CN111705045A - 一种内切木聚糖酶突变体s35f07及其制备方法和应用 - Google Patents

一种内切木聚糖酶突变体s35f07及其制备方法和应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种内切木聚糖酶突变体S35F07及其制备方法和应用,该突变体S35F07具有如SEQ ID NO.1所示的氨基酸序列,与野生酶相比,其在10.0mM的CaCl2、MgSO4、ZnSO4、CoCl2、NiSO4、FeCl3、FeSO4、EDTA、Pb(CH3COO)2、β‑Mercaptoethanol中的活性、在3.0~30.0%(w/v)的NaCl和Na2SO4中的活性、在15.0~30.0%(w/v)的NaNO3中的活性得到了改良。本发明的突变内切木聚糖酶S35F07可应用于高温和/或高盐环境下的食品加工和饲料添加剂等生物技术领域。

Description

一种内切木聚糖酶突变体S35F07及其制备方法和应用
技术领域
本发明涉及一种内切木聚糖酶突变体,具体涉及一种内切木聚糖酶突变体S35F07及其制备方法和应用。
背景技术
半纤维素是自然界中仅次于纤维素的异质多聚体,广泛存在于绿色植物细胞壁中。其中,木聚糖在半纤维素中的含量最多,可高达占植物细胞干重的三分之一。内切木聚糖酶能够随机降解由木糖残基通过β-1,4糖苷键连接形成木聚糖主链,生产低聚木糖和/或木糖。因此,木聚糖酶在涉及到半纤维素转化的食品、饲料、造纸、环保及能源等生物技术领域发挥着重要的作用,尤其是在食品和饲料行业中(Chakdar et al.3Biotech,2016,6:150.)。
良好热活性和盐抗性的酶能够在复杂的催化环境影响因素中具有更好的适用性。高温和高盐环境下食品加工或发酵,可以防止微生物的污染、节省灭菌等所消耗的能源;饲料涉及高温制粒过程,作为饲料中的酶制剂需要耐受高温并保持活性(Warden和Williams,Nat Commun,2015,6:10278.)。目前,已知中温木聚糖酶居多,缺乏高浓度盐抗性,在高温和/或高盐环境下酶活力不可逆的丧失。木聚糖酶高温和/或高盐的适应性的不足,限制其在食品和饲料领域的进一步应用。
发明内容
本发明的目的是提供一种内切木聚糖酶突变体S35F07及其制备方法和应用,该突变体S35F07具有耐高温和高盐的特性,能够对NaCl、Na2SO4和NaNO3具有耐受性,比野生酶rXynAGN16L酶活力高,能够应用于食品和饲料领域。
为了达到上述目的,本发明提供了一种内切木聚糖酶突变体S35F07,该突变体S35F07具有如SEQ ID NO.1所示的氨基酸序列。
本发明的另一目的是提供一种所述的内切木聚糖酶突变体S35F07的编码基因。
优选地,所述编码基因s35f07具有如SEQ ID No.2所示的核苷酸序列。
本发明的另一目的是提供一种包含所述的编码基因s35f07的重组载体。
优选地,所述重组载体采用的表达载体为pEasy-E2。
本发明的另一目的是提供一种包含所述的编码基因s35f07的重组菌。
优选地,所述重组菌采用的菌为大肠杆菌BL21-Gold(DE3)。
本发明的另一目的是提供一种所述的内切木聚糖酶突变体S35F07的制备方法,该方法包含:
将所述的编码基因s35f07和表达载体pEasy-E2相连接,并将连接产物转化大肠杆菌BL21-Gold(DE3),获得包含编码基因s35f07的重组菌株;培养所述重组菌株,诱导内切木聚糖酶突变体S35F07表达。
优选地,所述重组菌株的培养采用含100μg mL-1Amp的LB培养液,振荡培养,当OD600为0.6~1.0时,加入IPTG进行诱导。
本发明的另一目的是提供一种所述的内切木聚糖酶突变体S35F07在食品和饲料领域中的应用。
本发明的内切木聚糖酶突变体S35F07及其制备方法和应用,具有以下优点:
与野生酶相比,本发明的突变内切木聚糖酶S35F07的热活性和盐适应性发生了改变。纯化的突变酶S35F07、野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的最适pH分别为4.5、5.5和6.0,最适温度分别为80℃、50℃和75℃。在10.0mM的CaCl2、MgSO4、ZnSO4、CoCl2、NiSO4、FeCl3、FeSO4、EDTA、Pb(CH3COO)2、β-Mercaptoethanol中,突变体S35F07的酶活力比野生酶rXynAGN16L的酶活力分别高11~69%,比野生酶rXynAHJ3的酶活力分别高27~71%;在5.0~30.0%(w/v)的NaCl中,突变体S35F07酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高14~64%,比rXynAHJ3酶活力分别高28~73%;在15.0~30.0%(w/v)的NaNO3中,突变体S35F07酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高13~21%,比rXynAHJ3酶活力分别高28~38%;在3.0~30.0%(w/v)的Na2SO4中,突变体S35F07酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高4~38%,比rXynAHJ3酶活力分别高7~31%。
本发明的突变内切木聚糖酶S35F07可应用于高温和/或高盐环境下的食品加工和饲料添加剂等生物技术领域。
附图说明
图1为在大肠杆菌中表达的重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S35F07的SDS-PAGE分析(CK:蛋白质Marker)。
图2为重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S35F07的最适温度。
图3为重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S35F07的50℃的温度稳定性。
图4为重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S35F07在NaCl中的活性。
图5为重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S35F07在NaNO3中的活性。
图6为重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S35F07在Na2SO4中的活性。
具体实施方式
下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
本发明实验采用的材料和试剂具体如下:
菌株及载体:大肠杆菌Escherichia coli BL21-Gold(DE3)和表达载体pEasy-E2购自北京全式金生物技术有限公司;节杆菌(Arthrobacter sp.)和列舍瓦里尔菌(Lechevalieria sp.)由云南师范大学提供。
酶类及其它生化试剂:DNA聚合酶及dNTP购自北京全式金生物技术有限公司,山毛榉木聚糖购自Sigma公司,玉米芯木聚糖购自上海源叶生物科技有限公司,易错PCR试剂盒购自北京天恩泽基因科技有限公司,细菌基因组提取试剂盒购自GENE STAR公司,PopCultureTM细胞裂解液购自德国默克集团有限公司,其它都为国产试剂(均可从普通生化试剂公司购买得到)。
培养基:采用LB培养基,其成分为:蛋白胨(Peptone)10g、酵母抽提物(Yeastextract)5g和NaCl 10g,加蒸馏水至1000mL,pH自然(约为7)。固体培养基在此基础上加2.0%(w/v)琼脂。
说明:以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法,均参照《分子克隆实验指南》(第三版)J.萨姆布鲁克一书中所列的具体方法进行,或者按照试剂盒和产品说明书进行。
实施例1突变文库的构建
突变文库的构建过程具体如下:
(1)按照GENE STAR公司细菌基因组提取试剂盒说明书提取节杆菌(Arthrobactersp.)和列舍瓦里尔菌(Lechevalieria sp.)基因组;
(2)根据GenBank记录的节杆菌(Arthrobacter sp.)内切木聚糖酶核苷酸序列JQ863105(SEQ ID No.3),设计引物5'-GTGCAGCCGGAGGAAAAACG-3'(SEQ ID No.5)和5'-GATGAAGGCAGGATCCGGGGT-3'(SEQ ID No.6),以节杆菌(Arthrobacter sp.)基因组为模板进行PCR扩增,获得内切木聚糖酶基因xynAGN16L;另根据GenBank记录的列舍瓦里尔菌(Lechevalieria sp.)内切木聚糖酶核苷酸序列JF745868(SEQ ID No.4),设计引物5'-GTCTCGGCCCCGCCGGACGT-3'(SEQ ID No.7)和5'-GGCTCGCTTCGCCAGCGTGG-3'(SEQ IDNo.8),以列舍瓦里尔菌(Lechevalieria sp.)基因组为模板进行PCR扩增,获得内切木聚糖酶基因xynAHJ3;PCR反应参数为:94℃变性5min;然后94℃变性30sec,55℃退火30sec,72℃延伸1min 30sec,30个循环后72℃保温10min。
(3)以上述PCR产物为模板,利用易错PCR试剂盒,按照试剂盒说明书进行基因突变;
(4)用超声打断仪Biorupter对易错PCR产物进行超声随机打断,打断产物经2%琼脂糖凝胶电泳后切胶纯化;
(5)纯化后的小片段DNA自身互为引物和模板进行DNA家族改组(DNAFamilyshuffling)PCR,PCR反应参数为:96℃变性1min 30sec;然后94℃变性30sec,依次65℃退火90sec、62℃退火90sec、59℃退火90sec、56℃退火90sec、53℃退火90sec、50℃退火90sec、47℃退火90sec、44℃退火90sec、41℃退火90sec,72℃延伸1min 30sec,35个循环后72℃保温7min;
(6)以纯化的DNA家族改组PCR产物为模板,用内切木聚糖酶基因xynAHJ3和xynAGN16L扩增引物和反应条件进行序列全长扩增,扩增产物含突变序列和未突变序列;
(7)将序列全长扩增产物和表达载体pEasy-E2相连接,并将连接产物转化大肠杆菌BL21-Gold(DE3),经过夜培养,从转化平板中挑取单菌落于含有150μL液体LB培养液(含100μg mL-1Amp,Amp为氨苄西林)的96孔细胞培养板中,于37℃,快速振荡培养约16h后,每孔加入40%(w/w)的甘油50μL,混匀后于-70℃保存。
实施例2突变体的筛选
突变体的筛选过程,具体如下:
(1)从保存的突变文库的96孔细胞培养板中取2μL菌液,接种于含200μL/孔液体LB培养液(含100μg mL-1Amp)的96深孔板中,于37℃,200rpm振荡培养至OD600>1.0(约20h),加入含2mM IPTG和100μg mL-1Amp的200μL液体LB培养液,于20℃,160rpm过夜诱导;
(2)诱导结束后加入40μL/孔的PopCultureTM细胞裂解液,在25℃下,震荡裂解细胞30min;
(3)取50μL含1.0%(w/v)山毛榉木聚糖的McIlvaine缓冲液(pH=7.0)及50μL细胞裂解产物,在96深孔板中于70℃恒温箱中反应2h。反应结束后加入150μL DNS试剂终止反应,于140℃恒温箱中保温20min以上并冷却至室温,使用酶标仪读取OD540nm的值,以只含有pEASY-E2空载体的E.coli BL21-Gold(DE3)菌株裂解液反应组作为对照;
(4)取有内切木聚糖酶活性的突变体细胞裂解产物10μL,另取90μL含0.5%(w/v)山毛榉木聚糖的McIlvaine缓冲液(pH=7.0),加入10%(w/v)和25%(w/v)的NaCl,在96深孔板中于70℃恒温箱中反应10min;
(5)反应结束后加入150μL DNS试剂终止反应,于140℃恒温箱中保温20min以上并冷却至室温,使用酶标仪读取OD540nm的值,以不含NaCl的对应突变体裂解液反应组作为对照;
(6)比较突变体与野生重组酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的酶活大小,获得在10%(w/v)和25%(w/v)NaCl中酶活提高的1个突变体,编号为S35F07,该突变体氨基酸序列如SEQID NO.1所示,其是两个野生酶的改组杂合体,该突变体核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
实施例3突变体S35F07及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的酶制备
将含突变体S35F07、野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的重组菌株以0.1%的接种量分别接种于LB(含100μg mL-1Amp)培养液中,37℃快速振荡16h。
然后,将此活化的菌液以1%接种量接种到新鲜的LB(含100μg mL-1Amp)培养液中,快速振荡培养约2–3h(OD600达到0.6-1.0)后,加入终浓度0.1mM的IPTG(异丙基硫代半乳糖苷)进行诱导,于20℃继续振荡培养约20h。12000rpm离心5min,收集菌体。用适量的pH=7.0Tris–HCl缓冲液悬浮菌体后,于低温水浴下超声波破碎菌体。
以上胞内浓缩的粗酶液经13,000rpm离心10min后,吸取上清并用Nickel-NTAAgarose和0–500mM的咪唑分别亲和和纯化目的蛋白。
SDS-PAGE结果(参见图1)表明,突变酶S35F07、野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3都获得了纯化,产物为单一条带。
实施例4突变体S35F07及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶的性质测定
1、突变体S35F07及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶的活性分析
活性测定方法采用3,5-二硝基水杨酸(DNS)法:将底物溶于缓冲液中,使其终浓度为0.5%(w/v);反应体系含100μL适量酶液,900μL底物;底物在反应温度下预热5min后,加入酶液后再反应10min,然后加1.5mL DNS终止反应,沸水煮5min,冷却至室温后在540nm波长下测定OD值;1个酶活单位(U)定义为在给定的条件下每分钟分解底物产生1μmol还原糖(以木糖计)所需的酶量。
2、突变体S35F07及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶的pH活性和pH稳定性测定
酶的最适pH测定:将酶液置于37℃下和pH=4.0~12.0的缓冲液中进行酶促反应。酶的pH稳定性测定:将酶液置于pH=3.0~12.0的缓冲液中,在37℃下处理1h,然后在pH=7.0及37℃下进行酶促反应,以未处理的酶液作为对照。缓冲液为:McIlvaine buffer(pH=3.0–8.0)和0.1M glycine–NaOH(pH=9.0–12.0)。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:突变酶S35F07、野生纯化酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的最适pH分别为4.5、5.5和6.0;在pH=5.5~10时,突变体S35F07、野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3稳定。
3、突变体S35F07及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶的热活性及热稳定性测定
酶的热活性测定:在pH=7.0的缓冲液中,于0~90℃下进行酶促反应。酶的热稳定性测定:将同样酶量的酶液置于37℃处理0~60min后,在pH=7.0及37℃下进行酶促反应,以未处理的酶液作为对照。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:S35F07、rXynAGN16L和rXynAHJ3的最适温度分别为80℃、50℃和75℃,在70℃分别具有98.5%、17.7%和97.7%的酶活(参见图2);S35F07和rXynAHJ3在50℃时稳定,rXynAGN16L在50℃时极不稳定(参见图3)。
4、不同金属离子及化学试剂对突变体S35F07及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶活力的影响
在酶促反应体系中加入10.0mM的金属离子及化学试剂,研究其对酶活性的影响。在37℃及pH=7.0条件下,以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物测定酶活性。
结果(如下表1所示)表明:10.0mM的HgCl2可完全抑制S35F07、rXynAGN16L和rXynAHJ3;除10.0mM的CuSO4外,在其余被测10mM金属离子及化学试剂中,突变体S35F07酶活力比野生酶rXynAGN16L的酶活力分别高11~69%,比野生酶rXynAHJ3的酶活力分别高27~71%。
表1金属离子及化学试剂对突变体S35F07及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3活力的影响
Figure BDA0002584389340000081
5、突变体S35F07及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶在NaCl、NaNO3和Na2SO4中的活性
(1)酶在NaCl中的活性测定
在酶促反应体系中加入3.0~30.0%(w/v)NaCl,于pH7.0及37℃下进行酶促反应。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:在5.0~30.0%(w/v)的NaCl中,突变体S35F07酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高14~64%,比rXynAHJ3酶活力分别高28-73%(参见图4)。
(2)酶在NaNO3中的活性测定
在酶促反应体系中加入3.0~30.0%(w/v)NaNO3,于pH7.0及37℃下进行酶促反应。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:在15.0~30.0%(w/v)的NaNO3中,突变体S35F07酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高13~21%,比rXynAHJ3酶活力分别高28~38%(参见图5)。
(3)酶在Na2SO4中的活性测定
在酶促反应体系中加入3.0~30.0%(w/v)Na2SO4,于pH7.0及37℃下进行酶促反应。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:在3.0~30.0%(w/v)的Na2SO4中,突变体S35F07酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高4~38%,比rXynAHJ3酶活力分别高7~31%(参见图6)。
尽管本发明的内容已经通过上述优选实施例作了详细介绍,但应当认识到上述的描述不应被认为是对本发明的限制。在本领域技术人员阅读了上述内容后,对于本发明的多种修改和替代都将是显而易见的。因此,本发明的保护范围应由所附的权利要求来限定。
序列表
<110> 云南师范大学
<120> 一种内切木聚糖酶突变体S35F07及其制备方法和应用
<160> 8
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 342
<212> PRT
<213> S35F07
<400> 1
Val Gln Pro Asp Val Ser Gly His Lys Gln Thr Leu Arg Ser Ala Ala
1 5 10 15
Pro Lys Gly Phe His Ile Gly Thr Ala Val Ala Gly Gly Gly His His
20 25 30
Glu Asn Gln Pro Tyr Pro Asp Pro Phe Thr Ser Asp Ile Glu Tyr Arg
35 40 45
Lys Val Leu Ala Ala Glu Phe Asn Ser Val Ser Pro Glu Asn Gln Met
50 55 60
Lys Trp Glu Tyr Ile His Pro Glu Arg Gly Arg Tyr Asn Phe Gly Met
65 70 75 80
Ala Asp Ala Ile Val Arg Phe Ala Lys Gln Asn Arg Gln Val Val Arg
85 90 95
Gly His Thr Leu Met Trp His Ser Gln Asn Pro Glu Trp Leu Glu Gln
100 105 110
Gly Asp Phe Thr Ala Ala Glu Leu Arg Glu Ile Leu Arg Glu His Ile
115 120 125
Met Thr Val Val Gly Arg Tyr Lys Gly Lys Val Gln Gln Trp Asp Val
130 135 140
Ala Asn Glu Ile Phe Thr Asp Ala Gly Ala Leu Arg Thr Thr Glu Asn
145 150 155 160
Ile Trp Ile Arg Glu Leu Gly Pro Gly Ile Val Ala Asp Ala Phe Arg
165 170 175
Trp Ala His Gln Ala Asp Pro Lys Ala Lys Leu Phe Phe Asn Asp Tyr
180 185 190
Asn Val Glu Ser Val Asn Ala Lys Ser Asp Ala Tyr Tyr Ala Leu Ile
195 200 205
Lys Glu Leu Arg Ala Ala Gly Val Pro Val His Gly Phe Ser Ala Gln
210 215 220
Ala His Leu Ser Leu Asp Tyr Gly Phe Pro Asp Asp Leu Glu Arg Asn
225 230 235 240
Leu Lys Arg Phe Ala Asp Leu Arg Leu Glu Thr Ala Ile Thr Glu Leu
245 250 255
Asp Val Arg Met Thr Leu Pro Ala Ser Gly Val Pro Thr Ala Ala Gln
260 265 270
Leu Gln Gln Gln Ala Asp Tyr Tyr Gln Arg Thr Leu Ala Ala Cys Leu
275 280 285
Lys Val Arg Thr Cys Lys Ser Phe Thr Ile Trp Gly Phe Thr Asp Lys
290 295 300
Tyr Ser Trp Val Pro Val Phe Phe Gln Gly Gln Gly Ala Ala Thr Val
305 310 315 320
Met Trp Asn Asp Phe Gly Arg Lys Gln Ala Tyr Tyr Ala Leu Arg Ser
325 330 335
Thr Leu Ala Lys Arg Ala
340
<210> 2
<211> 1026
<212> DNA
<213> s35f07
<400> 2
gtgcagccgg acgtgagcgg ccacaaacag acgttgcgct cggcagcgcc caagggtttc 60
cacatcggca cggccgtcgc gggcggcggc caccacgaga accagccgta cccggacccc 120
ttcacctcgg acatcgagta ccggaaggtg ctggccgcgg agttcaactc ggtctcgccc 180
gagaaccaga tgaagtggga gtacatccac ccggagcgcg gccggtacaa cttcggcatg 240
gccgacgcca tcgtccggtt cgccaagcag aaccggcagg tggtccgcgg gcacaccctg 300
atgtggcaca gccagaaccc ggagtggctg gagcagggcg acttcaccgc ggccgaactg 360
cgcgagatcc tgcgcgagca catcatgacc gtggtcggcc ggtacaaggg caaggtccag 420
cagtgggacg tggccaacga gatcttcacc gacgccggcg ctctgcggac cacggagaac 480
atctggatcc gtgaactcgg tccgggcatc gtggcggacg cgttccgctg ggcgcaccag 540
gccgacccca aggcgaagct gttcttcaac gactacaacg tcgaaagcgt caacgcgaag 600
agcgacgcgt actacgcgct gatcaaggag ctgcgcgccg cgggtgtgcc cgtgcacggc 660
ttctccgccc aggcgcacct cagcctggac tacggcttcc cggacgacct ggagcgcaac 720
ctgaagcggt tcgccgacct ccggctggag accgcgatca ccgagctcga cgtgcggatg 780
accctgcccg cgagcggcgt gccgacggcg gcccagctgc agcagcaggc cgactactac 840
cagcgcacgc tcgcggcctg cctgaaggtc aggacctgca agtcgttcac catctggggc 900
ttcacggaca agtactcgtg ggttccggtc ttcttccagg ggcagggtgc ggccacggtg 960
atgtggaacg acttcggtcg caagcaggcg tactacgcgc tgcggtccac gctggcgaag 1020
cgagcc 1026
<210> 3
<211> 3639
<212> DNA
<213> JQ863105
<400> 3
atgaaggttc cgcgtttatt aaccgctctg gctgtaacct cggcgctgct gctgccggcg 60
gttccggcgc ttgccgtgca gccggaggaa aaacgtcctc cgggccagtc caaacaggac 120
acgctgcgcc gtgcagcccc caaagacttc aagattggtt ccgccgttgc gggcggaggc 180
catcatgagg cccaggacta ccccgatcct tttacgttcg ataaggaata ccgccggcaa 240
ctggccgccg agttcaattc ggtgtcaccg gagaaccagt cgaagtggga attcatccac 300
ccggaaaagg atgtctaccg cttcacggaa atggacgcca ttgtccgctc cgcccaaaaa 360
aacaagcagg tggtgcgcgg ccacaccctc ttttggcaca gccagaatcc tcagtggctg 420
gagcagggaa acttctccaa agaagaactg cgcggaatcc tcaaagacca cgtccagact 480
gtagtgggca ggtacgccgg caaaatccag cagtgggacg tcgccaacga aatcttcaat 540
gatgacggaa ccctgcgcgc caccgagaac atttggcttc gtgaactggg cccggacatc 600
attgccgacg ttttccgctg ggcgcacgag gccgacccca aggccaagct gttcttcaat 660
gatttcggcg ttgaggacat taatgccaag agtgatgcct acctcgaact catcccccgg 720
cttcaggcac agggcgtgca ggttgacggg tttgccatcc agggccatct gagcacccgc 780
tacggtttcc cttcagggct gcaggccaac ctgcagcgct ttgacgacct ggggctggaa 840
actgccatta cggaaataga cgtccgcatg gatattgcag ccggcacgga gccgacggcc 900
gagcagcttg agcagcaggc ggactactac cagcgcgccc ttgaggcctg cctgtccgtt 960
gcagactgca attcgttcac catttggggc ttcacggaca agtactcgtg ggttccggtc 1020
ttctttgccg gcgagggcga ggcgacagtc atggaggaag acttcacgcg caagcctgcc 1080
tactttgccc tgcgggaaac actgaagcgt ccggtgccga agcccgacga cggcggcccg 1140
tcccagccaa ccccggatcc tgccttcatc cccggcggcg ccgccaaccc gacagcgacg 1200
ccgatcgcag catcccgcgg caccggcaac tccgtggcgc tcaccttcga tgacgggccc 1260
gagcccggcg aaaccacagc tgtcctcgat ttcctcaagg acaagggcat cactgccacc 1320
ttctgcgtca tcggagcgaa catccaggcc cccggcggag ccgagctggt gaagcgcatg 1380
gtcgaggagg gccacacgct gtgcaaccac ggcaccacgt atgcggacat gggttcgtgg 1440
acccaggaac agattaaggc cgacctggtg gaaaacctcc gcatcatccg tgaagccgcc 1500
ggcacgcctg atctgcaggt cccctatttc cgggcaccga acggaagctg gggagtcacg 1560
ggcgaagtag ccgcagcgct tggtatgcag ccgctgggcc tgggcaatgt catctttgac 1620
tgggacggca atgacctcag cgaagccacc ctcacggcaa acctccgtgc cgcgttcacc 1680
cccggcgcgg tggtgctggc gcacgtcggc ggcggtgacc ggaccaacac agtgaaggca 1740
gttacgacgg tcgtgaccga aaagctcgcc caggggtgga cgttcgccct tccgcagggc 1800
ggtgccccgg aggaaccttc cggcggtgtg ccctcggact tcgagaccgg aaccgacggc 1860
tggaccgcgc gcggggactc agtggcggtc aacctcagct ccgacgcccg caccggatcc 1920
ggaagcctgc tggtcacgaa ccggacccag gactggcacg gtgccgcact cgacgtcacg 1980
ggcgccctac cggtcggctc ggccgtaaag atgtccgtct gggccaagct cgcccccggg 2040
cagcagccgg cggcactgaa aatgtccgtt cagcgggaca acggcggcgg gagtgcctat 2100
gaaggcgttg ccggagccgg ggcttcggtc accgccgacg gctggaccga acttgccggg 2160
acttacaccc tcggcgcagc agcggacaaa gcccaggtgt acatcgaagg tgctgtcggc 2220
gtggggttcc tgctcgatga cttcagcctc gccgcatatg ttgagcctcc ccttcaggag 2280
gacatacccg ggttgaaaga cgtccttggc ctgcagggca tcgagcacgt gggagcagca 2340
atcgacgcac gcgagacagc gggcaccgca gcgaacctcc tgcggaaaca cttcaatgcc 2400
ttcactcccg agaacgccgg caggcccgag agcgtgcagc cggtggaggg tcagttcacc 2460
cttacccagc tggaccagct gctggacttc gcagccgcca acaatgtcaa ggtgtacgga 2520
catgtgctgg tctggcattc ccagacccct gagtggttct tcaaggacgg gacccgggac 2580
ctgaccggca accggtccga ccgggcgctg ctgagggcac gcatggaggc acatatcaag 2640
ggcatcgcag atcacatcaa tgcccgctac ccggaggggg acagccccat ttgggcctgg 2700
gacgttgtca acgagaccat tgcggacggt gacacggcca acccgcacga catgcgggac 2760
agccgctggt tccaggtcct cggtgaacgt tttgtcgatg atgccttccg tctcgcggac 2820
aagtacttcc cggaggcaaa gctcttcatc aacgactaca acaccgagat gccccagaaa 2880
cgggccgact atctcgagct gattcgtgcc ctggaagccc ggggcgtacc catcgacggc 2940
gtgggccacc aggcgcacgt cgacgtggca cgtccggtgc agtggctcga ggactcgatc 3000
aaggccgttg agaaggtcaa tcctgacctg atgcaggcga tcactgagct cgacgtgaac 3060
gcgtccaccg agaatcaggg cgcggacgtg gacggtgccc cggtggatcc gtaccagccg 3120
gcattcggga acgacgggga cgccgccgcg gaagtcggat actactaccg cgacttgttc 3180
gccatgctgc gcaagcacag ttcggctatt gattcggtga ccgtctgggg catcagcaac 3240
gcccgcagct ggctgcggac ctggccgatg gcccggccct gggagcagcc gcttccattc 3300
gacgatgatc tgcaggctgc accggcctac tggggaatcg tggatcccgc gaaactgccg 3360
gcccggcctg ccgacgtgct ggcaccccgc atcgccgatc agccggacgt ggtggccttt 3420
tcaaagcgcg ccggacgggt gaaggtggct tacccgttgc cctcggcgat cgacaccctc 3480
gacggcaaag tgccggtgga ctgttctccg cgccgcggca gcacctttgc cgtggggacc 3540
actgcggtca cctgcacggc cacggatgcc gccggcaaca cgaggaccag cagcttcgac 3600
gtggtggtga agaagcaccg gcaccacgga aggcactga 3639
<210> 4
<211> 1104
<212> DNA
<213> JF745868
<400> 4
atgaggtcgg ctcgtctggt catcgctttg ttcgctgccg tggcgttgtc ggcgccaccg 60
gcttcggcgg tctcggcccc gccggacgtg agcggccaca aacagacgtt gcgctcggca 120
gcgcccaagg gtttccacat cggcacggcc gtcgcgggcg gcggccacca cgagaaccag 180
ccgtacccgg accccttcac ctcggacagc gagtaccgga aggtgctggc cgcggagttc 240
aactcggtct cgcccgagaa ccagatgaag tgggagtaca tccacccgga gcgcggccgg 300
tacaacttcg gcatggccga cgccatcgtc cggttcgcca agcagaaccg gcaggtggtc 360
cgcgggcaca ccctgatgtg gcacagccag aacccggagt ggctggagca gggcgacttc 420
accgcggccg aactgcgcga gatcctgcgc gagcacatca tgaccgtggt cggccggtac 480
aagggcaagg tccagcagtg ggacgtggcc aacgagatct tcaccgacgc cggcgctctg 540
cggaccacgg agaacatctg gatccgtgaa ctcggtccgg gcatcgtggc ggacgcgttc 600
cgctgggcgc accaggccga ccccaaggcg aagctgttct tcaacgacta caacgtcgaa 660
agcgtcaacg cgaagagcga cgcgtactac gcgctgatca aggagctgcg cgccgcgggt 720
gtgcccgtgc acggcttctc cgcccaggcg cacctcagcc tggactacgg cttcccggac 780
gacctggagc gcaacctgaa gcggttcgcc gacctccggc tggagaccgc gatcaccgag 840
ctcgacgtgc ggatgaccct gcccgcgagc ggcgtgccga cggcggccca gctgcagcag 900
caggccgact actaccagcg cacgctcgcg gcctgcctga aggtcaggac ctgcaagtcg 960
ttcaccatct ggggcttcac cgacaagtac tcgtgggtgc cggtcttctt ccaggggcag 1020
ggtgcggcca cggtgatgtg gaacgacttc ggtcgcaagc aggcgtacta cgcgctgcgg 1080
tccacgctgg cgaagcgagc ctga 1104
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 5
gtgcagccgg aggaaaaacg 20
<210> 6
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 6
gatgaaggca ggatccgggg t 21
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 7
gtctcggccc cgccggacgt 20
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 8
ggctcgcttc gccagcgtgg 20

Claims (10)

1.一种内切木聚糖酶突变体S35F07,其特征在于,该突变体S35F07具有如SEQ ID NO.1所示的氨基酸序列。
2.一种如权利要求1所述的内切木聚糖酶突变体S35F07的编码基因。
3.根据权利要求2所述的编码基因s35f07,其特征在于,所述编码基因s35f07具有如SEQ ID No.2所示的核苷酸序列。
4.一种包含如权利要求2所述的编码基因s35f07的重组载体。
5.根据权利要求4所述的重组载体,其特征在于,所述重组载体采用的表达载体为pEasy-E2。
6.一种包含如权利要求2所述的编码基因s35f07的重组菌。
7.根据权利要求6所述的重组载体,其特征在于,所述重组菌采用的菌为大肠杆菌BL21-Gold(DE3)。
8.一种如权利要求1所述的内切木聚糖酶突变体S35F07的制备方法,其特征在于,该方法包含:
将如权利要求2或3所述的编码基因s35f07和表达载体pEasy-E2相连接,并将连接产物转化大肠杆菌BL21-Gold(DE3),获得包含编码基因s35f07的重组菌株;
培养所述重组菌株,诱导内切木聚糖酶突变体S35F07表达。
9.根据权利要求8所述的制备方法,其特征在于,所述重组菌株的培养采用含100μg mL-1Amp的LB培养液,振荡培养,当OD600为0.6~1.0时,加入IPTG进行诱导。
10.一种如权利要求1所述的内切木聚糖酶突变体S35F07在食品和饲料领域中的应用。
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Citations (2)

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CN105821021A (zh) * 2016-05-19 2016-08-03 云南师范大学 一种木聚糖酶热盐性改良突变体及其应用
CN106906195A (zh) * 2017-04-24 2017-06-30 云南师范大学 一种pH、温度和盐适应性改良的内切木聚糖酶突变体及其应用

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Non-Patent Citations (1)

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Title
JUNPEI ZHOU ET AL.: "Molecular and Biochemical Characterization of a Novel Multidomain Xylanase from Arthrobacter sp. GN16 Isolated from the Feces of Grus nigricollis", 《APPL BIOCHEM BIOTECHNOL》 *

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