CN110257277A - 一种复合菌剂zlm-11及其应用 - Google Patents

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郭长虹
张莹
李欢欢
张旖璐
蔡润
唐璐
陈佳欣
王拓
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    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor

Abstract

本发明提供了一种复合菌剂ZLM‑11,该复合菌剂由粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL‑11和路氏肠杆菌(Enterobacter ludwigii)MJM‑11两株细菌组成。所述菌株均可以1‑氨基环丙烷‑1‑羧酸(ACC)为唯一氮源生长。其中,粘质沙雷氏菌LJL‑11保藏号为CGMCC No.6290,路氏肠杆菌MJM‑11保藏号为CGMCC No.6295,均保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心。该复合菌剂的ACC脱氨酶活性最高可达45.81μmolα‑KA·(mg Pr·h)‑1;随着L‑Trp的浓度增加,其合成IAA的量增加;并具有溶解无机磷、固氮的能力。该复合菌剂可在盐碱胁迫环境下促进植物生长,提高苜蓿产量;并能改善土壤微生态环境,使苜蓿根际土壤pH值、电导率下降,有机质含量增加。

Description

一种复合菌剂ZLM-11及其应用
技术领域
本发明属于微生物肥料领域,具体涉及一种复合菌剂及其应用。
背景技术
土壤盐碱化是一个世界性的环境问题,我国盐碱地的面积逐年增加,盐碱对生态环境和农业耕种具有严重的胁迫作用。盐碱胁迫常引起植物体内代谢紊乱,表现为直接抑制植物生长发育,已经成为限制全球作物产量的重要因素之一。在当今提倡生态效益为重的前提下,利用生物方法改良盐碱地,对保持环境健康和维持土壤生产力具有发展潜力和研究价值。
紫花苜蓿(Medicago sativa L.)属于中等耐盐碱豆科植物,产量高,适口性好,能为畜牧提供优质的植物蛋白,其营养价值丰富,是一种极好的饲料作物,素以“牧草之王”著称。苜蓿根系发达,主根粗大,有较强的耐寒、抗旱、耐瘠薄和再生能力,同时还可以调节土壤的酸碱性,长期种植可促进土壤有机质、全氮在土壤表层的积累,能在盐碱地的改良中充分发挥生物固氮的功能,缓解污染,是改良中轻度盐碱荒地的理想植物,对农业可持续发展有及其重要的意义。
植物根际促生菌 (plant growth-promoting rhizobacteria, PGPR) 作为一种优良的菌株被广泛应用到微生物肥料的生产中,既能防病又 能增产的PGPR生物制剂产业化前景广阔,尤其是PGPR菌株互作制成的复合菌剂更是深受研究者的青睐,比单一接种PGPR菌株的促生效果显著,能够增进肥效,从而大幅度提高农作物产量和品质,在增产的同时,能够减少化肥的使用,改善盐碱地土壤板结状况,对发展可持续农牧业、生态农牧业、绿色农牧业以及保护人类生存环境都有深远影响。
发明内容
本发明目的是提供一种复合菌剂,所述复合菌剂可在盐碱土壤中促进植物生长,植物具体为紫花苜蓿。
本发明所述两个菌株分离自植物根际土壤,以ACC为唯一氮源筛选得到。紫花苜蓿受到盐碱胁迫时,接种含ACC脱氨酶的PGPR,可以通过减少乙烯的合成量,减轻乙烯对植物生长的抑制作用。
本发明提供的复合菌剂ZLM-11,由粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL-11和路氏肠杆菌(Enterobacter ludwigii)MJM-11两株细菌组成。
菌株MJM-11产生吲哚-3-乙酸能力强,IAA能促进植物生长,用该细菌接种苜蓿可以促进根的生长,可以增强植物对非生物胁迫的抗性,调节植物抗胁迫能力。
菌株LJL-11在ACC脱氨酶活性、溶磷、固氮方面表现出较强的能力,通过ACC脱氨酶活性可以降低胁迫诱导产生的乙烯,从而改善盐碱胁迫对苜蓿产生的危害;该菌株分泌有机酸能力强,可降低碱性土壤的pH值。
路氏肠杆菌(Enterobacter ludwigii)MJM-11具有以下特性:
在ADF培养基上形成圆形、不透明、淡黄色、突起光滑、边缘整齐、有粘性的菌落;革兰氏染色菌体呈红色,为革兰氏阴性菌;根据《常见细菌系统鉴定手册》和《伯杰细菌手册》对分离出的菌株进行生理生化的检测和鉴定,表现出接触酶阳性,淀粉水解阳性,吲哚实验阳性。
粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL-11具有以下特性:
在ADF培养基上形成红色、不透明、边缘不规则的菌落;革兰氏染色菌体呈红色,为革兰氏阴性菌;根据《常见细菌系统鉴定手册》和《伯杰细菌手册》对分离出的菌株进行生理生化的检测和鉴定,鉴定出该菌具鞭毛、具荚膜、接触酶、利用柠檬酸盐、利用葡萄糖,可液化明胶,不具芽孢。
本发明提供的复合菌剂中粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL-11和路氏肠杆菌(Enterobacter ludwigii)MJM-11的有效菌数量比例为1:1。
本发明还提供了一种复合菌剂的制备方法。其制备方法包括如下步骤:
将上述粘质沙雷氏菌LJL-11和路氏肠杆菌MJM-11划线至LB培养基中,培养温度28-35℃,培养时间为12-16h。挑取单菌落接种于LB液体培养基中,制备菌悬液;
将粘质沙雷氏菌LJL-11和路氏肠杆菌MJM-11以1:1的菌体数量比例混合作为种子液;
将种子液以1%的体积比接入发酵培养基,初始pH为7,培养温度为28℃,转速为180rpm,振荡培养12~24 h,所得到的培养液即为所述复合菌剂。
该复合菌剂除了具有ACC脱氨酶活性,还能够合成吲哚乙酸、嗜铁素、溶解无机磷。本发明公开了复合菌剂在促进植物生长方面的应用。所述的菌剂为促吲哚乙酸合成的菌剂、促嗜铁素合成的菌剂或溶解无机磷的菌剂中的一种或几种。
与现有技术相比,本发明具有以下有益的技术效果:
1.粘质沙雷氏菌LJL-11和路氏肠杆菌MJM-11对盐碱土壤有较好的适应性。
2.本发明的复合菌剂,充分发挥了菌种间的相互作用,相比于单一菌株,具有明显的促生优势。
本发明复合菌剂可以合成IAA、嗜铁素,溶解难溶无机磷,经大田实地验证,该复合菌剂配方合理,功效稳定,能在盐碱胁迫环境中有效促进植物吸收营养物质,促进植物生长,同时可以帮助植株清除过量超氧阴离子自由基等有害物质,积累渗透保护物质,提高植物的抗盐碱能力,改善作物品质,增加产量,提高土壤肥效。
保藏说明
本发明对上述两种菌种进行了下述保藏:
保藏时间:2012年6月26日,保藏地点:中国,北京。北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC);粘质沙雷氏菌LJL-11保藏号为CGMCC No. 6290,路氏肠杆菌MJM-11保藏号为CGMCC No. 6295。
附图说明
图1为粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL-11和路氏肠杆菌(Enterobacterludwigii)MJM-11的拮抗反应测试结果;
图2为不同pH对复合菌剂生长的影响;
图3为不同盐度对复合菌剂生长的影响;
图4为复合菌剂ACC脱氨酶活性的测定;
图5为复合菌剂吲哚乙酸(IAA)合成含量;
图6为复合菌剂溶解无机磷含量;
图7为复合菌剂固氮能力的测定;
图8为复合菌剂在盐碱胁迫下对苜蓿的促生效果;
图9为接种PGPR菌肥对土壤微生态环境的影响。
具体实施方式
下面结合具体的附图和实施例对本发明做进一步的详细说明,所述是对本发明的解释而不是限定。
下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的实验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量实验,均设置三次以上重复实验,结果取平均值。
一、复合菌剂的制备
1、菌株间拮抗反应测试
将供试2株细菌进行抑菌实验,以无菌水作阴性对照。每个处理3次重复,1 d后观察抑菌圈的有无。有抑制圈,说明两菌株间有拮抗作用;无抑制圈,说明两菌株间无拮抗现象。
检测结果如图1,粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL-11和路氏肠杆菌(Enterobacter ludwigii)MJM-11间无抑菌圈产生,这两个细菌可以共存,混合培养。
2、复合菌剂的制作
将粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL-11和路氏肠杆菌(Enterobacterludwigii)MJM-11划线至LB培养基中,培养温度28-35℃,培养时间为12-16h。
分别挑取单菌落接种于LB液体培养基中,于全温培养摇床28℃,180r/min条件下培养24 h。等菌株充分生长后,用紫外分光光度计测菌株悬浮液OD值,在OD600下测吸光值,将粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL-11和路氏肠杆菌(Enterobacter ludwigii)MJM-11以1:1的菌体数量比例混合作为种子液。
将种子液以1%的体积比接入发酵培养基,初始pH为7,培养温度为28℃,转速为180 rpm,振荡培养12~24 h,所得到的培养液即为所述复合菌剂。
二、复合菌剂对pH、盐度的适应性分析
1、pH值对菌株生长的影响
配制LB液体培养基,分别用NaOH和HCl依次调节pH,再将LB液体培养基进行分装,标上不同的pH,灭菌,备用。将供试菌株过夜培养,调菌悬液浓度OD600=0.5±0.004,菌悬液微量转移到新的液体培养基,每个处理3个重复。将单独和混合培养菌株振荡培养12 h,测定菌液吸光值。
由图2可知,在pH值为10时,复合菌剂ZLM-11与单接种相比生长良好,可以适应更为碱性的土壤。
2、盐分对菌株生长影响
在LB培养基中加入不同剂量的NaCl,配成4个盐浓度,分别为4%、5%、6%、7%。灭菌后,将各个菌株处理接种到不同盐度液体培养基中,每个处理3个重复,观察菌体生长情况。
由图3可知,盐浓度为4%~6%时,单接种和复合菌剂ZLM-11生长良好,当盐浓度为7%时,复合菌剂ZLM-11与单接种相比,生长较好,说明菌株互作可以提高促生菌的耐盐性,有利于盐碱地微生物促生菌剂的开发。
三、复合菌剂ACC脱氨酶活性的测定
将供试菌株LJL-11、MJM-11及复合菌剂ZLM-11菌悬液接种到TSB液体培养基中,过夜培养,4℃离心收集菌体。用DF培养基洗涤3次,将菌体微量转移到ADF培养基中,28℃,180rpm,培养2 d后,8000 rpm离心收集菌体,用Tris-HCl(pH=7.6)洗涤3次,将菌体重悬于Tris-HCl(pH=8.0)缓冲液中,加入30 μL甲苯并在漩涡振荡器上振荡30 s以破碎细胞,吸取200 μL,剩余细胞提取物用作蛋白质含量的测定,在提取液中加入20 μL 0.5 mol/L ACC颠倒混匀,不添加ACC做空白对照,30℃培养15 min。添加1 mL 0.56 mol/L HCl,高速离心,取1 mL上清液,加入800 μL 0.56 mol/L HCl混匀,再加入300 μL2,4二硝基苯肼颠倒混匀,30℃恒温培养30 min,加入2 mL 2 mol/L NaOH终止反应,540 nm测吸光值。
结果如图4所示,供试菌株都含有ACC脱氨酶活性,复合菌剂ZLM-11的ACC脱氨酶活性为45.81 μmol α-KA·(mgPr·h)-1,显著高于单接种(P < 0.05)。
四、复合菌剂吲哚乙酸(IAA)合成能力的测定
将供试菌株LJL-11、MJM-11及复合菌剂ZLM-11菌悬液接种到DF培养基中培养2 d,随之取其菌悬液的10%在分别添加0、200和500 µg/mL三个浓度的L-Trp新的DF中培养2 d,每个处理3次重复,进行菌株IAA合成量的测定。取菌液测OD600吸光值。剩余菌悬液进行离心,取上清,添加2 mL S试剂,暗反应20 min,测OD535吸光值。用DF空白对照。
结果如图5,所有供试菌株及复合菌剂的IAA合成量均随L-Trp浓度的增大而显著增加,在L-Trp浓度为0时,LJL-11几乎不能合成IAA,复合菌剂ZLM-11的IAA合成含量显著高于单接种;在L-Trp浓度为200、500μg/mL时,复合菌剂ZLM-11的IAA合成含量与单接种LJL-11相比差异显著(P < 0.05)。
五、复合菌剂溶解无机磷能力的测定
将供试菌株LJL-11、MJM-11及复合菌剂ZLM-11菌悬液接种于液体NBRIP培养基中,于28℃,180 r/min振荡培养5 d,菌悬液离心10000 rpm,10 min,取50 μL上清与2.5 mL钼锑抗混合显色剂混合,随后用去离子水定容至25 mL,反应30 min。在660 nm波长下测量OD值。
检测结果表明,粘质沙雷氏菌LJL-11和路氏肠杆菌MJM-11的菌落周围均能形成无色透明晕圈,说明菌株LJL-11和MJM-11具有溶解无机磷的能力。复合菌剂ZLM-11进行溶磷量的测定。如图6结果显示,复合菌剂ZLM-11与两单接种相比溶磷量明显提高,且差异显著(P < 0.05)。
六、复合菌剂固氮能力的测定
将单菌株和复合菌剂菌悬液分别接种到Ashby培养基中培养,28℃,180 r/min,培养24h后,菌株处理微量转移到新的50 mL Ashby培养基的锥形瓶中,置于28℃,180 r/min摇床上培养7 d,吸取一定量的样品到硝化管中,加入10 mL浓硫酸,180℃ 60 min,300℃ 120min。消化冷却后,再加入2 mL H2O2,消煮一段时间,保证澄清后无颗粒。分别以加等量灭活菌体和无菌水作为对照。含氮量根据以下公式进行计算:
公式中,V1为样品滴定时消耗0.005 mol/L标准盐酸溶液体积;
V2为空白滴定时消耗0.005 mol/L标准硫酸溶液体积;
14为每毫摩尔氮的毫克数;
V为菌悬液毫升数。
供试单菌株在Ashby固体平板上形成无色透明晕圈,说明单菌株具有固氮能力,对复合菌剂的固氮能力进行测定。结果如图7,所有菌株不仅能在无氮培养基中生长繁殖,而且还表现出较强的固氮能力,供试菌株能与宿主植物进行联合固氮。复合菌剂ZLM-11与其单接种相比表现出较高的固氮能力。
七、复合菌剂ZLM-11的盆栽实验
将单菌株LJL-11、MLM-11和复合菌剂ZLM-11菌悬液接种于LB培养基中过夜培养,离心收集菌体,重悬于无菌水中,调节菌浓度OD600=0.5±0.04。挑选饱满、大小一致、无病害的健康紫花苜蓿种子,进行表面消毒,75%乙醇浸泡4 min后,无菌水冲洗5次,然后将种子浸于2%次氯酸钠溶液中5 min,再用无菌水冲洗5次,将表面杀菌的种子用菌悬液处理,对照组只用无菌水处理,室温培养至种子萌发后,种于盆中。
供试盐碱土壤采自黑龙江省农科院兰西基地,每盆装500 g土,种15粒发芽的种子,每处理设4次重复。实验组每7 d浇一次菌悬液,对照组浇等量无菌水。温室培养,适当补充水分。在盐碱环境下评价菌株处理对盆栽苜蓿的促生效果,种植60 d后取样,测植株的生物量,对植株的株高、根长、地上部分干鲜重和根干鲜重等指标进行比较(表1,图8)。
表1 盆栽实验中促生菌菌株组合对苜蓿生物量的影响
注:不同字母表示差异显著(P < 0.05)。
结果表明,无论单接种还是双接种均能不同程度地促进苜蓿生长。与不接菌处理的对照(CK)相比,复合菌剂ZLM-11使株高增加了17.94%,根长增加了62.02%,地上鲜重增加了67.45%,根鲜重增加了95.21%,地上干重增加了58.94%,根干重增加了45.83%。复合菌剂ZLM-11的促生效果与其单接种相比差异显著(P < 0.05)。
八、复合菌剂的田间实验
本实验于黑龙江省农科院草业所兰西基地进行,每处理设5次重复,每小区面积为1m×1m,小区内设有5行,相邻两小区间隔0.5m,播种时采用条播,实验区组内完全随即设置。四周种植保护行,施肥时把菌液均匀施用到小区各处,为保持菌体在土壤中的活性,以30天为一周期,对每小区紫花苜蓿多次施肥,施肥方法采用等量菌液灌根,每小区施肥量为1 L菌液,对照组采用等量蒸馏水处理。整个试验期内不再施除草剂、化肥等其他化学合成物质。
实验中共采用4种处理:CK为空白对照,1L为LJL-11液体菌肥,1M为MJM-11液体菌肥,1Z为ZLM-11复合菌剂。
在初花期对小区中的紫花苜蓿进行随机刈割,对其株高、产量进行测定,经各菌肥处理的苜蓿的株高、干鲜重均显著高于对照(表2)。与CK相比,株高增加了7.87%,鲜重增加了77.25%,干重增加了30.19%,产量增加了30.32%。经复合菌剂ZLM-11处理效果最优,较两单接种处理显著(P < 0.05)。
表2 大田实验中促生菌菌株组合对苜蓿生物量的影响
注:不同字母表示差异显著(P < 0.05)。
九、接种PGPR菌肥对土壤微生态环境的影响
1. 土壤pH值
在盐碱大田环境下,研究施加不同PGPR菌肥对苜蓿根际土壤pH值的变化影响。结果表明,施加单接种和复合菌剂均可以使苜蓿根际土壤的pH呈下降趋势(如图9a)。其中,经1Z(ZLM-11处理后的苜蓿根际土壤pH值最低,效果好于单接种,且与对照组(CK)相比差异显著(P < 0.05)。
2. 土壤电导率
近年来,土壤总盐量逐年升高,产生土壤酸化和次生盐渍化现象,测定土壤中的电导率可以直接反映出混合盐的含量。
研究了在盐碱环境下施加不同PGPR菌肥对苜蓿根际土壤电导率的影响。研究结果表明,施加单接种和复合菌剂均可以使苜蓿根际土壤的电导率呈下降趋势(如图9b)。同时,与未施加PGPR处理的对照组(CK)相比差异显著(P < 0.05)。其中,1Z(ZLM-11)处理组的苜蓿根际电导率值最低。
3.土壤有机质
土壤有机质是植物营养的主要来源之一,能促进植物的生长发育,改善土壤的物理性质,促进土壤中营养元素的分解,提高土壤肥力。
测定了在盐碱环境下施加PGPR菌肥对苜蓿根际土壤有机质含量的变化。结果表明,与未施加PGPR处理的对照组(CK)相比,施加不同PGPR菌肥后的苜蓿根际土壤有机质含量均呈现上升的趋势,且差异显著(P < 0.05)。其中,1Z(ZLM-11)处理后的苜蓿根际土壤有机质含量最高(如图9c)。

Claims (7)

1.一种复合菌剂ZLM-11,其特征在于,由粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)LJL-11和路氏肠杆菌(Enterobacter ludwigii)MJM-11两株细菌1:1复配组成:粘质沙雷氏菌LJL-11保藏号为CGMCC No. 6290,所述路氏肠杆菌MJM-11保藏号为CGMCC No. 6295,均保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心。
2.权利要求1所述的复合菌剂ZLM-11,其特征在于,提供了一种制备方法:
将粘质沙雷氏菌LJL-11和路氏肠杆菌MJM-11划线至LB固体培养基中,挑取单菌落接种于LB液体培养基中,制备菌悬液;将粘质沙雷氏菌LJL-11和路氏肠杆菌MJM-11以1:1的菌体数量比例混合作为种子液;将种子液以1%的体积比接入发酵培养基,所得到的培养液即为所述复合菌剂。
3.权利要求1中所述的复合菌剂ZLM-11可以作为盐碱胁迫下促进植物生长菌剂的应用。
4.如权利要求3所述的复合菌剂ZLM-11的应用,其特征在于,所述的菌剂为促吲哚乙酸合成、促ACC脱氨酶合成、促进溶磷和固氮中菌剂的一种或几种。
5.权利要求1所述的复合菌剂ZLM-11在制备用于在盐碱胁迫下促进植物生长的菌剂中的应用。
6.如权利要求5所述的应用,其特征在于制备的菌剂为促吲哚乙酸合成、促ACC脱氨酶合成、促进溶磷和固氮中菌剂的一种或几种。
7.权利要求1所述的复合菌剂ZLM-11可以作为修复盐碱土壤、改善土壤微生态环境的微生物复合菌剂。
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