CN108740811A - 含松叶有效成分的营养黄花鱼干的制造方法及黄花鱼干 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一种含有松叶有效成分的营养黄花鱼干的制造方法及黄花鱼干,根据本发明的含松叶成分的黄花鱼干的制造方法包括如下步骤:准备小黄鱼、去除卤水2至5年而得到的日晒盐、生松叶及松叶粉;向所述小黄鱼添加所述日晒盐、生松叶及松叶粉;向添加了日晒盐、生松叶及松叶粉的所述小黄鱼的两面分别照射一次100至200分钟的具有2至20微米的波长的远红外线,从而使选自类黄酮或多酚的松叶的有效成分渗透至小黄鱼;使照射了远红外线的小黄鱼熟化;用盐水清洗熟化的小黄鱼;以及干燥清洗后的小黄鱼。根据所述制造方法,通过将类黄酮或多酚等松叶的有效成分充分包含,可以制造提高营养价值及功能性的黄花鱼干。

Description

含松叶有效成分的营养黄花鱼干的制造方法及黄花鱼干
技术领域
本发明涉及一种含松叶有效成分的含松叶成分的黄花鱼干的制造方法及据此制造的含松叶成分的黄花鱼干。
背景技术
通常,黄花鱼干是在节日中作为高档礼品而流通的高价水产,并且为了黄花鱼干的大众化及高营养化而探索了多种加工方法。具体地,例如,韩国授权专利第1996-16571号中公开了如下的制造辣椒酱黄花鱼干的方法:将小黄鱼干浸泡在辣椒酱而使辣椒酱通过渗透压作用而替代黄花鱼干体内的脂肪,并通过使辣椒酱渗透而表现出特有的味道。韩国授权专利第10-202300号中公开了即时烹饪式熏制黄花鱼干的烹饪方法。并且,韩国授权专利第10-265297号中公开了以如下工序执行的制造蒸黄花鱼干的方法:将干燥的黄花鱼干冷冻后解冻,并蒸制后立即急速冷却,然后分离黄花鱼干肉而选择性地进行调味处理,然后进行干燥而真空包装,并再次冷冻。韩国公开专利第2001-57544号中公开了保管容易且经过卫生的调味处理的新的调味黄花鱼干的制造方法。韩国公开专利第1998-43081号中公开了利用生物能量金字塔的生物黄花鱼干的制造方法。上述的黄花鱼干的制造方法分别具有不同的优点,但是为了黄花鱼干的大众化需要探索特性化的多样的加工方法,与此同时,对于如下技术的需求也在增加:使黄花鱼干包含食物等天然药材中所包含的有效成分,从而能够制造更具营养价值的黄花鱼干。
另外,由于长时间生吃松叶会不老且身体变轻、充满力量、白发变黑、耐寒和耐饿,因此从以前开始松叶称为神仙食品。在东医宝鉴中记载为,松叶被用作调理风湿疮(即由于湿气导致的关节麻或疼的疾病)、生发、舒缓五脏六腑,且作为谷物的替换物而使用。松叶含有大量的不饱和脂肪酸,因此阻挡胆固醇的堆积并防止动脉硬化。并且,扩张末梢血管而促进血液循环,从而提高脑细胞功能,除此之外,有助于高血压、糖尿病、心脏病、中风、贫血以及毒品、尼古丁解毒、去除有害的氧代谢物等。
因此,本发明的发明人在研究含松叶有效成分的黄花鱼干的制造方法的过程中,确认了在特定条件下制造黄花鱼干的情况下,不用单独提取松叶也可以使松叶的有效成分渗透至黄花鱼干,从而完成了本发明。
[现有技术文献]
[专利文献]
(专利文献1)韩国公开专利第10-2004-0036854号(2004.05.03)
发明内容
本发明的目的在于提供含松叶有效成分的营养黄花鱼干的制造方法。
本发明的另一目的在于提供含松叶有效成分的营养黄花鱼干。
为了实现上述目的,本发明提供如下的含松叶成分的黄花鱼干的制造方法,准备小黄鱼、去除卤水2至5年而得到的日晒盐、生松叶及松叶粉;向所述小黄鱼添加所述日晒盐、生松叶及松叶粉;向添加了日晒盐、生松叶及松叶粉的所述小黄鱼的两面分别照射一次100至200分钟的具有2至20微米的波长的远红外线,从而使选自类黄酮或多酚的松叶的有效成分渗透至小黄鱼;使照射了远红外线的小黄鱼熟化;用盐水清洗熟化的小黄鱼;以及干燥清洗后的小黄鱼。
为了实现上述目的,本发明提供通过上述制造方法制造的含松叶成分的黄花鱼干。
本发明涉及一种制造含松叶有效成分的营养黄花鱼干的方法,以往尝试了添加松叶粉或松叶液而使松叶的成分渗透至黄花鱼干内,但是上述成分不易渗透。但是,如本发明,通过在盐渍小黄鱼的步骤中照射远红外线,能够使松叶的有效成分容易渗透至黄花鱼干内,因此根据本发明的制造方法可以制造含有类黄酮及多酚而能够表现出抗氧化效果等多样的生理活性的高营养黄花鱼干。
附图说明
图1是示出根据本发明的含松叶成分的黄花鱼干的制造方法的流程图。
具体实施方式
以下,对本发明进行更详细的说明。
本发明提供一种含松叶成分的黄花鱼干的制造方法,其包括如下步骤:准备韩国产小黄鱼、2至5年内去除卤水而得到的日晒盐、生松叶及松叶粉;向所述小黄鱼添加所述日晒盐、生松叶及松叶粉;向添加了日晒盐、生松叶及松叶粉的所述小黄鱼照射远红外线而使松叶的有效成分渗透至小黄鱼;使照射了远红外线的小黄鱼熟化;用盐水清洗熟化的小黄鱼;以及干燥清洗后的小黄鱼。
优选地,所述日晒盐可以是去除卤水3年而得到的日晒盐,所述生松叶及松叶粉可以直接制作,也可以使用市销的产品。
所述生松叶及松叶粉可以相对于100重量份的小黄鱼而添加50重量份至100重量份,如果在上述含量范围内添加,则可以使松叶的有效成分充分渗透至黄花鱼干,因此优选。
并且,在照射所述远红外线的步骤中,可以将波长为2微米至20微米的远红外线向小黄鱼照射总共200至400分钟,更优选地,将波长为2微米至20微米的远红外线向小黄鱼照射2次,每次100至200分钟。
即,对小黄鱼的两面,每次分别照射波长为2微米至20微米的远红外线100至200分钟,从而向小黄鱼的两面总共照射200至400分钟的远红外线。如上所述,在将波长为2微米至20微米的远红外线照射所述时间范围的情况下,可以最大化渗透至黄花鱼干的松叶的有效成分,因此优选。
此时,所述松叶的有效成分可以是类黄酮或者多酚,根据本发明的一实施例,通过本发明的制造方法制造的黄花鱼干相比于普通的黄花鱼干含有2倍以上的类黄酮,并且含有未在普通黄花鱼干中包含的多酚。
因此,根据本发明的制造方法而制造的所述黄花鱼干可以表现出抗氧化效果,除此之外也可以表现出类黄酮或多酚所表现的多样的生理活性,因此,根据本发明可以制造提高营养性及功能性的营养黄花鱼干。
进而,本发明提供通过上述制造方法制造的含松叶成分的黄花鱼干。
如上所述,当制造所述黄花鱼干时,添加生松叶及松叶粉后将特定波长的远红外线照射特定时间,因此可以使生松叶及松叶粉中的松叶的有效成分充分地渗透至黄花鱼干,因此所述黄花鱼干含有大量的类黄酮或多酚而能够表现出多样的生理活性。
以下,为了有助于理解本发明而通过举出实施例进行详细说明。但是,下述的实施例为了向本领域中具有基本知识的人员更完整地说明本发明而提供,且仅举例示出本发明的内容,因此本发明的范围不限于以下实施例。
<实施例1>营养黄花鱼干的制造
本发明中公开的制造方法如图1所示。即,如图1所示,从韩国法圣浦水协购买了韩国产小黄鱼,并从韩国盐山日晒盐购买了去除卤水3年而得到的日晒盐,并在韩国松树造景农场采集了生松叶而准备,并购买了松叶粉(图1的S100)。此后,向所述小黄鱼添加所述日晒盐以及小黄鱼比重的50%(相对于小黄鱼100重量份的50重量份)的生松叶和松叶粉(图1的S110),并向所述小黄鱼照射300分钟的2至20微米的远红外线(图1的S120),从而使松叶的有效成分渗透至小黄鱼。即,向小黄鱼的每一面照射150分钟的远红外线而对两个面总共照射了300分钟的远红外线。
此后,使照射了远红外线的小黄鱼熟化30分钟(图1的S130),并将熟化的小黄鱼用盐水清洗(图1的S140)以及干燥(图1的S150)而制作了含松叶成分的黄花鱼干。
<实验例1>营养黄花鱼干的营养成分分析
(1)试料的预处理
利用在所述实施例1中制造的黄花鱼干而准备了之后要使用的试料。具体地,先用肉眼确认试料的状态有无异常,然后仅将黄花鱼干的鱼肉分离,并利用粉碎用混合器(HMF3250S,韩日电器)及均质器(AESAP 1100,AES)而进行均质化。将如上所述地均质化的试料以1×2进行2等分,并分成小份而分别用于两次的实验(样品编号1)。此时,作为对照试料使用普通黄花鱼干(购自海上黄花鱼干)(样品编号2),并以相同方法进行了两次的实验。
(2)确认维生素C的含量
为了确认所述实施例1中制造的本发明的含松叶成分黄花鱼干的成分差异,首先分析了维生素C的含量。首先,利用作为紫外检测器的Waters 996PDADetector执行了液相色谱,并作为试剂及试液而制造了10%偏磷酸溶液、5%偏磷酸溶液、标准溶液。偏磷酸具有100%地防止维生素C的氧化的效果,首先将纯度为35%的偏磷酸(制造公司:JUNSEI)28.57g(换算后为纯偏磷酸10g)溶于超纯水(电阻为18.2MΩ以上)而使体积达到100ml,并进行过滤而去除不溶物,从而制造了10%的偏磷酸溶液,将如上所述地制造的10%的偏磷酸溶液再次用超纯水稀释2倍而制造了5%偏磷酸溶液。并且,精确地测量10.0mg的抗坏血酸(制造公司:Sigma Aldrich)而溶于5%偏磷酸溶液而使体积达到100ml,然后用超声波均质化,然后为了防止抗坏血酸的氧化而放入棕色量瓶而用作标准原液(100ppm)。此时,标准原液的浓度根据13.8mg X 99.9%X 1,999μg/mg/100ml式而成为137.862μg/ml。此后,将5%偏磷酸溶液投入标准原液而稀释成所要浓度而得到了用于实验的标准溶液,此时,各标准溶液的浓度为2.7572μg/ml、6.8931μg/ml、13.7862μg/ml。
此后,将在所述实施例1中制造的黄花鱼干预定量(在维生素C含量为50mg/100g以上的情况下为2g左右,在维生素C含量为10~50mg/100g的情况下为5~10g左右)准确称重之后添加同量的10%的偏磷酸溶液而使其悬浊10分钟,然后投入适量的5%的偏磷酸而使其悬浊,且为了提取维生素C而利用超声波进行均质化30分钟。将如上所述地均质化的待检物移至100ml量瓶,并用少量的5%偏磷酸溶液清洗容器后合并到量瓶,使体积达到100ml。此后,在3,000rpm下利用离心分离器(韩日科学MF-300)进行10-15分钟的离心分离而提取上清液,并用5%的偏磷酸溶液适当地稀释而将其中的50ml用作试验溶液。
在进行液相色谱时,分别将试验溶液及标准溶液注入10μl,作为反相柱使用Jascopack Fine Sil-NH2(除此之外,可以使用Lichrosorb NH2,并改变条件而使用ZipaxSAX、Vydac SAX.Partisil-10SAX、μ-Bondapak C18、μ-Bondapak/CN、Pormaphase CPS等),并作为移动相使用了0.05M KH2PO4/乙腈(60:40),并作为缓冲溶液和离子配对试剂而使用磷酸二氢钾。流速为1.9ml/分,且在254nm波长下使用紫外(UV)检测器进行了测量。
求得如上所述地执行液相色谱后后得到的峰值的宽度或高度而制作校准曲线(Calibration Curve),然后求得试验溶液的维生素C的浓度(μg/mL),并如下<式1>地计算了待检物中的抗坏血酸的含量(mg/100g)。在换算为L-抗坏血酸钠的情况下,将L-抗坏血酸的量乘以系数1.125。
<式1>
(S:试验溶液中的抗坏血酸的浓度(μg/ml),a:试验溶液的总量(ml),b:试验溶液的稀释倍数)
其结果,可以得到如下<表1>所示的结果。
[表1]
具体地,将实验试料(样品编号1)作为对象的第一次实验(1-1)及第二次实验(1-2)中都表现出0mg/100g的含量,且将对照试料(样品编号2)作为对象的第一次实验(2-1)及第二次实验(2-2)中也都表现出0mg/100g的含量。即,实验试料与对照试料在维生素C的含量方面无差异。
(3)铁成分含量分析
将上文中准备的试料提取到200~300ml分解烧瓶之后,加入硝酸溶液(德山化学)5ml而缓慢地较弱地加热,并在最初的剧烈的反应结束之后再次升温而加热。即,加热至硝酸挥发而使内容物几乎干燥,此后添加10ml的硝酸溶液和70%的过盐酸(大井化金)10ml而调节加热,并加热至固形物完全溶解且溶液变成几乎无色,由此进行了分解。完成分解之后,进行冷却并用少量的水进行稀释,然后将溶液移至清洗后的直径为9cm的瓷蒸发皿而进行蒸发干燥而使过盐酸蒸发。将大约10ml的盐酸溶液加入残留物后用等量的水进行稀释,并在水浴上加热而完全融化,然后移至100ml的量瓶而加入水,并使总量为100ml而用作试验溶液。
此后,利用电感耦合等离子体法(inductively coupled plasma,ICP)将所述试验溶液定量。ICP是如下方法:利用电感耦合方法向氩气施加高频而放电,从而得到氩等离子体,将试验溶液注入所得到的氩等离子体而测量目标元素的原子线及离子线的发光光度或质量值而计算试验溶液中的目标元素的浓度。本实验中,使用了ICP-AES(EPCTRO BLUE,SPECTRO),并将铁1ppm标准溶液(KANTO)、将其稀释而制作的铁1μg/ml溶液、所述试验溶液和空白试验溶液注入电感耦合等离子体而计算了试验溶液的浓度。
此时,标准溶液的校准曲线如下<表2>所示,并以如下<式2>中公开的内容计算了试验溶液的铁成分含量。
[表2]
浓度(ug/ml) 吸光度
0.10 11162.000
0.50 44464.000
1.00 84676.000
<式2>
(S:试验溶液中的铁成分的浓度(μg/ml),a:试验溶液的总量(ml),b:试验溶液的稀释倍数)
其结果,如下<表3>所示,对实验试料的第一次实验(1-1)中,铁成分的测量值为6.52mg/100g,第二次实验(1-2)中,铁成分的测量值为6.36mg/100g,因此平均含有6.44mg/100g的铁成分。即,相比于对照试料而没有表现出有意义的区别。
[表3]
(4)总类黄酮含量分析
类黄酮为植物界中广泛分布的多酚化合物的一种,并且为天然色素,并具有γ-吡喃酮(γ-pyrone)结构[C6(benzene A ring)-C3-C6benzene B ring],尤其在植物的叶子、开花组织及花粉等中存在较多。类黄酮具有抗炎症、抗过敏及抗氧化作用等多种生理学、药理学作用(Havesteen B.,Biochem.Pharmacol.,32:1141-1148,1983;Fukuzawa andTakaishi,J.Act.Oxy.Free Rad.,1:55-69,1990),并且最近发现了可以通过摄取类黄酮含量较高的多种疏果类而降低慢性癌及心脏病的发病的事实(Yoshida M.et al.,FEBSLetter 260:10-13,1990;Hertog et al.,J.Agric Food Chem.,40:2379-2383,1992a;Verma A.K.et al.,Cancer Res.,48:5754-5758,1998)。并且,在报告中提到类黄酮是与肿瘤产生具有较大的关联的前列腺素合成酶(prostaglandin synthase)、脂肪氧合酶(lipoxygenase)及环氧酶(cyclooxygenas)等酶抑制剂(Bauman et al.,Prostaglandin20:627-639,1980;Yoshimoto et al.,Biochem.Biphys.Res.Commun.,116:612-618,1983;Moroney et al.,J.Pharmacol.Phamacodyn.,278:4-12,1988;Laughton et al.,Biochem.Pharmacol.,42:1673-1681,1991),不仅如此,能够使抗老化物质的L-抗坏血酸(L-ascorbic acid)再生,或者诱导属于无毒化酶的谷胱甘肽s-转移酶(glutathione S-transferase)等酶(Smith and Yang,Effect of Food Phytochemicals on XenobioticMetabolism and Tumorigenesis,ACS,1994)。
这种类黄酮系物质在415nm具有最大吸收波长。因此,本发明中使作为代表性的类黄酮系物质(Flavonol)的槲皮素(quercetin)与铝结合而呈金色,从而测量吸光度并基于此进行了定量。更为具体地,作为标准物质使用了槲皮素二水合物(纯度97.02%,制造公司:HWI),如果使槲皮素二水合物与铝进行反应,则与Al3+结合并呈金色。作为普通试剂使用了乙醇(德山化学),作为普通试液使用了10%的硝酸铝溶液(Aluminium nitrate)及1M醋酸钾溶液(CH3COOK)。此时,准确地称重17.6g的硝酸铝9水合物(Al(NO3)39H2O;YAKURI)而用蒸馏水溶解而达到100ml,并准确地称重9.815g的醋酸钾(JUNSEI)而溶解于蒸馏水而达到100ml,从而作为各个普通试液使用。并且,使用了80%乙醇(20%的水使用超纯水),90%乙醇(10%的水使用超纯水)。
此后,通过如下的方法调制了试验溶液。首先,称量上文中准备的黄花鱼干试料60~100mg,并用分液器滴加90%乙醇20ml而溶解。对于颗粒状及片状的产品,将试料充分破碎而使用,并对于包含明胶等的产品,将内容物取出而使用。此后,进行离心分离(3000rpm,10分钟)而提取上清液,并对残留物添加80%乙醇8ml而萃取3次。将所述上清液和萃取3次的萃取物集中在一处后使用80%乙醇而使体积达到50ml,从而制造了用作试验溶液的蜂胶萃取物。
标准溶液通过以下方法制造:将槲皮素二水合物以无水物混合而准确称重50mg而放入50ml体积的烧瓶,并将乙醇填充至标线而制造了标准原液。此后,添加乙醇而稀释100倍(0.01mg/ml)、20倍(0.05mg/ml)、10倍(0.1mg/ml)而制作了标准溶液,此时标准原液的浓度为0.8704mg/ml。
此后,分别将0.5ml的标准溶液及试验溶液用作对照液和试验液而取到两个试管,并在此添加乙醇1.5ml,10%硝酸铝溶液0.1ml,1M乙酸钾溶液0.1ml、蒸馏水2.8ml而充分搅拌。在按各浓度进行标准物质及试料的空白试验中,代替10%硝酸铝而添加0.1ml蒸馏水。将该试料在室温下停放40分钟后,对液层使用10mm单元(cell)并将水作为对照液而在415nm下测量了吸光度。
此时,按标准物质的浓度测量的吸光度与按浓度测量的空白试验的吸光度之差而如下<表4>所示地制造了标准物质的校准曲线。
[表4]
将试料的吸光度与试料的空白试验吸光度之差应用于校准曲线,然后用下述<式3>中示出的方法测量了类黄酮的总含量(mg/g)。
<式3>
类黄酮总含量(mg/g)=C×a/S
(C:试验溶液中的类黄酮总含量(mg/ml或ug/ml)、S:试料提取量(g或ml)、a:试验溶液的总量(ml)=30ml)
其结果,如下<表5>所示,在根据本发明的黄花鱼干试料的第一次实验(1-1)中,类黄酮的总含量为2.70mg/100g,第二次实验(1-2)中,类黄酮的总含量为2.71ml/100g。这种数值为将对照试料作为对象的两次实验(2-1,2-2)中分别测量的1.01mg/100g及1.00mg/100g的含量数值的大约2倍以上,因此可知,通过使根据本发明的黄花鱼干含有松叶有效成分,从而以高浓度包含能够以高浓度包含表现出抗氧化活性的物质。
[表5]
(5)多酚总含量分析
多酚表示苯环(C6H6)的氢中的一个被氢氧基(OH)取代的物质,具有上述结构的化合物在自然界中大量存在。被包含于绿茶的儿茶酚(catechins)、被包含于咖啡的绿原酸、诸如草莓或茄子、葡萄、黑豆、红豆等红色或紫色的花青素类色素等都是多酚类化合物。除此之外,多酚化合物被包含于蔬菜、水果、可可、红葡萄酒等多种。多酚类具有防止氧化的作用,即抗氧化功能。最近,多酚类受瞩目的原因为,该功能在生物体内也作为抗氧化剂而发挥作用,从而有望有助于维持健康、预防疾病等。并且,多酚类阻止胆固醇被消化管吸收,因此还起到降低血液中的胆固醇数值的作用。与此同时,被认为是去除皮肤老化的主要原因而使皮肤再生的最有效的成分。不仅如此,所述多酚能够改善女性的褐斑,并抑制中性脂肪,且已知在预防肥胖或高脂血症时具有卓越的效果。
本实验中,为了计算根据本发明的黄花鱼干的多酚总含量,将试料溶解于蒸馏水,并用超声波提取,然后与着色试剂进行反应而使用分光光度计进行定量。更为具体地,作为标准物质使用了单宁酸(Tannin acid;Sigma-Aldrich),且作为普通试剂使用了佛林顿尼斯试剂(Folin-Denis reagent;Sigma-Aldrich)及蒸馏水(利用超纯水制造装置(NEXPOWER 2000;Human Corporation)制造)。所述Folin-Denis试剂通过如下方法制造:将钼酸钠25g、钨酸钠100g与85%磷酸50ml、浓盐酸100ml、水700ml一起加热10小时而进行回流,并继续添硫酸锂150g、水50ml、几滴溴后,加热15分钟而去除多余的溴,然后加水而稀释为1L。并且所述Folin-Denis以混合有磷钼酸(phosphomolybdic acid)和磷钨酸(phosphotungstic acid)的状态呈黄色。并且,作为试液使用35%碳酸钠溶液(Sodiumcarbonate),此时,精确地称重35g的碳酸钠(大井化金)而投入蒸馏水100ml,并在70℃下溶解而放置在常温下,然后当在过饱和的溶液中生成Na2CO3·10H2O结晶时,用玻璃棉(glasswool)过滤。
精确地称量单宁酸10mg而放入100ml体积的烧瓶,并将蒸馏水填充至标线而制作了标准原液,利用蒸馏水稀释至适当浓度后用作标准溶液。此时,标准原液的浓度为103μg/ml。为了制造试验溶液,称量100mg的试料而装在100ml体积烧瓶,然后投入蒸馏水而达到标线,然后进行超声波处理而进行了溶解。
此后,将蒸馏水7.5ml投入到与要实验的试料的数量对应的数量的试管,然后分别将1ml的标准溶液及试验溶液投入所述试管,并依次添加Folin-Denis试剂0.5ml、碳酸钠1ml而进行了混合。将如上所述的混合有Folin-Denis试剂及碳酸钠的试管置于暗处1小时,然后在760nm下测量了吸光度。
此时,利用按标准物质的浓度测量的吸光度和各空白试验的吸光度之差制造了标准物质的校准曲线,且如下<表6>所示。
[表6]
浓度(ug/ml) 吸光度
51.50 0.485
25.75 0.258
10.30 0.106
5.15 0.063
1.03 0.020
并且,将测量的试料的吸光度与试料的空白试验的吸光度之差应用于校准曲线,然后如下述<式4>所示地测量了多酚总含量(mg/g)。
<式4>
(A:试验溶液的总量(ml)、B:稀释倍数、C:试验溶液中的多酚总浓度(mg/ml)、D:试料提取量(g或ml))
其结果,如下述<表7>所示,可知不同于在两次实验中都完全没有测量出多酚的对照试料(2-1,2-2),根据本发明的黄花鱼干试料的第一次实验(1-1)及第二次实验(1-2)中分别含有4.18mg/100g及4.21mg/100g的多酚。
[表7]
因此,考虑到所有上述实验结果,根据本发明的黄花鱼干通过照射远红外线而包含松叶中含有的类黄酮及多酚,如上所述,除了黄花鱼干本身的营养成分以外,还包括松叶的有效成分,因此可以作为提高了营养价值及功能性的黄花鱼干而使用。
以上详细记载了本发明的内容的特定部分,对于本领域中具有基本知识的人而言,上述的具体技术仅仅是优选的实施形态,需要明确的是,本发明不限于上述记载。即,本发明的实质范围根据权利要求及其等价物定义。

Claims (3)

1.一种含松叶成分的黄花鱼干的制造方法,包括如下步骤:
准备小黄鱼、去除卤水2至5年而得到的日晒盐、生松叶及松叶粉;
向所述小黄鱼添加所述日晒盐、生松叶及松叶粉;
向添加了日晒盐、生松叶及松叶粉的所述小黄鱼的两面分别照射一次100至200分钟的具有2至20微米的波长的远红外线,从而使选自类黄酮或多酚的松叶的有效成分渗透至小黄鱼;
使照射了远红外线的小黄鱼熟化;
用盐水清洗熟化的小黄鱼;以及
干燥清洗后的小黄鱼。
2.如权利要求1所述的含松叶成分的黄花鱼干的制造方法,其中,
所述黄花鱼干表现出抗氧化效果。
3.一种含松叶成分的黄花鱼干,通过权利要求1所述的制造方法而制造,且包括选自类黄酮或多酚的松叶的有效成分。
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