CN110656070A - 一株嗜热兼性厌氧微生物菌株及其应用 - Google Patents

一株嗜热兼性厌氧微生物菌株及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明实施例公开了一株嗜热厌氧微生物菌株64‑1及其应用。该菌种的拉丁文名称为Phaeospirillum sp.，该菌株于2019年8月6日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏号为CGMCC 1.16798，保藏地址为中国北京朝阳区北辰西路1号院3号。该菌株64‑1的16S rDNA基因全长序列为1453bps，根据GenBank的比对结果进行分析，该菌株16S rDNA基因序列与Telmatospirillum siberiense 26‑4b1(T)的16S rDNA基因序列的相似度为92.47％。本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64‑164‑1CGMCC 1.16798对高凝油具有很好的降解作用，且其产生的生物表活剂可降低发酵液表面张力，对高凝油具有很好的乳化分散能力。该菌种及其培养物可用于提高高凝油的采收率。

Description

一株嗜热兼性厌氧微生物菌株及其应用
本申请要求于2019年07月08日提交中国专利局、申请号为201910611014.X、申请名称为一种嗜热兼性厌氧微生物菌株及其应用的中国专利申请的优先权，其全部内容通过引用结合在本申请中。
技术领域
本发明实施例涉及一株新型嗜热兼性厌氧微生物菌株在高凝油开采中的应用，属于微生物提高原油采收率技术范畴。本发明实施例涉及利用该微生物菌株及菌剂作用高凝油，通过改变原油理化性质，增强原油流动性和可驱替性，提高原油采收率。本发明实施例公开的菌株及菌剂因其所具有的性能，可应用于原油开发领域和环保治理领域，但不局限于这些该领域。
背景技术
高凝油是一种特种油资源，具有凝固点高、含蜡高的特点。中国是高凝油资源最为丰富的国家之一，高凝油资源量可达5×109t以上，占世界高凝油资源的30％～40％，其中，辽河盆地的资源最为丰富。随着油藏开发进入中后期和国际油价持续低迷，油田水驱效果达到极限，而化学驱油成本过高，急需一种经济、环保、高效地提高高凝油采收率的技术。
利用微生物提高原油采收率(MEOR)技术，因其成本低，适用范围广，逐渐成为油田增产有效的技术手段，并在国内外矿场试验中初见成效。国外研究报道较多的国家主要有俄罗斯和美国，其中，美国侧重于研究外源微生物采油技术，俄罗斯侧重于研究内源微生物采油技术。外源微生物采油技术主要是通过生物工程手段研究开发包括基因工程菌在内的高效菌种，但存在微生物菌种与地层环境条件的配伍性和适用性差，以及菌种褪化变质等问题。因为受到生物安全性的限制，工程菌的应用目前仅限于在反应器中生产微生物代谢物如生物表面活性剂、生物聚合物和生物酶等，然后再将这些代谢物用于提高石油的采收率。相对而言，内源微生物采油技术则比较较简单适用，内源菌适用油藏条件，不存在生物安全问题，关键是找到高效的内源微生物采油功能菌。
油藏的温度、盐度、pH、压力等环境因素多样，要求采油功能菌株需要具备很好的适应能力。因此，采油功能菌株在油藏开采中的成功应用取决于该功能菌株能否适应油藏油层环境条件并快速生存繁殖，进而起到提高原油采收率的功效。尤其对于一些高温油藏，采油功能菌株是否能够在高温条件下存活成为首要考虑的因素。采油功能菌株需要在高温、含氧量低的油藏环境条件下，利用原油为营养物质生长繁殖、作用原油产生次级代谢产物，进而发挥提高原油采收率的作用。
目前用于微生物采油的菌种不能适应温度高于65℃的油藏，而且无法在无氧或低氧浓度的油藏条件下产生有效作用浓度的代谢产物，起到提高原油采收率的作用。因此研究在高温、厌氧油藏条件，微生物产生物表活性剂，乳化、降解高凝油性能，筛选出能够耐高温、且适应含氧量低的油藏环境本源微生物，开发可降低高凝油粘度和凝固点的新型采油功能菌株及菌剂，是利用微生物提高原油采收率的关键。
发明内容
为此，本发明实施例提供一株新型嗜热兼性厌氧微生物菌株及其应用，以解决现有技术中的菌株应用于高温采油效果差，无法降解高凝油、降低原油粘度和凝固点，以及提高高凝油采收率幅度低的问题。
为了实现上述目的，本发明实施例提供如下技术方案：
一株嗜热兼性厌氧微生物菌株64-1，其拉丁文名称为Phaeospirillum sp.，该菌种于2019年8月6日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏号为CGMCC 1.16798，保藏地址为中国北京朝阳区北辰西路1号院3号。
优选的，所述微生物菌株的16S rDNA的核苷酸序列如Seq ID No.1所示。
本发明实施例另一方面还提供一种微生物菌剂，包括上述所述的微生物菌株及其代谢产物。
本发明实施例的微生物菌剂还包括营养剂，所述营养剂包括以下质量百分数组分：玉米浆干粉0.4％、磷酸氢二铵0.2％、硝酸钠0.2％，酵母粉0.05％，余量为水。
本发明实施例的微生物菌剂还包括利用上述所述微生物菌株发酵产生的生物表面活性剂；
所述生物表面活性剂为蛋白多糖类，且所述表面活性剂的CMC值为22.30mg/L。
本发明实施例另一方面还提供一种降解高凝油的方法，包括利用上述所述的微生物菌株降解高凝油的过程。
优选的，其中，包括利用所述微生物菌株降低所述高凝油中的非烃类、胶质和沥青质相对含量，增加饱和烃相对含量的过程。
本发明实施例另一方面还提供一种降低高凝油粘度和凝固点方法，包括利用上述所述的微生物菌株处理所述高凝油的过程。
本发明实施例的另一方面还提供一种提高高凝油采收率方法，包括利用上述所述的微生物菌株驱油的过程。
本发明实施例中，所谓的高凝油是指凝固点高于35℃，且含蜡量大于30％的原油。
本发明实施例中，嗜热兼性厌氧新型微生物菌种64-1在厌氧条件下发酵产生物表面活性剂，能够乳化高凝油，该菌株从油层温度为70℃的油藏油水样中分离、纯化获得。
本发明实施例中，嗜热兼性厌氧菌株64-1，其拉丁文名称为Phaeospirillum sp.，该菌种于2019年8月6日保藏保藏于中国微生物保藏管理委员会普通微生物中心，保藏编号为CGMCC 1.16798，保藏地址为中国北京朝阳区北辰西路1号院3号。
本发明实施例具有如下优点：
本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1对高凝油具有很好的降解作用。在兼性厌氧条件下70℃培养168小时后嗜热兼性厌氧菌株JD-641对高凝油的降解率达50％；高凝油的四组分分析表明，该菌株降解了高凝油中的非烃类、胶质和沥青质组分，能够将大于C30的正构烷烃和蜡质降解为C10–C30的短链烷烃；将高凝油的凝固点由49℃降低到40℃，降凝率达到18.37％；将高凝油的粘度由68mPa·s1降低到22mPa·s1，降粘率达到68.65％。
本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1的发酵液表面张力显著降低，从70.68mN/m降至28.12mN/m，降低了60.22％；其CMC值为22.30mg/L。此外嗜热兼性厌氧菌株64-1CGMCC1.16798发酵液高凝油具有很好的乳化能力，乳化指数EI-24值高达90％。
本发明实施例的嗜热兼性厌氧新型菌株能够降低高凝油粘度和凝固点，乳化高凝油，增强高凝油的流动性，提高高凝油的采收率，与单纯水驱的对照相比，在70℃条件下提高辽河高凝油采收率达9.21％。
附图说明
图1为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1的菌种鉴定系统发育树分析图；
图2为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1的扫描电镜图；
图3为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1在兼性厌氧不同温度条件下的生长曲线图；
图4为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1在兼性厌氧不同盐度条件下的生长曲线图；
图5A为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1在兼性厌氧条件下作用原油前的气相色谱图；
图5B为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1在兼性厌氧条件下作用原油后的气相色谱图；
图6为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1产生的生物表面活性剂活性及CMC值；
图7为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1产生的生物物表面活性剂定性鉴定，其中：A为钼酸铵-高氯酸定性检测脂肽，B为茚三酮方法定性检测蛋白质，C为蒽酮乙酸乙酯-硫酸方法定性检测还原性多糖；
图8为本发明实施例的嗜热兼性厌氧菌株64-1的物理模拟驱油实验效果图。
具体实施方式
以下由特定的具体实施例说明本发明的实施方式，熟悉此技术的人士可由本说明书所揭露的内容轻易地了解本发明的其它优点及功效，显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
实施例1、嗜热兼性厌氧菌株64-1的筛选
取辽河油田某区块油井产出液5mL接种于盛有100mL富集培养基容量为200mL三角瓶中，其中，该富集培养基的组分包括：玉米浆干粉0.4％、磷酸氢二铵0.2％、硝酸钠0.2％、酵母粉0.05％，150rpm、70℃恒温摇床培养7天，取10ml培养液重新放入一个盛有100mL富集培养基的容量为200mL三角烧瓶中培养，如此重复5次。
将获得的富集物进行系列稀释，取0.1mL涂布在固体富集培养基(含琼脂1％)平板培养基，70℃培养。然后，挑取典型菌落，反复划线3～4次，得到单一形态的菌落。
实施例2、嗜热兼性厌氧菌株64-1的鉴定
用牙签挑取实施例1中琼脂固体培养基上的单菌落，进行菌株的16S rDNA基因扩增，使用通用引物27F和1492R，如表1所示。其反应体系为50μL：2×Taq PCR mix 25μL、27F1.0μL、1492R 1.0μL、ddH2O 23.0μL。PCR反应程序为：变性94℃5min、94℃30S、57℃30S、72℃1min 30S，30个循环、延伸72℃10min，保存4℃。
使用0.8％琼脂糖凝胶电泳检测PCR扩增产物，点样：3μL PCR产物+1μL Gel-Red，电泳条件是150V 15min。检测结果为阳性的样品送样华大基因测序。
表1
Figure BDA0002268313820000061
获得菌株64-1的16S rDNA基因全长序列为1453bps，根据GenBank的比对结果进行分析，该菌株16S rDNA基因序列与Telmatospirillum siberiense26-4b1(T)的16S rDNA基因序列的相似度为92.47％。该菌株16S rDNA基因全长序列(1453bps)在GenBank中的比对结果及微生物系统发育树见图1。菌株64-1的16S rDNA基因序列与已报道的菌株16S rDNA基因序列的相似度均小于97％，表明本发明实施例筛选的嗜热兼性厌氧菌株64-1CGMCC1.16798为一新的微生物菌种。
实施例3、嗜热兼性厌氧菌株64-1的形态特征、生理生化实验
1、供试菌株
本发明实例1所分离的嗜热兼性厌氧菌株64-164-1CGMCC 1.16798。
2、实验方法
参照《Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology》实验方法，检测供试菌株的革兰氏染色、菌体大小、形态，生长温度、pH和氯化钠耐受范围，并通过穿刺实验检测菌株的厌氧特征。
3、实验结果
供试菌株形态学特征：革兰氏染色呈阴性。如图2所示，扫描电镜下细胞呈短杆状、无鞭毛，细胞大小为0.6-0.8μm×1.0-1.2μm。
如图3所示，供试菌株生理生化特征：菌株生长温度范围37℃～80℃，最适生长温度为70℃；生长pH范围为5-11，最适生长pH为7.0；如图4所示，盐度耐受范围为0～8％，最适生长氯化钠含量为1.0％；穿刺实验表明该菌株64-1为兼性厌氧菌。
实施例4、本发明嗜热兼性厌氧菌株64-1在兼性厌氧条件下对高凝油的降解实验
1、供试菌株
本发明实例1所分离的嗜热兼性厌氧菌株64-1CGMCC 1.16798。
2、实验方法
活化供试菌株64-1至对数生长期，以10％(v/v)的接种量接种于三角瓶中，瓶中盛有100mL以高凝油(5％，w/w)为唯一碳源的无机盐培养基(磷酸氢二铵0.2％、硝酸钠0.2％、0.05％酵母粉)。兼性厌氧条件将无菌氮气通入瓶中，封口膜封口，置于100rpm、70℃恒温摇床培养。
培养168小时后，收集培养液中原油，并以不接种菌株处理的高凝油作为对照样，使用高压气相色谱法分析供试菌株作用前后高凝油组分变化。
检测原油降解率的方法如下：将活化菌液以10％(v/v)接种于三角瓶中，瓶中盛有100mL以5％高凝油为唯一碳源的培养基(磷酸氢二铵0.2％、硝酸钠0.2％、0.05％酵母粉)的250mL三角瓶中，兼性厌氧条件是将无菌氮气通入摇瓶，封口膜封口，置于100rpm、70℃恒温摇床培养30天后测定高凝油的降解率。
油类测定方法根据中华人民共和国石油天然气行业标准《岩石中可溶有机物及原油族组分分析》(SY/T 5119-2008)分析微生物作用前后原油组分(饱和烃、芳香烃、胶质、沥青质)的变化。降解率(w/w,％)＝(1-剩余原油量)/加入原油量×100％，并采用高压气相色谱法分析高凝油的降解情况。
3、实验结果
姥鲛烷(Pr)/nC17、植烷(Ph)/nC18是衡量微生物降解原油的参数，比值越小表明原油被降解为短链烷烃越多，表2为高压气相色谱法分析高凝油的降解情况，由图5和表2可知，原油流动性增加。w(nC21-)/w(nC22+)和(C21+C22)/(C28+C29)也是描述原油组分变化的重要参数。当w(nC21-)/w(nC22+)和(C21+C22)/(C28+C29)增加时，表明原油中重质组分含量相对减少，由图5和表2可知，轻质组分含量增加。
表2
供试菌株在兼性厌氧条件下培养30天对辽河高凝油的降解率达50％。供试菌株作用前后原油族组成的变化分析如表3所示，原油非烃、胶质、沥青质含量相对降低，从作用前22.45％降低到17.64％；芳烃含量明显减少，从作用前的36.63％降低到28.69％；饱和烃含量相对增加，从作用前的41.32％增加到53.67％。
表3
Figure BDA0002268313820000082
实施例5、嗜热兼性厌氧菌株64-1在兼性厌氧条件下降低高凝油的凝固点和粘度实验
1、供试菌株
本发明实施例1所分离的嗜热兼性厌氧菌株64-1CGMCC 1.16798。
2、实验方法
活化供试菌株64-1至对数生长期，以10％(v/v)的接种量接种于三角瓶中，瓶中盛有100mL以高凝油(5％，w/w)为唯一碳源的无机盐培养基(磷酸氢二铵0.2％、硝酸钠0.2％、0.05％酵母粉)。兼性厌氧条件将无菌氮气通入瓶中，封口膜封口，置于100rpm、70℃恒温摇床培养。培养30天后，收集作用后的原油，8000rpm离心2min脱水，根据中华人民共和国国家标准《凝固点测定》(GB510-83)测定原油凝固点，在50℃条件下使用BROOKFIELD-DV-ⅢUTRA粘度计按照石油天然气行业标准SY/T 0520-2008测定原油粘度变化，并以不接种菌株处理的原油样品作为对照。
3、实验结果
供试菌株64-1在兼性厌氧条件下将高凝油的凝固点由49℃降低到40℃，降凝率达到18.37％。
供试菌株64-1在兼性厌氧条件下将高凝油的粘度由68mPa·s1降低到22mPa·s1，降粘率达到68.65％。
本发明嗜热兼性厌氧菌株64-1可在兼性厌氧条件下降低高凝油的凝固点和粘度，在提高高凝油采收率方面具有很好的应用潜力。
实施例6、嗜热兼性厌氧菌株64-1在兼性厌氧条件下产生物表面活性剂实验
1、供试菌株
本发明实施例1所分离的嗜热兼性厌氧菌株64-1CGMCC 1.16798。
2、实验方法
活化供试菌株64-1至对数生长期，以10％(v/v)的接种量接种于三角瓶中，三角瓶盛有100mL发酵产培养基(玉米浆干粉0.4％、磷酸氢二铵0.2％、硝酸钠0.2％、酵母粉0.05％)。兼性厌氧条件是将无菌氮气通入瓶中，封口膜封口，置于100rpm、70℃恒温摇床培养168小时后，取10ml发酵液8000rpm离心2min，取上清液，乳化原油并测定乳化指数，同时使用表面张力仪测定发酵液表面张力。
乳化指数测定方法：取一支25ml刻度试管，取5mL菌株发酵液加入5mL高凝油，振荡器震荡2min，50℃静置24小时后测定EI-24值。EI-24(％)＝(乳化层高度/液体总高度)×100％。如果EI-24>50％，即认为乳化液是稳定的。
表面张力测定方法：取2mL发酵液，8000rpm离心5min，取上清液1mL，使用表面张力仪测定发酵液表面张力。
蒽酮乙酸乙酯-硫酸定性检测还原性糖方法：取离心后的发酵液2mL，装入洁净干燥试管，先向试管中加入0.5mL蒽酮乙酸乙酯试剂(取分析纯蒽酮2g溶于50mL乙酸乙酯中)，再加入5mL浓硫酸，轻微震荡后，放入沸水浴中，保温5min取出冷却至室温。以去离子水作阴性对照，以槐糖脂、鼠李糖脂溶液作阳性对照。
茚三酮定性检测蛋白质方法：取离心后的发酵液2mL，装入洁净干燥试管，加入5mL乙醇-茚三酮(取0.05g分析纯茚三酮溶于50mL乙醇中，避光保存)；充分震荡后，放入沸水浴中，保温10min取出冷却至室温。以去离子水、脂肽溶液分别作阴性、阳性参照。
钼酸铵-高氯酸定性检测脂肽类方法：取再离心后的发酵液2mL，装入洁净干燥试管若干；向试管中加入5mL钼酸铵显色剂(钼酸铵2g溶于25ml水，加入1mol/L HCl 30mL，加入高氯酸15mL(6％)，混匀溶解)；充分震荡后，放入沸水浴中，保温10min取出冷却至室温。以去离子水、脂肽溶液分别作阴性、阳性参照。
3、实验结果
供试菌株发酵液对高凝油具有很好的乳化能力，EI-24值高达90％。
供试菌株发酵液的表面张力从70.68mN/m降至28.12mN/m，其CMC值为22.30mg/L如图6所示。
生物表面活性剂鉴定结果表明，蒽酮乙酸乙酯-硫酸定性检测还原性糖结果呈阳性，茚三酮定性检测蛋白质的结果为阳性，钼酸铵-高氯酸定性检测脂肽类的结果为阴性，推测菌株64-1产蛋白多糖类生物表面活性剂，结果如图7所示。
实施例7、嗜热兼性厌氧菌株64-1在70℃条件下物理模拟驱油试验
1、供试菌株
本发明实例1所分离的嗜热兼性厌氧菌株64-1CGMCC 1.16798。
2、实验方法
具体实验过程为：石英砂装填模型→氮气测定渗透率→岩心抽真空饱和地层水→水测定渗透率→注入高凝油至饱和→水驱至含水率为98％→注入供试菌株发酵液、菌体浓度为108CFU/mL、注入量为0.5PV→70℃恒温培养7天→水驱至含水达98％。
发酵液制备：活化菌株，5％(v/v)接种于培养基(玉米浆干粉0.4％、磷酸氢二铵0.2％、硝酸钠0.2％)、70℃、150rpm培养2天。
3、实验结果
供试菌株或其发酵液能够提高高凝油的采收率。通过注入供试菌株及其发酵液可降低产出液中的含水率，提高原油产量，且岩心压力稳定在较低的水平。与单一水驱相比，最终提高高凝油采收率达9.21％，微生物物理模拟驱油试验数据统计结果如图8和表4所示。
表4
Figure BDA0002268313820000111
实验结果表明，通过本发明实施例所分离的嗜热兼性厌氧菌株64-1及其发酵液可用于提高高凝油的采收率。
虽然，上文中已经用一般性说明及具体实施例对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之作一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。
Figure BDA0002268313820000121
Figure BDA0002268313820000131
序列表
<110> 北京众合华创生物环保科技有限公司，王小通
<120> 一株嗜热兼性厌氧微生物菌株及其应用
<130> GG19519288A
<160> 3
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 1453
<212> DNA
<213> Telmatospirillum Sp.
<400> 1
ggagagtttg atcctggctc agaacgaacg ctggcggcat gcctaacaca tgcaagtcga 60
acgaaggctt cggccttagt ggcgcacggg tgagtaacgc gtgggaatct gccttgcagt 120
gggggataac gtcgggaaac tgacgctaat accgcatacg cccttcgggg gaaagattta 180
tcgctgcaag atgagcccgc gtcggattag ctagttggtg gggtaacggc ccaccaaggc 240
gacgatccgt agctggtctg agaggatgat cagccacact gggactgaga cacggcccag 300
actcctacgg gaggcagcag tggggaatat tggacaatgg gggcaaccct gatccagcaa 360
tgccgcgtga gtgatgaagg ccttagggtt gtaaagctct ttcgcacgcg acgatgatga 420
cggtagcgtg agaagaagcc ccggctaact tcgtgccagc agccgcggta atacgaaggg 480
ggctagcgtt gttcggaatt actgggcgta aagcgcacgt aggcggtccg ttaaattaga 540
agtgaaagcc ctgggctcaa cccgggaact gcttttaaga ctggcgggct tgaatccatg 600
agaggtcagt ggaattccca gtgtagaggt gaaattcgta gatattggga agaacaccag 660
tggcgaaggc gactgactgg cgtggtattg acgctgaggt gcgaaagcgt ggggagcaaa 720
caggattaga taccctggta gtccacgccg taaacgatga gtgctagatg tcgggaagct 780
tgcttctcgg tgtcgcagct aacgcattaa gcactccgcc tggggagtac ggccgcaagg 840
ttaaaactca aaggaattga cgggggcccg cacaagcggt ggagcatgtg gtttaattcg 900
aagcaacgcg cagaacctta ccagcccttg acatccgggt cgcggccgcc agagatggca 960
gccttcagtt cggctggacc cgagacaggt gctgcatggc tgtcgtcagc tcgtgtcgtg 1020
agatgttggg ttaagtcccg caacgagcgc aaccctcatc gctagttgcc agcggttcgg 1080
ccgggcactc tagcgaaact gccggtgaca agccggagga aggtggggat gacgtcaagt 1140
cctcatggcc cttacgggct gggctacaca cgtgctacaa tggtgactac aatgggcagc 1200
gacctcgcga ggggaagcta atctccaaaa gtcatctcag ttcggattgc actctgcaac 1260
tcgagtgcat gaagtcggaa tcgctagtaa tcgcggatca gcatgccgcg gtgaatacgt 1320
tcccgggcct tgtacacacc gcccgtcaca ccatgggagt tggttttacc cgaagccggt 1380
gagctaacct caaggaggca gccgaccacg gtaaggtcag cgactggggt gaagtcgtaa 1440
caaggtagcc gta 1453
<210> 2
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
agagtttgat cctggctca 19
<210> 3
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
ggttaccttg ttacgactt 19

Claims (9)

1.一株嗜热兼性厌氧微生物菌株64-1，其拉丁文名称为Phaeospirillum sp.，该菌种于2019年8月6日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏号为CGMCC1.16798，保藏地址为中国北京朝阳区北辰西路1号院3号。
2.如权利要求1所述的嗜热兼性厌氧微生物菌株，所述微生物菌株的16S rDNA的核苷酸序列如Seq ID No.1所示。
3.一种微生物菌剂，包括权利要求1所述的微生物菌株及其代谢产物。
4.权利要求3所述的微生物菌剂，还包括营养剂，所述营养剂包括以下质量百分数组分：玉米浆干粉0.4％、磷酸氢二铵0.2％、硝酸钠0.2％，酵母粉0.05％，余量为水。
5.权利要求4所述的微生物菌剂，还包括利用权利要求1所述微生物菌株发酵产生的生物表面活性剂；
所述生物表面活性剂为蛋白多糖类，且所述表面活性剂的CMC值为22.30mg/L。
6.一种降解高凝油的方法，包括利用权利要求1所述的微生物菌株降解高凝油的过程。
7.权利要求6所述的方法，其中，包括利用所述微生物菌株降低所述高凝油中的非烃类、胶质和沥青质相对含量，增加饱和烃相对含量的过程。
8.一种降低高凝油粘度和凝固点方法，包括利用权利要求1所述的微生物菌株处理所述高凝油的过程。
9.一种提高高凝油采收率方法，包括利用权利要求1所述的微生物菌株驱油的过程。
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