CN111172235A

CN111172235A - 一种检测组织蛋白酶b的生物传感器及其检测方法和应用

Info

Publication number: CN111172235A
Application number: CN202010042539.9A
Authority: CN
Inventors: 张春阳; 王子月; 张程鹏
Original assignee: Shandong Normal University
Current assignee: Shandong Normal University
Priority date: 2020-01-15
Filing date: 2020-01-15
Publication date: 2020-05-19
Anticipated expiration: 2040-01-15
Also published as: CN111172235B

Abstract

本发明提供一种检测组织蛋白酶B的生物传感器及其检测方法和应用，属于检测分析技术领域。本发明中的生物传感器至少多肽‑DNA偶联物，DNA模板1和DNA模板2。本发明将含有氨基酸残基的第一引物DNA转化成不含氨基酸残基的新引物DNA，可以完全消除核酸扩增过程中的空间位阻效应，以增加扩增反应效率。同时，多个链置换反应的进行及核糖核酸酶H的循环消化作用可进一步放大荧光信号，因此可实现对组织蛋白酶B活性的超灵敏检测，具有良好的实际应用之价值。

Description

一种检测组织蛋白酶B的生物传感器及其检测方法和应用

技术领域

本发明属于检测分析技术领域，具体涉及一种检测组织蛋白酶B的生物传感器及其检测方法和应用。

背景技术

公开该背景技术部分的信息仅仅旨在增加对本发明的总体背景的理解，而不必然被视为承认或以任何形式暗示该信息构成已经成为本领域一般技术人员所公知的现有技术。

半胱氨酸组织蛋白酶是一类位于胞内溶酶体泡内的蛋白酶，其功能是介导蛋白质的大量溶解。半胱氨酸组织蛋白酶主要根据不同的催化中心分为组织蛋白酶B、C、F、H、L、K、O、S、V、W、X等11种，在抗原呈递和骨吸收中发挥重要作用。组织蛋白酶B可裂解特异性肽序列，使细胞粘附蛋白失活，激活其他蛋白酶(如层粘连蛋白)，降解细胞外基质，释放实体瘤转移细胞，使癌细胞侵袭转移。组织蛋白酶B在多种癌症中过表达，如喉癌、甲状腺癌、口腔癌、乳腺癌和结肠直肠癌，组织蛋白酶B正成为一种有前途的肿瘤生物标志物，其浓度和分布可用于指导癌症的诊断和合适的抗癌药物的选择。因此，准确、灵敏地检测组织蛋白酶B对于早期癌症的诊断和治疗至关重要。

到目前为止，组织蛋白酶B的检测方法多种多样，主要分为亲和法和活性法。酶联免疫吸附法(ELISA)和免疫组化法可以根据组织蛋白酶B与抗原的亲和力检测组织蛋白酶B的总浓度，酶联免疫吸附法已被广泛用于检测组织蛋白酶B在血清、尿液和组织裂解液中的浓度。但这些检测是耗时的，需要特定的抗体。活性测定法可以检测蛋白酶的活性，而不是检测蛋白酶的浓度，它更贴近生物学过程，能反映靶标的真实生物学功能，在癌症诊断中特别有用。采用紫外分光光度法对设计的多肽底物进行催化裂解，检测组织蛋白酶B的蛋白水解活性，筛选组织蛋白酶B的抑制作用。但该方法耗时长、样品消耗量大、自动化程度低。电化学检测技术因其易于微型化、简单的直接电子读出、低成本和利用电极阵列同时检测多个蛋白酶的能力而受到关注，因此，它有可能成为一种疾病诊断、治疗监测和药物筛选的方法。然而，这种方法对于研究复杂癌细胞裂解物或组织裂解物中的蛋白酶非常有限。近年来，基于荧光共振能量转移的蛋白酶传感器被开发出来用于检测组织蛋白酶B的活性，其中荧光染料和淬灭标记多肽被水解成分离片段后都会发出强烈的荧光。但这些方法需要设计复杂的荧光共振能量转移染料对，且灵敏度较差。

发明内容

针对现有技术的不足，本发明提供一种检测组织蛋白酶B的生物传感器及其检测方法和应用。本发明通过磁珠分离辅助多肽-DNA共轭物与等温多路循环信号放大相结合来实现，将DNA聚合酶介导的链延长与核酸酶介导的单链刻痕相结合，基于多链置换反应的循环信号扩增具有扩增效率高、反应温度等温、扩增动力学快等优点。利用循环信号放大，磁珠分离效率高，以及核糖核酸酶H(RNase H)驱动消化的高特异性，可实现对组织蛋白酶 B活性的超灵敏检测，因此具有良好的实际应用之价值。

为实现上述技术目的，本发明采用的技术方案如下：

本发明的第一个方面，提供一种检测组织蛋白酶B的生物传感器，所述生物传感器至少包括多肽-DNA偶联物，DNA模板1和DNA模板2；

其中，

所述多肽-DNA偶联物含有组织蛋白酶B的生物素化肽底物，其中肽底物C端修饰有生物素，肽底物N端与DNA 5'端连接；多肽-DNA偶联物的 DNA部分作为核酸扩增反应的引物；

所述DNA模板1包含三个主要区域X*-Y*-Z*；

所述DNA模板2包含三个主要区域Z*-Y*-X*；

其中序列X*与多肽-DNA偶联物结合的DNA部分和生成的触发器X 互补，序列Y*与生成的触发器Y互补，序列Z*与生成的触发器Z互补。

进一步的，上述两个DNA模板中，Y*的左右两侧分别设计了限制性核酸内切酶的识别位点。

所述检测组织蛋白酶B的生物传感器还包括信号探针，所述信号探针为一个RNA寡核苷酸，在所述RNA寡核苷酸两端分别使用荧光剂和猝灭剂进行修饰，所述信号探针可以与触发器Z结合，形成RNA-DNA双链。

所述检测组织蛋白酶B的生物传感器还包括磁珠、DNA聚合酶和核糖核酸酶H。

其中，所述磁珠为链霉亲和素修饰的磁珠，从而使得生物素化多肽-DNA 偶联物可通过生物素-链霉亲和素相互作用在磁珠表面进行组装；

所述DNA聚合酶用于引发链的延伸，产生丰富的X、Y、Z触发器。

所述核糖核酸酶H可以选择性地消化信号探针与触发器Z结合形成的 RNA-DNA双链中的RNA寡核苷酸，产生明显的荧光团荧光信号，同时释放Z触发器。

本发明的第二个方面，提供一种检测组织蛋白酶B的方法，所述方法包括：

1)将多肽-DNA偶联物与磁珠共孵育得多肽-DNA-磁珠轭合物；

2)向步骤1)中加入待测样品共孵育进行切除反应，上清液磁分离待用；

3)向步骤2)处理后的上清液中加入DNA模板1、DNA模板2和信号探针共孵育进行酶辅助级联信号放大。

所述检测组织蛋白酶B的方法还包括对反应产物进行实时荧光检测和/ 或凝胶电泳，以及荧光光谱测量。

本发明的第三个方面，提供上述生物传感器和/或检测方法在组织蛋白酶B活性检测和/或筛选组织蛋白酶B相关药物中的应用。

需要说明的是，本发明虽然以检测组织蛋白酶B为例，提供相关检测生物传感器以及检测方法，但是基于本发明的构思，如将多肽-DNA偶联物中的肽底物进行替换用于检测其他组织蛋白酶或者其他酶类等显然也是容易想到的，因此同样应属于本发明的保护范围。

本发明的有益技术效果：

1)高灵敏度

本发明利用了高效率的恒温指数扩增方法和核糖核酸酶H的特异性循环消化，将检测信号进行了循环放大，具有超高的灵敏度。这种方法可以检测到组织蛋白酶B活性的检出限极低，为8.1×10^-12克每毫升，动态范围大，从1×10^-11到1×10^-7克每毫升，可达4个数量级，本发明的灵敏度比电化学方法 (2.4×10^-6克每毫升)提高了5个数量级，比比色法(2.2×10^-7克每毫升)提高了4个数量级。

2)高特异性

由于本发明是基于组织蛋白酶B对切割位点的特异性识别，反应十分精确，保证了该方法的高特异性。核糖核酸酶H只能水解RNA-DNA双链中的 RNA，这也大大减少了该方法的非特异性。

3)可以在单个癌细胞中定量

本发明可以进一步扩展为在单个癌细胞中准确地确定组织蛋白酶B活性的诊断工具。

4)反应时间短

本发明检测方法中总反应时间约为2.5小时，优于文献报道的组织蛋白酶B测定方法。将有氨基酸残基的引物DNA转化成无氨基酸残基的新引物 DNA，可以完全消除核酸扩增的空间位阻效应，扩增反应效率高。

附图说明

构成本发明的一部分的说明书附图用来提供对本发明的进一步理解，本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明，并不构成对本发明的不当限定。

图1为多肽-DNA结合多重循环信号扩增用于组织蛋白酶B检测的方案原理图。

图2A为组织蛋白酶B介导的裂解反应的非变性凝胶电泳监测。条带1，多肽-DNA结合物；条带2，多肽-DNA结合物+组织蛋白酶B。

图2B为扩增产物的非变性凝胶电泳分析。条带1，模板1；条带2，模板 2；条带3，多肽-DNA结合+模板1+模板2+Bst DNA聚合酶+限制性核酸内切酶；条带4，多肽-DNA结合+组织蛋白酶B+模板1+模板2+Bst DNA聚合酶+限制性核酸内切酶+信号探针+核糖核酸酶H+核糖核酸酶抑制剂。

图2C为实时监测组织蛋白酶B存在和缺失时的荧光强度。组织蛋白酶B 的浓度为1×10^-7克每毫升。

图3A为不同浓度组织蛋白酶B的荧光发射光谱。

图3B为在1×10^-11克每毫升至5×10^-7克每毫升范围内，组织蛋白酶B浓度对荧光强度的影响。插图显示了组织蛋白酶B浓度在1×10^-11到1×10^-7克每毫升范围内的对数与荧光强度之间的线性关系。

图4为反应缓冲液(对照)，1×10^-7克每毫升组织蛋白酶S，1×10^-7克每毫升组织蛋白酶L，1×10^-7克每毫升组织蛋白酶D，1×10^-7克每毫升组织蛋白酶B 的荧光强度测定。

图5A为在分别存在裂解缓冲液，10000个人胚胎肾细胞，10000个人宫颈癌细胞，10000个人宫颈癌细胞加2微摩尔亮抑酶肽时荧光强度的测量。

图5B为荧光强度与1到10000个人宫颈癌细胞的数量关系。插图显示了组织蛋白酶B浓度在1到10000个细胞范围内的对数与荧光强度之间的线性关系。

具体实施方式

应该指出，以下详细说明都是例示性的，旨在对本发明提供进一步的说明。除非另有指明，本文使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属技术领域的普通技术人员通常理解的相同含义。

需要注意的是，这里所使用的术语仅是为了描述具体实施方式，而非意图限制根据本发明的示例性实施方式。如在这里所使用的，除非上下文另外明确指出，否则单数形式也意图包括复数形式，此外，还应当理解的是，当在本说明书中使用术语“包含”和/或“包括”时，其指明存在特征、步骤、操作、器件、组件和/或它们的组合。应理解，本发明的保护范围不局限于下述特定的具体实施方案；还应当理解，本发明实施例中使用的术语是为了描述特定的具体实施方案，而不是为了限制本发明的保护范围。

如前所述，现有针对组织蛋白酶B等酶类检测普遍存在耗时长、样品消耗量大、制备或检测过程复杂繁琐、灵敏度差等缺点。

有鉴于此，开发一种简单、灵敏的方法来检测组织蛋白酶B的活性是非常必要的。将核酸引入蛋白质检测是一个很好的策略。例如，多肽结合的氯化血红素/G-四联体(hGQ-多肽)结构被用于一系列高效电化学蛋白检测，如癌胚抗原检测、凝血酶检测、半胱天冬酶3活性检测等。多肽探针还可以与DNA稳定的银纳米团簇结合，DNA-银纳米团簇-多肽共轭被吸附到氧化石墨烯表面以检测胰蛋白酶。当目标蛋白含量极低时，可以进一步引入核酸扩增技术，提高检测灵敏度。例如，当DNA-多肽偶联探针附着于固相时，炭疽内肽酶可裂解肽段，释放DNA，引起聚合酶链反应扩增。但该方法存在一个缺点：释放的DNA中含有一些氨基酸残基，可能会引起空间位阻效应，降低进一步的扩增效率。因此，我们开发了一种简单的基于多重循环信号放大的检测组织蛋白酶B活性的荧光检测方法，将含有氨基酸残基的第一引物DNA转化成不含氨基酸残基的新引物DNA，可以完全消除核酸扩增过程中的空间位阻效应，以增加扩增反应效率。同时，多个链置换反应的进行及核糖核酸酶H的循环消化作用可进一步放大荧光信号。

具体的，该方法基于多肽-DNA偶合物的多重循环信号扩增。我们设计了两个具有多个结构域的DNA模板，分别用于DNA聚合酶介导的DNA链延伸和核酸酶介导的切割，并结合核糖核酸酶H辅助扩增，将组织蛋白酶B活性转化为可测量的荧光信号。该方法操作简便、快速、易于操作，在放大过程中不涉及任何热循环，整个测定过程可在2.5小时内完成，优于已有的组织蛋白酶B测定方法。该方法具有一些不同的特点:(1)将含有氨基酸残基的第一引物DNA转化成不含氨基酸残基的新引物DNA，可以完全消除核酸扩增过程中的空间位阻效应；(2)多个链置换反应可以诱导循环信号放大； (3)核糖核酸酶H对循环消化信号探测进一步放大荧光信号。本方法灵敏度高，可定量测定组织蛋白酶B活性，检测限为8.1×10^-12克每毫升，其动态范围非常大，从1×10^-11到1×10^-7克每毫升，甚至可以在单细胞水平准确定量组织蛋白酶B活性。该方法可用于组织蛋白酶B抑制剂的筛选，在生物医学研究和早期临床诊断中具有巨大的应用潜力。重要的是，通过合理设计相应的探针，该方法可以作为检测其他类型蛋白酶的通用平台。

本发明的一个具体实施方式中，提供一种检测组织蛋白酶B的生物传感器，所述生物传感器至少包括多肽-DNA偶联物，DNA模板1和DNA模板2；

本发明的又一具体实施方式中，所述多肽-DNA偶联物含有组织蛋白酶 B的生物素化肽底物，其中肽底物C端修饰有生物素，肽底物N端与DNA 5'端连接；多肽-DNA偶联物的DNA部分作为核酸扩增反应的引物；

本发明的又一具体实施方式中，所述DNA模板1包含三个主要区域 X*-Y*-Z*；

本发明的又一具体实施方式中，所述DNA模板2包含三个主要区域 Z*-Y*-X*；

本发明的又一具体实施方式中，其中序列X*与多肽-DNA偶联物结合的DNA部分和生成的触发器X互补，序列Y*与生成的触发器Y互补，序列Z*与生成的触发器Z互补。

本发明的又一具体实施方式中，上述两个DNA模板中，Y*的左右两侧分别设计了限制性核酸内切酶的识别位点。

本发明的又一具体实施方式中，

所述X*序列为5'-AAC AGA CTC ACT ACG ACC GGG AC-3'(SEQ ID No.1)；

所述Y*序列为5'-AAC AGA CTC CAC AAA TTC GAC C-3'(SEQ ID No.2)；

所述Z*序列为5'-CGT GAA TAA CTC TAC TAT C-3'(SEQ ID No.3)。

本发明的又一具体实施方式中，

所述DNA模板1核苷酸序列为：5'-CGT GAA TAA CTC TAC TAT CAA CAG AC TCCACA AAT TCG ACC AAC AGA CTC ACT ACG ACC GGG AC-磷酸基团-3'(SEQ ID No.4)；其中，下划线区域表示Nt.BstNBI的识别位点；

所述DNA模板2核苷酸序列为：5'-AAC AGA CTC ACT ACG ACC GGG ACA ACA GAC TCC ACA AAT TCG ACC AAC AGA CTC CGT GAA TAA CTC TAC TAT C-磷酸基团-3'(SEQ IDNo.5)；其中，下划线区域表示 Nt.BstNBI的识别位点；

本发明的又一具体实施方式中，所述含有组织蛋白酶B的生物素化肽底物具体为生物素修饰的KGFRLC(SEQ ID No.6)。

本发明的又一具体实施方式中，所述多肽-DNA偶联物中DNA的序列为5'-GTC CCGGTC GTA GTG AGT CT-3'(SEQ ID No.7)。

本发明的又一具体实施方式中，所述多肽-DNA偶联物的序列为：C_term- 生物素-KGFRLC-N_term-GTC CCG GTC GTA GTG AGT CT。

本发明的又一具体实施方式中，所述检测组织蛋白酶B的生物传感器还包括信号探针，所述信号探针为一个RNA寡核苷酸，在所述RNA寡核苷酸两端分别使用荧光剂和猝灭剂进行修饰，所述信号探针可以与触发器Z 结合，形成RNA-DNA双链。

所述荧光剂选自FAM，所述淬灭剂选自BHQ1；

本发明的又一具体实施方式中，所述信号探针的序列为：

5'-FAM-rArUrArArCrUrCrUrArCrUrArUrC-BHQ1-3'(SEQ ID No.8)。

本发明的又一具体实施方式中，所述检测组织蛋白酶B的生物传感器还包括磁珠、DNA聚合酶和核糖核酸酶H。

本发明的又一具体实施方式中，提供一种检测组织蛋白酶B的方法，所述方法包括：

1)将多肽-DNA偶联物与磁珠共孵育得多肽-DNA-磁珠轭合物；

其中，

所述步骤1)中，所述磁珠为链霉亲和素包覆的磁珠；

共孵育处理条件为：室温下处理10-20分钟；

所述步骤2)中，共孵育处理条件为：35～40摄氏度孵育0.5～2小时，优选为37摄氏度孵育1小时；

所述步骤3)中，共孵育处理添加为35～40摄氏度孵育0.5～2小时，优选为37摄氏度孵育50分钟。

本发明的又一具体实施方式中，提供上述生物传感器和/或检测方法在组织蛋白酶B活性检测和/或筛选组织蛋白酶B相关药物中的应用。

在所述应用中，对组织蛋白酶B活性检测的应用环境可以为外界自然环境或者生物体体内环境，所述生物体体内环境包括生物个体、器官、组织或细胞，可以是生物体细胞，尤其值得说明的是，本发明可实现在单个细胞中对组织蛋白酶B的定量检测。

所述组织蛋白酶B相关药物包括但不限于组织蛋白酶B抑制剂或组织蛋白酶B激活剂。

以下通过实施例对本发明做进一步解释说明，但不构成对本发明的限制。应理解这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。实施例1中涉及的核苷酸/氨基酸序列信息如下表所示：

下划线区域表示Nt.BstNBI的识别位点；信号探针中的小写字母r代表核糖核苷酸

实施例1

药品和材料。所有寡核苷酸和焦碳酸二乙酯(DEPC)处理水均由Takara 生物技术有限公司(大连，中国)购买，多肽C_term-生物素-KGFRLC-N_term由杭州中肽生化有限公司(杭州,浙江,中国)合成。组织蛋白酶B，组织蛋白酶L，组织蛋白酶S，抗蛋白酶和亮抑酶肽是从西格玛奥德里奇公司(圣路易斯,密苏里州,美国)购买，组织蛋白酶D从R&D系统(明尼阿波利斯，明尼苏达州，美国)购买。链霉亲和素磁珠，Bst DNA聚合酶(大片段)，10 ×ThermoPol反应缓冲液(200毫摩尔三(羟甲基)氨基甲烷-盐酸(Tris-HCl)， 100毫摩尔硫酸铵((NH₄)₂SO₄)，100毫摩尔氯化钾(KCl)，20毫摩尔硫酸镁(MgSO₄)，1％聚乙二醇辛基苯基醚，PH 8.8)，限制性核酸内切酶(Nt.BstNBI)，10×NEB缓冲液3.1(1000毫摩尔氯化钠，500毫摩尔三(羟甲基)氨基甲烷-盐酸，100毫摩尔氯化镁(MgCl₂)，1毫克每毫升牛血清白蛋白(BSA)，pH 7.9)，核糖核酸酶H，10×核糖核酸酶H反应缓冲液(500 毫摩尔三(羟甲基)氨基甲烷-盐酸，750毫摩尔氯化钾，30毫摩尔氯化镁， 100毫摩尔二硫苏糖醇(DTT)，pH 8.3)，核糖核酸酶抑制剂，脱氧核糖核酸苷5’-三磷酸混合物(dNTPs)从新英格兰生物实验室(伊普斯威奇、马萨诸塞州、美国)获得。SYBR Gold购买于美国生命技术公司(卡尔斯巴德，加利福尼亚州，美国)。人宫颈癌细胞株(HeLa细胞)和人胚胎肾细胞系 (HEK-293细胞)来自中国科学院上海生物科学研究所细胞库(上海，中国)，其他分析用化学品没有进一步净化。本实验中使用的超纯水来自于微孔过滤系统，这项涉及肽和RNA的实验使用的是经深度处理的水。本实验中，组织蛋白酶B和细胞裂解液需要在5毫摩尔二硫苏糖醇和25毫摩尔2-(4-吗啉) 乙烷磺酸(MES)缓冲液(pH 5.0)中在37摄氏度预激活10分钟，酶解反应才能充分发挥活性。

多肽-DNA偶合物多个循环信号扩增反应。本实验包括三个步骤。首先，用经焦碳酸二乙酯处理的水稀释多肽-DNA偶联物，制备原液。20微升链霉亲和素包覆的磁珠溶液(4毫克每毫升)被转移至一个200微升的离心管中，用1×B&W缓冲液(5毫摩尔三(羟甲基)氨基甲烷-盐酸，pH 7.5，0.5毫摩尔乙二胺四乙酸(EDTA)，1摩尔氯化钠)洗涤两次，然后磁珠在20微升的2×B&W缓冲液(10毫摩尔三(羟甲基)氨基甲烷-盐酸，pH 7.5，1毫摩尔乙二胺四乙酸，2摩尔氯化钠)中被重悬，30微升1微摩尔生物素化的多肽 -DNA轭合物被添加到溶液中，室温旋转孵育15分钟。混合物用50微升 1×B&W缓冲液洗涤三次以移除未耦合的多肽-DNA轭合物，剩余的多肽 -DNA-磁珠轭合物被分散在20微升焦碳酸二乙酯处理水中。第二步，5微升多肽-DNA-磁珠轭合物被添加至20微升的切除反应体系(包括1×组织蛋白酶B反应缓冲液和不同浓度的活性组织蛋白酶B)，这个体系在37摄氏度孵育1 小时，进行多肽-DNA偶联裂解，上清液磁分离3分钟待用。第三步，2微升反应产物添加到20微升循环信号放大反应系统(包括25纳摩尔模板1，25纳摩尔模板2，500微摩尔脱氧核糖核酸苷5’-三磷酸混合物，2.4个单位的 Bst.DNA聚合酶，10个单位的限制性核酸内切酶，700纳摩尔信号探针，1个单位的核糖核酸酶H，20个单位的核糖核酸酶抑制剂，2微升10×NEB缓冲液 3.1，2微升10×ThermoPol缓冲液，2微升10×核糖核酸酶缓冲液)，然后混合物在37摄氏度孵育50分钟用于酶辅助级联信号放大。

实时荧光检测和凝胶电泳。使用BIO-RAD CFX连接TM实时系统(加利福尼亚，美国)每隔30秒对循环信号放大进行实时荧光监测，荧光指示剂为 1×SYBR Gold。采用14％非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)对1×四溴乙烷缓冲液(9毫摩尔三(羟甲基)氨基甲烷-盐酸，9毫摩尔硼酸，0.2毫摩尔 PH值为7.9的乙二胺四乙酸)中在110伏的恒定电压下，在室温下，在黑暗中工作60分钟的反应产物进行了分析，荧光指示剂为1×SYBR Gold。

荧光光谱测量。20微升反应产物用超纯水稀释到60微升。荧光信号采用日立F-7000荧光分光光度计(东京，日本)测定，激发波长为490纳米，发射光谱扫描范围为500到650纳米，数据分析采用发射波长520纳米处的荧光强度。

细胞培养及细胞提取物的制备。人类子宫颈癌细胞和人类胚胎肾细胞培养基为含有10％胎牛血清(FBS)和1％青霉素-链霉素的达尔伯克改良伊格尔培养基(DMEM)，放在含有5％二氧化碳，37摄氏度的培养箱中进行培养。用胰蛋白酶化法收集生长指数期的细胞。培养基被移除，用PH为7.4的冷1×聚丁二酸丁二醇酯(PBS)溶液洗涤细胞2次，用1000转每分钟离心5分钟。100微升裂解缓冲液(10毫摩尔三(羟甲基)氨基甲烷-盐酸，pH 8.0，150毫摩尔氯化钠，1％(质量/体积)乙基苯基聚乙二醇(NP-40)，0.25毫摩尔脱氧胆酸钠，1％(质量/体积)甘油，0.1毫摩尔4-(2-氨基乙基)苯基磺酰盐酸盐)被用于悬浮细胞，然后将混合物在冰上孵育30分钟，然后在4 摄氏度下用12000转每分钟离心20分钟。将上清液小心地转移到新鲜试管中， pH值小心地调整到5.5。

组织蛋白酶B测定的原理如图1所示。我们设计了一种生物素化多肽 -DNA偶联物，该偶联物含有组织蛋白酶B的生物素化肽底物(生物素 -KGFRLC)，N端与5’端DNA连接形成多肽-DNA偶联物。多肽-DNA偶合物的DNA部分可作为核酸扩增反应的引物。生物素化多肽-DNA偶联物可通过生物素-链霉亲和素相互作用在链霉亲和素修饰磁珠表面组装。在组织蛋白酶B的存在下，可以识别并裂解肽KGFRLC，导致DNA部分从磁珠中解离。经磁性分离后，释放的DNA部分可在两个线性模板(即模板1和模板2)。模板1包含三个主要区域X*-Y*-Z*，模板2包含三个主要区域Z*-Y*-X*，其中序列X*与多肽-DNA结合的DNA部分和生成的触发器X互补，序列Y*与生成的触发器Y互补，序列Z*与生成的触发器Z互补。此外，在两个模板中， Y*的左右两侧分别设计了限制性核酸内切酶的识别位点。所释放的DNA片段与模板1的杂交可在DNA聚合酶和脱氧核糖核酸苷5’-三磷酸混合物的存在下引发延伸反应，产生丰富的具有两个识别位点的DNA双链。在DNA聚合酶和脱氧核糖核酸苷5’-三磷酸混合物的作用下，DNA双链断裂可能引发新的延伸，形成链置换反应，产生丰富的Y、Z触发器。释放的触发器Z可能与模板2杂交，引发链位移扩增，产生更多的触发器X和Y；被释放的触发器 Y可以与模板1或模板2杂交，从而使链的位移放大产生更多的触发器X和Z。然后释放的触发器X、Y、Z可以与它们相应的模板杂交，诱导新的扩展、切割循环，产生丰富的Z。通过多链置换反应，将第一个带有氨基酸残基的DNA 引物转化成不含任何氨基酸残基的X、Y、Z等新的DNA引物，完全消除了空间位阻效应，大大提高了扩增效率。所得到的触发器Z可以作为报告探针，与信号探针结合，信号探针是一个RNA寡核苷酸，在5’和3’端分别用荧光团(FAM)和猝灭剂(BHQ1)修饰，形成RNA-DNA双链。然后核糖核酸酶 H可以选择性地消化RNA-DNA双链的RNA寡核苷酸，产生明显的荧光团荧光信号，同时释放Z触发器。释放的触发器Z可以进一步与新的信号探针结合，启动新的消化和释放的循环，从而增强荧光团荧光。而在没有组织蛋白酶B的情况下，既不会发生多肽底物的裂解反应，也不会发生链位移放大反应，因此没有荧光增强现象。

1、原理的实验验证

为了证明该方法的可行性，我们以SYBR Gold为荧光指示剂，使用14％非变性凝胶电泳分析组织蛋白酶B的切割过程(图1)。在没有组织蛋白酶B 的情况下，只观察到多肽-DNA结合带(条带1，图2A)。在存在组织蛋白酶B的情况下，观察到一个较短的条带，因为该肽被组织蛋白酶B裂解(条带2，图2A)，这表明该DNA底物可以被组织蛋白酶B裂解。我们进一步使用14％的非变性凝胶电泳来分析反应产物(图1)。在限制性核酸内切酶切开反应产物后，在组织蛋白酶B(条带4，图2B)的存在下，观察到19nt、 22nt、23nt、28nt的几个特征性条带，提示组织蛋白酶B可引发延伸反应，从而诱导链移位反应。在没有组织蛋白酶B的情况下，观察到两条带分别为64nt 和74nt(条带3，图2B)，分别对应于模板1(条带1,图2B)和模板2(条带 2，图2B)，但是并没有出现明显的解理产物的特征条带。我们以SYBR Gold为荧光指示剂，实时荧光测量法对扩增反应过程进行监测(图2C)。在组织蛋白酶B存在的情况下，在520纳米发射波长处检测到明显的荧光信号。对照组未检测到组织蛋白酶B，未检测到明显的荧光信号。这些结果表明，组织蛋白酶B可以切割特定的肽序列，诱导基于多链置换反应的循环信号放大反应。

2、灵敏度实验

为了研究该方法的敏感性，我们在最佳反应条件下监测了不同浓度的组织蛋白酶B对荧光强度的影响。如图3所示，随着组织蛋白酶B浓度的增加，荧光强度从1×10^-11克每毫升增加到1×10^-7克每毫升，在5×10^-7克每毫升以上达到平台，在1×10^-11到1×10^-7克每毫升范围内，组织蛋白酶B浓度的对数与荧光强度呈线性相关(图3B插图)。相关方程为F＝1404.5log₁₀ C+16271.2 (R²＝0.9940)，其中C为组织蛋白酶B的浓度(克每毫升)，F为荧光强度。通过计算平均对照组加3倍标准差，检测限为8.1×10^-12克每毫升。本方法的灵敏度比电化学方法(2.4×10^-6克每毫升)提高了5个数量级，比比色法 (2.2×10^-7克每毫升)提高了4个数量级。此外，本方法对组织蛋白酶S、组织蛋白酶L和组织蛋白酶D的响应具有较高的特异性，且无明显信号。

3、特异性实验

为了评价该方法的检测特异性，我们使用了组织蛋白酶S、组织蛋白酶 L和组织蛋白酶D作为非特异性蛋白。如图4所示，显著的荧光信号的发射波长520纳米是观察到的组织蛋白酶B，但没有增强的荧光信号检测的组织蛋白酶S，组织蛋白酶L和组织蛋白酶D，以上结果表明该方法可以很好的区分组织蛋白酶B和其它蛋白酶，证明本技术方案具有很好的特异性。

应注意的是，以上实例仅用于说明本发明的技术方案而非对其进行限制。尽管参照所给出的实例对本发明进行了详细说明，但是本领域的普通技术人员可根据需要对本发明的技术方案进行修改或者等同替换，而不脱离本发明技术方案的精神和范围。

SEQUENCE LISTING

<110> 山东师范大学

<120> 一种检测组织蛋白酶B的生物传感器及其检测方法和应用

<130>

<160> 8

<170> PatentIn version 3.3

<210> 1

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 1

aacagactca ctacgaccgg gac 23

<210> 2

<211> 22

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 2

aacagactcc acaaattcga cc 22

<210> 3

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 3

cgtgaataac tctactatc 19

<210> 4

<211> 64

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 4

cgtgaataac tctactatca acagactcca caaattcgac caacagactc actacgaccg 60

ggac 64

<210> 5

<211> 73

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 5

aacagactca ctacgaccgg gacaacagac tccacaaatt cgaccaacag actccgtgaa 60

taactctact atc 73

<210> 6

<211> 6

<212> PRT

<213> 人工序列

<400> 6

Lys Gly Phe Arg Leu Cys

1 5

<210> 7

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 7

gtcccggtcg tagtgagtct 20

<210> 8

<211> 14

<212> RNA

<213> 人工序列

<400> 8

auaacucuac uauc 14

Claims

1.一种检测组织蛋白酶B的生物传感器，其特征在于，所述生物传感器至少多肽-DNA偶联物，DNA模板1和DNA模板2；

其中，

所述多肽-DNA偶联物含有组织蛋白酶B的生物素化肽底物，其中肽底物C端修饰有生物素，肽底物N端与DNA 5'端连接；多肽-DNA偶联物的DNA部分作为核酸扩增反应的引物；

所述DNA模板1包含三个主要区域X*-Y*-Z*；

所述DNA模板2包含三个主要区域Z*-Y*-X*；

其中序列X*与多肽-DNA偶联物结合的DNA部分和生成的触发器X互补，序列Y*与生成的触发器Y互补，序列Z*与生成的触发器Z互补。

2.如权利要求1所述的生物传感器，其特征在于，两个DNA模板中，Y*区域的左右两侧设置有限制性核酸内切酶的识别位点。

3.如权利要求1所述的生物传感器，其特征在于，

所述X*序列为5'-AAC AGA CTC ACT ACG ACC GGG AC-3'(SEQ ID No.1)；或，

所述Y*序列为5'-AAC AGA CTC CAC AAA TTC GAC C-3'(SEQ ID No.2)；或，

所述Z*序列为5'-CGT GAA TAA CTC TAC TAT C-3'(SEQ ID No.3)；或，

所述DNA模板1核苷酸序列为：5'-CGT GAA TAA CTC TAC TAT CAACAGACTCC ACA AATTCG ACC AACAGA CTC ACT ACG ACC GGG AC-磷酸基团-3'(SEQ ID No.4)；其中，下划线区域表示Nt.BstNBI的识别位点；或，

所述DNA模板2核苷酸序列为：5'-AAC AGA CTC ACT ACG ACC GGG ACAACAGACTCCACAAAT TCG ACC AACAGACTC CGT GAA TAA CTC TAC TAT C-磷酸基团-3'(SEQ ID No.5)；其中，下划线区域表示Nt.BstNBI的识别位点；或，

所述含有组织蛋白酶B的生物素化肽底物具体为生物素修饰的KGFRLC(SEQ ID No.6)；或，

所述多肽-DNA偶联物中DNA的序列为5'-GTC CCG GTC GTA GTG AGT CT-3'(SEQ IDNo.7)；或，

所述多肽-DNA偶联物的序列为：C_term-生物素-KGFRLC-N_term-GTC CCG GTC GTA GTG AGTCT。

4.如权利要求1所述的生物传感器，其特征在于，所述检测组织蛋白酶B的生物传感器还包括信号探针，所述信号探针为一RNA寡核苷酸，在所述RNA寡核苷酸两端分别使用荧光剂和猝灭剂进行修饰；

优选的，所述荧光剂选自FAM，所述淬灭剂选自BHQ1；

优选的，所述信号探针的序列为：

5'-FAM-rArUrArArCrUrCrUrArCrUrArUrC-BHQ1-3'(SEQ ID No.8)。

5.如权利要求1所述的生物传感器，其特征在于，所述检测组织蛋白酶B的生物传感器还包括磁珠、DNA聚合酶和核糖核酸酶H；

优选的，所述磁珠为链霉亲和素修饰的磁珠。

6.一种检测组织蛋白酶B的方法，其特征在于，所述方法包括：

1)将多肽-DNA偶联物与磁珠共孵育得多肽-DNA-磁珠轭合物；

7.如权利要求6所述的方法，其特征在于，所述步骤1)中，所述磁珠为链霉亲和素包覆的磁珠；

共孵育处理条件为：室温下处理10-20分钟；

或，所述步骤2)中，共孵育处理条件为：35～40摄氏度孵育0.5～2小时，优选为37摄氏度孵育1小时；

或，所述步骤3)中，共孵育处理添加为35～40摄氏度孵育0.5～2小时，优选为37摄氏度孵育50分钟。

8.如权利要求6所述的方法，其特征在于，所述检测组织蛋白酶B的方法还包括对反应产物进行实时荧光检测和/或凝胶电泳，以及荧光光谱测量。

9.权利要求1-5任一项所述生物传感器和/或权利要求6-8任一项所述检测方法在组织蛋白酶B活性检测和/或筛选组织蛋白酶B相关药物中的应用。

10.如权利要求9所述应用，其特征在于，对组织蛋白酶B活性检测的应用环境为外界自然环境或者生物体体内环境，所述生物体体内环境包括生物个体、器官、组织或细胞；或，

所述组织蛋白酶B相关药物包括组织蛋白酶B抑制剂或组织蛋白酶B激活剂。