetA片段;
3):以SEQ ID No.9所示GFP-F和以SEQ ID No.10所示GFP-R为引物,以SEQ IDNo.11所示pUC-GFP为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.12所示GFP片段;
4):以SEQ ID No.13所示pUC18-F和以SEQ ID No.14所示pUC18-R为引物,以SEQID No.15所示pUC18为模板,通过PCR扩增,得到pUC18质粒骨架;通过CEPC组装技术,将与上述步骤获得的BSGlyRS、tetA、和GFP片段连接到pUC18质粒骨架上面,得到质粒命名为pUC18-BSTG,以SEQ ID No.16所示;
5):以SEQ ID No.17所示BSGT-mutF和以SEQ ID No.18所示BSGT-mutF为引物,以SEQ ID No.16所示pUC18-BSTG为模板,通过PCR扩增,得到BSGlyRS片段文库;
6):以SEQ ID No.19所示18-mutF和以SEQ ID No.20所示18-mutF为引物,以SEQID No.16所示pUC18-BSTG为模板,,得到文库质粒载体片段pUC18-STG;获得两者片段可构建为甘氨酸核糖开关质粒文库pUC18-BSTGlib,以SEQ ID No.21所示
7):将甘氨酸核糖开关质粒文库pUC18-BSTGlib转化到大肠杆菌MG1655中,涂布于M9固体培养基上,所有菌落收集于无菌水中;一半体积的菌液接种于补有80-100μg/mL(在此范围内均适用)氨苄青霉素的新鲜M9培养基中,和质量比10-12%(在此范围内均适用)的镍离子以除去甘氨酸-OFF核糖开关,然后在补有质量比0.4-0.8%(在此范围内均适用)的甘氨酸的新鲜M9培养基中选择甘氨酸-ON核糖开关,在补有80-100μg/mL(在此范围内均适用)氨苄青霉素,质量比0.4-0.8%甘氨酸和10-20μg/mL(在此范围内均适用)四环素的新鲜M9培养基中培养进一步富集甘氨酸-ON核糖开关。通过流式荧光细胞分选仪器(FACS)对具有最高绿色荧光的克隆进行分选。
8):另一半体积的菌液接种于在80-100μg/mL(在此范围内均适用)氨苄青霉素,质量比10-12%(在此范围内均适用)的镍离子和质量比0.4-0.8%(在此范围内均适用)的甘氨酸新鲜M9培养基中以除去甘氨酸-ON核糖开关,然后在补有80-100μg/mL(在此范围内均适用)氨苄青霉素但没有甘氨酸但没有甘氨酸新鲜M9培养基中培养,然后转接至在补有80-100μg/mL(在此范围内均适用)氨苄青霉素和10-20μg/mL(在此范围内均适用)四环素的M9培养基中,以富集甘氨酸-OFF核糖开光。同样,通过荧光细胞流式分选仪器(FACS)对具有最高绿色荧光的克隆进行分选。
9):将步骤七和八中的菌株分别在新鲜M9固体培养基上培养12-24h,随机挑选单菌落至96深孔板中进行初步筛选。每个单菌落分别接种于添加0.4-0.8%甘氨酸和不添加甘氨酸的深孔板中,37℃培养12-24h,然后分别检测在两种条件下的荧光强度和细胞生长量(OD600)。经96深孔板筛选后,得到如表1所示的突变体,其中有构象转变的甘氨酸-OFF核糖开关突变体和感应范围增加的甘氨酸-ON核糖开关突变体,突变体的特征如表1。
经96深孔板筛选后,得到甘氨酸-ON和-OFF核糖开关振幅比值最大的菌株MG1655-BS-ON14和MG1655-BS-OFF6。
本发明甘氨酸核糖开关突变体摇瓶表征:
挑选甘氨酸-ON和-OFF核糖开关振幅比值最大的菌株MG1655-BS-ON14和MG1655-BS-OFF6(菌株命名规则为:底盘菌株名称+甘氨酸核糖开关来源物种的简称+突变体对应的功能和序号),分别接种于M9液体培养基中,添加不同浓度甘氨酸进行表征。并检测不同甘氨酸浓度下,菌株的荧光强度和响应的生物量,计算细胞的相对荧光强度。
测定发酵过程中绿色荧光蛋白相对强度,结果显示随着甘氨酸添加量的增加,在以上6个甘氨酸-ON突变体中,14-ON的绿色荧光蛋白相对强度随着甘氨酸浓度的增加而不断增加,当甘氨酸浓度为107mM时,其绿色荧光蛋白相对强度为615.23,相比于野生型甘氨酸核糖开关提高约50%;14-ON的甘氨酸响应范围由野生型的0-80mM提高到0-107mM。而构象改变的甘氨酸核糖开关突变体6-OFF与野生型相反,当不添加甘氨酸时,绿色荧光蛋白相对强度为631.34,而当添加107mM甘氨酸时,其绿色荧光蛋白相对强度为50,大约有10倍的抑制作用。由此可知:成功通过从文库高通量筛选出性能提升,甘氨酸响应范围增加和振幅值增加的甘氨酸-ON的突变体14-ON和构象改变的甘氨酸核糖开关突变体6-OFF。以上的突变体不仅提升了当前甘氨酸核糖开关的性能,也丰富了核糖开关的数量。
本发明涉及甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建及性能提升与构象改变的突变体的应用。本发明的甘氨酸核糖开关基因线路可感应甘氨酸分子实现基因表达调控;本发明的甘氨酸-ON核糖开关突变体不仅显著提高了甘氨酸的响应范围,也提高了振幅值;同时将野生型甘氨酸-ON转变为甘氨酸-OFF核糖开关,同时也增加了核糖开关的振幅值。本发明还提供了筛选性能提升与构象改变的甘氨酸突变体方法以及含有这些突变体的表达载体和宿主细胞。本发明的甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建及性能提升与构象改变的突变体是目前在大肠杆菌内首次报道基于甘氨酸核糖开关线路和性能提升的有效突变体。通过添加廉价的甘氨酸从而实现菌株的动态表达,既不影响菌株的生长,也避免了使用高价诱导剂增加成本的问题。
附图说明
图1为SEQ ID No.11所示pUC18-BSTG质粒的示意图。
图2为野生型菌株MG1655-BSTG和MG1655-BS-GLYOFF66在添加甘氨酸浓度分别为0,7,14,27,80mM时绿色荧光蛋白相对强度变化示意图。
具体实施方式
本发明通过下述实施例进一步阐明,但任何实施例或其组合不应当理解为对本发明的范围或实施方式的限制。除非另有说明,所有技术和科学术语都具有本领域所知的常见含义。所有专利、专利申请、公开出版物、序列、以及其他公开材料均援引加入本文,除非另有说明。
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
下面结合实施例对本发明做进一步说明,下述实施例是为了使本领域的技术人员能够更好地理解本发明,但对本发明不作任何限制。
本发明所用到的原始菌株大肠杆菌平台菌株,分类命名为大肠埃希氏菌(Escherichia coli)MG1655,为通用菌株。
原始质粒pUC18来源为Addgene(https://www.addgene.org/)。
pUC-BSGly,pUC-GFP,pUC-TETA均为生物公司化学合成。
所用限制性内切酶、DNA聚合酶等分子生物学试剂购买自thermo公司(http://www.thermoscientificbio.com/fermentas)。
所用PCR仪,酶标仪,分光光度计和电转仪购自Bio-Rad(http://www.bio-rad.com/)。
所用其他生化试剂从生工生物工程(上海)股份有限公司(http://www.sangon.com/)购买。
LB固体培养基(蛋白胨10g/L,酵母抽提物5g/L,氯化钠10g/L,琼脂2%)余量是水。
LB液体培养基(蛋白胨10g/L,酵母抽提物5g/L,氯化钠10g/L)余量是水。
M9培养基:以每1L计含有:葡萄糖20g,磷酸氢二钠6.8g,磷酸二氢钾3g,氯化钠0.5g,氯化铵1.0g,硫酸镁0.24g,氯化钙0.11g,微量元素10mg,柠檬酸铁胺20mg,硫酸亚铁2.8mg,甘氨酸0.5-6g,余量为水。
实施例1
甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建方法与突变体的筛选,其特征是包括如下步骤:
1):以SEQ ID No.1所示BSGlyRS-F和以SEQ ID No.2所示BSGlyRS-R为引物,以SEQID No.3所示pUC-BSGlyRS为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.4所示BSGlyRS片段;
2):以SEQ ID No.5所示tetA-F和以SEQ ID No.6所示tetA-R为引物,以SEQ IDNo.7所示pUC-TETA为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.8所示tetA片段;
3):以SEQ ID No.9所示GFP-F和以SEQ ID No.10所示GFP-R为引物,以SEQ IDNo.11所示pUC-GFP为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.12所示GFP片段;
4):以SEQ ID No.13所示pUC18-F和以SEQ ID No.14所示pUC18-R为引物,以SEQID No.15所示pUC18为模板,通过PCR扩增,得到pUC18质粒骨架;通过CEPC组装技术,将与上述步骤获得的BSGlyRS、tetA、和GFP片段连接到pUC18质粒骨架上面,得到质粒命名为pUC18-BSTG,以SEQ ID No.16所示(如图1所示);
5):以SEQ ID No.17所示BSGT-mutF和以SEQ ID No.18所示BSGT-mutF为引物,以SEQ ID No.16所示pUC18-BSTG为模板,通过PCR扩增,得到BSGlyRS片段文库;
6):以SEQ ID No.19所示18-mutF和以SEQ ID No.20所示18-mutF为引物,以SEQID No.16所示pUC18-BSTG为模板,通过PCR扩增,得到文库质粒载体片段pUC18-STG;BSGlyRS片段文库和pUC18-STG文库质粒载体片段分别使用dpnI快切酶在37℃孵育20分钟,然后立即切胶回收,获得两者纯化片段通过CEPC组装技术构建为甘氨酸核糖开关质粒文库pUC18-BSTGlib,以SEQ ID No.21所示。
7):性能提升的甘氨酸核糖开关突变体的筛选为:甘氨酸核糖开关质粒文库pUC18-BSTGlib转化到大肠杆菌MG1655中,然后涂布于M9固体培养基上;用2-4mL灭菌的纯净水冲洗固体培养基上的菌落,收获在M9培养基上的所有转化体,一半体积菌液接种于补有100μg/mL氨苄青霉素的新鲜M9培养基中,补加90μM镍离子,在37℃,220rpm培养10-16h,以除去带有甘氨酸-OFF核糖开关的菌株;然后在补有80mM甘氨酸的新鲜M9培养基中选择甘氨酸-ON核糖开关,在补有100μg/mL氨苄青霉素,80mM甘氨酸和15μg/mL四环素的新鲜M9培养基中培养进一步富集甘氨酸-ON核糖开关。只有tetA和GFP表达显示较高水平的的克隆会在选择步骤中存活,然后通过流式荧光细胞分选仪器(FACS)对具有最高绿色荧光的克隆进行分选。
8):构象改变的甘氨酸核糖开关突变体的筛选为:收获在M9培养基上的所有菌落,另一半体积菌液接种于在100μg/mL氨苄青霉素,90μM镍离子和80mM甘氨酸新鲜M9培养基中以除去甘氨酸-ON核糖开关,然后在补有100μg/mL氨苄青霉素但没有甘氨酸但没有甘氨酸新鲜M9培养基中培养,然后转接至在补有100μg/mL氨苄青霉素和15μg/mL四环素的M9培养基中,以富集甘氨酸-OFF核糖开光。同样,只有tetA和GFP表达显示较高水平的的克隆会在选择步骤中存活,然后通过荧光细胞流式分选仪器(FACS)对具有最高绿色荧光的克隆进行分选。
9):将步骤7)和8)中的菌株分别在新鲜M9固体培养基上培养12-24h,随机挑选单菌落至96深孔板中进行初步筛选。每个单菌落分别接种于添加80mM甘氨酸和不添加甘氨酸的深孔板中,37℃培养12-24h,然后分别检测在两种条件下的荧光强度和细胞生长量(OD600)。经96深孔板筛选后,挑选甘氨酸-ON和-OFF核糖开关振幅比值最大的菌株。其中,来源甘氨酸-ON核糖开关的菌群,定义添加80mM甘氨酸时的相对荧光强度为ON值,不添加甘氨酸时的相对荧光强度为OFF值;来源甘氨酸-OFF核糖开关的菌群定义值与之相反。
Figure BDA0003435021840000081
Figure BDA0003435021840000082
公式中不同符号的含义:
GFP:绿色荧光蛋白的表达强度;
OD600:细胞生物量;
ON80:来源甘氨酸-ON核糖开关的菌群在添加80mM甘氨酸时,细胞的相对荧光强度;
OFF0:来源甘氨酸-ON核糖开关的菌群在不添加甘氨酸时,细胞的相对荧光强度;
ON0:来源甘氨酸-OFF核糖开关的菌群在不添加甘氨酸时,细胞的相对荧光强度;
OFF80:来源甘氨酸-OFF核糖开关的菌群在添加80mM甘氨酸时,细胞的相对荧光强度;
ON(ON80/OFF0):甘氨酸-ON核糖开关的振幅比值;
OFF(ON0/OFF80):甘氨酸-OFF核糖开关的振幅比值;
实验结果:经96深孔板筛选得到的突变体BSglyON3、BSglyON4、BSglyON9、BSglyON10、BSglyON13、BSglyON14表现为甘氨酸响应范围和振幅值增加;突变体BSglyOFF5、BSglyOFF6、BSglyOFF8、BSglyOFF11、BSglyOFF12、BSglyOFF35表现为野生型甘氨酸-ON构象突变为甘氨酸-OFF构象,并且振幅值增加。以上突变体的详细突变位点如下表1:(突变位点信息栏中,数字代表突变位点,横杠前的字母表示突变前的核苷酸,横杠后的字母表示突变后的核苷酸)
Figure BDA0003435021840000083
Figure BDA0003435021840000091
上述六个甘氨酸-ON突变体和六个甘氨酸-OFF突变体中,突变体BSglyON14和BSglyOFF6的开关振幅比值最大,对应的菌株为MG1655-BS-ON14和MG1655-BS-OFF6。
实施例2
甘氨酸核糖开关基因线路的发酵表征方法,如下述步骤:
(1)活化菌株:将带有野生型甘氨酸元件的菌株MG1655-BSTG和带有BSglyON14的菌株MG1655-BS-ON14,带有BSglyOFF6的菌株MG1655-BS-OFF6在含有氨苄青霉素抗性的LB固体培养基中划线,37℃培养10-20h,使菌株复壮;
(2)种子液的培养:调一环步骤(1)的活化菌接种到LB液体培养基中,37℃,220rpm培养10-20h,然后将所得菌液按初始OD600=0.02的接种量接种到M9培养基,37℃,220rpm培养10-20h,得到种子液;
(3)发酵表征:将步骤(2)所获得的种子液按初始OD600=0.02接种到装有50mL的三角瓶中,加入氨苄青霉素,使浓度为80-100μg/L,分别添加不同浓度的甘氨酸,浓度分别设定为0,7,13,27,80,107mM在37℃,转速220rpm的条件下培养12-24h;发酵结束后分别检测对应菌株的OD600和绿色荧光强度,并计算相对荧光强度。
实验结果:通过本实验的双筛选系统,成功筛选到性能提升和构象转变的甘氨酸核糖开关突变体BSglyON14和BSglyOFF6。带有BSglyON14的菌株MG1655-BS-ON14绿色荧光蛋白相对强度随着甘氨酸浓度的增加而不断增加,当甘氨酸浓度为107mM时,其绿色荧光蛋白相对强度为615.23,相比于野生型甘氨酸核糖开关提高约50%;MG1655-BS-ON14的甘氨酸响应范围由野生型的0-80mM提高到0-107mM。而构象改变的甘氨酸核糖开关突变体BSglyOFF6与野生型相反,当不添加甘氨酸时,绿色荧光蛋白相对强度为631.34,而当添加107mM甘氨酸时,其绿色荧光蛋白相对强度为50,大约有10倍的抑制作用。由此可知:成功通过从文库高通量筛选出性能提升,甘氨酸响应范围增加和振幅值增加的甘氨酸-ON的突变体BSglyON14和构象改变的甘氨酸核糖开关突变体BSglyOFF6,如图2所示。以上的突变体不仅提升了当前甘氨酸核糖开关的性能,也丰富了核糖开关的数量。这些性能优越的突变体构建的基因线路以甘氨酸为诱导剂的调控表达方法避免了过表达基因带来的菌株生长或辅因子不平衡以及使用高价诱导剂增加成本问题。此外,本领域的技术人员可以使用本发明中性能提升的甘氨酸核糖开关突变体BSglyON14及其他类似功能的突变体,用于以廉价的甘氨酸为诱导剂的微生物细胞工厂构建或代谢表达调控的案例中;本领域的技术人员可以使用本发明中构象转变的甘氨酸核糖开关突变体BSglyOFF6及其他类似功能的突变体,用于微生物细胞构建,例如丝氨酸合成细胞工厂的构建,5-氨基乙酰丙酸细胞工厂的构建,酶的定向进化等方面。
本发明公开和提出的技术方案,本领域技术人员可通过借鉴本文内容,适当改变条件路线等环节实现,尽管本发明的方法和制备技术已通过较佳实施例子进行了描述,相关技术人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法和技术路线进行改动或重新组合,来实现最终的制备技术。特别需要指出的是,所有相类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,他们都被视为包括在本发明精神、范围和内容中。本发明未尽事宜属于公知技术。
序列表
<110> 天津大学
<120> 甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建方法及应用
<160> 13
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 1179
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
atggcttctc acaaactgct ggttaccccg ccgaaagctc tgctgaaacc gctgtctatc 60
ccgaaccagc tgctgctggg tccgggtccg tctaacctgc cgccgcgtat catggctgct 120
ggtggtctgc aaatgatcgg ttctatgtct aaagacatgt accagatcat ggacgaaatc 180
aaagaaggta tccagtacgt tttccagacc cgtaacccgc tgaccctggt tatctctggt 240
tctggtcact gcgctctgga agctgctctg gttaacgttc tggaaccggg tgactctttc 300
ctggttggtg ctaacggtat ctggggtcag cgtgctgttg acatcggtga acgtatcggt 360
gctcgtgttc acccgatgac caaagacccg ggtggtcact acaccctgca agaagttgaa 420
gaaggtctgg ctcagcacaa accggttctg ctgttcctga cccacggtga atcttctacc 480
ggtgttctgc aaccactgga cggcttcggt gaactgtgcc accgttacaa atgcctgctg 540
ctggttgact ctgttgcttc tctgggtggt accccgctgt acatggaccg tcagggtatc 600
gacatcctgt actctggttc tcagaaagct ctgaacgctc cgccgggtac ctctctgatc 660
tctttctctg acaaagctaa aaaaaaaatg tactctcgta aaaccaaacc gttctctttc 720
tacctggaca tcaaatggct ggctaacttc tggggttgcg acgaccagcc gcgtatgtac 780
caccacacca tcccggttat ctctctgtac tctctgcgtg aatctctggc tctgatcgct 840
gaacagggtc tggaaaactc ttggcgtcag caccgtgaag ctgctgctta cctgcacggt 900
cgtctgcaag ctctgggtct gcaactgttc gttaaagacc cggctctgcg tctgccgacc 960
gttaccaccg ttgctgttcc ggctggttat gactggcgtg acatcgtgag ctacgttatc 1020
gaccacttcg acatcgaaat catgggtggt ctgggtccgt ctaccggtaa agttctgcgt 1080
atcggtctgc tgggttgcaa cgctacccgt gaaaacgttg accgtgttac cgaagctctg 1140
cgtgctgctc tgcaacactg cccgaaaaaa aaactgtaa 1179
<210> 2
<211> 392
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
Met Ala Ser His Lys Leu Leu Val Thr Pro Pro Lys Ala Leu Leu Lys
1 5 10 15
Pro Leu Ser Ile Pro Asn Gln Leu Leu Leu Gly Pro Gly Pro Ser Asn
20 25 30
Leu Pro Pro Arg Ile Met Ala Ala Gly Gly Leu Gln Met Ile Gly Ser
35 40 45
Met Ser Lys Asp Met Tyr Gln Ile Met Asp Glu Ile Lys Glu Gly Ile
50 55 60
Gln Tyr Val Phe Gln Thr Arg Asn Pro Leu Thr Leu Val Ile Ser Gly
65 70 75 80
Ser Gly His Cys Ala Leu Glu Ala Ala Leu Val Asn Val Leu Glu Pro
85 90 95
Gly Asp Ser Phe Leu Val Gly Ala Asn Gly Ile Trp Gly Gln Arg Ala
100 105 110
Val Asp Ile Gly Glu Arg Ile Gly Ala Arg Val His Pro Met Thr Lys
115 120 125
Asp Pro Gly Gly His Tyr Thr Leu Gln Glu Val Glu Glu Gly Leu Ala
130 135 140
Gln His Lys Pro Val Leu Leu Phe Leu Thr His Gly Glu Ser Ser Thr
145 150 155 160
Gly Val Leu Gln Pro Leu Asp Gly Phe Gly Glu Leu Cys His Arg Tyr
165 170 175
Lys Cys Leu Leu Leu Val Asp Ser Val Ala Ser Leu Gly Gly Thr Pro
180 185 190
Leu Tyr Met Asp Arg Gln Gly Ile Asp Ile Leu Tyr Ser Gly Ser Gln
195 200 205
Lys Ala Leu Asn Ala Pro Pro Gly Thr Ser Leu Ile Ser Phe Ser Asp
210 215 220
Lys Ala Lys Lys Lys Met Tyr Ser Arg Lys Thr Lys Pro Phe Ser Phe
225 230 235 240
Tyr Leu Asp Ile Lys Trp Leu Ala Asn Phe Trp Gly Cys Asp Asp Gln
245 250 255
Pro Arg Met Tyr His His Thr Ile Pro Val Ile Ser Leu Tyr Ser Leu
260 265 270
Arg Glu Ser Leu Ala Leu Ile Ala Glu Gln Gly Leu Glu Asn Ser Trp
275 280 285
Arg Gln His Arg Glu Ala Ala Ala Tyr Leu His Gly Arg Leu Gln Ala
290 295 300
Leu Gly Leu Gln Leu Phe Val Lys Asp Pro Ala Leu Arg Leu Pro Thr
305 310 315 320
Val Thr Thr Val Ala Val Pro Ala Gly Tyr Asp Trp Arg Asp Ile Val
325 330 335
Ser Tyr Val Ile Asp His Phe Asp Ile Glu Ile Met Gly Gly Leu Gly
340 345 350
Pro Ser Thr Gly Lys Val Leu Arg Ile Gly Leu Leu Gly Cys Asn Ala
355 360 365
Thr Arg Glu Asn Val Asp Arg Val Thr Glu Ala Leu Arg Ala Ala Leu
370 375 380
Gln His Cys Pro Lys Lys Lys Leu
385 390
<210> 3
<211> 1179
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
atggcttctc acaaactgct ggttaccccg ccgaaagctc tgctgaaacc gctgtctacc 60
ccgaaccagc tgctgctggg tccgggtccg tctaacctgc cgccgcgtat catggctgct 120
ggtggtctgc aaatgatcgg ttctatgtct aaagacatgt accagatcat ggacgaaatc 180
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tctggtcact gtgctctgga agctgctctg gttaacgttc tggaaccggg tgactctttc 300
ctggttggtg ctaacggtat ctggggtcag cgtgctgttg acatcggtga acgtatcggt 360
gctcgtgttc gcccgatgac caaagacccg ggtggtcact acaccctgca agaagttgaa 420
gaaagtctgg ctcagcacaa accggttctg ctgttcctga cccacggtga atcttctacc 480
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ctggttgact ctgttgcttc tctgggtggt accccgctgt acatgtaccg tcagggtatc 600
ggcatcctgt actctggttc acagaaagct ctgaacgctc cgccgggtac ttctctgatc 660
tctttctctg acaaagctaa aaaaaaaatg tgctctcgta aaaccaaacc gttctctttc 720
tacctggaca tcaaatggct ggctaacttc tggggttgcg acgacctgcc gcgtatgtac 780
caccacacca tcccggttat ctctctgtac tctctgcgtg aatctctggc tctgatcgct 840
gaacagggtc tggaaaactc ttggcgtcag caccgtgagg ctgctgctta cctgcacggt 900
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cgtgctgctc tgcaacactg cccgaaaaaa gaactgtaa 1179
<210> 4
<211> 392
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
Met Ala Ser His Lys Leu Leu Val Thr Pro Pro Lys Ala Leu Leu Lys
1 5 10 15
Pro Leu Ser Thr Pro Asn Gln Leu Leu Leu Gly Pro Gly Pro Ser Asn
20 25 30
Leu Pro Pro Arg Ile Met Ala Ala Gly Gly Leu Gln Met Ile Gly Ser
35 40 45
Met Ser Lys Asp Met Tyr Gln Ile Met Asp Glu Ile Lys Glu Gly Ile
50 55 60
Gln Tyr Val Phe Gln Thr Arg Asn Pro Leu Thr Leu Val Ile Ser Gly
65 70 75 80
Ser Gly His Cys Ala Leu Glu Ala Ala Leu Val Asn Val Leu Glu Pro
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Gly Asp Ser Phe Leu Val Gly Ala Asn Gly Ile Trp Gly Gln Arg Ala
100 105 110
Val Asp Ile Gly Glu Arg Ile Gly Ala Arg Val Arg Pro Met Thr Lys
115 120 125
Asp Pro Gly Gly His Tyr Thr Leu Gln Glu Val Glu Glu Ser Leu Ala
130 135 140
Gln His Lys Pro Val Leu Leu Phe Leu Thr His Gly Glu Ser Ser Thr
145 150 155 160
Gly Val Leu Gln Pro Leu Asp Gly Phe Gly Glu Leu Cys His Arg Tyr
165 170 175
Lys Cys Leu Leu Leu Val Asp Ser Val Ala Ser Leu Gly Gly Thr Pro
180 185 190
Leu Tyr Met Tyr Arg Gln Gly Ile Gly Ile Leu Tyr Ser Gly Ser Gln
195 200 205
Lys Ala Leu Asn Ala Pro Pro Gly Thr Ser Leu Ile Ser Phe Ser Asp
210 215 220
Lys Ala Lys Lys Lys Met Cys Ser Arg Lys Thr Lys Pro Phe Ser Phe
225 230 235 240
Tyr Leu Asp Ile Lys Trp Leu Ala Asn Phe Trp Gly Cys Asp Asp Leu
245 250 255
Pro Arg Met Tyr His His Thr Ile Pro Val Ile Ser Leu Tyr Ser Leu
260 265 270
Arg Glu Ser Leu Ala Leu Ile Ala Glu Gln Gly Leu Glu Asn Ser Trp
275 280 285
Arg Gln His Arg Glu Ala Ala Ala Tyr Leu His Gly Arg Leu Gln Ala
290 295 300
Leu Gly Leu Gln Leu Phe Val Lys Asp Pro Ala Leu Arg Leu Pro Thr
305 310 315 320
Val Thr Thr Val Ala Val Pro Ala Gly Tyr Asp Trp Arg Asp Ile Val
325 330 335
Ser Tyr Val Ile Gly His Phe Asp Ile Glu Ile Met Gly Gly Leu Gly
340 345 350
Pro Ser Thr Gly Lys Val Leu Cys Ile Gly Leu Leu Gly Cys Asn Ala
355 360 365
Thr Arg Glu Asn Val Asp Arg Val Thr Glu Ala Leu Arg Ala Ala Leu
370 375 380
Gln His Cys Pro Lys Lys Glu Leu
385 390
<210> 5
<211> 49
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gtaacgccag ggttttccca gtcacttaca gttttttttt cgggcagtg 49
<210> 6
<211> 69
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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tgctggtta 69
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<211> 77
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<210> 9
<211> 4915
<212> DNA
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<400> 9
gtttgacagc ttatcatcga ctgcacggtg caccaatgct tctggcgtca ggcagccatc 60
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gcactcccgt tctggataat gttttttgcg ccgacatcat aacggttctg gcaaatattc 180
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ttcggtaaca cggtcaacgt tttcacgggt agcgttgcaa cccagcagac cgatacacag 420
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ggcagttatt ggtgccctta aacgcctggt gctacgcctg aataagtgat aataagcgga 2940
tgaatggcag aaattcgaaa gcaaattcga cccggtcgtc ggttcagggc agggtcgtta 3000
aatagccgct tatgtctatt gctggttcta agcctgttga tgataccgct gccttactgg 3060
gtgcattagc cagtctgaat gacctgtcac gggataatcc gaagtggtca gactggaaaa 3120
tcagagggca ggaactgctg aacagcaaaa agtcagatag caccacatag cagacccgcc 3180
ataaaacgcc ctgagaagcc cgtgacgggc ttttcttgta ttatgggtag tttccttgca 3240
tgaatccata aaaggcgcct gtagtgccat ttacccccat tcactgccag agccgtgagc 3300
gcagcgaact gaatgtcacg aaaaagacag cgactcaggt gcctgatggt cggagacaaa 3360
aggaatattc agcgatttgc ccgagcttgc gagggtgcta cttaagcctt tagggtttta 3420
aggtctgttt tgtagaggag caaacagcgt ttgcgacatc cttttgtaat actgcggaac 3480
tgactaaagt agtgagttat acacagggct gggatctatt ctttttatct ttttttattc 3540
tttctttatt ctataaatta taaccacttg aatataaaca aaaaaaacac acaaaggtct 3600
agcggaattt acagagggtc tagcagaatt tacaagtttt ccagcaaagg tctagcagaa 3660
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acaaaaatcg acgctcaagt cagaggtggc gaaacccgac aggactataa agataccagg 2460
cgtttccccc tggaagctcc ctcgtgcgct ctcctgttcc gaccctgccg cttaccggat 2520
acctgtccgc ctttctccct tcgggaagcg tggcgctttc tcatagctca cgctgtaggt 2580
atctcagttc ggtgtaggtc gttcgctcca agctgggctg tgtgcacgaa ccccccgttc 2640
agcccgaccg ctgcgcctta tccggtaact atcgtcttga gtccaacccg gtaagacacg 2700
acttatcgcc actggcagca gccactggta acaggattag cagagcgagg tatgtaggcg 2760
gtgctacaga gttcttgaag tggtggccta actacggcta cactagaagg acagtatttg 2820
gtatctgcgc tctgctgaag ccagttacct tcggaaaaag agttggtagc tcttgatccg 2880
gcaaacaaac caccgctggt agcggtggtt tttttgtttg caagcagcag attacgcgca 2940
gaaaaaaagg atctcaagaa gatcctttga tcttttctac ggggtctgac gctcagtgga 3000
acgaaaactc acgttaaggg attttggtca tgagattatc aaaaaggatc ttcacctaga 3060
tccttttaaa ttaaaaatga agttttaaat caatctaaag tatatatgag taaacttggt 3120
ctgacagtta ccaatgctta atcagtgagg cacctatctc agcgatctgt ctatttcgtt 3180
catccatagt tgcctgactc cccgtcgtgt agataactac gatacgggag ggcttaccat 3240
ctggccccag tgctgcaatg ataccgcgag acccacgctc accggctcca gatttatcag 3300
caataaacca gccagccgga agggccgagc gcagaagtgg tcctgcaact ttatccgcct 3360
ccatccagtc tattaattgt tgccgggaag ctagagtaag tagttcgcca gttaatagtt 3420
tgcgcaacgt tgttgccatt gctacaggca tcgtggtgtc acgctcgtcg tttggtatgg 3480
cttcattcag ctccggttcc caacgatcaa ggcgagttac atgatccccc atgttgtgca 3540
aaaaagcggt tagctccttc ggtcctccga tcgttgtcag aagtaagttg gccgcagtgt 3600
tatcactcat ggttatggca gcactgcata attctcttac tgtcatgcca tccgtaagat 3660
gcttttctgt gactggtgag tactcaacca agtcattctg agaatagtgt atgcggcgac 3720
cgagttgctc ttgcccggcg tcaatacggg ataataccgc gccacatagc agaactttaa 3780
aagtgctcat cattggaaaa cgttcttcgg ggcgaaaact ctcaaggatc ttaccgctgt 3840
tgagatccag ttcgatgtaa cccactcgtg cacccaactg atcttcagca tcttttactt 3900
tcaccagcgt ttctgggtga gcaaaaacag gaaggcaaaa tgccgcaaaa aagggaataa 3960
gggcgacacg gaaatgttga atactcatac tcttcctttt tcaatattat tgaagcattt 4020
atcagggtta ttgtctcatg agcggataca tatttgaatg tatttagaaa aataaacaaa 4080
taggggttcc gcgcacattt ccccgaaaag tgccacctga cgtctaagaa accattatta 4140
tcatgacatt aacctataaa aataggcgta tcacgaggcc ctttcgtc 4188
<210> 13
<211> 3725
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
ctcctctttc tctagtattc gtgctagcat tatacctagg actgagctag ctgtcaaaag 60
cttggctgtt ttggcggatg agagaagatt ttcagcctga tacagattaa atcagaacgc 120
agaagcggtc tgataaaaca gaatttgcct ggcggcagta gcgcggtggt cccacctgac 180
cccatgccga actcagaagt gaaacgccgt agcgccgatg gtagtgtggg gtctccccat 240
gcgagagtag ggaactgcca ggcatcaaat aaaacgaaag gctcagtcga aagactgggc 300
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ataaatcctg gtgtccctgt tgataccggg aagccctggg ccaacttttg gcgaaaatga 600
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ggcgtatttt ttgagttatc gagattttca ggagctaagg aagctaaaat ggagaaaaaa 720
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tttcagtcag ttgctcaatg tacctataac cagaccgttc agctggatat tacggccttt 840
ttaaagaccg taaagaaaaa taagcacaag ttttatccgg cctttattca cattcttgcc 900
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aaacgccctg agaagcccgt gacgggcttt tcttgtatta tgggtagttt ccttgcatga 1740
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tctgttttgt agaggagcaa acagcgtttg cgacatcctt ttgtaatact gcggaactga 1980
ctaaagtagt gagttataca cagggctggg atctattctt tttatctttt tttattcttt 2040
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ttggtatagt gattaaaatc acctagacca attgagatgt atgtctgaat tagttgtttt 2280
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tttatgctgt gtggcactac tcaaccccac gattgaaaac cctacaagga aagaacggac 2400
ggtatcgttc acttataacc aatacgctca gatgatgaac atcagtaggg aaaatgctta 2460
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aaaatataat ctggaacatg ttaagtcttt tgaaaacaaa tactctatga ggatttatga 2700
gtggttatta aaagaactaa cacaaaagaa aactcacaag gcaaatatag agattagcct 2760
tgatgaattt aagttcatgt taatgcttga aaataactac catgagttta aaaggcttaa 2820
ccaatgggtt ttgaaaccaa taagtaaaga tttaaacact tacagcaata tgaaattggt 2880
ggttgataag cgaggccgcc cgactgatac gttgattttc caagttgaac tagatagaca 2940
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gaacatactg gctaaatacg gaaggatctg aggttcttat ggctcttgta tctatcagtg 3240
aagcatcaag actaacaaac aaaagtagaa caactgttca ccgttacata tcaaagggaa 3300
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gagtttttgg tgcattcaaa gctgttcacc atgaacagat cgacaatgta acgtttgaca 3420
gcttatcatc gactgcacgg tgcaccaatg cttctggcgt caggcagcca tcggaagctg 3480
tggtatggct gtgcaggtcg taaatcactg cataattcgt gtcgctcaag gcgcactccc 3540
gttctggata atgttttttg cgccgacatc ataacggttc tggcaaatat tctgaaatga 3600
gctgttgaca attaatcatc cggctcgtat aatgtgtggt cacacagaat tcgagctcgg 3660
tacccgggga tcctctagag tcgacctgca ggcatgcgtt gggtaacgcc agggttttcc 3720
cagtc 3725

Claims (4)

1.甘氨酸核糖开关基因调控线路的构建方法,其特征是,通过在野生型的甘氨酸核糖开关元件序列上进行突变,从文库高通量筛选出性能提升,甘氨酸响应范围增加和振幅值增加的甘氨酸-ON的突变体和构象改变的甘氨酸-OFF的突变体,从而实现基因的表达调控。
2.如权利要求1所述的构建方法,其特征是,源于枯草芽孢杆菌,核酸序列如SEQ IDNO:4所示;具有与SEQ ID NO:4等同的基因表达调控功能,经过筛选得到的突变体BSglyON3、BSglyON4、BSglyON9、BSglyON10、BSglyON13、BSglyON14表现为甘氨酸响应范围和振幅值增加;突变体BSglyOFF5、BSglyOFF6、BSglyOFF8、BSglyOFF11、BSglyOFF12、BSglyOFF35表现为野生型甘氨酸-ON构象突变为甘氨酸-OFF构象;以上突变体的详细突变位点如下表1:
Figure FDA0003435021830000011
表1中突变位点信息栏的数字代表突变位点,横杠前的字母表示突变前的核苷酸,横杠后的字母表示突变后的核苷酸。
3.如权利要求1或2所述的构建方法,其特征是,包括如下步骤:
1):以SEQ ID No.1所示BSGlyRS-F和以SEQ ID No.2所示BSGlyRS-R为引物,以SEQ IDNo.3所示pUC-BSGlyRS为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.4所示BSGlyRS片段;
2):以SEQ ID No.5所示tetA-F和以SEQ ID No.6所示tetA-R为引物,以SEQ ID No.7所示pUC-TETA为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.8所示tetA片段;
3):以SEQ ID No.9所示GFP-F和以SEQ ID No.10所示GFP-R为引物,以SEQ ID No.11所示pUC-GFP为模板,通过PCR的方法,得到以SEQ ID No.12所示GFP片段;
4):以SEQ ID No.13所示pUC18-F和以SEQ ID No.14所示pUC18-R为引物,以SEQ IDNo.15所示pUC18为模板,通过PCR扩增,得到pUC18质粒骨架;通过CEPC组装技术,将与上述步骤1)获得的BSGlyRS、骤2)获得的tetA和骤3)获得的GFP片段连接到pUC18质粒骨架上面,得到质粒命名为pUC18-BSTG,以SEQ ID No.16所示;
5):以SEQ ID No.17所示BSGT-mutF和以SEQ ID No.18所示BSGT-mutF为引物,以SEQID No.16所示pUC18-BSTG为模板,通过PCR扩增,得到BSGlyRS片段文库;
6):以SEQ ID No.19所示18-mutF和以SEQ ID No.20所示18-mutF为引物,以SEQ IDNo.16所示pUC18-BSTG为模板,,得到文库质粒载体片段pUC18-STG;获得两者片段构建为甘氨酸核糖开关质粒文库pUC18-BSTGlib,以SEQ ID No.21所示;
7):将步骤6)中质粒文库转化到大肠杆菌MG1655中,得到转化子收集于2-4mL无菌水中;一半体积的转化子接种于M9培养基中,并补加质量比10-12%镍离子过夜培养;然后转接到新鲜M9培养基中,补加质量比0.4-0.8%的甘氨酸以选择甘氨酸-ON核糖开关,随后在80-100μg/mL氨苄青霉素,质量比0.4-0.8%甘氨酸和10-20μg/mL四环素的新鲜M9培养基中培养进一步富集甘氨酸-ON核糖开关;通过流式荧光细胞分选仪器对具有最高绿色荧光的克隆进行分选;
8):另一半体积的转化子接种于新鲜M9培养基中,补加与步骤7)相同浓度的氨苄青霉素、镍离子和甘氨酸以除去甘氨酸-ON核糖开关,然后在补有80-100μg/mL氨苄青霉素但没有甘氨酸的M9培养基中过夜培养,然后转接至在补有80-100μg/mL氨苄青霉素和10-20μg/m四环素的M9培养基中,以富集甘氨酸-OFF核糖开光;同样,通过荧光细胞流式分选仪器对具有最高绿色荧光的克隆进行分选;
9):将步骤7)和步骤8)中的菌株分别在新鲜M9固体培养基上培养12-24h,随机挑选单菌落至96深孔板中进行初步筛选;每个单菌落分别接种于添加质量比0.4-0.8%甘氨酸和不添加甘氨酸的深孔板中,37℃培养12-24h,然后分别检测在两种条件下的荧光强度和细胞生长量(OD600);经96深孔板筛选后,得到甘氨酸-ON和-OFF核糖开关振幅比值最大的菌株MG1655-BS-ON14和MG1655-BS-OFF6。
4.权利要求1或权利要求2得到的感应范围增加的甘氨酸-ON突变体和构象改变的甘氨酸-OFF突变体应用于大肠杆菌胞内基因表达调控。
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