CN109588315A - 一种苔藓植物外植体的消毒方法 - Google Patents
一种苔藓植物外植体的消毒方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN109588315A CN109588315A CN201811651293.4A CN201811651293A CN109588315A CN 109588315 A CN109588315 A CN 109588315A CN 201811651293 A CN201811651293 A CN 201811651293A CN 109588315 A CN109588315 A CN 109588315A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- concentration
- explant
- time
- sterile water
- water wash
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
- A01H4/00—Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Botany (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
本发明公开了一种杀菌效果好、消毒废液不污染环境且对人体无害、毒性小、不易损伤苔藓植物的苔藓植物外植体的消毒方法。该消毒方法通过对苔藓外植体清洗后,接着将外植体依次经过酒精、次氯酸钠、酒精、次氯酸钠浸泡消毒处理,然后利用无菌水清洗干净后放入培养皿中,培养14‑21天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过酒精、次氯酸钠、酒精、次氯酸钠浸泡消毒处理,最后再利用无菌水清洗干净后即可得到无菌的苔藓外植体,该消毒方法操作简单、所需外植体量少、操作门槛低、不使用高污染消毒剂、对环境无害,试验效果好。适合在植物组织培养技术领域推广应用。
Description
技术领域
本发明涉及植物组织培养技术领域,尤其是一种苔藓植物外植体的消毒方法。
背景技术
苔藓植物一般生长在较阴暗,较潮湿的土壤、林下、沼泽、岩石及树皮等阴面,通过配子体叶片等微孔吸收大气中的营养物质,同时由于苔藓一般为丛生,植株间紧密生长,因此外植体上附着大量微生物,且不易清除。并且由于苔藓植物外植体大多是单层细胞构成,细胞容易因为消毒过度而死亡,一些稀缺苔藓植物不容易获得孢蒴,苔藓生物量少,采集不易等,这些因素都极大地阻碍了苔藓组织培养的发展,以及对苔藓种质资源的保护和利用。外植体消毒是进行组织培养的第一步,现有的方法,多采用升汞进行消毒,浓度过高易造成外植体死亡,且容易残留,不易清洗消除,消毒效果不太理想,并且升汞是高毒性污染物,对人体伤害大,排出环境易造成土壤重金属残留。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种杀菌效果好、消毒废液不污染环境且对人体无害、毒性小、不易损伤苔藓植物的苔藓植物外植体的消毒方法。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是:该苔藓植物外植体的消毒方法,包括以下步骤:
A、苔藓植物外植体的选取:挑选健壮的、生长旺盛的外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗时间为3-8min;
B、将经过步骤A处理过后的外植体放入超声波震荡仪中清洗1-2h;
C、将经过步骤B处理过后的外植体浸泡在浓度为500mg/l的氨苄青霉素钠溶液中,并且在避光条件下恒温浸泡1-2h,所述氨苄青霉素钠溶液的温度为3.5-4.5度;
D、将经过步骤C处理过后的外植体依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间后,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净备用;
E、将经过步骤D处理过后的外植体放入培养皿中,培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,所述营养液由6-BA、氨苄青霉素钠、knop无机培养液组成,其中6-BA的浓度为0.1mg/L,氨苄青霉素钠的浓度为500mg/L;
F、将培养皿置于培养箱中培养14-21天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为6-10小时,其余时间为光照下培养;
G、剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净后即可得到无菌的苔藓外植体。
进一步的是,在步骤A中,将外植体的假根部分切除后放入流水中冲洗时间为5min。
进一步的是,在步骤B中,将外植体放入超声波震荡仪中清洗2h,所述超声波震荡仪的超声波清洗频率为40kHz。
进一步的是,在步骤C中,将外植体浸泡在浓度为500mg/l的氨苄青霉素钠溶液中,并且在避光条件下恒温浸泡1h,所述氨苄青霉素钠溶液的温度为4度。
进一步的是,在步骤D中,将外植体依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,最后再利用无菌水清洗干净备用。
进一步的是,所述无菌过滤棉的形状与培养皿底部形状相同,所述无菌过滤棉的厚度为0.5cm。
进一步的是,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8。
进一步的是,在步骤F中,将培养皿置于培养箱中培养15天,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养。
进一步的是,在步骤G中,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后即可得到无菌的苔藓外植体。
本发明的有益效果是:该苔藓植物外植体的消毒方法的通过挑选健壮的、生长旺盛的外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗时间为3-8min;接着放入超声波震荡仪中清洗1-2h;然后将外植体浸泡在浓度为500mg/l的氨苄青霉素钠溶液中,并且在避光条件下恒温浸泡1-2,接着将外植体依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间后,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净后放入培养皿中,培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,接着将培养皿置于培养箱中培养14-21天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净后即可得到无菌的苔藓外植体,本发明通过苔藓独特而极强的再生能力,通过低浓度,多循环的消毒手段及无碳源添加等多种措施,本发明所述苔藓植物外植体的消毒方法操作简单、所需外植体量少、操作门槛低、不使用高污染消毒剂、对环境无害,试验效果好,适合苔藓植物及其他脆弱植株体无菌材料的消毒获取。
附图说明
图1为利用本发明所述的苔藓植物外植体的消毒方法对原丝体消毒后获得的苔藓生长一个月后的生长情况图;
图2为利用本发明所述的苔藓植物外植体的消毒方法对茎叶体消毒后获得的苔藓生长一个月后的生长情况图;
图3为采用传统方法消毒后获得的苔藓生长一个月后的生长情况图。
具体实施方式
苔藓植物是植物中最简单最低等的高等植物,拥有独特的生态位和再生能力。在营养需求上,苔藓植物主要通过配子体的吸附作用吸收大气中的养分。作为自养型生物,苔藓可以在不添加碳源的简单无机离子培养基中生长,如knop培养基。在再生能力上,大部分苔藓植物和蕨类等孢子植物在其再生体系中通过原丝体为枢纽可进行互相转化。大部分苔藓植物在转化上的规律可概括为,孢子体可发育成为原丝体,原丝体再进一步可继续分化出芽胞,经芽胞再分化形成假根和配子体植株。同时配子体在损伤状态时会在伤口处产生原丝体,芽胞通过一定处理也可以再分化出原丝体。本发明通过苔藓独特而极强的再生能力,通过低浓度,多循环的消毒手段及无碳源添加等多种措施,提出了一种针对脆弱苔藓植物的无菌外植体消毒技术。该技术操作简单、所需外植体量少、操作门槛低、不使用高污染消毒剂、对环境无害,试验效果好,适合苔藓植物及其他脆弱植株体无菌材料的获取。具体的,本发明所述的苔藓植物外植体的消毒方法,包括以下步骤:
A、苔藓植物外植体的选取:挑选健壮的、生长旺盛的外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗时间为3-8min;
B、将经过步骤A处理过后的外植体放入超声波震荡仪中清洗1-2h;
C、将经过步骤B处理过后的外植体浸泡在浓度为500mg/l的氨苄青霉素钠溶液中,并且在避光条件下恒温浸泡1-2h,所述氨苄青霉素钠溶液的温度为3.5-4.5度;
D、将经过步骤C处理过后的外植体依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间后,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净备用;
E、将经过步骤D处理过后的外植体放入培养皿中,培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,所述营养液由6-BA、氨苄青霉素钠、knop无机培养液组成,其中6-BA的浓度为0.1mg/L,氨苄青霉素钠的浓度为500mg/L;
F、将培养皿置于培养箱中培养14-21天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为6-10小时,其余时间为光照下培养;
G、剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净后即可得到无菌的苔藓外植体。
该苔藓植物外植体的消毒方法的通过挑选健壮的、生长旺盛的外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗时间为3-8min;接着放入超声波震荡仪中清洗1-2h;然后将外植体浸泡在浓度为500mg/l的氨苄青霉素钠溶液中,并且在避光条件下恒温浸泡1-2,接着将外植体依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间后,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净后放入培养皿中,培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,接着将培养皿置于培养箱中培养14-21天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净后即可得到无菌的苔藓外植体,本发明通过苔藓独特而极强的再生能力,通过低浓度,多循环的消毒手段及无碳源添加等多种措施,本发明所述苔藓植物外植体的消毒方法操作简单、所需外植体量少、操作门槛低、不使用高污染消毒剂、对环境无害,试验效果好,适合苔藓植物及其他脆弱植株体无菌材料的消毒获取。
为了保证外植体的清洗效果和清洗效率,在步骤A中,将外植体的假根部分切除后放入流水中冲洗时间为5min,为了进一步保证外植体的清洗效果和清洗效率,在步骤B中,将外植体放入超声波震荡仪中清洗2h,所述超声波震荡仪的超声波清洗频率为40kHz。
为了保证苔藓外植体的消毒效果同时不损伤外植体,在步骤C中,将外植体浸泡在浓度为500mg/l的氨苄青霉素钠溶液中,并且在避光条件下恒温浸泡1h,所述氨苄青霉素钠溶液的温度为4度。进一步的,在步骤D中,将外植体依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,最后再利用无菌水清洗干净备用;
为了保证苔藓外植体的正常生长,在步骤E中,所述无菌过滤棉的形状与培养皿底部形状相同,所述无菌过滤棉的厚度为0.5cm。在步骤E中,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8。进一步的是,在步骤F中,将培养皿置于培养箱中培养15天,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养。
为了使得到的苔藓无菌率更高,在步骤G中,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后完成消毒。
实施例
实例一:
A、挑选120株健壮的、生长旺盛的真藓外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗5min;
B、再放入超声波震荡仪中清洗1h,将夹杂在茎干与叶片汇合处的污垢彻底清洗干净,超声波震荡仪的超声波清洗频率为40kHz;
C、然后将清洗干净的外植体浸泡在500mg/L氨苄青霉素溶液,并在避光、4度条件下浸泡1h;
D、接着将外植体放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,最后再利用无菌水清洗3遍;
E、接着放入培养皿中,每个培养皿中放入4-5株外植体,每个培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,所述无菌过滤棉的形状与培养皿底部形状相同,所述无菌过滤棉的厚度为0.5cm,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,所述营养液由6-BA、氨苄青霉素钠、knop无机培养液组成,其中6-BA的浓度为0.1mg/L,氨苄青霉素钠的浓度为500mg/L,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8;
F、接着将培养皿置于培养箱中培养15天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养;
G、培养结束后,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后完成消毒。
实例二:
A、挑选120株健壮的、生长旺盛的真藓外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗5min;
B、再放入超声波震荡仪中清洗2h,将夹杂在茎干与叶片汇合处的污垢彻底清洗干净,超声波震荡仪的超声波清洗频率为40kHz;
C、然后将清洗干净的外植体浸泡在500mg/L氨苄青霉素溶液,并在避光、4度条件下浸泡2h;
D、接着将外植体放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,最后再利用无菌水清洗3遍
E、接着放入培养皿中,每个培养皿中放入4-5株外植体,每个培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,所述无菌过滤棉的形状与培养皿底部形状相同,所述无菌过滤棉的厚度为0.5cm,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,所述营养液由6-BA、氨苄青霉素钠、knop无机培养液组成,其中6-BA的浓度为0.1mg/L,氨苄青霉素钠的浓度为500mg/L,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8;
F、接着将培养皿置于培养箱中培养15天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养;
G、培养结束后,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后完成消毒。
实例三:
A、挑选120株健壮的、生长旺盛的真藓外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗5min;
B、再放入超声波震荡仪中清洗1h,将夹杂在茎干与叶片汇合处的污垢彻底清洗干净,超声波震荡仪的超声波清洗频率为40kHz;
C、然后将清洗干净的外植体浸泡在500mg/L氨苄青霉素溶液,并在避光、4度条件下浸泡1h;
D、接着将外植体放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,最后再利用无菌水清洗3遍;
E、接着放入培养皿中,每个培养皿中放入4-5株外植体,每个培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,所述无菌过滤棉的形状与培养皿底部形状相同,所述无菌过滤棉的厚度为0.5cm,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,所述营养液由6-BA、氨苄青霉素钠、knop无机培养液组成,其中6-BA的浓度为0.1mg/L,氨苄青霉素钠的浓度为500mg/L,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8;
F、接着将培养皿置于培养箱中培养15天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养;
G、培养结束后,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后完成消毒。
实例四:
A、挑选120株健壮的、生长旺盛的真藓外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗5min;
B、再放入超声波震荡仪中清洗1h,将夹杂在茎干与叶片汇合处的污垢彻底清洗干净,超声波震荡仪的超声波清洗频率为40kHz,;
C、然后将清洗干净的外植体浸泡在500mg/L氨苄青霉素溶液,并在避光、4度条件下浸泡1h;
D、接着将外植体放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,最后再利用无菌水清洗3遍;
E、接着放入培养皿中,每个培养皿中放入4-5株外植体,每个培养皿底部放置有培养基,清洗后的外植体接种在培养基上,所述培养基由琼脂、蔗糖、knop无机培养液组成,其中琼脂的浓度为5g/L,蔗糖的浓度为2g/L,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8;
F、接着将培养皿置于培养箱中培养15天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养;
G、培养结束后,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后完成消毒。
实例五:
A、挑选120株健壮的、生长旺盛的真藓外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗5min;
B、再放入超声波震荡仪中清洗1h,将夹杂在茎干与叶片汇合处的污垢彻底清洗干净,超声波震荡仪的超声波清洗频率为40kHz;
C、然后将清洗干净的外植体浸泡在500mg/L氨苄青霉素溶液,并在避光、4度条件下浸泡1h;
D、接着将外植体放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,最后再利用无菌水清洗3遍;
E、接着放入培养皿中,每个培养皿中放入4-5株外植体,每个培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,所述无菌过滤棉的形状与培养皿底部形状相同,所述无菌过滤棉的厚度为0.5cm,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,所述营养液由6-BA、氨苄青霉素钠、knop无机培养液组成,其中6-BA的浓度为0.1mg/L,氨苄青霉素钠的浓度为500mg/L,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8;
F、接着将培养皿置于培养箱中培养15天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养;
G、培养结束后,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后完成消毒。
实例六:
A、挑选120株健壮的、生长旺盛的真藓外植体,将外植体的假根部分切除后,接着将外植体放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗3遍;
B、接着放入培养皿中,每个培养皿中放入4-5株外植体,每个培养皿底部放置有培养基,清洗后的外植体接种在培养基上,所述培养基由琼脂、蔗糖、knop无机培养液组成,其中琼脂的浓度为5g/L,蔗糖的浓度为2g/L,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8;
C、接着将培养皿置于培养箱中培养15天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养;
D、培养结束后,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后完成消毒。
表1为上述六个实施例以及采用传统方法得到的无菌苔藓的无菌率、死亡率、难易程度的实验数据表,传统方法每个方法处理的外植体数量均为120株,所述无菌率是指消毒后未被污染的苔藓总数占总消毒苔藓总数的比例,死亡率是指消毒后死亡的苔藓总数占总消毒苔藓总数的比例,难易程度是指通过消毒获得无菌外植体的难易程度;
表1
由上表得出,实施例一条件下,综合效果最优,其无菌率较高,死亡率也较低,也容易获得无菌的外植体。
图1为利用本发明所述的苔藓植物外植体的消毒方法对原丝体消毒后获得的苔藓生长一个月后的生长情况图;图2为利用本发明所述的苔藓植物外植体的消毒方法对茎叶体消毒后获得的苔藓生长一个月后的生长情况图;图3为采用传统方法消毒后获得的苔藓生长一个月后的生长情况图;从三个图可以明显看出,采用传统方法消毒后获得的苔藓很容易被污染,消毒效果较差,而采用本发明所述的苔藓植物外植体的消毒方法消毒后获得的苔藓生长情况良好,没有被污染的情况,消毒效果非常好。
Claims (9)
1.一种苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于包括以下步骤:
A、苔藓植物外植体的选取:挑选健壮的、生长旺盛的外植体,将外植体的假根部分切除后,放入流水中冲洗时间为3-8min;
B、将经过步骤A处理过后的外植体放入超声波震荡仪中清洗1-2h;
C、将经过步骤B处理过后的外植体浸泡在浓度为500mg/l的氨苄青霉素钠溶液中,并且在避光条件下恒温浸泡1-2h,所述氨苄青霉素钠溶液的温度为3.5-4.5度;
D、将经过步骤C处理过后的外植体依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间后,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净备用;
E、将经过步骤D处理过后的外植体放入培养皿中,培养皿底部装有无菌过滤棉,并在培养皿中加入营养液,加入的营养液量将培养皿底部放置的无菌过滤棉完全湿润即可,所述营养液由6-BA、氨苄青霉素钠、knop无机培养液组成,其中6-BA的浓度为0.1mg/L,氨苄青霉素钠的浓度为500mg/L;
F、将培养皿置于培养箱中培养14-21天至培养基表面形成原丝体和茎叶体,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为6-10小时,其余时间为光照下培养;
G、剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为75%酒精中浸泡一段时间,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡一段时间,最后再利用无菌水清洗干净后即可得到无菌的苔藓外植体。
2.如权利要求1所述的苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于:在步骤A中,将外植体的假根部分切除后放入流水中冲洗时间为5min。
3.如权利要求1所述的苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于:在步骤B中,将外植体放入超声波震荡仪中清洗2h,所述超声波震荡仪的超声波清洗频率为40kHz。
4.如权利要求1所述的苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于:在步骤C中,将外植体浸泡在浓度为500mg/l的氨苄青霉素钠溶液中,并且在避光条件下恒温浸泡1h,所述氨苄青霉素钠溶液的温度为4度。
5.如权利要求1所述的苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于:在步骤D中,将外植体依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗一段时间后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,最后再利用无菌水清洗干净备用。
6.如权利要求1所述的苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于:在步骤E中,所述无菌过滤棉的形状与培养皿底部形状相同,所述无菌过滤棉的厚度为0.5cm。
7.如权利要求1所述的苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于:步骤E中,所述knop无机培养液的溶剂为水,溶质包括(Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、ZnSO4·7(H2O),所述Ca(NO3)2·4H2O的浓度为1g/L,KNO3的浓度为0.25g/L,KH2PO4的浓度为0.25g/L,MgSO4·7H2O的浓度为0.25g/L、ZnSO4·7H2O的浓度为0.003g/L,pH=5.8。
8.如权利要求1所述的苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于:在步骤F中,将培养皿置于培养箱中培养15天,培养箱的温度为23-25度;每天24d中在黑暗中培养的时间为8小时,其余时间为光照下培养。
9.如权利要求1所述的苔藓植物外植体的消毒方法,其特征在于:在步骤G中,剪取培养基表面形成的原丝体和茎叶体,并依次经过如下浸泡处理:首先,放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后接着放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡10s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为75%酒精中浸泡5s,利用无菌水清洗5s后再放入浓度为1%的次氯酸钠溶液中浸泡5s,最后再利用无菌水清洗干净后即可得到无菌的苔藓外植体。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201811651293.4A CN109588315B (zh) | 2018-12-31 | 2018-12-31 | 一种苔藓植物外植体的消毒方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201811651293.4A CN109588315B (zh) | 2018-12-31 | 2018-12-31 | 一种苔藓植物外植体的消毒方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN109588315A true CN109588315A (zh) | 2019-04-09 |
CN109588315B CN109588315B (zh) | 2021-05-28 |
Family
ID=65965770
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201811651293.4A Expired - Fee Related CN109588315B (zh) | 2018-12-31 | 2018-12-31 | 一种苔藓植物外植体的消毒方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN109588315B (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB2601311A (en) * | 2020-11-24 | 2022-06-01 | Micropropagation Services E M Ltd | Methods of in vitro culturing sphagnum |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101138317A (zh) * | 2006-09-06 | 2008-03-12 | 天津农学院 | 组织内带菌外植体消毒的处理方法 |
CN103651126A (zh) * | 2013-11-22 | 2014-03-26 | 张亚丽 | 一种凝花菜无菌外植体的制备方法 |
CN104106466A (zh) * | 2014-06-12 | 2014-10-22 | 南京工业大学大丰海洋产业研究院 | 一种植物组织培养中外植体消毒的方法 |
ES2575752A1 (es) * | 2014-12-31 | 2016-06-30 | Universitat De València - Estudi General | Obtención de extractos liquénicos y uso de los mismos para mejorar la recuperación de microorganismos asociados a líquenes |
CN105981636A (zh) * | 2015-02-11 | 2016-10-05 | 上海市园林科学研究所 | 一种泥炭藓原丝体快速繁殖的方法 |
CN106613951A (zh) * | 2016-10-21 | 2017-05-10 | 定州市绿谷农业科技发展有限公司 | 一种组织培养中外植体消毒的方法 |
-
2018
- 2018-12-31 CN CN201811651293.4A patent/CN109588315B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101138317A (zh) * | 2006-09-06 | 2008-03-12 | 天津农学院 | 组织内带菌外植体消毒的处理方法 |
CN103651126A (zh) * | 2013-11-22 | 2014-03-26 | 张亚丽 | 一种凝花菜无菌外植体的制备方法 |
CN104106466A (zh) * | 2014-06-12 | 2014-10-22 | 南京工业大学大丰海洋产业研究院 | 一种植物组织培养中外植体消毒的方法 |
ES2575752A1 (es) * | 2014-12-31 | 2016-06-30 | Universitat De València - Estudi General | Obtención de extractos liquénicos y uso de los mismos para mejorar la recuperación de microorganismos asociados a líquenes |
CN105981636A (zh) * | 2015-02-11 | 2016-10-05 | 上海市园林科学研究所 | 一种泥炭藓原丝体快速繁殖的方法 |
CN106613951A (zh) * | 2016-10-21 | 2017-05-10 | 定州市绿谷农业科技发展有限公司 | 一种组织培养中外植体消毒的方法 |
Non-Patent Citations (5)
Title |
---|
HANAN SHAABAN等: "A Simple Method to Obtain Microbial-free in vitro Moss Cultures", 《TAECKHOLMIA》 * |
YUAN-YUAN CHEN等: "Successful tissue culture of the medicinal moss Rhodobryum giganteum and factors influencing proliferation of its protonemata", 《ANNALES BOTANICI FENNICI》 * |
刘庆昌,吴国良: "《植物细胞组织培养》", 31 January 2003, 中国农业大学出版社 * |
李大华等: "多纹泥炭藓外植体消毒及其培养基筛选", 《分子植物育种》 * |
程家胜: "《植物组织培养与工厂化育苗技术》", 31 March 2003, 金盾出版社 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB2601311A (en) * | 2020-11-24 | 2022-06-01 | Micropropagation Services E M Ltd | Methods of in vitro culturing sphagnum |
GB2601311B (en) * | 2020-11-24 | 2022-11-23 | Micropropagation Services E M Ltd | Methods of in vitro culturing sphagnum |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN109588315B (zh) | 2021-05-28 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Fletcher | Epiphytism and fouling in Gracilaria cultivation: an overview | |
CN105858898B (zh) | 一种水体生态修复方法 | |
CN101743934A (zh) | 渤海湾双齿围沙蚕的无公害养殖方法 | |
CN103858632A (zh) | 一种复合式沉水植物草皮的制作方法 | |
CN105660357B (zh) | 一种浒苔人工半咸水生态育苗法 | |
CN208095731U (zh) | 一种水循环式淡水鱼生态鱼池 | |
CN100462001C (zh) | 菹草种苗快速繁殖的方法 | |
CN105993909A (zh) | 一种坛紫菜纯系种苗培育方法 | |
CN101779595A (zh) | 一种北方池塘脆江蓠移植栽培的方法 | |
CN110240362A (zh) | 一种高效的养殖尾水处理方法 | |
CN109588315A (zh) | 一种苔藓植物外植体的消毒方法 | |
CN104663439B (zh) | 一种伊乐藻组织培养与快速繁殖方法 | |
CN105494215A (zh) | 一种虾夷扇贝亲贝保活水运法 | |
CN103782929A (zh) | 公共淡水水域移殖放流海水梭鱼方法 | |
CN1742563A (zh) | 菹草种苗快速繁殖的方法 | |
CN208956743U (zh) | 一种便于排污的鱼虾养殖池 | |
CN102124952A (zh) | 轮叶黑藻组织培养快速繁殖方法 | |
Chopin et al. | Beyond the monospecific approach to animal aquaculture—the light of integrated multi-trophic aquaculture | |
CN104855290B (zh) | 玉郎伞的组织培养方法 | |
CN110301278A (zh) | 一种“红阳”猕猴桃无溃疡病病原菌种苗培育技术 | |
CN102101724B (zh) | 原位修复富营养化池塘养殖水的方法 | |
CN204969011U (zh) | 一种轮虫培养装置 | |
CN101760455B (zh) | 以芦苇地表根须为载体的石油降解菌固定化方法 | |
CN107361010A (zh) | 基于滨海盐碱地的黄河口大闸蟹养殖池塘水质调控方法 | |
CN103404464A (zh) | 一种海水养殖扇贝笼和贝壳上污损生物的生物清除方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20210528 Termination date: 20211231 |