CN110331107A - 一种地衣芽孢杆菌制剂及制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种地衣芽孢杆菌制剂及制备方法。以豆腐黄浆水为培养基发酵制备发酵液,按质量比4wt%的蔗糖,10wt%淀粉以及86wt%的地衣芽孢杆菌BL14发酵液,通过冷冻干燥获得。该菌制剂中菌BL14的存活率高达94.69%,在人工模拟胃液和胰液环境中37℃处理4h后,菌存活率保留19.35%和84.94%,内切葡聚糖酶活力保存率分别为27.50%和77.46%,检测到的菌落数分别为3.3*107(cfu/ml)和13.3*107(cfu/ml)。该菌制剂对猪饲料、鸡饲料和牛饲料有显著的糖化作用,添加至猪、鸡和牛等畜禽饲料中,有望提高畜禽对饲料的吸收利用效率。
Description
技术领域
本发明属于菌制剂技术领域,具体涉及一种地衣芽孢杆菌制剂及制备方法。
背景技术
地衣芽孢杆菌能够产生多种生物活性物质,包括多糖、蛋白质、非肽类物质和一些小分子活性物质。可调整菌群失调达到治疗目的,可促使机体产生抗菌活性物质、杀灭致病菌。能产生抗活性物质,并具有独特的生物夺氧作用机制,能抑制致病菌的生长繁殖,通过调整菌群失调达到治疗腹泻腹痛的目的能改善肠道健康、提高宿主免疫力和抗氧化活性指标,促进动物生长、提高动物生产性能。2008年公布的《饲料添加剂品种目录》中,地衣芽孢杆菌被批准为饲用微生物添加剂,被认为是较为理想的工业生产菌株。
豆腐黄浆水,是豆腐在生产过程中形成的豆腐沥水,其产生量是大豆干重的3-5倍。豆腐黄浆水固形物含量约占1%,主要由可溶性蛋白质、低聚糖、维生素、脂类、微量元素等组成。豆腐黄浆水是豆腐废水的主要组成部分,对豆腐黄浆水进行开发利用,则可以减少其对环境的污染,帮助企业节约处理污水产生的高成本的同时,产生出附加的有价值的产品。
本发明以豆腐黄浆水为发酵原料,生产出地衣芽孢杆菌制发酵液,通过最佳芽孢形成率发酵工艺参数筛选、保护剂和载体、加入量以及干燥工艺筛选,获得地衣芽孢杆菌制剂及制备工艺,为地衣芽孢杆菌制剂更好的应用于畜禽养殖,提高饲料中纤维素的糖化过程,提高畜禽对饲料的吸收利用效率提供帮助。
发明内容
本发明的目的在于提供一种地衣芽孢杆菌制剂及制备方法。本发明的地衣芽孢杆菌制剂制成粉末,其中地衣芽孢杆菌菌存活率高,为该菌制剂更好的应用于畜禽饲料,提高饲料中纤维素的糖化作用,提高畜禽对饲料的吸收利用效率提供帮助。
为实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
一种地衣芽孢杆菌制剂,原料包括:地衣芽孢杆菌BL14发酵液,蔗糖、淀粉;按重量百分数计包括:地衣芽孢杆菌制剂发酵液86%、蔗糖 4%、淀粉 10%。
一种地衣芽孢杆菌制剂的制备方法,包括以下步骤:
(1)地衣芽孢杆菌BL14母液的制备:将20%甘油保存的地衣芽孢杆菌BL14按 1wt%的接种量接种入基础培养基中(蛋白胨10 g/L、牛肉膏5 g/L、氯化钠5 g/L、pH7.0,121℃高压灭菌25min),37℃ 160r/min恒温培养24h,得菌BL14母液。
(2)地衣芽孢杆菌制剂发酵液的制备:以豆腐黄浆水为培养基,加浓度为10wt%的NaOH溶液调节豆腐黄浆水的pH值至7.0,121℃高压灭菌30min,按 1wt%的接种量接种地衣芽孢杆菌制剂BL14母液,160r/min,35℃恒温培养48h,使其达到最高值,获得芽孢形成率大于80%的地衣芽孢杆菌制剂BL14发酵液;
(3)按质量百分比为步骤(1)制得的发酵液86%,蔗糖4%,淀粉10%,将三种原料混合均匀,采用-80℃预冷冻,温度-50℃,真空度23帕冷冻干燥工艺干燥48h,得地衣芽孢杆菌制剂。
一种地衣芽孢杆菌制剂在畜禽饲料中的应用。
本发明的有益效果在于:
通过发酵时间和发酵温度筛选,获得在35℃恒温培养72h后,地衣芽孢杆菌制剂BL14的芽孢形成率最佳,通过对不同保护剂及载体的筛选,获得加入量为4%的蔗糖保护剂和10%淀粉载体对地衣芽孢杆菌制剂BL14有很好的保护作用,通过不同的干燥工艺筛选,获得冷冻干燥工艺对枯草芽孢杆菌存活率保护效果最好,该菌制剂经人工模拟胃液和胰液后,菌落数每毫升依然保留有高达107活菌数。该菌制剂可显著促进猪饲料、牛饲料和鸡饲料中纤维素向多糖的转化,有利于提高畜禽对饲料的吸收利用效率,可应用于畜禽养殖领域,具有极好的应用价值。
具体实施方式
为了使本发明所述的内容更加便于理解,下面结合具体实施方式对本发明所述的技术方案做进一步的说明,但是本发明不仅限于此。
所用蔗糖和淀粉为市场上购买获得,所用的黄浆水为豆腐加工厂在豆腐加工过程中废弃的豆腐沥水,本发明中的地衣芽孢杆菌制剂BL14为实验室自有菌种,具体实施技术如下。
实施例1 最佳芽孢形成率的获得
1.1 发酵时间对菌产芽孢的影响
地衣芽孢杆菌BL14母液的制备:将20%甘油保存的地衣芽孢杆菌BL14,按1wt%的接种量接种入基础培养基中(:蛋白胨10 g/L、牛肉膏5 g/L、氯化钠5 g/L、pH7.0,121℃高压灭菌25min),37℃ 160r/min恒温培养24h,得菌BL14母液。
将地衣芽孢杆菌BL14发酵母液根据1wt%的接种量置于豆腐黄浆水培养基中,160r/min,37℃恒温培养,分别于培养12、24、36、48、72、96h时取样,采用孔雀绿染色法对产生的芽孢进行计数,根据芽孢(绿色)和营养细胞(红色)计算芽孢产生率,计算公式为:芽孢产生率=芽孢数/(芽孢数+营养细胞数)*100%,结果见1。菌BL14在发酵至48h时,芽孢产生率最高,达到70.99%。
表1 不同培养时间芽孢形成率(%)
1.2不同温度条件下地衣芽孢杆菌BL14的芽孢形成率
制备菌BL14母液,按1wt%的接种量接种于豆腐黄浆水培养基中,分别置于20、25、30、35和40(℃)温度条件下培养,160r/min培养,菌BL14在发酵至48h时,取样检测芽孢数,结果见表2。可知,菌BL14在发酵温度为35℃时芽孢形成率最佳,为82.01%。
表2 不同培养温度条件下芽孢形成率 (%)
实施例2 保护剂筛选
2.1最佳保护剂种类的筛选
以豆腐黄浆水为培养基发酵按实施例1的最佳条件制备BL14发酵液,在100ml的发酵液中分别加入10 wt%甘油,10 wt%脱脂奶粉,10wt %海藻糖,10wt %麦芽糊精,10 wt%蔗糖,0.5 wt%海藻酸钠,在25℃下常温烘干,将干燥后的各样品重新定容至100ml,取1ml加入9mL生理盐水,稀释至不同倍数,平板涂布,测定菌落数,以烘干前为对照,计算存活率,存活率=(烘干样品定容后1ml样液的活菌数/发酵液加入保护剂前1ml样液的活菌数)*100%。结果见表3:从表中可知,蔗糖对地衣芽孢杆菌BL14保护效果最佳,经过常温烘干后,菌的存活率可达91.1±2.5%,显著高于其他处理。
表3.不同保护剂对菌的存活率影响
2.2 最佳保护剂加入浓度筛选
以蔗糖为保护剂,在100mL的BL14发酵菌液中加入2wt%-12wt %量的蔗糖,常温烘干后,将烘干样品用100mL的生理盐水稀释,取100ul稀释至-6,-8次方,取100ul涂布计数,菌落数以log10(cfu/ml)计,结果见表4。从表中可知,蔗糖加入量为4wt%时,菌BL14烘干获得的菌落数最大。
表4.最佳保护剂加入量筛选
实施例3 载体筛选
3.1最适载体种类筛选
以豆腐黄浆水为培养基,在实施例1的最佳条件下发酵制备BL14发酵液,在100ml的发酵液中分别加入10wt%麦耚,10wt%米糠,10wt%稻壳,10wt%豆粕,10wt%淀粉,在25℃下常温烘干,将干燥后的各样品重新定容至100ml,取1ml加入9mL生理盐水,稀释至不同倍数,平板涂布,测定菌落数,以烘干前为对照,计算存活率。从表5可知,米糠,稻壳和淀粉对作为载体对地衣芽孢杆菌BL14保护效果较好,三者间不存在显著差异,但以淀粉为载体时,菌的存活率可达92.4±0.9%,因此选淀粉为菌BL14的载体。
表5.不同载体对菌存活率的影响
3.2最适载体加入量筛选
以淀粉为保护剂,在100mL的BL14发酵菌液中加入2wt %-10wt %量的淀粉,常温烘干后,将烘干样品用50mL的生理盐水稀释,取100ul稀释至-6,-8次方,取100ul涂布计数,菌落数以log10(cfu/ml)计,结果见表6。从表中可知,淀粉以加入量为10wt%时,菌BL14烘干获得的菌落数最大。
表6.最佳载体加入量筛选
实施例4 成品制备工艺
以豆腐黄浆水为培养基,在实施例1最佳条件下发酵制备BL14发酵液,在100ml菌BL14中分别加入4wt%蔗糖和10wt%粉淀,混合均匀后,采用以下干燥工艺进行烘干,其中常温烘干:25度,烘干72小时。喷雾干燥:进口温度85度,出口温度60度。冷冻干燥:-80度预冷冻,温度-50度,真空度23帕,干燥48h。60度烘干:60度,烘干24小时,干燥结果见表7。从表7可知,干燥条件较好的工艺为常温干燥和冷冻干燥,由于常温干燥容易使样品出现结块,干燥不均衡等问题,固采用冷冻干燥最最佳干燥工艺。
表7.不同干燥条件对菌保护效果的影响
实施例5 成品成活率计算
分别加最佳保护剂、载体和最佳保护剂和载体的混合物以最佳加入量加入发酵菌液中,冷冻干燥,以未加保护剂和载体的发酵原液为对照。在100ml发酵液中单独加入4wt%蔗糖和10wt%淀粉,以及加入4wt%蔗糖和10wt%淀粉混合物后,冷冻干燥,将干燥后的各样品重新定容至100ml,取1ml加入9mL生理盐水,稀释不同倍数后进行菌落计数。结果见表8,与原液相比,加入保护剂和载体存活率显著提高,统计显示加入的三处理间未见有显著差异,单独加入4wt%蔗糖和10wt%淀粉,以及加入蔗糖和淀粉保护剂混合物保护后,与未加相比,存活率显著提高,统计显示加入的三处理间未见有显著差异,加入蔗糖+淀粉的混合物后菌BL14的存活率可高达94.49%,菌落数达9.8*108(cfu/ml)。
表8.几种保护剂在冷冻干燥条件下各菌存活率
实施例6. 酶菌制剂体外胃肠模拟环境存活状况分析
肠道模拟实验:分别向450mL人工胃液(KCl 6.9mmol/L、KH2PO4 0.9 mmol/L、NaHCO3 25mmol/L、NaCl 47.2 mmol/L、MgCl2 0.1 mmol/L、(NH4)2CO3 0.5mmol/L、CaCl2 0.075 mmol/L,用HCl调节pH值至3.0,临用前加入胃蛋白酶至2000U/mL)和人工肠液(KCl 6.8mmol/L、KH2PO4 0.8 mmol/L、NaHCO3 85 mmol/L、NaCl 38.4 mmol/L、MgCl2 0.33 mmol/L、CaCl2 0.6mmol/L,用HCl调节pH值至7.0,临用前加入胰蛋白酶至 100U/mL。)中加入50g的BL14菌制剂,ZRS-8GD智能溶出实验仪器设定温度37℃,搅拌速度120转/min,分别于0h,2h,4h时取出5mL样品,待测。取1mL样品与9mL生理盐水中,稀释至10-5,再取100uL涂布。菌落计数计算存活率,DNS法检测分析内切葡聚糖酶活力保持情况。结果见表9,从表中可知,经过人工模拟胃液处理后,菌BL14的存活率出现了明显的下降,处理2h后,存活率分别为22.29 %,菌落数分别为3.8*107 cfu/ml,经过处理后内切葡聚糖酶酶活的保存率也出现了明显的下降,但下降幅度低于菌落数。经过人工模拟胰液环境后,菌BL14受胰液影响较小,处理4h后,存活率高达84.94%,菌落数达13.3*107 cfu/ml,内切葡聚糖酶活性保持率为77.46%,处于较高水平。
表9.菌制剂体外模拟胃液和胰液的存活状况分析
实施例7. 酶菌制剂对高纤维物质的糖化力检测
选取猪饲料(福建省华龙集团饲料有限公司)、鸡饲料(福建省华龙集团饲料有限公司)和牛饲料(河北冀泰饲料有限公司)为糖化标的,将各饲料与水按质量比1:1的比例加水混合均匀,分别称取100g各类处理饲料接种5wt%的BL14地衣芽孢杆菌制剂,置于37℃恒温发酵,在0、2、9、12、24(h)取样检测总糖含量,每一处理三个重复,结果见表8。从表中可知:与未发酵相比,经过2h发酵后,所有饲料的总糖含量都出现了显著的上升,说明菌BL14对各饲料中的纤维素有糖化效果,添加菌制剂将有利于畜禽对饲料的吸收利用效率。总体上,菌BL14对猪饲料的碳化力在培养2h时就出现显著的差异,在之后的培养中总糖含量基本未出现显著差异,这可能与总糖被菌进一步的代谢有关;发酵后,鸡饲料在发酵2-12h总糖含量先后达到最高值,在发酵24h后,出现了显著的下降,推测总糖被菌进一步的代谢导致;牛饲料发酵后,直到发酵24h,牛饲料的总糖一直呈上升趋势,这可能与牛饲料中纤维素含量高有关。
表10 酶菌制剂的对饲料的糖化力(mg/mL)
以上所述仅为本发明的较佳实施例,凡依本发明申请专利范围所做的均等变化与修饰,皆应属本发明的涵盖范围。
Claims (3)
1.一种地衣芽孢杆菌制剂,其特征在于:原料包括地衣芽孢杆菌BL14发酵液,蔗糖、淀粉;按重量百分数计包括:地衣芽孢杆菌制剂发酵液86%、蔗糖 4%、淀粉 10%。
2.如权利要求1所述一种地衣芽孢杆菌制剂的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)地衣芽孢杆菌BL14母液的制备:将20%甘油保存的地衣芽孢杆菌BL14按 1wt%的接种量接种入基础培养基中,37℃ 160r/min恒温培养24h,地衣芽孢杆菌BL14母液;
(2)地衣芽孢杆菌制剂发酵液的制备:以豆腐黄浆水为培养基,加浓度为10wt%的NaOH溶液调节豆腐黄浆水的pH值至7.0,121℃高压灭菌30min,按 1wt%的接种量接种地衣芽孢杆菌制剂BL14母液,160r/min,35℃恒温培养48h,获得芽孢含量大于80 %的地衣芽孢杆菌制剂BL14发酵液;
(3)按重量百分比为步骤(1)制得的发酵液86%,蔗糖4%,淀粉10 %将三种原料混合均匀,采用-80℃预冷冻,温度-50℃,真空度23帕的冷冻干燥工艺干燥48h,得地衣芽孢杆菌制剂。
3.一种如权利要求1所述的地衣芽孢杆菌制剂在畜禽饲料中的应用。
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CN201910654988.6A CN110331107A (zh) | 2019-07-19 | 2019-07-19 | 一种地衣芽孢杆菌制剂及制备方法 |
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---|---|---|---|---|
CN113729112A (zh) * | 2021-11-05 | 2021-12-03 | 山东健源生物科技有限公司 | 一种清除宠物寄生虫毒素的高活性生物制剂及其制备方法 |
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2019
- 2019-07-19 CN CN201910654988.6A patent/CN110331107A/zh not_active Withdrawn
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