CN113215080A - 诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法 - Google Patents

诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法 Download PDF

Info

Publication number
CN113215080A
CN113215080A CN202110598378.6A CN202110598378A CN113215080A CN 113215080 A CN113215080 A CN 113215080A CN 202110598378 A CN202110598378 A CN 202110598378A CN 113215080 A CN113215080 A CN 113215080A
Authority
CN
China
Prior art keywords
cells
alveolar
inducing differentiation
pluripotent stem
human pluripotent
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN202110598378.6A
Other languages
English (en)
Other versions
CN113215080B (zh
Inventor
杨仁君
刘抒羽
殷诺雅
费凡
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Research Center for Eco Environmental Sciences of CAS
Original Assignee
Research Center for Eco Environmental Sciences of CAS
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Research Center for Eco Environmental Sciences of CAS filed Critical Research Center for Eco Environmental Sciences of CAS
Priority to CN202110598378.6A priority Critical patent/CN113215080B/zh
Publication of CN113215080A publication Critical patent/CN113215080A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN113215080B publication Critical patent/CN113215080B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0688Cells from the lungs or the respiratory tract
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30Organic components
    • C12N2500/38Vitamins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30Organic components
    • C12N2500/40Nucleotides, nucleosides or bases
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/01Modulators of cAMP or cGMP, e.g. non-hydrolysable analogs, phosphodiesterase inhibitors, cholera toxin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/115Basic fibroblast growth factor (bFGF, FGF-2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/117Keratinocyte growth factors (KGF-1, i.e. FGF-7; KGF-2, i.e. FGF-12)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/119Other fibroblast growth factors, e.g. FGF-4, FGF-8, FGF-10
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/15Transforming growth factor beta (TGF-β)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/155Bone morphogenic proteins [BMP]; Osteogenins; Osteogenic factor; Bone inducing factor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/16Activin; Inhibin; Mullerian inhibiting substance
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30Hormones
    • C12N2501/38Hormones with nuclear receptors
    • C12N2501/39Steroid hormones
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/40Regulators of development
    • C12N2501/405Cell cycle regulated proteins, e.g. cyclins, cyclin-dependant kinases
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/40Regulators of development
    • C12N2501/415Wnt; Frizzeled
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2506/00Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
    • C12N2506/45Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from artificially induced pluripotent stem cells

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明提供了诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法,具体涉及使用小分子激活剂/抑制剂诱导人多能干细胞分化为肺前体细胞或肺泡细胞的培养基及方法。本发明诱导分化而来的细胞表达典型的肺前体细胞和肺泡细胞生物标志物,其中三维人肺泡类器官具有肺泡样泡状结构,可以作为毒理学研究、药物筛选和肺部疾病研究的材料。

Description

诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及 方法
技术领域
本发明属于细胞生物学与发育生物学交叉领域,涉及诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法。
背景技术
肺是人类主要的呼吸器官,其中肺泡上皮细胞组成的肺泡是肺部实现气体交换功能的基本结构和功能单位。在体外培养肺细胞进行药物筛选、毒性测试和疾病研究是临床医学、药学、发育生物学和细胞生物学等领域的共同需求。然而,人源肺泡细胞一直是一种十分稀缺的资源,相关细胞的分离、纯化和实验室扩大培养的技术均不成熟。尽管目前从人胎儿中分离肺上皮前体细胞的实验流程已经比较成熟,但由于肺泡上皮细胞一般出现在孕26周,因此可用于取样的流产胎儿极难获得,亟需一套能够高效获得人体肺泡细胞或肺泡类器官的方法。
发明内容
为解决上述问题,本发明提供以下技术方案:
一方面,本发明提供诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,所述方法包括以下步骤:
a.诱导诱导人多能干细胞分化为原条细胞;
b.诱导原条细胞分化为限定性内胚层细胞;
c.诱导限定性内胚层细胞分化为前端前肠细胞;
d.诱导前端前肠细胞分化为肺前体细胞;
e.诱导肺前体细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官。
在一些实施方案中,诱导分化使用的基底培养基为LD basal,LD basal配方为:DMEM/F12培养基中加入GlutaMAX(1-4mM,优选为1、2、3、4mM,更优选为2mM)、N2补充剂(1×),B27补充剂(1×),抗坏血酸-2-磷酸(40-60μg/mL,优选为40、50、60μg/mL,更优选为50μg/mL)。
在一些实施方案中,诱导诱导人多能干细胞分化为原条细胞所用培养基为LDM-1,所述LDM-1的配方为:LD basal培养基中加入Activin A(20-500ng/mL,优选为20、50、80、100、150、200、250、300、350、400、450、500ng/mL,更优选为100ng/mL)、CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)。
在一些实施方案中,诱导诱导人多能干细胞分化为原条细胞的诱导时间为1-3天,优选为1、2、3天,更优选为1天。
在一些实施方案中,诱导原条细胞分化为限定性内胚层细胞所用的培养基为LDM-2,所述的LDM-2配方为:LD basal培养基中加入Activin A(20-500ng/mL,优选为20、50、80、100、150、200、250、300、350、400、450、500ng/mL,更优选为100ng/mL)。
在一些实施方案中,诱导限定性内胚层细胞分化为前端前肠细胞所用的培养基为LDM-3,所述LDM-3的配方为:LD basal培养基中加入SB431542(1-20μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20μM,更优选为10μM)、dorsomorphin(1-10μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10μM,更优选2μM)。
在一些实施方案中,诱导限定性内胚层细胞分化为前端前肠细胞的诱导时间为2-4天,优选为2、3、4天,更优选为3天。
在一些实施方案中,诱导前端前肠细胞分化为肺前体细胞所用的培养基为LDM-4,所述LDM-4的配方为:LD basal培养基中加入CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)、视黄酸(10-100nM,优选为10、20、30、40、50、60、70、80、90、100nM,更优选为50nM)、BMP4(1-30ng/mL,优选为1、5、8、15、20、25、30ng/mL,更优选为10ng/mL)、FGF7(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)、FGF10(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)。
在一些实施方案中,诱导前端前肠细胞分化为肺前体细胞的诱导时间为8-10天,优选为8、9、10天,更优选为9天。
在一些实施方案中,诱导肺前体细胞分化为肺泡细胞所用的培养基为LDM-5,所述的LDM-5配方为:LD basal培养基中加入CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)、FGF7(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)、地塞米松(10-50nM,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50nM,更优选为50nM)、cAMP(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)、3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)。
在一些实施方案中,诱导肺前体细胞分化为肺泡细胞的诱导时间为13-15天,优选为13、14、15天,更优选为14天。
在一些实施方案中,诱导肺前体细胞分化为肺泡类器官包括以下步骤:
(1)将步骤d获得的肺前体细胞与基质胶溶液混合,形成细胞悬液;
(2)将细胞悬液按照每滴20-100μL的量,接种在干燥的细胞培养板里;
(3)等待至细胞悬液凝固;
(4)加入LDM-5进行诱导;LDM-5的配方为:LD basal培养基中加入CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)、FGF7(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)、地塞米松(10-50nM,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50nM,更优选为50nM)、cAMP(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)、3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)。
在一些实施方案中,诱导肺前体细胞分化为肺泡类器官的诱导时间为为13-15天,优选为13、14、15天,更优选为14天。
另一方面,本发明提供LD basal培养基或试剂盒或组合物,其包括:
DMEM/F12培养基;
GlutaMAX;
N2补充剂(1×);
B27补充剂(1×);
抗坏血酸-2-磷酸。
另一方面,本发明提供LD basal培养基或试剂盒,LD basal配方为:DMEM/F12培养基中加入GlutaMAX(1-4mM,优选为1、2、3、4mM,更优选为2mM)、N2补充剂(1×),B27补充剂(1×),抗坏血酸-2-磷酸(40-60μg/mL,优选为40、50、60μg/mL,更优选为50μg/mL)。
另一方面,本发明提供诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基或试剂盒或组合物,其包括:
上述LD basal培养基或试剂盒或组合物;
WNT通路激活剂;
ACTIVIN通路激活剂;
TGFβ通路抑制剂;
BMP通路抑制剂;
BMP通路激活剂;
RA通路激活剂;
FGF通路激活剂;
cAMP通路激活剂;
糖皮质激素;
磷酸二酯酶抑制剂。
在一些实施方案中,所述WNT通路激活剂选自由CHIR99021、IM-12、AZD2858和WNT3a组成的组中的一个或多个,优选为CHIR99021。
在一些实施方案中,ACTIVIN通路激活剂为ACTIVIN A。
在一些实施方案中,所述TGFβ通路抑制剂选自由SB431542、A83-01和LY2109761组成的组中的一个或多个,优选为SB431542。
在一些实施方案中,所述BMP通路抑制剂选自由dorsomophin、LDN193189和K02288组成的组中的一个或多个,优选为dorsomophin。
在一些实施方案中,所述BMP通路激活剂选自由BMP2、BMP4,BMP7组成的组中的一个或多个,优选为BMP4;
在一些实施方案中,所述RA通路激活剂选自由视黄酸、WYC-209和AM580组成的组中的一个或多个,优选为视黄酸。
在一些实施方案中,所述FGF通路激活剂选自由FGF2、FGF7、FGF8和FGF10组成的组中的一个或多个,优选为FGF7和FGF10。
在一些实施方案中,所述cAMP通路激活剂选自由cAMP和Forskolin组成的组中的一个或多个,优选为cAMP。
在一些实施方案中,所述糖皮质激素选自由地塞米松、甲泼尼龙和布地奈德组成的组中的一个或多个,优选为地塞米松。
在一些实施方案中,所述磷酸二酯酶抑制剂选自由3-异丁基-1-甲基黄嘌呤、Luteolin和Udenafil组成的组中的一个或多个,优选为3-异丁基-1-甲基黄嘌呤。
另一方面,本发明提供诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基或试剂盒或组合物,其包括:
上述LD basal培养基或试剂盒或组合物;
WNT通路激活剂,其选自由CHIR99021、IM-12、AZD2858和WNT3a组成的组中的一个或多个,优选为CHIR99021;
ACTIVIN通路激活剂,优选为ACTIVIN A;
TGFβ通路抑制剂,其选自由SB431542、A83-01和LY2109761组成的组中的一个或多个,优选为SB431542;
BMP通路抑制剂,其选自由dorsomophin、LDN193189和K02288组成的组中的一个或多个,优选为dorsomophin;
所述BMP通路激活剂选自由BMP2、BMP4,BMP7组成的组中的一个或多个,优选为BMP4;
RA通路激活剂,其选自由视黄酸、WYC-209和AM580组成的组中的一个或多个,优选为视黄酸;
FGF通路激活剂,其选自由FGF2、FGF7、FGF8和FGF10组成的组中的一个或多个,优选为FGF7和FGF10;
cAMP通路激活剂,其选自由cAMP和Forskolin组成的组中的一个或多个,优选为cAMP;
糖皮质激素,其选自由地塞米松、甲泼尼龙和布地奈德组成的组中的一个或多个,优选为地塞米松;
磷酸二酯酶抑制剂,其选自由3-异丁基-1-甲基黄嘌呤、Luteolin和Udenafil组成的组中的一个或多个,优选为3-异丁基-1-甲基黄嘌呤。
在进一步的实施方案中,诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基或试剂盒或组合物,还包含Activin A(20-500ng/mL,优选为20、50、80、100、150、200、250、300、350、400、450、500ng/mL,更优选为100ng/mL)、CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)、SB431542(1-20μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20μM,更优选为10μM)、dorsomorphin(1-10μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10μM,更优选2μM)、CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)、视黄酸(10-100nM,优选为10、20、30、40、50、60、70、80、90、100nM,更优选为50nM)、BMP4(1-30ng/mL,优选为1、5、8、15、20、25、30ng/mL,更优选为10ng/mL)、FGF7(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)、FGF10(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)、地塞米松(10-50nM,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50nM,更优选为50nM)、cAMP(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)、3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)。
另一方面,本发明提供上述培养基或试剂盒或组合物诱导诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的用途。
与现有技术相比,本发明的优势在于:
本发明通过诱导人多能干细胞进行肺分化,能够提供充足的人肺细胞,满足各种研究的需要。这些细胞与癌细胞相比,遗传物质正常,更贴近健康人体真实情况。与从人体中提取肺泡细胞相比,本发明获得肺细胞的方法更加温和,不涉及伦理问题,样品也非常容易获取。
附图说明
图1为根据本发明实施方式的限定性内胚层细胞形态;
图2为根据本发明实施方式的肺前体细胞形态;
图3为根据本发明实施方式的单层肺泡细胞形态;
图4为根据本发明实施方式的三维肺泡类器官形态;
图5为根据本发明实施方式的肺前体细胞生物标志物NKX2.1的表达;
图6为根据本发明实施方式的肺前体细胞生物标志物ID2的表达;
图7为根据本发明实施方式的肺前体细胞生物标志物SFTPC的表达;
图8为根据本发明实施方式的肺泡细胞生物标志物NKX2.1的表达;
图9为根据本发明实施方式的肺泡细胞生物标志物ID2的表达;
图10为根据本发明实施方式的肺泡细胞生物标志物SFTPC的表达;
图11为根据本发明实施方式的肺泡细胞生物标志物ABCA3的表达;
图12为根据本发明实施方式的肺泡细胞生物标志物NAPSA的表达。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚明白,以下结合具体实施例,并参照附图,对本发明作进一步的详细说明。
实施例1诱导人多能干细胞分化为限定性内胚层细胞
本发明中所有的细胞均在37℃,含有5%二氧化碳的细胞培养箱中恒温培养。
实施例1使用的初始细胞是诱导人多能干细胞DYR0100(中国科学院细胞库/干细胞技术平台,SCSP-1301)。
在基质胶(Corning,356231)包被的24孔板中使用10mL的mTesR1(STEMCELLTechnologies,85850)培养基,维持培养DYR0100。DYR0100克隆的汇合度达到90%时,开始诱导分化。
诱导分化使用的基底培养基为LD basal,LD basal配方为:100mL DMEM/F12(Gibco,C1410500BT330500BT)培养基中加入1mL GlutaMAX(Gibco,35050061)(100×)、1mLN2补充剂(Gibco,17502001)(100×)、2mL B27补充剂(Gibco,17504044)(50×)、0.1mL抗坏血酸-2-磷酸(源叶,S24742)(50μg/mL)。
在分化的第0天,使用LDM-1,诱导细胞向原条细胞分化。LDM-1的配方为:LD basal培养基中加入Activin A(100ng/mL)(Peprotech,120-14E)、CHIR99021(3μM)(Selleck,S2924)。
在分化的第1天,使用LDM-2,诱导原条细胞分化3天,成为限定性内胚层细胞。LDM-2的配方为:LD basal培养基中加入Activin A(100ng/mL)。限定性内胚层细胞为密集单层细胞(图1)。
实施例2诱导限定性内胚层细胞分化为肺前体细胞
针对实施例1最终获得的限定性内胚层细胞,第一阶段使用LDM-3,诱导实施例1获得的限定性内胚层细胞分化3天,成为前端前肠细胞。LDM-3的配方为:LD basal培养基中加入SB431542(Selleck,S2924)(10μM)、dorsomorphin(Selleck,S7306)(2μM)。
第二阶段使用LDM-4,诱导上述获得的前端前肠细胞分化9天,成为肺前体细胞(图2)。LDM-4的配方为:LD basal培养基中加入CHIR99021(3μM)、视黄酸(Sigma,R2625)(50nM)、BMP4(Gibco,PHC9531)(10ng/mL)、FGF7(R&D,251-KG-050)(10ng/mL)、FGF10(R&D,345-FG-025)(10ng/mL)。
实施例3诱导肺前体细胞分化为单层肺泡细胞
针对实施例2最终获得的肺前体细胞,使用LDM-5诱导肺前体细胞分化约16天,最终成为肺泡细胞(图3)。LDM-5的配方为:LD basal培养基中加入CHIR99021(3μM)、FGF7(10ng/mL)、地塞米松(Sigma-Aldrich,D4092)(50nM)、cAMP(Sigma-Aldrich,B5386)(0.1mM)、3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(Sigma-Aldrich,I5879-250MG)(0.1mM)。
实施例4诱导肺前体细胞分化为肺泡类器官
针对实施例2最终获得的肺前体细胞。具体诱导步骤如下:
(1)将上述肺前体细胞与基质胶溶液混合,形成细胞悬液;
(2)将细胞悬液按照每滴20-100μL的量,接种在干燥的细胞培养板里;
(3)等待20分钟直至细胞悬液凝固;
(4)加入LDM-5,培养16天;LDM-5的配方为:LD basal培养基中加入CHIR99021(3μM)、FGF7(10ng/mL)、地塞米松(50nM)、cAMP(0.1mM)、3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(0.1mM)。
最终获得的细胞为中间有空腔的肺泡类器官(图4)。
实施例5肺前体细胞或肺泡细胞生物标志物检测
使用的样品是诱导人多能干细胞、上述实施例2的肺前体细胞和实施例3的肺泡细胞。
使用TRNzol总RNA提取试剂(天根生化科技(北京)有限公司,DP424)提取样品中的RNA。
使用FastKing试剂盒(天根生化科技(北京)有限公司,KR118)去除所述样品中基因组DNA污染和反转录。
使用FastFire qPCR PreMix(天根生化科技(北京)有限公司,FP207)对所述样品进行荧光定量PCR。
荧光定量PCR实验中使用的引物根据NCBI公布的人类基因组转录本信息设计,产物长度在80~120bp左右,PCR引物信息如下:
GAPDH-Fw:5′-GGTCACCAGGGCTGCTTTTA-3′
GAPDH-Rv:5′-GGATCTCGCTCCTGGAAGATG-3′
NKX2.1-Fw:5′-CTCATGTTCATGCCGCTC-3′
NKX2.1-Rv:5′-GACACCATGAGGAACAGCG-3′
ID2-Fw:5′-GACAGCAAAGCACTGTGTGG-3′
ID2-Rv:5′-TCAGCACTTAAAAGATTCCGTG-3′
SFTPC-Fw:5′-AGCAAAGAGGTCCTGATGGA-3′
SFTPC-Rv:5′-CGATAAGAAGGCGTTTCAGG-3′
ABCA3-Fw:5′-AAGATGTAGCGGACGAGAGG-3′
ABCA3-Rv:5′-CCCCGGTCAGCATTTTGAAA-3′
NAPSA-Fw:5′-ACGCCTCCACAAAACTTCAC-3′
NAPSA-Rv:5′-TGGCAAACTTGGTCCCATTG-3′
荧光定量PCR的反应条件为:预变性95℃,30秒;95℃,5秒,60℃,30秒,50个循环。
使用荧光定量PCR检测肺前体细胞中标志基因NKX2.1、ID2和SFTPC的表达水平。相关检测结果显示,与诱导人多能干细胞相比,肺前体细胞中NKX2.1、ID2和SFTPC的表达水平分别上升了4.3倍、2.6倍和9671.7倍(图5-7),可见肺前体分化效果良好。
使用荧光定量PCR检测肺泡细胞标志基因NKX2.1、ID2、SFTPC、ABCA3和NAPSA的表达水平。相关检测结果显示,与肺前体细胞相比,肺泡细胞中NKX2.1表达水平几乎不变,ID2、SFTPC、ABCA3和NAPSA的表达水平分别上升了1.2倍、80.9倍、15倍、112.9倍(图8-12),可见肺泡分化效果良好。
以上所述的具体实施例,对本发明的目的、技术方案和有益效果进行了进一步详细说明,应理解的是,以上所述仅为本发明的具体实施例而已,并不用于限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所做的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (17)

1.诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,所述方法包括以下步骤:
a.诱导人多能干细胞分化为原条细胞;
b.诱导原条细胞分化为限定性内胚层细胞;
c.诱导限定性内胚层细胞分化为前端前肠细胞;
d.诱导前端前肠细胞分化为肺前体细胞;
e.诱导肺前体细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官。
2.根据权利要求1所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导分化使用的基底培养基为LD basal,LD basal配方为:DMEM/F12培养基中加入GlutaMAX(1-4mM,优选为1、2、3、4mM,更优选为2mM)、N2补充剂(1×),B27补充剂(1×),抗坏血酸-2-磷酸(40-60μg/mL,优选为40、50、60μg/mL,更优选为50μg/mL)。
3.根据权利要求2所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导人多能干细胞分化为原条细胞所用培养基为LDM-1,所述LDM-1的配方为:LDbasal培养基中加入Activin A(20-500ng/mL,优选为20、50、80、100、150、200、250、300、350、400、450、500ng/mL,更优选为100ng/mL)、CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)。
4.根据权利要求3所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导人多能干细胞分化为原条细胞的诱导时间为1-3天,优选为1、2、3天,更优选为1天。
5.根据权利要求2所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导原条细胞分化为限定性内胚层细胞所用的培养基为LDM-2,所述的LDM-2配方为:LD basal培养基中加入Activin A(20-500ng/mL,优选为20、50、80、100、150、200、250、300、350、400、450、500ng/mL,更优选为100ng/mL)。
6.根据权利要求5所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导限定性内胚层细胞分化为前端前肠细胞所用的培养基为LDM-3,所述LDM-3的配方为:LD basal培养基中加入SB431542(1-20μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20μM,更优选为10μM)、dorsomorphin(1-10μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10μM,更优选2μM)。
7.根据权利要求6所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导限定性内胚层细胞分化为前端前肠细胞的诱导时间为2-4天,优选为2、3、4天,更优选为3天。
8.根据权利要求2所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导前端前肠细胞分化为肺前体细胞所用的培养基为LDM-4,所述LDM-4的配方为:LD basal培养基中加入CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)、视黄酸(10-100nM,优选为10、20、30、40、50、60、70、80、90、100nM,更优选为50nM)、BMP4(1-30ng/mL,优选为1、5、8、15、20、25、30ng/mL,更优选为10ng/mL)、FGF7(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)、FGF10(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)。
9.根据权利要求8所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导前端前肠细胞分化为肺前体细胞的诱导时间为8-10天,优选为8、9、10天,更优选为9天。
10.根据权利要求2所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导肺前体细胞分化为肺泡细胞所用的培养基为LDM-5,所述的LDM-5配方为:LDbasal培养基中加入CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)、FGF7(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)、地塞米松(10-50nM,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50nM,更优选为50nM)、cAMP(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)、3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)。
11.根据权利要求10所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导肺前体细胞分化为肺泡细胞的诱导时间为13-15天,优选为13、14、15天,更优选为14天。
12.根据权利要求2所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导肺前体细胞分化为肺泡类器官包括以下步骤:
(1)将步骤d获得的肺前体细胞与基质胶溶液混合,形成细胞悬液;
(2)将细胞悬液按照每滴20-100μL的量,接种在干燥的细胞培养板里;
(3)等待至细胞悬液凝固;
(4)加入LDM-5进行诱导;LDM-5的配方为:LD basal培养基中加入CHIR99021(1-12μM,优选为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12μM,更优选为3μM)、FGF7(10-50ng/mL,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50ng/mL,更优选为10ng/mL)、地塞米松(10-50nM,优选为10、15、20、25、30、35、40、45、50nM,更优选为50nM)、cAMP(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)、3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(0.1-2mM,优选为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0mM,更优选为0.1mM)。
13.根据权利要求12所述诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的方法,其特征在于,诱导肺前体细胞分化为肺泡类器官的诱导时间为为13-15天,优选为13、14、15天,更优选为14天。
14.LD basal培养基或试剂盒或组合物,其特征在于,包括:
DMEM/F12培养基;
GlutaMAX;
N2补充剂;
B27补充剂;
抗坏血酸-2-磷酸。
15.诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基或试剂盒或组合物,其特征在于,包括:
根据权利要求14所述的培养基或试剂盒或组合物;
WNT通路激活剂;
ACTIVIN通路激活剂;
TGFβ通路抑制剂;
BMP通路抑制剂;
BMP通路激活剂;
RA通路激活剂;
FGF通路激活剂;
cAMP通路激活剂;
糖皮质激素;
磷酸二酯酶抑制剂。
16.根据权利要求15所述的诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基或试剂盒或组合物,其特征在于,
所述WNT通路激活剂选自由CHIR99021、IM-12、AZD2858和WNT3a组成的组中的一个或多个;
所述ACTIVIN通路激活剂为ACTIVIN A;
所述TGFβ通路抑制剂选自由SB431542、A83-01和LY2109761组成的组中的一个或多个;
所述BMP通路抑制剂选自由dorsomophin、LDN193189和K02288组成的组中的一个或多个;
所述BMP通路激活剂选自由BMP2、BMP4,BMP7组成的组中的一个或多个;
所述RA通路激活剂选自由视黄酸、WYC-209和AM580组成的组中的一个或多个;
所述FGF通路激活剂选自由FGF2、FGF7、FGF8和FGF10组成的组中的一个或多个;
所述cAMP通路激活剂选自由cAMP和Forskolin组成的组中的一个或多个;
所述糖皮质激素选自由地塞米松、甲泼尼龙和布地奈德组成的组中的一个或多个;
磷酸二酯酶抑制剂选自由3-异丁基-1-甲基黄嘌呤、Luteolin和Udenafil组成的组中的一个或多个。
17.根据权利要求16所述的诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基或试剂盒或组合物,其特征在于,所述培养基或试剂盒包含Activin A、CHIR99021、SB431542、dorsomorphin、视黄酸、BMP4、FGF7、FGF10、地塞米松、cAMP和3-异丁基-1-甲基黄嘌呤。
CN202110598378.6A 2021-05-31 2021-05-31 诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法 Active CN113215080B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110598378.6A CN113215080B (zh) 2021-05-31 2021-05-31 诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110598378.6A CN113215080B (zh) 2021-05-31 2021-05-31 诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN113215080A true CN113215080A (zh) 2021-08-06
CN113215080B CN113215080B (zh) 2022-08-16

Family

ID=77081639

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202110598378.6A Active CN113215080B (zh) 2021-05-31 2021-05-31 诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN113215080B (zh)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115786243A (zh) * 2023-01-31 2023-03-14 苏州吉美瑞生医学科技有限公司 一种肺前体细胞的分化培养基、培养方法及其应用
CN115786245A (zh) * 2023-02-13 2023-03-14 淇嘉科技(天津)有限公司 人仿生肺脏类器官构建方法
CN115838684A (zh) * 2023-02-13 2023-03-24 淇嘉科技(天津)有限公司 肺纤维化体外精准模拟方法
CN117126798A (zh) * 2023-10-20 2023-11-28 北京大学第三医院(北京大学第三临床医学院) 一种用于多能干细胞衍生肺类器官的培养基以及培养方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109576211A (zh) * 2018-11-01 2019-04-05 上海淮泊生物科技有限公司 一种人多能干细胞定向肺类器官分化流程

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109576211A (zh) * 2018-11-01 2019-04-05 上海淮泊生物科技有限公司 一种人多能干细胞定向肺类器官分化流程

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KYLE M. LOH等: "Efficient endoderm induction from human pluripotent stem cells by logically directing signals controlling lineage bifurcations", 《CELL STEM CELL》 *
SHUYU LIU等: "Development of Human Lung Induction Models for Air Pollutants’ Toxicity Assessment", 《ENVIRON. SCI. TECHNOL.》 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115786243A (zh) * 2023-01-31 2023-03-14 苏州吉美瑞生医学科技有限公司 一种肺前体细胞的分化培养基、培养方法及其应用
CN115786245A (zh) * 2023-02-13 2023-03-14 淇嘉科技(天津)有限公司 人仿生肺脏类器官构建方法
CN115838684A (zh) * 2023-02-13 2023-03-24 淇嘉科技(天津)有限公司 肺纤维化体外精准模拟方法
CN117126798A (zh) * 2023-10-20 2023-11-28 北京大学第三医院(北京大学第三临床医学院) 一种用于多能干细胞衍生肺类器官的培养基以及培养方法
CN117126798B (zh) * 2023-10-20 2024-05-03 北京大学第三医院(北京大学第三临床医学院) 一种用于多能干细胞衍生肺类器官的培养基以及培养方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN113215080B (zh) 2022-08-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN113215080B (zh) 诱导人多能干细胞分化为肺泡细胞或肺泡类器官的培养基及方法
RU2359030C1 (ru) Способ получения эндотелиальных клеток из эмбриональных стволовых клеток человека (варианты)
Okada et al. Retinoic-acid-concentration-dependent acquisition of neural cell identity during in vitro differentiation of mouse embryonic stem cells
CN105121632B (zh) 由多能干细胞生成肝细胞和胆管细胞的方法
US20020146678A1 (en) Directed differentiation of embryonic cells
US20100062527A1 (en) Induction, propagation and isolation of liver progenitor cells
JPWO2014200030A1 (ja) 人工多能性幹細胞の選別方法および血球への分化誘導方法
Fang et al. Multipotency of Flk1+ CD34− progenitors derived from human fetal bone marrow
CN115975914B (zh) 利用化学小分子药物重编程诱导多能干细胞的方法
Chen et al. Directed hepatic differentiation from embryonic stem cells
US20130028872A1 (en) Composition and method for differentiation of human embryonic stem cells
EP3747991A1 (en) Cell induction method
CN113234664A (zh) 一种胰腺祖细胞的制备方法及其应用
Doss et al. Transcriptomic and phenotypic analysis of murine embryonic stem cell derived BMP2+ lineage cells: an insight into mesodermal patterning
EP3950933A1 (en) Cell population including pluripotent stem cells and production method thereof
CN116376808A (zh) 呼吸道类器官的体外诱导及其应用
WO2023164499A2 (en) Methods of making induced pluripotent stem cells
CN115232788A (zh) 一种定型内胚层细胞来源的间充质干细胞及其分化方法和应用
CN116064372A (zh) 一种制备人卵巢体细胞样细胞的方法
WO2021145402A1 (ja) 特定細胞に分化する能力を有する多能性幹細胞の製造方法およびその応用
CN117157388A (zh) 卵巢体细胞样细胞的制造方法及将灵长类多能干细胞分化诱导成卵巢体细胞样细胞的方法
Vassilieva et al. A system to enrich for primitive streak-derivatives, definitive endoderm and mesoderm, from pluripotent cells in culture
CN115956117A (zh) 人类人工多能干细胞的培养方法、人类人工多能干细胞培养物、以及脑类器官的制造方法
JP2024501130A (ja) ヒト多能性幹細胞由来の脊髄ニューロンサブタイプの効率的且つ迅速なスペシフィケーション
Roubal et al. Derivation of neural precursor cells from human embryonic stem cells for DNA methylomic analysis

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant