CN110157743A - 用于敲低大菱鲆14-3-3基因表达的注射剂及使用方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种用于敲低大菱鲆14‑3‑3基因表达的注射剂及使用方法,属于分子生物学领域,所述注射剂的制备方法包括如下步骤:(1)基因主表达组织RNA提取,(2)dsRNA的制备:根据目的基因的CDS序列,设计特异性引物合成DNA产物片段。以步骤(1)提取的RNA反转录合成的cDNA为模板,通过PCR获得目的DNA片段,将DNA产物回收,以回收产物为模板,合成dsRNA,使用生理盐水稀释合成的dsRNA,其有效浓度为4ug/g,通过多点注射的方式,分2‑4次注射到鱼体背部肌肉中。本发明注射剂能够实现直接在鱼类个体水平上进行基因敲降,以便于研究大菱鲆14‑3‑3基因的功能。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学技术领域,具体地涉及到一种用于敲低大菱鲆14-3-3基因表达的dsRNA注射剂及使用方法。
背景技术
RNA干扰(RNA interference,RNAi)是指在进化过程中高度保守的、由双链RNA(double-stranded RNA,dsRNA)诱发的、通过抑制mRNA翻译或使mRNA高效特异性降解从而介导转录后的基因沉默现象。由dsRNA介导的基因沉默过程通常需要经过三个步骤来实现。首先是dsRNA进入细胞后与酶蛋白Dicer结合并被Dicer切割成21-23nt长的小片段,这些小片段被称为siRNA;紧接着siRNA再与体内一些酶(包括内切酶、外切酶、解旋酶等)结合形成RNA诱导的沉默复合物(RNA-induced silencing complex,RISC);最后被激活的RISC在反义链的引导下与目标mRNA结合,通过抑制mRNA的翻译或使mRNA降解介导转录后的基因沉默。该现象首次在线虫中被发现,将dsRNA注入线虫后出现了基因表达沉默的现象。与传统的基因敲除手段相比,RNAi技术具有快速、高效、特异性强、操作简易等优点,近年来已经成为揭示不同物种中基因功能的工具,被广泛应用于植物、线虫、果蝇及哺乳动物,在生长发育、抗逆、信号转导等方面都发挥了重要的作用。在水产动物中的研究主要集中在模式动物斑马鱼中,研究方法主要是在胚胎中注射dsRNA进行干扰,研究基因在生长发育过程中所起到的作用,然而在幼鱼肌肉中注射进行干扰的研究方法未见报道。因此,在鱼类个体水平上研究基因在抗逆、信号转导等方面的功能需要新的研究方式。
发明内容
本发明要解决的技术问题在于提供一种用于敲低大菱鲆14-3-3基因表达的dsRNA注射剂及使用方法,所述dsRNA注射剂能够通过对鱼类肌肉注射来敲低大菱鲆14-3-3基因表达。
本发明是通过如下技术方案来实现的:
一种用于敲低大菱鲆14-3-3基因表达的dsRNA注射剂,所述注射剂的制备方法包括如下步骤:
(1)基因主表达组织RNA提取:提取大菱鲆鳃组织的RNA;
(2)dsRNA的制备:根据目的基因的CDS序列,设计特异性引物合成DNA产物片段,产物控制在300-800bp之间,上下游引物的5’端均需加入T7启动子序列TAATACGACTCACTATAGGG;IR1F TAATACGACTCACTATAGGGG CACGAATCGCTTGCCACT,IR1RTAATACGACTCACTATAGGGAC GGAGAAGTTCAGAGCAAGG;
使用这对引物,以步骤(1)提取的RNA反转录合成的cDNA为模板,通过PCR扩增获得目的DNA片段,将DNA产物回收,凝胶检测,并对其进行测序以确认合成片段的特异性,以回收产物为模板,合成dsRNA,Nanodrop 2000以及凝胶检测dsRNA质量与浓度;
本发明还提供上述注射剂的使用方法:合成的dsRNA保存在-80℃或者液氮中,使用前冰上融化再进行稀释操作,使用生理盐水稀释合成的dsRNA,根据鱼体重选择dsRNA注射剂量,其有效浓度为4ug/g,通过多点注射的方式,分2-4次注射到鱼体背部肌肉中,完成干扰过程。
本发明与现有技术相比的有益效果:
在基因功能研究方面,本发明提供的方法可以实现直接在鱼类个体水平上进行基因敲降,结合已有的细胞水平的基因敲降,可以更好地研究基因的功能。本发明针对的大菱鲆14-3-3可以作为接头或支架蛋白,在环境应激方面(如温度胁迫、盐度胁迫)发挥重要的作用,使用肌肉注射dsRNA对其进行有效干扰后,可以在个体水平更好地揭示该基因在环境胁迫方面发挥的功能,同时也可以为培育抗逆良种提供参考。
附图说明
图1大菱鲆14-3-3基因dsRNA凝胶电泳图:1、marker,2-4、dsRNA。
图2使用第一对引物(IR1F和IR1R)合成的dsRNA肌肉注射后产生的干扰效果。
图3用第二对引物(IR2F和IR2R)合成的dsRNA肌肉注射后产生的干扰效果。
具体实施方式
下面通过实施例结合附图来对本发明的技术方案做进一步解释,但本发明得保护范围不受实施例任何形式上的限制。
实施例1
用于敲低大菱鲆14-3-3基因表达的注射剂及使用方法,具体步骤如下:大菱鲆14-3-3基因dsRNA制备、肌肉注射干扰实验以及干扰效果的验证
1、14-3-3基因主表达组织RNA提取:采集鳃组织,使用Tiangen RNA快速提取试剂盒进行RNA提取,通过1%琼脂糖凝胶电泳检测RNA质量,利用Nanodrop2000紫外分光光度计测定RNA浓度,检测合格后保存于-80℃。
2、14-3-3基因的全长cDNA克隆:将鳃组织的RNA反转录成cDNA,通过TA克隆以及RACE的方法获得全长cDNA序列,并对序列进行生物信息学分析,如编码区的预测等。
3、dsRNA引物设计:以大菱鲆14-3-3基因全长cDNA序列为依据,在ORF内采用Primer5设计用于制备双链RNA的引物2对,干扰引物如表1所示:
表1干扰引物序列
其中TAATACGACTCACTATAGGG为T7启动子序列。
4、dsRNA合成:采用设计合成的dsRNA引物,以大菱鲆鳃组织总RNA反转录合成的cDNA为模板,通过PCR获得目的DNA片段,将DNA产物回收,凝胶检测,并对其进行测序以确认合成片段的特异性,以回收产物为模板,使用HiScribeTMT7 High Yield RNA SynthesisKit合成dsRNA,Nanodrop 2000以及凝胶检测RNA质量与浓度。合成步骤如下:按照表2的配比方式配成20μl体系;
表2PCR反应体系
简单离心混匀后,37℃孵育2h。反应产物进行DNA酶处理,去除模板DNA,每20μl反应体系中加入30μl无核酸酶水溶液,然后加入2μlDNaseI(无RNase),混合后并37℃孵育15分钟。孵育结束后利用Nanodrop2000紫外分光光度计测定RNA浓度。
5、dsRNA纯化:按照RNA吸附柱的吸附效率,同时结合测量的RNA浓度,将孵育产物分批放入吸附柱,静置10min后,12000rpm离心2min,使用无酶水进行RNA的洗脱,对洗脱产物进行凝胶电泳检测产物RNA的质量,利用Nanodrop2000紫外分光光度计测定RNA浓度,选择质量合格产物(260/280在1.8-2.0之间,凝胶电泳显示单一明亮条带)保存于-80℃备用。
6、肌肉注射干扰实验:干扰实验分为7组,其中6个干扰组由两种不同dsRNA三种不同浓度(2μg/g、4μg/g、6μg/g)组成,对照组注射等量的生理盐水。注射用鱼的大小为30±2g,注射方式为多点注射,分2-4次注射到鱼体背部肌肉中,完成干扰过程。在实验6h、12h、24h和48h分别取样干扰组和对照组鳃组织,液氮中保存。
7、干扰效果的验证:使用Tiangen RNA快速提取试剂盒对取样的鳃组织进行RNA提取,并使用Takara公司的PrimeScriptTM RT Master Mix(Perfect Real Time)试剂盒将RNA反转录成cDNA,采用实时荧光定量PCR技术(qPCR)对14-3-3基因干扰效率进行检测,用大菱鲆18S基因做内参,定量引物和内参引物如表3所示:
表3定量引物和内参引物序列
实验结果采用2-ΔΔCt计算基因相对表达量,使用SPSS18.0软件对数据进行分析,使用Origin8.6软件对分析结果进行作图,结果如图2、图3所示。
8、实验结果
图1所示,为合成的双链RNA图,dsRNA条带清晰,特异性强。
图2所示,为使用第一对引物(IR1F和IR1R)合成的dsRNA肌肉注射后产生的干扰效果。
图3所示,为使用第二对引物(IR2F和IR2R)合成的dsRNA肌肉注射后产生的干扰效果。
结果显示,与对照组相比,第二对引物(IR2F和IR2R)合成的dsRNA没有产生很好的干扰效果,而第一对引物(IR1F和IR1R)合成的dsRNA在注射后产生了显著的干扰效果。另外三种不同浓度的注射都产生了显著的干扰效果,其中4μg/g注射12h后的干扰效果最为显著,随着时间的加长以及浓度的提高,干扰效果并没有提升,因此对大菱鲆14-3-3而言,使用IR1F和IR1R合成的dsRNA进行肌肉注射后具有高效的干扰效率,可以有效的实验目的基因的沉默。
Claims (2)
1.一种用于敲低大菱鲆14-3-3基因表达的dsRNA注射剂,所述注射剂的制备方法包括如下步骤:
(1)基因主表达组织RNA提取:提取大菱鲆鳃组织的RNA;
(2)dsRNA的制备:根据目的基因的CDS序列,设计特异性引物合成DNA产物片段,产物控制在300-800bp之间,上下游引物的5’端均需加入T7启动子序列TAATACGACTCACTATAGGG;IR1F TAATACGACTCACTATAGGGG CACGAATCGCTTGCCACT,IR1R TAATACGACTCACTATAGGGACGGAGAAGTTCAGAGCAAGG;
使用这对引物,以步骤(1)提取的RNA反转录合成的cDNA为模板,通过PCR获得目的DNA片段,将DNA产物回收,凝胶检测,并对其进行测序以确认合成片段的特异性,以回收产物为模板,合成dsRNA,使用Nanodrop 2000以及凝胶检测dsRNA质量与浓度。
2.根据权利要求1所述注射剂的使用方法:其特征在于所述方法具体为:合成的dsRNA保存在-80℃或者液氮中,使用前冰上融化再进行稀释操作,使用生理盐水稀释合成的dsRNA,根据鱼体重选择dsRNA注射剂量,其有效浓度为4ug/g,通过多点注射的方式,分2-4次注射到鱼体背部肌肉中,完成干扰过程。
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