CN113699064B - 一种AHLs淬灭菌及其在防治依赖AHLs致病的病原菌中的应用 - Google Patents

Abstract

本发明属于农业病害防治技术领域，具体涉及一种AHLs淬灭菌及其在防治依赖AHLs致病的病原菌中的应用。本发明公开了可降解群体感应信号分子AHLs的红球菌(Rhodococcus sp.)SXT‑7，所述菌株于2021年7月21日于广东省微生物菌种保藏中心保藏，其保藏编号为GDMCC No.61818。本发明研究表明，红球菌针对群体感应信号分子AHLs具有较好的降解活性，且降解效果稳定并显著；菌株SXT‑7对细菌群体感应信号分子降解率与菌株SXT‑7的生长呈正相关；且在防治AHLs介导致病的致病菌上具有较明显的生物防治效果。表明红球菌在降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌危害方面具有巨大的应用潜力，这为病害的生物防治提供了一种新的途径和方法。

Description

一种AHLs淬灭菌及其在防治依赖AHLs致病的病原菌中的应用

技术领域

本发明属于农业病害防治技术领域。更具体地，涉及一种AHLs淬灭菌及其在防治依赖AHLs致病的病原菌中的应用。

背景技术

由细菌引起的病害是农业上的一大问题，在绿色农业的背景下，化学农药的使用逐渐受到限制，因此，绿色环保、高效简便的新型病害防治策略是近些年的研究热点。

群体感应(Quorum sensing，QS)是细菌细胞间通过信号分子互相交流的一种现象，细菌细胞通过分泌并感应特定的信号分子浓度，当信号分子浓度达到一定阈值时，细菌细胞会启动特定基因尤其是很多致病基因的表达，这就给防治某些植物、动物性疾病提供了一种新思维。群体淬灭(Quorumquenching，QQ)就是基于群体感应而提出的，它主要是通过分解细菌细胞所产生的信号分子，使信号分子浓度在阈值之内，从而使细菌无法表达特定致病因子，进而防治病害的一种方法。群体感应现象在许多已知的细菌中都存在，从自然界中游离生活的细菌到寄生于高级生物体内的细菌(共生体和病原菌)，不同的细菌细胞产生的信号分子不同，具有群体感应系统的细菌很多都是植物病原菌，植物的细菌性病害是威胁农业生产的主要自然灾害之一。

干扰Qs系统则成为一种新型的病害防治策略，群体淬灭应运而生，群体淬灭是利用某种方法干扰或者降解群体感应产生的信号分子，使信号分子浓度低于启动致病因子表达所需要的阈值，从而使致病菌的致病因子无法启动表达，致病菌不表现出致病力，病害不再发生。群体淬灭主要有如下3个方式：(1)干扰信号分子的合成；(2)降解信号分子，使信号分子浓度低于阈值；(3)阻止信号分子与受体蛋白结合，使之不能行使转录调节功能。由于AHL内酯酶和AHL酰基转移酶能够分解AHL信号分子，并且所有这些酶都来自微生物细胞，有越来越多的证据表明这些酶在细菌与细菌间相互作用中起重要作用。从一株布鲁氏菌(Bru.cellamelitensis)中发现的酰基转移酶AibP在体外条件下能够降解自身产生的内生AHL分子并在巨噬细胞的侵染期间减少AHL的积累(Terwagne M,et al.,2013)；含有attM基因的根癌农杆菌能抑制Ti质粒的接合转移等(Hong KW,et al.,2021)，这些数据表明，菌株在自然界中取得竞争优势，群体淬灭酶具有重要作用。

因此，群体淬灭是一种新的病害防治策略，具有避免病原菌抗药性的产生，操作简便，对环境友好，效率高，经济实用且持续周期长等优点，为今后发展新型绿色安全病害防控措施开辟了新思路。在当今国际上微生物病害防治技术研究中，寻找稳定高效的淬灭菌是国际的前沿和热点。如专利CN109042738A公开了不动杆菌的AHLs淬灭作用及防治介导致病的致病菌的应用。但是由于微生物菌有退化风险，因此，生防菌库的不断充实具有重要的意义。

发明内容

本发明要解决的技术问题是研究新的AHLs淬灭菌，为防治依赖AHLs致病的病原菌提供更多更高效的生防菌选择。

本发明的目的是提供一种可以高效降解群体感应信号分子AHLs的群体淬灭菌红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株。

本发明的第二个目的是提供一种红球菌(Rhodococcus sp.)在降解群体感应信号分子AHLs或防治AHLs介导致病的致病菌中的应用。

本发明第三个目的是提供防治依赖AHLs致病的致病菌病害的方法和降解菌剂、生防菌剂。

本发明上述目的通过以下技术方案实现：

本发明从采自深圳红树林近海浅滩的土壤中，经人工筛选分离纯化鉴定获得一株可降解群体感应信号分子AHLs的一株红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株，所述菌株于2021年7月21日保藏于广东省微生物菌种保藏中心(GDMCC)，菌种保藏编号为GDMCCNo.61818，保藏地址为广州市先烈中路100号大院59号楼5楼。

本发明菌株SXT-7在LB固体培养基上划线置于28℃生化培养箱中恒温培养48h，定期进行观察记录，观察形态学特征。淬灭菌株SXT-7菌落在LB固体平板中呈现淡黄色，圆形，菌落光滑有光泽，边缘整齐，表面粘稠半透明。降解菌SXT-7在LB液体培养基中生长时，呈扩散混浊状，28℃条件下生长良好。菌株SXT-7在场发射扫描电子电镜图观察，菌体细胞为棒状，无鞭毛，表面有黏液。

本发明提供的红球菌(Rhodococcus sp.)菌株SXT-7对群体感应信号分子AHLs有显著的降解作用。可在以3OC6HSL为唯一碳源的培养基中正常生长，菌株SXT-7在12～24h时间段对3OC6HSL的降解速度最快，24h内对3OC6HSL的降解率达到93％以上，36h后3OC6HSL的降解率达到97％以上。且对其他AHLs信号分子如3OC8HSL、3OC12HSL、C6HSL均具有较好降解效果。

因此，本发明提供红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株在防治由群体信号分子3OC6HSL介导的植物病害方面具有较好的应用潜力。

本发明还提供红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株在降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害中的应用。

红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株在制备降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害的制剂产品中的应用。

优选地，所述AHLs不仅包括传统的AHLs，如：N-(3-氧代己酰)-L-高丝氨酸内酯(N-(3-oxohexanoyl)-L-homoserine lactone，3OC6HSL/OHHL)、N-己酰-L-高丝氨酸内酯(N-hexanoyl-L-homoserine lactone，C6HSL/HHL)、N-(3-氧代辛酰)-L-高丝氨酸内酯(N-(3-oxooctanoyl)-L-homoserine lactone，3OC8HSL/OOHL)和N-(3-氧代癸酰)-L-高丝氨酸内酯(N-(3-oxododecanoyl)-L-homoserine lactone，3OC12HSL/OdDHL)；还包括一些新的特殊的AHLs，如：异戊酰基-高丝氨酸内酯(Isovaleryl-homoserine lactone)、羧化酰基-高丝氨酸内(carboxyl-AHLs)、芳基-高丝氨酸内酯(Aryl-homoserine lactone)和香豆酰基-高丝氨酸内酯(p-coumaroyl-HSL)。

本发明还提供一种防治依赖AHLs致病的致病菌病害的方法；

优选地，该方法以红球菌(Rhodococcus sp.)或其菌液对作物进行处理。

更优选地，该方法是用SXT-7菌株或其菌液对作物进行接种/喷雾处理。

本发明提供一种可降解群体感应信号分子AHLs的降解菌剂；

优选地，降解菌剂是红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株或其菌液。

本发明还提供一种依赖AHLs致病的致病菌或其引起的植物病害的生防菌剂。

优选地，该生防菌剂是红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株或其菌液。

优选地，所述依赖AHLs致病的致病菌包括迪卡氏菌(Dickeya zeae)、果胶杆菌(Pectobacterium carotovorum)和/或绿脓杆菌(Pseudomonas aeruginosa)。

更优选地，制备菌株SXT-7菌液的最适培养基为Luria-Bertani(LB)培养基，其配方为：胰蛋白胨10.0g/L，酵母提取物5.0g/L，氯化钠10.0g/L，pH 6.8～7.2，121℃灭菌15～25min。

本发明具有以下有益效果：

本发明研究发现，红球菌(Rhodococcus sp.)针对群体感应信号分子AHLs具有较好的降解活性，且降解效果稳定并显著；为AHLs介导致病的致病菌的生物防治提供了一种新的途径和方法，对解决农药或抗生素滥用及耐药性问题具有重大现实意义。

本发明获得的红球菌(Rhodococcus sp.)菌株SXT-7对群体感应信号分子AHLs具有显著降解活性。菌株SXT-7对细菌群体感应信号分子3OC6HSL降解率与菌株SXT-7的生长呈正相关，菌株在36h时对的3OC6HSL降解率达到97％；且在防治AHLs介导致病的致病菌上具有较明显的生物防治效果。

红球菌菌株SXT-7是一株环境友好菌株，可利用AHLs作为唯一碳源进行生长，且菌株活性稳定，在群体淬灭、防治依赖AHLs介导致病的致病菌以及植物病害方面，有巨大的应用潜力。

附图说明

图1为菌株SXT-7在LB培养基上的菌落形态图。

图2为菌株SXT-7的扫描电镜图。

图3为菌株SXT-7的系统进化树分析图。

图4为菌株SXT-7对AHLs信号降解活性测定图(CK为未添加淬灭菌空白对照)。

图5为菌株SXT-7对AHLs信号降解的HPLC图。

图6为菌株SXT-7对马铃薯软腐病的生物防治效果。

图7为菌株SXT-7对白萝卜软腐病的生物防治效果。

图8为菌株SXT-7对白菜软腐病的生物防治效果。

具体实施方式

以下结合说明书附图和具体实施例来进一步说明本发明，但实施例并不对本发明做任何形式的限定。除非特别说明，本发明采用的试剂、方法和设备为本技术领域常规试剂、方法和设备。

除非特别说明，以下实施例所用试剂和材料均为市购。

以下实施例中所用到的培养基及试剂如下：

LB培养基：胰蛋白胨(Tryptone)10.0g；酵母提取物(Yeast extract)5.0g；氯化钠(NaCl)10.0g；蒸馏水1000mL；pH 7.2。

基础盐培养基(MSM)：硫酸铵(NH₄)₂SO₄ 2.0g；七水合硫酸镁MgSO₄·7H₂O 0.2g；二水合氯化钙CaCl₂·2H₂O 0.01g；七水合硫酸亚铁FeSO₄·7H₂O 0.001g；十二水合磷酸氢二钠Na₂HPO₄·12H₂O 1.5g；磷酸二氢钾KH₂PO₄ 1.5g；蒸馏水1000mL；pH 6.5。

基础培养基(MM)：硫酸铵(NH₄)₂SO₄ 2.0g；磷酸氢二钾K₂HPO₄ 10.5g；七水合硫酸镁MgSO₄·7H₂O 0.2g；无水氯化钙CaCl₂ 0.01g；硫酸亚铁FeSO₄ 0.005g；氯化锰MnCl₂ 0.002g；磷酸二氢钾KH₂PO₄ 4.5g；蒸馏水1000mL；pH 6.5。

以上培养基均需在高压灭菌锅中灭菌(121℃，20min)后使用。若需制备相应固体培养基：液体培养基中添加1.5％(w/v)的琼脂粉。

N-酰基高丝氨酸内酯类(AHLs)信号分子：N-(3-氧代己酰)-L-高丝氨酸内酯(N-(3-oxohexanoyl)-L-homoserine lactone，3OC6HSL/OHHL)、N-(3-氧代辛酰)-L-高丝氨酸内酯(N-(3-oxooctanoyl)-L-homoserine lactone，3OC8HSL/OOHL)、N-(3-氧代癸酰)-L-高丝氨酸内酯(N-(3-oxododecanoyl)-L-homoserine lactone，3OC12HSL/OdDHL)和N-己酰-L-高丝氨酸内酯(N-hexanoyl-L-homoserine lactone，C6HSL/HHL)购自上海甄淮生物科技有限公司。X-gal采购自Sigma试剂公司。分析级乙酸乙酯、色谱级甲醇、色谱级乙腈、色谱级丙醇购自鼎国公司。

实验所用马铃薯、萝卜等材料均购自华南农业大学蔬菜水果市场。

实施例1红球菌菌株SXT-7的分离、筛选

1、土样采集：

从深圳红树林近海浅滩采集土壤样品若干份，样品取回后存放于4℃冰库中冷藏备用。

2、菌株的富集培养：

将从红树林公园收集的土壤样本作为微生物源，以AHLs为唯一碳源对其中的微生物进行富集筛选。先将制备的50mL基础盐培养基(MSM)放入250mL三角瓶，并在121℃，20min条件下完成灭菌，冷却后在无菌条件下加入N-(3-氧代己酰)-L-高丝氨酸内酯(3OC6HSL)母液(浓度为100mmol/L，溶剂为甲醇)，使细菌群体感应信号分子3OC6HSL最终浓度为5μmol/L。同时加入微生物源土壤样本5g，放置于30℃、200r/min条件摇床培养7d，吸取10％的接种量转接到3OC6HSL浓度为10μmol/L的第二批MSM培养基中。相同条件培养7d，再按10％的接种量转接到3OC6HSL浓度为20μmol/L的第三批MSM培养基中，再以相同条件培养7d。以此类推连续培养6次，最终增加3OC6HSL的浓度至160μmol/L。

3、菌株的分离与纯化：

采用稀释、平板涂布法和平板划线法进行菌株的分离和纯化。取出最后一次培养的MSM培养基发酵液1mL进行梯度稀释。用无菌水将其浓度梯度稀释成10^-1、10^-2、10^-3、10^-4、10^-5、10^-6、10^-7、10^-8的培养液，然后分别吸取稀释后各个浓度的培养液150μL，均匀涂布在LB固体平板上培养。挑取平板上不同形态的单菌落，在LB固体平板反复划线纯化培养，直至分离出单菌落。而后用甘油保种法保存到-80℃冰箱，待进一步实验检测信号淬灭活性。

4、菌株筛选：

利用报告菌株Agrobacterium tumefaciensCF11进行降解菌的筛选。将待筛选的菌株从-80℃冰箱取出，划线于LB固体培养基平板上进行活化，在30℃培养箱培养24h。挑取单菌落，接种至LB液体培养基，在30℃，200rpm的条件下过夜培养，得到菌液。将待筛选的菌株用LB固体培养基活化并制备菌液。将OD₆₀₀值为1.0的菌体接种到1mL MSM培养基中，此MSM培养基只含3OC6HSL为唯一碳源且3OC6HSL浓度为40μmol/L。得到1mL的反应混合物后将其转移至2mL离心管中，置于30℃，200r/min的条件下培养。24h后，取其中5μL混合物点样至MM琼脂条(pH值为6.5)顶端，随后在混合物点样正下方点一排(约13-18个点)报告菌株CF-11的菌液。将处理后的MM琼脂条置于28℃培养箱避光培养24h并观察结果。

结果分析，当报告菌株检测到环境中含有AHLs之后，其β-半乳糖苷酶的基因开始表达，并向环境中释放β-半乳糖苷酶。β-半乳糖苷酶可以将MM琼脂条中的无色化合物X-gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷)酶解为半乳糖和深蓝色物质5-溴-4-靛蓝，5-溴-4-靛蓝可使整个报告菌株的菌落变成蓝色。AHLs属于小分子物质，可以在琼脂条内进行扩散，且扩散距离与浓度成正比。由此可以根据琼脂条上报告菌株自顶端变蓝的距离判断出样品中3OC6HSL含量的多少。

同时表明，当MM琼脂条顶端的反应混合物中含有AHLs时，下方的报告菌株会变蓝，反应混合物含量越多，报告菌株变蓝的长度就越长，反之，反应混合物中不含有AHLs，则下方报告菌株不会变蓝。根据这一原理，筛选获得一株对AHLs信号稳定高效降解的菌株，并命名为SXT-7。

实施例2红球菌株SXT-7的鉴定

本实施例针对淬灭菌SXT-7进行了形态学鉴定、16S rDNA系统发育分析和生理生化鉴定，鉴定该菌株为红球菌(Rhodococcus sp.)。具体如下：

1、菌落形态特征：淬灭菌株SXT-7菌落在LB固体平板中呈现淡黄色，圆形，菌落光滑有光泽，边缘整齐，表面粘稠半透明。如图1所示；在LB液体培养基中生长时，呈扩散混浊状，28℃条件下生长良好。

2、菌体形态特征：如图2所示，菌体细胞为棒状，无鞭毛，表面有黏液。

3、16S rDNA鉴定及系统发育分析：以菌株SXT-7的基因组为模板，利用细菌16SrDNA通用引物进行PCR扩增，将纯化后的产物委托金唯智生物科技有限公司进行测序。将测序结果在NCBI数据库中进行比对，根据同源性比较，降解菌株SXT-7基因序列与BLAST在线数据库中的Rhodococcus qingshengii相似性达到99％以上。通过SXT-7菌株的16S rDNA序列BLAST结果与形态学特征，利用生物学软件MEGA.5.0进行系统进化树的构建，如图3所示。

4、生理生化特征：接触酶阳性，氧化酶阴性。可以利用葡萄糖和麦芽糖为碳源生长。不能利用蔗糖、鼠李糖、柠檬酸钠、山梨醇和甘露醇生长。

综上结果，菌株SXT-7鉴定为红球菌(Rhodococcus sp.)，并于2021年7月21日保藏于广东省微生物菌种保藏中心，保藏号为GDMCC No.61818，保藏地址为广州市先烈中路100号大院59号楼5楼。

实施例3红球菌株SXT-7对AHLs信号的降解活性检测

本实施例利用报告菌株Agrobacterium tumefaciens CF11检测菌株SXT-7对AHLs的降解效果。用LB固体培养基平板活化菌株SXT-7，将平板置于28℃培养箱，培养48h。挑取单菌落接种至液体LB培养基中，以28℃，200rpm的条件过夜培养得到菌液。获取OD6oo值为1.0的SXT-7菌体，接种至1mL MSM无机盐培养基中，MSM只含有AHLs作为唯一碳源。反应体系中AHLs的浓度均为40μmol/L。将反应混合物至于适宜条件下培养。而后取反应混合物与报告菌株Agrobacterium tumefaciens CF11菌液进行点样。同时，以已知能够淬灭AHLs的苏云金芽孢杆菌以色列亚种(Bacillus thuringiensis subsp.israelensis)B23为阳性对照，以不具备淬灭AHLs活性的大肠杆菌(Escherichia coli)作为阴性对照。然后将已经点好反应混合物和报告菌株的培养皿避光放置于28℃培养箱，培养24h后观察实验结果并拍照。

实验结果如图4所示，酰基高丝氨酸内酯(AHLs)在琼脂条上的扩散距离与其浓度成正比。因此根据琼脂条上报告菌株自顶端变蓝的距离可以期断出样本中酰基高丝氨酸内酯(AHLs)的含量。图4中，CK与阴性对照E.coli的AHLs扩散距离一致，即两者反应混合物中AHLs含量相近；阳性对照B23变蓝，但是变蓝距离短于CK与阴性对照。实验组SXT-7琼脂条上的报告菌株未变蓝，说明AHLs已经被降解完全。说明菌株SXT-7同B23一样具有淬灭活性，且淬灭效果比阳性对照B23显著。

实施例4利用HPLC检测红球菌菌株SXT-7对AHLs信号的降解效果

将冻存于-80℃的菌株SXT-7用LB固体板活化，30℃培养48h后挑取平板上的单菌落接种于液体LB培养基中，以30℃，200rpm的条件过夜培养得到菌液。将SXT-7接种于含有0.4mM/L 3OC6HSL的MSM培养基中并在30℃，200rpm条件下培养，并在6h、12h、18h、24h、30h、36h六个时间点下采样。并分别测定菌株SXT-7在不同时间点降解3OC6HSL与菌株生长的动态关系。

其中菌株降解能力通过HPLC测定的3OC6HSL残留量判断，SXT-7菌株生长情况通过测定OD₆₀₀值来表示。根据HPLC检测结果以及OD₆₀₀值制作菌株的生长曲线以及3OC6HSL的降解曲线。结果如图5所示，图中有三条曲线，一条通过OD₆₀₀值表示菌株不同时间点的生长状况，一条表示接种菌株SXT-7后的实验组中3OC6HSL的浓度，一条表示对照组中3OC6HSL自然降解条件下的浓度。

结果显示，接种菌株SXT-7后的实验组在本次实验选取的时间点6h、12h、18h、24h、30h、36h下取得的样品，降解率分别达到19.98％、29.45％、59.84％、93.05％、96.40％、97.13％，对应时间下菌株的OD₆₀₀值为0.1297、0.3340、0.5105、0.7525、0.8160、0.8453。分析数据可知，菌株在36h时已经基本完全降解培养基中的3OC6HSL。且菌株SXT-7生长速度快，能迅速进入生长对数期，菌株SXT-7对3OC6HSL降解率与菌株SXT-7的生长呈正相关，说明菌株SXT-7能够在短时间内有效降解3OC6HSL。由数据可知，菌株SXT-7在12-24h时间段对3OC6HSL的降解速度最快，24h内对3OC6HSL的降解率达到93％以上，36h后3OC6HSL的降解率达到97％以上，而对照组中3OC6HSL的自然降解率约为40％。菌株SXT-7对其他AHLs信号分子如3OC8HSL、3OC12HSL、C6HSL均具有较好降解效果，36h降解率均达到90％以上。结果表明菌株SXT-7能迅速且显著的降解AHLs信号分子，且在防治由群体信号分子AHLs介导的植物病害方面具有较好的应用潜力。

实施例5菌株SXT-7对依赖AHLs信号致病的植物软腐病的生防效果

本实施例以植物致病菌胡萝卜软腐果胶杆菌胡萝卜亚种(Pectobacteriumcarotovorum subsp.carotovora,Pcc)Z3-3为例，研究菌株SXT-7对依赖AHLs致病的致病菌的生防效果。

用LB固体培养基平板活化菌株SXT-7，Z3-3，E.coli和B23，30℃条件下培养。48h后分别挑取平板上的单菌落，接种至液体LB培养基中，以30℃，200rpm的条件过夜培养至OD600约为2.0。其中，苏云金芽孢杆菌以色列亚种(Bacillus thuringiensissubsp.israelensis)B23为已知对3OC6HSL具有降解效果的菌株(Dong Y,Xu J,Li X,etal.AiiA,an enzyme that inactivates the acylhomoserinelactone quorum-sensingsignal andattenuates the virulence of Erwinia carotovora[J].Proc Natl AcadSci U S A,2000,97:3526-3531.)，E.coli为已知不具备降解AHLs信号的菌株。在生防实验中，将设置五个实验组：Z3-3+LB、Z3-3+E.coli、Z3-3+B23、Z3-3+SXT-7和SXT-7。其中，实验组Z3-3+LB为空白对照组，Z3-3+E.coli为阴性对照组，Z3-3+B23为阳性对照组。

选取新鲜的马铃薯、白萝卜和白菜分别作为实验材料，将材料用蒸馏水洗净。将马铃薯和萝卜切成厚度约为0.3cm的薄片，白菜梗切成约为6cm×4cm的小长方形块。将Z3-3菌液分别与B23、E.coli、SXT-7的菌液和液体LB培养基以1:800的比例混合。每个实验组的混合菌液取5μL分别接种至处理好的实验材料中央。加入无菌湿水棉花保湿并用保鲜膜密封放置28℃培养箱培养，36h后观察结果。

如图6、图7和图8所示，在马铃薯、白萝卜和白菜生防实验中，实验组Z3-3+LB和Z3-3+E.coli的马铃薯、白萝卜和白菜发病程度较严重，其病斑较实验组Z3-3+B23和Z3-3+SXT-7的病斑面积大。即淬灭菌SXT-7与致病菌共同接种比单独接种致病菌时软腐病病害症状明显减轻。实验结果表明，淬灭菌株SXT-7对由Z3-3引起的软腐病具有较明显的生物防治效果。且淬灭菌SXT-7在马铃薯、白萝卜和白菜上为安全不致病菌株。

上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。

Claims (6)

1.一株可降解群体感应信号分子AHLs的红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株，其特征在于，所述菌株于2021年7月21日保藏于广东省微生物菌种保藏中心(GDMCC)，菌种保藏编号为GDMCC No.61818。

2.权利要求1所述的红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株在降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害中的应用。

3.权利要求1所述的红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株在制备降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害的制剂产品中的应用。

4.一种防治依赖AHLs致病的致病菌病害的方法，其特征在于，以权利要求1所述红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株或其菌液对作物进行处理。

5.一种可降解群体感应信号分子AH L s的降解菌剂，其特征在于，包含权利要求1所述红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株或其菌液。

6.一种依赖AHLs致病的致病菌或其引起的植物病害的生防菌剂，其特征在于，包含以权利要求1所述红球菌(Rhodococcus sp.)SXT-7菌株或其菌液。

Images