CN113304133B - 贝壳杉烷类化合物在制备预防和治疗炎症性肠病的药物中的应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种贝壳杉烷类化合物在制备治疗炎症性肠病药物中的应用。贝壳杉烷类化合物可明显减轻葡聚糖硫酸钠诱导(DSS)的肠炎模型小鼠的体重，改善结肠炎模型小鼠结肠长度缩短，减轻结肠炎模型结肠组织炎症细胞的浸润，降低结肠炎模型小鼠的白细胞、中性粒细胞、淋巴细胞和单核细胞的升高，降低炎症因子的表达，对肠道具有免疫调节的功能。其机制可能是通过调节巨噬细胞的极化和T细胞分化可知，贝壳杉烷类化合物可以减轻DSS诱导的炎症性肠病模型小鼠的炎症反应，改善炎症性肠病疾病严重程度，可用于制备治疗炎症性肠病的药物或者保健品。

Description

贝壳杉烷类化合物在制备预防和治疗炎症性肠病的药物中的 应用

发明领域

本发明公开了一种贝壳杉烷类化合物在炎症性肠病的缓解和治疗作用。本发明公开了该类贝壳杉烷类化合物明显减轻葡聚糖硫酸钠诱导(DSS)的肠炎模型小鼠的体重，改善结肠炎模型小鼠结肠长度缩短，减轻结肠炎模型结肠组织炎症细胞的浸润，降低结肠炎模型小鼠的白细胞、中性粒细胞、淋巴细胞和单核细胞的升高，降低炎症因子的表达。本发明公开了该类贝壳杉烷类化合物对炎症性肠病发生时巨噬细胞和T细胞的调节作用。

背景技术

炎症性肠病是一种发病机制尚不明确的慢性肠道炎症性疾病，主要包括溃疡性结肠炎(Ulcerative Colitis，UC)和克罗恩病(Crohn’s disease，CD)。UC 是一种慢性非特异性结肠炎症，病变主要累及结肠的黏膜，范围多自远端结肠开始，可向近端发展，甚至累及整个结肠；临床主要表现为腹泻、腹痛和粘液脓血便。CD为一种慢性肉芽肿性炎症，病变可累及胃肠道各部位，但好发于末段回肠和右半结肠；临床主要表现为腹痛、腹泻、肠梗阻(Peixoto Armando,ACG Case Reports Journal,2017,4(1):e46)。IBD在西方国家常见，欧洲和北美国家患病率高达120-200/100,000，是消化领域常见的疾病。据统计，IBD发病率自1990 开始在非洲、亚洲和南美洲呈快速增长的趋势。在巴西，UC和CD发病率的年增长率分别高达15％和11％；在我国，IBD发病率也呈现逐年上升的趋势，IBD 己经成为我国消化系统的常见疾病和慢性腹泻、便血的主要病因。其病因与发病机制不明，普遍认为与遗传、肠黏膜免疫调节异常、持续性肠道感染、肠黏膜屏障缺损有关。炎症性肠病患者大多伴随自身免疫性疾病的肠外表现，如结节性红斑、关节炎等。炎症性肠病病程迁延不愈，有的甚至长达几十年。亦有发生癌变的可能性。目前研究发现，炎症性肠病患者局部体液或细胞免疫呈激活状态，肠黏膜固有层中有大量炎性细胞浸润。在部分病人血清中可检出抗结肠上皮细胞抗体等。肠黏膜组织内异常的免疫应答是引起肠黏膜组织损伤的重要原因，IBD治疗的主要方法是恢复促炎因子与抗炎因子之间的平衡，调节肠道黏膜免疫异常，免疫应答包括肠黏膜适应性免疫应答(如T细胞)和固有性免疫应答(如巨噬细胞)(Khor B,Nature.2011.474(7351):307-17)。

T细胞包括Th1、Th2和Th17细胞，参与DSS诱导的肠炎的发病机制。以往认为导致肠黏膜炎症的主要效应细胞是CD4+T细胞，其中CD被认为是以Th1 型粘膜炎症反应占主导；UC则是以Th2型为主导。但随着研究的深入，CD和 UC与Th1、Th2两类细胞的对应关系仍存在较大争议细胞因子。Th17细胞亚群是近几年发现的一类CD4+T细胞亚群，在近期研究中，发现IBD患者有大量 Th17细胞浸润，这开辟了研究炎症性肠病新的领域。研究发现多种细胞因子与Th17细胞的分化调节有关。Th17细胞的作用包括清除特定的细胞外病原体，从而起到保护作用；也包括导致炎症和自身免疫性疾病发生。Th17细胞的主要作用是分泌细胞因子，包括IL-17A、IL-21等，在多种自身免疫性疾病发生过程中起到了重要作用，并且在IBD免疫调节中诱发炎性应答。通过控制Th7细胞相关的细胞因子的分泌，能够明显缓解IBD患者的临床症状(Yu-Fang Wang,World journal of gastroenterol,2013,19(11):1827-33)。

巨噬细胞是一群高度异质的细胞，根据其活化状态的不同，主要分为经典激活的巨噬细胞(M1型)和替代激活的巨噬细胞(M2型)两种亚群(Besedovsky H,Clinical andexperimental immunology,1977；27(1):1-12)。巨噬细胞的极化受到微环境中多种细胞因子的影响，具有相当大的可塑性。M1型巨噬细胞主要由 IFN-γ、TNF-α、LPS等刺激激活，能够分泌大量的炎性细胞因子，如IL-1β、IL-13、 TNF-α等以及活性氧产物。这些细胞介质能够促进Th1和Th17细胞的活化，促进局部炎症反应，加速细胞内病原体的清除。如果M1型巨噬细胞活性不受控制，会导致过度的炎症反应，引起组织损伤(Knobloch HS,Frontiers inbehavioral neuroscience,2014；8:31)。巨噬细胞在粒细胞或Th2细胞产生的IL-4、IL-13的作用下极化为M2型巨噬细胞，对LPS的刺激不敏感，分泌生长因子、IL-10、 TGF-β等，募集Th2和调节性T细胞(Treg)，下调局部炎症反应，促进组织修复和寄生虫的清除。当M2型巨噬细胞调节失衡，会增强过敏反应，促进局部纤维化和肿瘤的形成(Kim YS,Cells,tissues,organs,2012；195(5):428-42)。因此，调节M1和M2型两种巨噬细胞亚群之间的平衡，对维持内环境的免疫稳态有着十分重要的作用巨噬细胞的极化受到细胞内多种信号途径的调节。来越多的研究发现，IBD患者存在肠道巨噬细胞极化的异常，这可能在IBD发生和发展起着核心作用；恢复肠道巨噬细胞两种亚型之间的平衡，可能成为临床治疗IBD的重要手段。因此，从免疫调节的角度，尤其是Th细胞亚群和巨噬细胞极化，深入了解IBD多因素多靶点的发病机制，对进一步阐明IBD的免疫发生机制有重要意义。

目前没有能够完全治愈IBD的药物，临床上用于治疗的药物主要目的是缓解症状、改善患者的生活质量。治疗药物包括氨基水杨酸制剂、糖皮质类激素、免疫抑制剂和各种生物制剂(如TNF-α单抗等)。以上药物各存在不足，如氨基水杨酸类药物容易使患者产生耐药性，糖皮质激素停药后会复发，TNF抗体生产和治疗的成本较高，长期使用后容易失效，而且容易导致病人感染(Paolo Gionchetti,Dig Liver Dis,2017,49(6):604-17)。因此，寻找更为安全有效的抗结肠炎药物是目前IBD研究的热点之一，是当前未被满足临床急切需求。

化合物A是从甜菊糖分离的一种贝叶烷萜类化合物。甜菊糖是广为熟知的南美洲的传统植物，并是全球广泛使用的甜味剂。甜菊对代谢和心血管系统的功效(Geuns JMC.Stevioside.Phytochemistry.2003；64(5):913-21)也有报道。

先前的研究表明，以化合物A为代表类贝壳杉烷型化合物，具有心脏和脑组织的保护作用，可以用于治疗心肌缺血和脑梗塞(专利1：CN100508962 C)。此外，化合物A及相关的贝壳杉烷型化合物也可抑制组织损伤导致炎症反应，抑制心肌和肺组织的纤维化(专利2：CN108348481 A)。化合物A对同时也可能用于代谢性疾病和糖尿病心肌炎等。研究还证明，化合物A对一些细胞因子如TNF-α，白介素IL-6等也有抑制作用。

然而，化合物A及相关贝壳杉烷类化合物在治疗炎症性肠病并没有报道。现已知道，免疫功能失调是诱发炎症性肠病的主要原因，而巨噬细胞和T细胞的不平衡对上述细胞因子风暴启动和发展起着关键作用。然而，化合物A及相关贝壳杉烷类化合物对上述免疫功能失调和巨噬细胞、T细胞的免疫调节作用，也没有报道。

在此发明中，我们首次提出化合物A及相关贝壳杉烷类化合物，可用于治疗炎症性肠病；可以改善炎症性肠病。化合物A及相关贝壳杉烷类化合物还可以通过抑制炎症性肠病导致巨噬细胞的极化和T细胞的分化，抑制多种细胞因子和化学毒性物质的表达，从而调节异常的免疫炎症反应，达到治疗炎症性肠病的效果。

发明内容

本发明的目的是提供一种贝壳杉烷类化合物在制备炎症性肠病的治疗、预防药物中的药物的应用。本发明公开了一种新型治疗和/或预防炎症性肠病的药物。

本发明公开了贝壳杉烷类化合物，如化合物A(结构式(I))，用于治疗脓毒症和多器官衰竭。结构式(I)代表一类天然的、合成的或半合成的化合物。其中许多化合物已被公众所知(Kinghorn AD,2002,p86-137；Sinder BB et al., 1998；Chang FR et al.,1998；Hsu FL et al.,2002)。结构式(I)的化合物可能有一个或多个不对称中心，也有可能以不同的立体异构体存在。

其中

ii.R1:氢、羟基或烷氧基。

iii.R2：羧基、羧酸盐、酰卤、醛基、羟甲基，和可以生成羧基的酯基、丙烯酰胺基、酰基或醚键基团。

iv.R3、R4、R5、R6、R8：氧、羟基、羟甲基和能水解生成羟甲基的酯基或烷氧甲基。

v.R7：甲基、羟基，和能水解生成羟甲基的酯基或烷氧甲基。

vi.R9：亚甲基或氧

一组优选化合物的结构如式(I’)所示。所述化合物具有贝壳杉烷结构，在C13 位置上被取代，在C17，C18上衍生化。所述化合物可能具有多个不对称中心，并存在不同的立体异构体或非对映异构体。位置8和13的绝对构型为(8R，13S) 或(8S，13R)。

其中

vii.R2：羧基、羧酸盐、醛基、羟甲基、甲基酯、酰甲基、酰卤。

viii.R7：甲基，羟甲基或甲基醚。

ix.R9：亚甲基或氧。

天然甜菊苷酸解后可以得到化合物A。化合物B是甜菊糖的糖苷配基，甜菊糖是化合物B的苷类。化合物A和B是同分异构体。化合物B可通过甜菊糖水解、氧化得到，或通过动物肠道细菌催化反应得到。

化合物A的分子式为C₂₀H₃₀O₃，化学名称为(4α，8β，13β)- 13-methyl-16-oxo-17-norkauran-18-oic acid。化合物A也被称为 ent-16-ketobeyran-18-oic acid。该化合物是含有贝壳杉烷结构的四环二萜类化合物，其中，不对称碳原子的绝对构型为：(4R，5S，8R，9R，10s、13s)，碳13 位上为甲基取代基，碳16上为羰基，碳18位上为羧基(Rodrigues etal.,1988)。

化合物B的分子式为C₂₀H₃₀O₃，化学名称为 ent-13-hyrdoxykaur-16-en-18-oicacid，它也被称为甜菊醇。该化合物也是含有贝壳杉烷结构的四环二萜类化合物。其中，手性碳原子的绝对构型为(4R,5S,8R,9R, 10S,13S)，碳13上连接羟基，与碳16相邻的双键连接亚甲基，碳18连接羧基 (Rodrigues et al.,1993).

化合物A或B在碳18位上也可以羧酸盐的形式存在，其中羧酸盐是钠和碱性金属或氯化物和卤素。化合物A和B都是含有贝壳杉烷结构的贝壳杉烷类化合物。化合物A是本发明的优选化合物。本发明公开了化合物A或B在治疗和预防心脏肥大和肺动脉高压方面具有相似的治疗效果。可以推断，结构式(I) 的所有其它化合物也具有与化合物A相同的治疗效果。据报道，化合物B在体外一定条件下会致突变。因此，与化合物B相比，化合物A更适合作为治疗药物。本发明所使用的化合物A是溶解度较好的化合物A的钠盐。

本发明公开化合物A结构式(I)在治疗和预防炎症性肠病方面的应用。DSS 诱发小鼠炎症性肠病后，小鼠体重减轻，出现便血。如给与DSS后再腹腔给与化合物A则小鼠体重有所恢复，便血明显减少。在本发明的一个实验中，在自由饮水中加入DSS，连续七天，小鼠体重明显减轻，出现便血，腹泻，组织病理学评分加重；如自由饮用DSS的同时，再给予化合物A(10-15mg/kg)，小鼠的体重有所恢复，便血和腹泻减轻，呈剂量依赖性。

本发明还公开了在DSS诱发的炎症性肠病小鼠，血液血常规检测结果显示小鼠的白细胞，中性粒细胞和单核细胞值较正常组有显著性升高，显示DSS模型组的小鼠出现炎症反应；给予化合物A后小鼠的白细胞，中性粒细胞和单核细胞，比DSS模型组有显著性下降，同时接近正常水平。效果优于或者相当市售药物5-氨基水杨酸(5-ASA)、地塞米松(Dex)和英芙利息(IFX)。表明化合物A对炎症性肠病导致的免疫功能紊乱有明显的调节作用，并使其恢复正常。本发明公开的另一实施中，结构式(I)中的化合物B也具有和化合物A相似的效果。以上公开内容是以往未被报道的，也不是业内人士可以预测和推知的，应被视为具备新颖性和创造性。

另一方面，本研究还公开了，令人意外的发现：在上述DSS诱发的炎症性肠病小鼠，给予Dex后，中性粒细胞与炎症性肠病小鼠相比反而进一步增加。表明免疫功能紊乱不仅没有恢复正常，反而加重了免疫功能的失调。此外，脾脏是调节免疫抗体的重要器官，它生成的各类免疫球蛋白对于机体对抗病原至关重要，炎症性肠病小鼠脾脏/体重比例明显增加。然而使用激素治疗后，该比例明显减少。且低于正常对照水平。体重机体对抗病原的能力有所降低。本发明第一次公开了，使用化合物A治疗炎症性肠病可以避免临床使用皮质激素治疗炎症性肠病的毒副作用。本发明公开的另一实施中，结构式(I)中的化合物 B也具有和化合物A相似的效果。以上公开内容是以往未被报道的，也不是业内人士可以预测和推知的，应被视为具备新颖性和创造性。

细胞因子在机体系统性的大量产生(细胞因子风暴)是炎症性肠病发生和发展的重要原因。本发明公开的实验中，DSS诱导炎症性肠病小鼠第七天后，检测小鼠血清中TNF-α、IL-1β和IFN-γ含量较正常组显著性增加，给予不同剂量的化合物A后血清中的TNF-α、IL-1β和IFN-γ显著性减少。现有文献报道了化合物A可以抑制缺血损伤时上述炎症因子的增加。本发明首次公开了化合物 A对可以抑制炎症性肠病导致的细胞因子的增加。缺血和炎症性肠病病因和病理机制完全不同。本发明公开的另一实验中结构式(I)中的化合物B也具有和化合物A相似的功效。本发明公开的上述内容不是业内人士可以预测和推知的，应被视为具备新颖性和创造性。

本发明还公开了炎症性肠病时脾脏的巨噬细胞M1和M2明显增加。给予化合物A后上述M1和M2巨噬细胞的生物标记物以及巨噬细胞数量均显著下降。化合物A可以通过抑制M1和M2型巨噬细胞，调节巨噬细胞导致的炎症反应。

本发明还公开了炎症性肠病时对脾脏的T细胞的影响。DSS模型组Th17 细胞显著增加，而Treg细胞降低，给予化合物A后上述Th17细胞降低和Treg 细胞增加。化合物A可以通过调节T细胞减缓炎症反应。

附图说明

图1是本发明实施例1中化合物A对炎症性肠病小鼠便血的影响。

图2是本发明实施例1中不同剂量的化合物A腹腔注射对DSS诱导的炎症性肠病小鼠体重的影响

图3是本发明实施例1中化合物A对炎症性肠病小鼠结肠长度的影响。

图4是本发明实施例1中化合物A对炎症性肠病小鼠脾脏重量的影响。

图5是本发明实施例1中化合物A对炎症性肠病小鼠组织HE染色。

图6是本发明实施例1中化合物A对炎症性肠病小鼠组织病理学评分的影响。

图7是本发明实施例2中化合物A对炎症性肠病小鼠肠道通透性的影响。

图8是本发明实施例3中化合物A对炎症性肠病小鼠血常规的影响。

图9是本发明实施例4中化合物A对炎症性肠病小鼠炎症因子的影响

图10是本发明实施例5中化合物A对炎症性肠病小鼠Th7细胞的影响

图11是本发明实施例5中化合物A对炎症性肠病小鼠FoxP3细胞的影响

图12是本发明实施例5中化合物A对炎症性肠病小鼠巨噬细胞M1的影响

图13是本发明实施例5中化合物A对炎症性肠病小鼠巨噬细胞M2的影响。实施例

在以下实施例中详细提供了本发明的方法和实施方式。

具体实施方式

为了进一步说明用于实现本发明目的的技术，下文描述了关于确定和鉴定本发明中化合物的药物和治疗用途的详细方法，技术，流程和特点。案例提供了用于支持及验证本发明所使用的动物模型的实验方法和结果。涉及的案例均使用了适当的对照组实验及统计分析方法。以下的案例均用于描述而非限制本发明的应用。这些案例所涉及的方法及技术可用于筛选及确定此类化合物制剂的治疗效果。其他此类化合物制剂的治疗效果评价可使用相同的方法。

本发明中列举的案例用于支持本发明的实验方法和结果，并验证本发明中使用的动物模型。本发明的所有实验均采用了适当的对照和统计检验。提供以下实施例来说明而非限制本发明。这些例子说明了用于筛选和确定结构式(I) 中某些具有特定药理活性的贝壳杉烷化合物的方法和技术。也可以用相同的方法测定结构式(I)的其他化合物的治疗用途。

实验材料实验动物：成年雄性Balb/c小鼠，体重20g±5g，6-8周龄。饲养环境包括恒定的温度、湿度以及严格的黑暗光照周期，自由采食。

化学试剂：化合物A(ent-17-norkaurane-16-oxo-18-oic acid，分子式，C₂₀H₄₀O₃，分子量：318.5)是由甜菊糖通过酸性水解、结晶纯化而得到。化合物A的钠盐可以通过加入NaOH或其他含钠碱获得；用高效液相色谱法测得化合物A的钠盐的纯度大于99％。受试化合物的给药方式：静脉注射或腹腔注射或口服。剂量：化合物A(或其钠盐)，10mg/kg至15mg/kg。

统计分析

依次通过方差分析(单因素方差分析)，Fisher检验比较多组间的差异。所有检验的P值均为双尾，以P<0.05被认为是具有统计学差异。

实施例1

本案例主要观察不同剂量的化合物A腹腔注射对葡聚糖硫酸钠(DSS)诱导的小鼠溃疡性肠炎的影响。

清洁级Balb/c鼠，6-8周，雄性。随机分为八组，设正常组(给予生理盐水)，模型组(自由饮用3.5％DSS)，化合物A(5mg/kg)空白组，化合物A(10 mg/kg)+DSS组，化合物A(15mg/kg)+DSS组，阳性对照组5-ASA(50 mg/kg)+DSS组，阳性对照组Dex(10mg/kg)+DSS组，阳性对照组IFX(1 mg/kg)+DSS组，每组15只。分组后实验组小鼠分别腹腔注射的化合物A、Dex 和IFX，灌胃5-ASA，对照组腹腔注射生理盐水。实验组连续2天进行给药。第3天起实验组和对照组均开始自由饮用3.5％DSS水溶液，每只小鼠每天的饮水量按7mL计算，每两天换一次新鲜的DSS溶液，DSS共给予7天，每天观察小鼠的体重变化，便血情况和粪便粘稠度。并于第10天对小鼠进行采血，处死，取小鼠结直肠组织并测量长度，部分组织进行福尔马林固定和剩下组织的冻存在-80℃进行保存，用于后续的组织学分析和分子生物学实验。

由图1可以看出，DSS组模型组的小鼠便血严重，而化合物A干预给药后，小鼠的便血情况有所缓解。

图2可以看出，第0天，所有7组动物的平均体重基本一致。在之后的7 天中，正常组和15mg/kg对照组体重稳步上升。前三天所有组别的体重都有缓步增长，但从自由饮用DSS后的第四天开始除正常组和15mg/kg对照组外的其他所有组别体重都有一个陡降的趋势，其中模型组和Dex组的体重与其他组相比，体重减轻最多。化合物A治疗组的体重也都有所下降。两种阳性对照药， 5-ASA和Infliximab组动物体重的减轻比模型组要少，Infliximab组体重的减少要高于组5-ASA。可知化合物A对于体重的保持效果较好。

从图3可以看出，在给予动物DSS后，实验动物结肠由于肠壁变薄重量会减轻，长度也会缩短。在第9天处死动物后，对结肠组织进行长度的测量，我们发现经药物治疗后，化合物A组动物结肠组织的长度与模型组相比有显著增加，而其他给药组虽然也有所增加，但无显著性差异。

动物的脾脏重量的增加可能与炎症程度相关。从图4可以看出，在给予DSS 后，小鼠的脾脏重量会有所增加，表现为脾肿大。在第9天处死后，对脾脏的重量进行称量记录，并继续采用各只动物处死前体重进行矫正。可以发现，模型组小鼠的脾脏大小和重量与正常对照组相比具有显著性差异。各给药组都可见不同程度的脾肿大缓解，与模型组相比，化合物A、5-ASA、Dex和infliximab 各组否有所下降其中，与模型组相比均有显著性差异。

结肠组织病理学改变是评价药物作用疗效的最有力的证据之一。从图5和图6可以看出，DSS第9天，模型组小鼠肠组织结构重度异常，主要表现为粘膜层正常结构基本全部消失，粘膜上皮细胞糜烂脱落，固有膜裸露，粘膜层大量炎症细胞，新生血管及纤维组织增生，并可见出血，粘膜下层水肿，并可见大量炎症细胞浸润。而各剂量化合物A、5-ASA和infliximab组病理损害均有部分类似模型组的表现，但程度较轻，而Dex组较模型组无显著性差异。

实施例2

本案例主要观察各组实验小鼠结肠的通透性。

1)原理：动物肠道的通透性程度可以通过使用荧光示踪剂检测血清中的荧光强度进行半定量检测。

2)标准曲线的制作：

取正常小鼠数只,收集无溶血血清，称取FITC-dextran粉末200μg，溶于5ml 血清中，倍比稀释，再使用酶标仪检测焚光强度,即可得到标准曲线。

3)处死动物当天，提前4小时禁食。

4)灌胃给予配制好的FITC-dextran示踪剂，剂量60mg/kg重。

5)动物处死前取血，收集无溶血血清。

6)将血清加入96孔板中，每孔100μl使用酶标仪检测荧光强度(激发光 488mn，发射光520nm)。

7)通过标准曲线公式可计算出动物血清中FITC-dextran的含量。

FITC-dextran(荧光素标记葡聚糖)是一种荧光染料，外源性的给予小鼠 FITC-dextran后，通过检测血清中FITC-dextran的荧光强度可以反映肠道通透性的高低，是一种新型的评价肠道炎症的指标。因此在处死动物当天，对小鼠禁食6h以上，然后灌胃给予FITC-dextran，6h后,检测血清中FITC-dextran荧光含量。如图7所示，正常对照组小鼠血清中FITC含量很低，说明肠道通透性正常。而模型组的FITC含量明显升高,说明肠道通透性增加，肠壁有损伤。而化合物A、 5-ASA、Dex和Infliximab组的FITCF含量均有显著降低，说明化合物A对保护肠道有一定的作用。

实施例3

本案例主要说明了化合物A对炎症性肠病血常规的影响。

第9天后，对小鼠进行采血，轻轻滴入准备好的EDTA盐抗凝的EP管内，将采取的80-100μL血液标本混匀，使用全自动血液分析仪检测血常规，包括红细胞计数(RBC)、单核细胞(MONO)、中性粒细胞(LYMPH)、血小板(PLT)、血红蛋白(HGB)、红细胞压积(HCT)及白细胞计数(WBC)等。

如图8所示，与正常组比较，模型组的WBC、NEUT、LYMPH和MONO 都显著增加，化合物A、5-ASA和Infliximab干预后，WBC、NEUT、LYMPH 和MONO都有所下降，但Dex组和模型组相比较无显著性差异。

实施例4

本案例主要说明了化合物A对炎症因子的影响。

血清TNF-α、IFN-γ和IL-1β含量按照ELISA试剂盒提供的说明书进行。

如图9所示，在正常对照组小鼠的血清中血清TNF-α、IFN-γ和IL-1β含量较低，而模型组小鼠血清中血清TNF-α、IFN-γ和IL-1β的含量则显著升高，具有显著性差异。给药化合物A、5-ASA组、Dex组和infliximab组小鼠血清的血清TNF-α、IFN-γ和IL-1β含量均有所下降，其中化合物A与模型组相比较均有显著性差异，5-ASA与模型组相比IFN-γ的含量有显著性差异；Infliximab与模型组相比TNF-α的含量有显著性差异。结果表明，化合物A改善了炎症反应导致的血清抗炎因子的高水平表达。

实施例5

这个例子说明化合物A对T细胞和巨噬细胞极化的影响。

1)实验动物分组：70只6-8周龄Balb/c雄性小鼠适应性喂养一周后，随机分成8组，各组10只，分别为正常组、化合物A正常对照组、DSS模型组、化合物A组、5-ASA组、Dex组和infliximab组。连续自由饮用DSS七天。

2)脾脏腹腔巨噬细胞和T细胞的的提取：第八天引颈处死小鼠，提取脾脏 T细胞和巨噬细胞。

3)流式检测巨噬细胞：用MACS对巨噬细胞冰上阻断20min后，1000rpm，4 ℃ 离心5min，弃上清，细胞悬液中加入各0.2μl的PE-抗小鼠的F4/80抗体和BV421-抗CD11c抗体，冰上避光孵育30min后，PBS洗一次，用50μl固定液冰上固定10min，50μl的1x破膜液破膜，1000rpm，4℃离心5min，再加 100μl 1x破膜液破膜，离心，加入0.2μl的FITC-抗小鼠CD206抗体冰上避光孵育30min后，加100μl破膜液离心后，最后加1ml PBS洗一次，离心，收集沉淀，200μl PBS重悬，FACSCelesta流式细胞仪检测，FlowJo 7.6.1软件分析 M1型(F4/80⁺CD11c⁺CD206^-)和M2型(F4/80⁺CD11c^-CD206⁺)。

4)流式检测T细胞：用MACS对巨噬细胞冰上阻断20min后，1000rpm，4 ℃ 离心5min，弃上清，细胞悬液中加入各0.2μl的CD4、CD3和CD25抗体，冰上避光孵育30min后，PBS洗一次，用50μl固定液冰上固定10min，50μl 的1x破膜液破膜，1000rpm，4℃离心5min，再加100μl 1x破膜液破膜，离心，加入0.2μl的IL-17和FoxP3抗体冰上避光孵育30min后，加100μl破膜液离心后，最后加1ml PBS洗一次，离心，收集沉淀，200μl PBS重悬， FACSCelesta流式细胞仪检测，FlowJo 7.6.1软件分析Th17和Treg细胞。

如图10和图11所示，和DSS模型组比较，化合物A、5-ASA组、Dex组和infliximab干预后Th17细胞显著减少，Treg细胞显著增加，说明化合物A在 T细胞的调节中起重要作用。

如图12和图13所示，和DSS模型组比较，化合物A、5-ASA组、Dex组和infliximab干预后M1型和M2型腹腔巨噬细胞都显著减少，说明化合物A在 M1和M2巨噬细胞的失衡起到调节作用，维持体内巨噬细胞的平衡。

以上所述仅是本发明的优选实施方式，并不用于限制本发明，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明的技术原理的前提下，还可以作出若干改进和变型，这些改进和变型也应视为本发明的保护范围。

Claims (10)

1.异甜菊醇钠在制备用于治疗溃疡性结肠炎药物制剂中的应用。

2.异甜菊醇钠和免疫抑制剂药物、抗体、或S1P受体调节剂组合制备用于治疗溃疡性结肠炎药物制剂中的应用。

3.根据权利要求1或2中所述的应用，其特征在于其治疗的作用机制涉及抑制细胞因子的产生或抑制细胞因子风暴，所述细胞因子包括TNF-α、IL-1β、FN-γ和IL-17。

4.根据权利要求2所述的应用，其特征在于免疫抑制剂包括强的松、布地奈德、氟替卡松、氟尼缩松、环索奈德、莫米松、倍氯米松、地塞米松。

5.根据权利要求2所述的应用，其特征在于免疫抑制剂包括柳氮磺吡啶、美沙拉嗪、巴柳氮和奥沙拉嗪。

6.根据权利要求2所述的应用，其特征在于所述的抗体为英夫利昔单抗、阿达木单抗、戈利木单抗、维多珠单抗、赛妥珠单抗、那他珠单抗、优特克单抗和Bm-ca。

7.根据权利要求1或2中所述的应用，其特征在于所述药物制剂的作用机制涉及抑制和调节巨噬细胞的激活和增殖。

8.根据权利要求1或2中所述的应用，其特征在于所述药物制剂的作用机制涉及抑制白细胞、中性粒细胞、单核细胞和淋巴细胞的激活和增殖及促进淋巴细胞Treg的增殖。

9.根据权利要求1或2中所述的应用，其特征在于所述药物制剂的剂型包括：片剂、胶囊剂、颗粒剂、栓剂、软膏剂、贴剂、水针剂以及经口服或非肠道途径的缓控释制剂。

10.根据权利要求1或2所述的应用，其特征在于所述药物制剂通过口服、吸入、鼻用喷雾、注射、外用、滴眼、直肠或阴道给药。

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