发明内容
针对目前二代燃料乙醇生产酿酒酵母菌株对木质纤维素水解液中混合抑制物抗性不足,以及菌株抑制物抗性与木糖代谢能力之间的拮抗现象,本发明要解决的问题是提供一株能够缓解高木糖利用与高鲁棒性拮抗的C6/C5共发酵酿酒酵母菌株及其应用。
本发明所述的能够缓解高木糖利用与高鲁棒性拮抗的C6/C5共发酵酿酒酵母,其特征在于:该菌株同时具备抑制物高鲁棒性和高木糖利用的特性,命名为酵酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)6M-15,菌株已于2020年08月17日保藏在“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号)”,保藏编号为CGMCC No.20436。
上述酵酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)6M-15是通过常温常压等离子体(ARTP)迭代诱变,并结合在高毒性(含多种抑制物)玉米秸秆预处理液和纯木糖培养基中交替驯化和筛选获得的,具体技术步骤如下:
(1)出发菌株在高毒性玉米秸秆预处理液中的生长测试:
出发菌株为申请人实验室前期构建的C6/C5共发酵酿酒酵母菌株LF1,该菌株已申报专利,专利申请号:201510747241.7,保藏号:CGMCC No.11331。
高毒性玉米秸秆预处理原液(以下简称预处理液)中主要糖组分为葡萄糖和木糖(浓度分别为14g L-1和43g L-1);主要抑制物为乙酸、5-羟甲基糠醛、糠醛及总酚类化合物(浓度分别为3.5g L-1、2.7g L-1、0.3g L-1和3.3g L-1)。
在YP培养基中添加不同比例的预处理液,考察其对菌株生长的影响。结果显示,预处理液添加比例为50%(v/v)时,菌株生长受到明显抑制,说明50%(v/v)预处理液中抑制物浓度能够对细胞造成显著的毒性。基于此,确定50%(v/v)预处理液的添加量可以作为后续筛选抑制物鲁棒性提高菌株的选择压力条件。
(2)ARTP诱变处理:
首先,绘制出发菌株LF1经ARTP诱变的致死率曲线。然后,根据致死率对LF1进行诱变处理,诱变后的菌体置于YPD培养基中孵育30min恢复生长。最后,将菌体置于含50%(v/v)预处理液的YP培养基中连续驯化培养30天。
(3)鲁棒性显著提高菌株的筛选:
取适量上述驯化后的菌体培养液,无菌水洗涤后涂布到含50%(v/v)预处理液的YP固体培养基进行培养。挑选直径较大的单菌落若干,通过Bioscreen全自动生长曲线分析仪测试上述菌落在50%(v/v)预处理液培养基中的生长能力。对生长较快的菌株于40mL的相同培养基条件下进行复筛,筛选得到鲁棒性最高的菌株,命名为LF1-6。
(4)多轮ARTP迭代诱变缓解木糖利用和鲁棒性之间的拮抗现象:
筛选得到的菌株LF1-6鲁棒性显著提高,但其木糖利用能力下降。为恢复其木糖利用能力,通过多轮ARTP迭代诱变,在纯木糖固体培养基中厌氧培养,挑选生长较快的单菌落测试其木糖利用能力,最终获得一株明显缓解木糖利用与鲁棒性之间拮抗现象的C6/C5共发酵酿酒酵母菌株,命名为酵酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)6M-15。
本发明所述能够缓解高木糖利用与高鲁棒性拮抗的C6/C5共发酵酿酒酵母在以秸秆类木质纤维素生物质水解液为原料发酵生产二代燃料乙醇中的应用。
上述的应用中,所述以秸秆类木质纤维素生物质水解液为原料摇瓶发酵生产二代燃料乙醇的方法是:
用玉米秸秆水解液代替YP培养基中的水,使发酵培养基中的组分及浓度是:20gL-1蛋白胨、10g L-1酵母粉、50.23±0.39g L-1葡萄糖、25.62±0.47g L-1木糖、0.93±0.13gL-1纤维二糖、1.03±0.31g L-1半乳糖、8.09±0.24g L-1阿拉伯糖、4.36±0.28g L-1乙酸、1.09±0.25g L-1 5-羟甲基糠醛、0.35±0.06g L-1糠醛、4.78±0.13g L-1总酚类化合物,pH3.5±0.2;发酵条件:培养温度为30±2℃,150mL限氧瓶中装有40mL培养基的加料比例,摇床转速为200±20rpm,橡胶塞封口,插上注射器针头控制限氧条件,初始接种OD值为10,限氧条件培养96±10小时消耗完全部葡萄糖和木糖,发酵产物离心过滤即得到含乙醇的上清液。
进一步优选以秸秆类木质纤维素生物质水解液为原料摇瓶发酵生产二代燃料乙醇的方法是:
用玉米秸秆水解液代替YP培养基中的水,使发酵培养基中的组分及浓度是:20gL-1蛋白胨、10g L-1酵母粉、50g L-1葡萄糖、25g L-1木糖、0.93g L-1纤维二糖、1.03g L-1半乳糖、8.09g L-1阿拉伯糖、4.36g L-1乙酸、1.09g L-15-羟甲基糠醛、0.35g L-1糠醛、4.78g L-1总酚类化合物,pH 3.5±0.1;发酵条件:培养温度为30℃,150mL限氧瓶中装有40mL培养基的加料比例,摇床转速为200rpm,橡胶塞封口,插上注射器针头控制限氧条件,初始接种OD值为10,限氧条件培养96±1小时消耗完全部葡萄糖和木糖,发酵产物离心过滤得到含乙醇的上清液。
实验证实:消耗完全部葡萄糖和木糖,糖醇转化率为0.43g g-1,达到理论值的85%。
本发明公开了一株能够缓解高木糖利用与高鲁棒性拮抗的酿酒酵母菌株6M-15,其在高毒性玉米秸秆水解液中表现出优良的发酵性能,具有应用于二代燃料乙醇工业化生产的极大潜力。本发明的创新之处在于,基于二代燃料乙醇生产菌株选育过程中凸显的高木糖利用与高鲁棒性之间的拮抗现象,采用新兴的ARTP诱变育种技术,同时结合厌氧筛选策略,经过多轮迭代诱变及筛选,最终使得菌株能够耐受多重抑制物的同时,还具备了C6/C5高效共发酵能力,并且实验证实本发明提供的菌株6M-15能够消耗完全部的葡萄糖和木糖生成乙醇,其糖醇转化率为0.43g g-1。本发明的菌株和采用的筛选技术策略为进一步选育发酵性能更优的二代燃料乙醇生产的酿酒酵母菌株提供了技术参考与基础。
具体实施方式
下面结合具体附图和实施例对本发明内容进行详细说明。如下所述例子仅是本发明的较佳实施方式而已,应该说明的是,下述说明仅仅是为了解释本发明,并非对本发明作任何形式上的限制,凡是依据本发明的技术实质对实施方式所做的任何简单修改,等同变化与修饰,均属于本发明技术方案的范围内。
下述实施例中,所使用的材料、试剂等,如无特殊说明,均从商业途径得到。
实施例1微生物培养基及基础培养条件确定
(1)酿酒酵母培养基
YP培养基:20g L-1蛋白胨,10g L-1酵母粉;YPD培养基:YP培养基添加20g L-1葡萄糖;YPX培养基:YP培养基添加40g L-1木糖;YPGX培养基:YP培养基添加40g L-1木糖,80g L-1葡萄糖。含预处理液YP培养基:根据实验需要添加不同比例的玉米秸秆预处理液;全水解液YP培养基:用水解液代替YP培养基的水。相应的固体培养基添加20g L-1琼脂粉。
(2)玉米秸秆预处理液及水解液的制备
将绝干的玉米秸秆粉粹成直径小于1mm的颗粒,100g秸秆颗粒与0.5%的稀硫酸按照固液比1:5混合,转入不锈钢管式反应器,加热至180℃反应40min,将反应物混合物离心后,所得上清液即为玉米秸秆预处理液(以下简称预处理液)。
将上述反应物混合物转移至摇瓶中,NaOH调节pH至4.8,添加纤维素酶20FPU/g进行酶解,反应温度为50℃,转速时间为200rpm,酶解48h,离心所得上清液即为玉米秸秆水解液(以下简称水解液)。
预处理液和水解液主要糖组份及抑制物浓度如表1所示。
表1玉米秸秆预处理液和水解液成分表
(3)基础培养条件
限氧摇瓶培养条件:培养温度为30℃,150mL限氧瓶中装有40mL培养基,摇床转速为200rpm,橡胶塞封口,插上注射器针头控制限氧条件,作三个平行发酵实验,每4h取样一次。
Bioscreen全自动生长曲线分析仪培养条件:培养体积为200μL,起始接种量OD600为0.2,培养温度为30℃,作三个平行发酵实验,每0.5h自动取样检测OD值。
实施例2原料组分及发酵产物检测方法确定
通过高效液相色谱法测定预处理液、水解液以及乙醇发酵时底物、产物的浓度。
取1mL样品,高速离心(13000r/min、5min)去除样品中的杂质或者菌体,取上清液用0.22μm微孔滤膜过滤,用高效液相色谱仪系统Waters e2695测定其成分含量。标样浓度:葡萄糖49.998g L-1、木糖48.891g L-1、纤维二糖9.857g L-1、半乳糖6.029g L-1、阿拉伯糖6.074g L-1、5-羟甲基糠醛0.630g L-1、糠醛1.042g L-1。色谱条件:①葡萄糖、木糖、阿拉伯糖、纤维二糖、半乳糖、乙酸和乙醇使用HPX-87H离子排阻色谱柱(Bio-Rad Aminex)进行分析,该色谱柱在45℃下以5mM H2SO4作为流动相,使用Waters 2414RI示差折光检测器;②糠醛和5-HMF使用WondaSil C18色谱柱(GL Sciences)在40℃下使用40%甲醇作为流动相,使用Waters 2998PDA紫外检测器。预处理液中总酚的含量通过福林试剂法检测,以香草醛为标准品,与Folin—Ciocalteu试剂反应,于725nm检测吸收值。
实施例3能够缓解高木糖利用与高鲁棒性拮抗的C6/C5共发酵酿酒酵母菌株的选育
出发菌株为申请人实验室前期构建的C6/C5共发酵酿酒酵母菌株LF1,该菌株已申报专利,专利申请号:201510747241.7,保藏号:CGMCC No.11331。通过常温常压等离子体(ARTP)迭代诱变,并结合在高毒性(含多种抑制物)玉米秸秆预处理液和纯木糖培养基中交替驯化和厌氧筛选,以期获得能够缓解高木糖利用与高鲁棒性拮抗的C6/C5共发酵酿酒酵母菌株,具体技术步骤如下:
(1)确定显著抑制出发菌株生长的高毒性玉米秸秆预处理液的浓度
测试培养基中预处理液的添加量对出发菌株的生长影响。酿酒酵母YP培养基分别添加0%(对照)、10%、30%、50%(v/v)的预处理液,出发菌株LF1的初始接种OD600为0.2,接种体积40mL,培养温度为30℃,转速200rpm,培养24h。结果如图1所示,预处理液添加比例为50%(v/v)时,菌株生长受到明显抑制。基于此,确定将培养基中50%(v/v)预处理液添加量作为后续实验中筛选鲁棒性提高菌株的压力条件。
(2)ARTP诱变处理
①测试不同辐射时间对出发菌株致死率的影响。挑取出发菌株单菌落培养至对数生长中期,离心收集菌液,用无菌水洗涤2~3次后,适量稀释制成OD600值在0.6~0.8的菌悬液,取10μL菌悬液涂布在无菌金属载片上,在ARTP诱变育种仪中设置0s(对照)、15s、30s、45s四个时间梯度,每个梯度做三个平行样品,进行诱变处理。全部样品处理完毕,用无菌镊子将载片分别放至装有1mL无菌水的EP管中,使用振荡器振荡5min,把附着在载片上的细胞洗脱到无菌水中,形成新的菌悬液,并浓缩至100μL,全部涂布YPD平板,30℃培养,待长出菌落后,根据实验组与对照组的菌落数量差异,计算致死率。
②确定诱变条件。在120W的功率、气体流量10SLM的条件下,照射15s时,出发菌株的致死率为97.2%,照射30s时没有菌株存活(见图2),因此,以15s诱变时间、120W功率、10SLM气量作为ARTP诱变育种的条件。
③根据②中确定的诱变条件,诱变后的出发菌株置于YPD培养基中孵育30min恢复生长。最后,将菌体置于含50%(v/v)预处理液的YP培养基中驯化培养。以细胞生物量倍增为转接指标,经过约30天的转接驯化培养,细胞生物量倍增时间显著缩短并维持不变,将细胞涂布在含50%(v/v)预处理液的YP固体培养基中分离单菌落。
(3)鲁棒性显著提高菌株的筛选
将(2)③中的细胞涂布在含50%(v/v)预处理液的YP固体培养基中,30℃培养,菌落长出后,挑选相对直径较大的菌落,通过Bioscreen全自动生长曲线分析仪(Oy GrowthCurves Ab Ltd,Helsinki,Finland)测试突变株在50%(v/v)预处理液YP培养基中的生长性能(见图3),培养体积为200μL,起始接种量OD600为0.2,培养温度为30℃。对生长较快的菌株于40mL相同培养基条件下进行复筛,筛选得到鲁棒性最高的菌株,命名为LF1-6。
在50%(v/v)预处理液培养基中分批发酵测试,发酵条件如下所述:培养温度为30℃,150mL限氧瓶中装有40mL 50%(v/v)预处理液培养基,摇床转速为200rpm,橡胶塞封口,插上注射器针头控制限氧条件,初始接种OD值为0.2,每4h取一次样,发酵实验重复三次,数据取平均值进行计算。结果显示(见图4a),LF1-6的鲁棒性显著提升,而出发菌株几乎不长。但是在40g L-1的木糖培养基中,突变株LF1-6的木糖利用速率(见图4c)和乙醇生成速率(见图4d)均明显低于出发菌株LF1,高木糖利用与高鲁棒性之间呈现拮抗关系。将突变株LF1-6在50%(v/v)预处理液培养基和纯木糖培养基中交替驯化,筛选得到一株木糖代谢能力提高的菌株,命名为LF1-6M,其在相同条件的木糖培养基中发酵20h,其OD600提升了44.23%,木糖利用率提升了6.58%,但与出发菌株LF1的木糖利用率相比,差距依然很大(42.4%vs95.6%),拮抗问题没能有效解决(见图5a和b)。
(4)多轮迭代ARTP诱变和厌氧筛选缓解木糖利用和鲁棒性拮抗的菌株
针对上述拮抗问题,以LF1-6M为出发菌株,进行多轮迭代ARTP诱变,在纯木糖固体YPX培养基中厌氧培养,并在含有50%(v/v)预处理液的YP培养基和YPX培养基中交替驯化,以生长OD600值为检测指标,驯化至细胞生物量倍增时间显著缩短并维持不变。取适量最终菌悬液涂布到含有50%的YP固体培养基上,待菌株长出后挑选直径较大的菌落测试木糖利用能力和鲁棒性,最终筛选得到突变株鲁棒性和木糖代谢同步提高的菌株,命名为酵酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)6M-15,菌株已于2020年08月17日保藏在“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号)”,保藏编号为CGMCC No.20436。
实施例4不同突变株在YPX和YPGX培养基中的发酵性能及乙醇产量比较
(1)培养基:YPX培养基:20g L-1蛋白胨,10g L-1酵母粉,40g L-1木糖;YPGX培养基:20g L-1蛋白胨,10g L-1酵母粉,80g L-1葡萄糖,40g L-1木糖。
(2)菌种活化:挑取待测菌株单菌落接种到5mL YPX液体培养基,30℃,200rpm培养24小时,再转接至10mL YPX液体培养基二次活化12小时。将活化菌种分别接种至盛有40mLYPX和YPGX液体培养基的150mL的三角瓶中发酵培养。
(3)发酵条件:培养温度为30℃,150mL限氧瓶中装有40mL培养基,摇床转速为200rpm,橡胶塞封口,插上注射器针头控制限氧条件,初始接种OD值为0.2,每4h取样一次检测OD值,样品离心过滤得上清液,采用实施例2所述HPLC方法检测糖组分和发酵产物的变化,每菌株作三个平行实验。
发酵结果显示:
在纯木糖YPX培养基中,突变株的木糖利用能力逐渐提升(见图5),LF1≈6M-15>LF1-6M,发酵24h时,6M-15能利用全部的木糖,基本达到了出发菌株LF1的木糖代谢水平,且乙醇产量最高点的糖醇转化率达到理论值的90.98%。进一步地,在80g L-1葡萄糖和40g L-1木糖的混糖YPGX培养基中,6M-15展现出优良的发酵性能(见图6)。6M-15在28h内可以消耗完全部糖组分,相比出发菌株LF1,发酵时间缩短了8h(28h vs.36h),乙醇浓度最高可达54.98g L-1,糖醇转化率达到理论值的91.37%。从上述结果来看,通过多轮迭代ARTP诱变和厌氧筛选,高鲁棒性菌株的木糖代谢能力得到恢复。
实施例5出发菌株LF1和突变株6M-15在玉米秸秆水解液YP培养基中的乙醇发酵性能
(1)玉米秸秆水解液YP培养基:用玉米秸秆水解液代替YP培养基(20g L-1蛋白胨,10g L-1酵母粉)中水。培养基中主要糖组分及浓度:50g L-1葡萄糖和25g L-1木糖,以及主要抑制物及浓度:4.36g L-1乙酸、1.09g L-15-羟甲基糠醛、0.35g L-1糠醛及4.78g L-1总酚类化合物,pH~3.5。
(2)菌种活化过程如实施例4所述。
(3)发酵条件如实施例4所述,初始接种OD值为10,每12h取样一次,检测方法如实施例2所述。
发酵结果显示:
在低pH(~3.5)、含多种较高浓度抑制物的全水解液YP培养基发酵过程中,出发菌株LF1的生长受到了严重抑制,葡萄糖代谢速率缓慢,木糖几乎不被利用,发酵结束时,LF1只利用了50%的葡萄糖,且仅产生大约7.5g L-1的乙醇。而突变株6M-15的生长几乎不受影响,葡萄糖利用速率较快,24h即可利用全部葡萄糖,同时木糖同步利用,发酵结束时,6M-15可以消耗完全部的葡萄糖和木糖,乙醇产量为30.53g L-1,糖醇转化率为0.43g g-1,达到了理论值的85%(见图7)。
当秸秆类生物水解液中乙酸、5-羟甲基糠醛、糠醛以及总酚化合物等主要抑制物浓度不高于上述浓度,以及pH不低于3.5时,该菌株生长优势明显,葡萄糖和木糖转化产乙醇得率不低于0.43g g-1。
从上述结果来看,本发明最终筛选得到的突变株6M-15同时具备了高木糖利用速率和对水解液中抑制物高鲁棒性的特性,显著缓解了以木质纤维类生物质水解液为原料生产二代燃料乙醇的酿酒酵母菌株选育过程中凸显的高木糖利用与高鲁棒性拮抗的问题。总起来讲,本发明选育的6M-15菌株(保藏编号为CGMCC No.20436)在具备C6/C5共发酵能力的同时,还具备抵抗木质纤维类生物质水解液中多重抑制物的能力,是一株应用于二代燃料乙醇工业化生产的潜力菌株,同时也为进一步选育发酵性能更优的二代燃料乙醇生产的酿酒酵母菌株提供了优良的底盘细胞。
实施例6本发明所述能够缓解高木糖利用与高鲁棒性拮抗的C6/C5共发酵酿酒酵母在以秸秆类木质纤维素生物质水解液为原料发酵生产二代燃料乙醇中的应用。
其中,所述以秸秆类木质纤维素生物质水解液为原料摇瓶发酵生产二代燃料乙醇的方法是:
用玉米秸秆水解液代替YP培养基中的水,使发酵培养基中的组分及浓度是:20gL-1蛋白胨、10g L-1酵母粉、50g L-1葡萄糖、25g L-1木糖、0.93g L-1纤维二糖、1.03g L-1半乳糖、8.09g L-1阿拉伯糖、4.36g L-1乙酸、1.09g L-15-羟甲基糠醛、0.35g L-1糠醛、4.78g L-1总酚类化合物,pH 3.5±0.1;发酵条件:培养温度为30℃,150mL限氧瓶中装有40mL培养基的加料比例,摇床转速为200rpm,橡胶塞封口,插上注射器针头控制限氧条件,初始接种OD值为10,限氧条件培养96±1小时消耗完全部葡萄糖和木糖,发酵产物离心过滤得到含乙醇的上清液。
具体操作如实施例4和5所述。