CN110904040A - 一种细胞剥离方法 - Google Patents

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曹振芳
陈礼明
杨桂娟
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0634Cells from the blood or the immune system
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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Abstract

本发明提供一种细胞剥离方法,具体涉及医药技术领域,S1、把尼龙毛40至80g放入烧杯中,加入蒸馏水80至160ml,用铝箔盖上烧杯并煮沸15至20min;然后冷却至常温,倒入设有滤纸的漏斗内,把水过滤掉后;S2、把尼龙毛摊在铺有纱布的托盘内,30至45℃温箱并干燥30~40h;S3、取50ml注射器,并在注射器口配置设有夹头的橡胶管,将尼龙毛装入注射器内,然后将注射器用锡箔纸包好,放入灭菌箱内灭菌。S4、往注射器内填入35至40℃的细胞培养液,静置30分钟,将待剥离的细胞液用35至40℃的的培养液稀释成4.9×107个细胞/ml至5.1×107个细胞/ml。S6、将S5中的细胞液倒入注射器内,35至40℃温育50min至70min,离心即T淋巴细胞剥离。本发明可提高T淋巴细胞的剥离效率和剥离质量。

Description

一种细胞剥离方法
技术领域
本发明属于医药技术领域,具体涉及一种细胞剥离方法。
背景技术
细胞剥离即细胞分离是生物技术领域常用的实验手段,对于细胞的研究有着不可忽视的作用,其中T淋巴细胞来源于骨髓的多能干细胞(胚胎期则来源于卵黄囊和肝)。在人体胚胎期和初生期,骨髓中的一部分多能干细胞或前T细胞迁移到胸腺内,在胸腺激素的诱导下分化成熟,成为具有免疫活性的T细胞。成熟的T细胞经血流分布至外周免疫器官的胸腺依赖区定居,并可经淋巴管、外周血和组织液等进行再循环,发挥细胞免疫及免疫调节等功能。T细胞的再循环有利于广泛接触进入体内的抗原物质,加强免疫应答,较长期保持免疫记忆。对T细胞进行剥离检测,对人体的健康监测有着举足轻重的作用;现有的T细胞剥离方法,其剥离效率和剥离质量仍有待进一步的提升。
针对上述不足,本发明的目的是提供一种细胞剥离方法,可提高T淋巴细胞的剥离效率和剥离质量。
发明内容
针对上述不足,本发明的目的是提供一种细胞剥离方法,可提高T淋巴细胞的剥离效率和剥离质量。
本发明提供了如下的技术方案:
一种细胞剥离方法,具体步骤如下:S1、把尼龙毛40至80g放入烧杯中,加入蒸馏水80至160ml,用铝箔盖上烧杯并煮沸15至20min;然后冷却至常温,倒入设有滤纸的漏斗内,把水过滤掉后,再次把尼龙毛放入烧杯中,重复上述步骤5至7次;
S2、把尼龙毛摊在铺有纱布的托盘内,30至45℃温箱并干燥30~40h;
S3、取50ml注射器,并在注射器口配置设有夹头的橡胶管,将尼龙毛装入注射器内,然后将注射器用锡箔纸包好,放入灭菌箱内灭菌。
S4、把注射器固定,往注射器内填入35至40℃的细胞培养液,静置30分钟,然后打开夹头,把细胞培养液放掉,重复上述步骤2至4次。
S5、将待剥离的细胞液用35至40℃的的培养液稀释成4.9×107个细胞/ml至5.1×107个细胞/ml
S6、将S5中的细胞液倒入注射器内,且细胞液液面没过尼龙毛;用锡箔纸包住注射器,35至40℃温育50min至70min。
S7、然后打开橡胶管的夹头,将细胞液收集于离心管中;然后离心即T淋巴细胞剥离。
优选的,S1步骤中,把尼龙毛60g放入烧杯中,加入蒸馏水120ml,用铝箔盖上烧杯并煮沸18min;然后冷却至常温,倒入设有滤纸的漏斗内,把水过滤掉后,再次把尼龙毛放入烧杯中,重复上述步骤6次。
优选的,S2步骤中,把尼龙毛摊在铺有纱布的托盘内,35℃温箱并干燥35h后,使用铝箔将托盘上方盖住
优选的,S4步骤中,把注射器固定,往注射器内填入38℃的细胞培养液,静置30分钟,然后打开夹头,把细胞培养液放掉,重复上述步骤3次
优选的,S5步骤中,将待剥离的细胞液用38℃的的培养液稀释成5×107个细胞/ml
优选的,S6步骤中,将S5中的细胞液倒入注射器内,且细胞液液面没过尼龙毛;用锡箔纸包住注射器,38℃温育60min。
优选的,S7步骤中,打开橡胶管的夹头2滴/分钟的速度,将细胞液收集于离心管中。
本发明的有益效果:
本发明可提高T淋巴细胞的剥离效率和剥离质量,且实验流程简单,可有效提高剥离纯化效率;降低人员的工作强度,大大提高了工作效率。
具体实施方式
实施例1:
S1、把尼龙毛40g放入烧杯中,加入蒸馏水80ml,用铝箔盖上烧杯并煮沸15min;然后冷却至常温,倒入设有滤纸的漏斗内,把水过滤掉后,再次把尼龙毛放入烧杯中,重复上述步骤5次;
S2、把尼龙毛摊在铺有纱布的托盘内,30℃温箱并干燥30h;
S3、取50ml注射器,并在注射器口配置设有夹头的橡胶管,将尼龙毛装入注射器内,然后将注射器用锡箔纸包好,放入灭菌箱内灭菌。
S4、把注射器固定,往注射器内填入35℃的细胞培养液,静置30分钟,然后打开夹头,把细胞培养液放掉,重复上述步骤2次。
S5、将待剥离的细胞液用35℃的的培养液稀释成4.9×107个细胞/ml
S6、将S5中的细胞液倒入注射器内,且细胞液液面没过尼龙毛;用锡箔纸包住注射器,35℃温育50min至70min。
S7、然后打开橡胶管的夹头,将细胞液收集于离心管中;然后离心即T淋巴细胞剥离。
实施例2:
S1、把尼龙毛60g放入烧杯中,加入蒸馏水120ml,用铝箔盖上烧杯并煮沸18min;然后冷却至常温,倒入设有滤纸的漏斗内,把水过滤掉后,再次把尼龙毛放入烧杯中,重复上述步骤6次;
S2、把尼龙毛摊在铺有纱布的托盘内,35℃温箱并干燥35h后,使用铝箔将托盘上方盖住;
S3、取50ml注射器,并在注射器口配置设有夹头的橡胶管,将尼龙毛装入注射器内,然后将注射器用锡箔纸包好,放入灭菌箱内灭菌。
S4、把注射器固定,往注射器内填入38℃的细胞培养液,静置30分钟,然后打开夹头,把细胞培养液放掉,重复上述步骤3次。
S5、将待剥离的细胞液用38℃的的培养液稀释成5×107个细胞/ml
S6、将S5中的细胞液倒入注射器内,且细胞液液面没过尼龙毛;用锡箔纸包住注射器,38℃温育60min。
S7、打开橡胶管的夹头2滴/分钟的速度,将细胞液收集于离心管中;然后离心即T淋巴细胞剥离。
实施例3:
S1、把尼龙毛80g放入烧杯中,加入蒸馏水160ml,用铝箔盖上烧杯并煮沸20min;然后冷却至常温,倒入设有滤纸的漏斗内,把水过滤掉后,再次把尼龙毛放入烧杯中,重复上述步骤7次;
S2、把尼龙毛摊在铺有纱布的托盘内,45℃温箱并干燥40h;
S3、取50ml注射器,并在注射器口配置设有夹头的橡胶管,将尼龙毛装入注射器内,然后将注射器用锡箔纸包好,放入灭菌箱内灭菌。
S4、把注射器固定,往注射器内填入40℃的细胞培养液,静置30分钟,然后打开夹头,把细胞培养液放掉,重复上述步骤4次。
S5、将待剥离的细胞液用40℃的的培养液稀释成5.1×107个细胞/ml
S6、将S5中的细胞液倒入注射器内,且细胞液液面没过尼龙毛;用锡箔纸包住注射器,340℃温育70min。
S7、然后打开橡胶管的夹头,将细胞液收集于离心管中;然后离心即T淋巴细胞剥离。
实验数据分析:
具体测试过程如下:
实施例1剥离后的样品随机取样三份编号为A1、A2、A3;
实施例2剥离后的样品随机取样三份编号为B1、B2、B3;
实施例3剥离后的样品随机取样三份编号为C1、C2、C3;
分别测试上述细胞的剥离率,具体数据如下:
Figure BDA0002278031220000061
本发明可提高T淋巴细胞的剥离效率和剥离质量,且实验流程简单,可有效提高剥离纯化效率;降低人员的工作强度,大大提高了工作效率;
以上仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明,尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,对于本领域的技术人员来说,其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分技术特征进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (7)

1.一种细胞剥离方法,其特征在于,具体步骤如下:
S1、把尼龙毛40至80g放入烧杯中,加入蒸馏水80至160ml,用铝箔盖上烧杯并煮沸15至20min;然后冷却至常温,倒入设有滤纸的漏斗内,把水过滤掉后,再次把尼龙毛放入烧杯中,重复上述步骤5至7次;
S2、把尼龙毛摊在铺有纱布的托盘内,30至45℃温箱并干燥30~40h;
S3、取50ml注射器,并在注射器口配置设有夹头的橡胶管,将尼龙毛装入注射器内,然后将注射器用锡箔纸包好,放入灭菌箱内灭菌;
S4、把注射器固定,往注射器内填入35至40℃的细胞培养液,静置30分钟,然后打开夹头,把细胞培养液放掉,重复上述步骤2至4次;
S5、将待剥离的细胞液用35至40℃的的培养液稀释成4.9×107个细胞/ml至5.1×107个细胞/ml;
S6、将S5中的细胞液倒入注射器内,且细胞液液面没过尼龙毛;用锡箔纸包住注射器,35至40℃温育50min至70min;
S7、然后打开橡胶管的夹头,将细胞液收集于离心管中;然后离心即T淋巴细胞剥离。
2.根据权利要求1所述的一种细胞剥离方法,其特征在于:S1步骤中,把尼龙毛60g放入烧杯中,加入蒸馏水120ml,用铝箔盖上烧杯并煮沸18min;然后冷却至常温,倒入设有滤纸的漏斗内,把水过滤掉后,再次把尼龙毛放入烧杯中,重复上述步骤6次。
3.根据权利要求1所述的一种细胞剥离方法,其特征在于:S2步骤中,把尼龙毛摊在铺有纱布的托盘内,35℃温箱并干燥35h后,使用铝箔将托盘上方盖住。
4.根据权利要求1所述的一种细胞剥离方法,其特征在于:S4步骤中,把注射器固定,往注射器内填入38℃的细胞培养液,静置30分钟,然后打开夹头,把细胞培养液放掉,重复上述步骤3次。
5.根据权利要求1所述的一种细胞剥离方法,其特征在于:S5步骤中,将待剥离的细胞液用38℃的的培养液稀释成5×107个细胞/ml。
6.根据权利要求1所述的一种细胞剥离方法,其特征在于:S6步骤中,将S5中的细胞液倒入注射器内,且细胞液液面没过尼龙毛;用锡箔纸包住注射器,38℃温育60min。。
7.根据权利要求1所述的一种细胞剥离方法,其特征在于:S7步骤中,打开橡胶管的夹头2滴/分钟的速度,将细胞液收集于离心管中。
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