CN108152501A - A群牛轮状病毒检测试剂盒和该病毒抗体胶体金试剂制备方法 - Google Patents

A群牛轮状病毒检测试剂盒和该病毒抗体胶体金试剂制备方法 Download PDF

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CN108152501A CN201810013771.2A CN201810013771A CN108152501A CN 108152501 A CN108152501 A CN 108152501A CN 201810013771 A CN201810013771 A CN 201810013771A CN 108152501 A CN108152501 A CN 108152501A
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Abstract

本发明涉及一种A群牛轮状病毒检测试剂盒,包含试剂R1和试剂R2。本发明还涉及一种A群牛轮状病毒检测试剂盒的制备方法,包括烧制胶体金;将抗体与胶体金纳米颗粒偶联,得到偶联抗体的纳米金颗粒溶液;离心,沉淀用含稳定剂、防腐剂的缓冲液重悬,调整浓度。本发明具有较高的检测灵敏度和特异性,稳定性好,操作简单,反应时间短;适用于全自动生化分析仪、特种蛋白仪及分光光度计,反应后不产生沉淀,便于反应杯清洗;本发明试剂盒与IPMA、ELISA、免疫荧光、免疫层析等方法对样本中BRoV检测数据统计分析,检测结果可靠,较胶乳法生产成本更低,具有较大的市场竞争力。

Description

A群牛轮状病毒检测试剂盒和该病毒抗体胶体金试剂制备 方法
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体的说是一种A群牛轮状病毒检测试剂盒及其制备方法。
背景技术
轮状病毒是各种幼龄动物和婴幼儿病毒性腹泻的病原之一。1968年Mebus等人在美国阿拉斯加州一农场犊牛腹泻粪便中首次发现牛轮状病毒(Bovine rotavirus,BRoV),以后在欧洲、美洲、澳大利亚、新西兰、日本等都发现了由牛轮状病毒引起的犊牛腹泻。
BRoV属于呼肠孤病毒科轮状病毒属的双链RNA病毒,BRoV感染时引起犊牛爆发肠道机能紊乱的一种急性肠道传染病,以呕吐、腹泻、脱水和酸碱平衡紊乱为主要特征,给养牛业带来严重的危害。BRoV病毒粒子略呈圆形,具有双层衣壳,直径65-75nm。中央是一个电子致密六角形核心,为RV的芯髓,直径37-40nm;芯髓周围绕有一个电子透明层,壳粒由此向外呈辐射状排列,构成内衣壳;外周是一层由光滑薄膜构成的外衣壳,厚约20nm,是在内质网膜上芽生时获得的。以核心为毂,以呈辐射状排列的内衣壳为轮辐,以外衣壳为辋,构成特征性的轮状结构。电子显微镜水平下可以对轮状病毒与呼肠孤病毒加以区分。电子显微镜观察发现,轮状病毒的内衣壳壳粒为棍棒状,向外呈辐射状排列,外周为一层由光滑薄膜构成的外衣壳,故而病毒粒子表面光滑;相反,呼肠孤病毒内衣壳的壳粒接近球形或呈短棱柱状,外衣壳的壳粒清楚可见,故整个病毒的表面呈粗糙颗粒状。此外,轮状病毒的核心小于呼肠孤病毒的核心。
BRoV存在多种血清型,我国牛群中轮状病毒感染以A群为主,在A群BRoV中VP6蛋白是群抗原,在各毒株中高度保守。我国BRoV的诊断主要依赖于实验室的常规诊断,这些常规的诊断技术有其优点,但也有其固有的缺点。成本高、需要特殊的昂贵的仪器、需要特殊技术人员、存在有害物质等因素影响了对BRoV的及时诊断,尤其是对BRoV的现地诊断,从而也影响了对BRoV的及时预防和治疗。
随着单克隆抗体技术的发展和全自动生化分析仪、蛋白分析仪的普及,免疫比浊技术已经发展出多种快速免疫比浊检测技术,已被广泛应用于临床诊断、生物材料分析的等技术实践中。
纳米颗粒增强比浊法(Particle-enhanced turbidimetric immunoassay,PETIA)是一种较为稳定、准确的均相免疫比浊检测方法。
PETIA法大体分为两种:一种是散射比浊检测法,另一种是透射比浊检测法。这两种方法的基本原理非常相似,都是在高分子纳米微球的表面交联单克隆抗体,当交联有抗体的微球与抗原结合后,在短时间内会迅速聚集在一起,改变了反应液的散光性能或透光性能。而且,反应液散光性能或透光性能(即吸光度)的改变与被测抗原的浓度有较强的相关性,在一定范围内可以反映被测抗原的浓度。
PETIA检测方法是在均相反应体系中进行抗原、抗体反应及结果的测定。抗原、抗体反应后,直接测定反应液的吸光度值,省却了ELISA法反复孵育和洗板等烦琐操作步骤,几分钟就能获得结果,省时省力。
此外,PETIA操作步骤的简化也相应地避免了许多人为操作因素和试剂、环境等外界因素的干扰,稳定性和重复性都较好,能较真实地反映被测物质的存在情况。纳米级粒子的推出解决了对单克隆抗体结合的能力不强,临床检测的线性范围窄,干扰因素多,实验稳定性差等问题,大大促进了免疫比浊法在临床上的广泛应用。
发明内容
本发明要解决的第一个技术问题是提供一种A群牛轮状病毒检测试剂盒,该检测试剂盒具有较高的检测灵敏度和特异性,稳定性好,操作简单,反应时间短; 可适用于全自动生化分析仪、特种蛋白仪及分光光度计,反应后不产生沉淀,便于反应杯清洗。
本发明要解决的第二个技术问题是提供一种A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂的制备方法,该方法不需要预处理样本,操作简便、准确可靠、重复性好,可用于全自动生化分析仪、特种蛋白仪及分光光度计上使用。
为解决第一个技术问题,本发明提供了一种A群牛轮状病毒检测试剂盒,包含试剂R1和试剂R2;所述试剂R1为pH 6.0-8.0的缓冲液,其包括稳定剂、高分子加速剂、表面活性剂和防腐剂;所述试剂R2为A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂,其包括稳定剂、抗A群牛轮状病毒抗体纳米金颗粒、防腐剂和缓冲液。
进一步地,所述试剂R1的缓冲液包括醋酸盐缓冲液、氯化铵缓冲液、磷酸盐缓冲液、三羟甲基氨基甲烷TRIS缓冲液、硼砂-氢氧化钠缓冲液、甘氨酸缓冲液、3-(N-吗啉)丙磺酸MOPS缓冲液、3-(环己胺)-2-羟基-1-丙磺酸CAPSO缓冲液、4-羟乙基哌嗪乙磺酸HEPES缓冲液中的一种或几种。
进一步地,所述试剂R1的稳定剂包括亚氨基二乙酸、脂肪醇聚氧乙烯醚硫酸钠、乙二胺四乙酸二钠、二乙烯三胺五乙酸钠、1,2-环己二醇缩水甘油、甘露糖、葡萄糖、壳聚糖、山梨醇和牛血清蛋白中的一种或几种;所述试剂R1的防腐剂包括叠氮钠、苯酚、Proclin、对羟基苯甲酸、对羟基苯甲酸乙酯和乙基汞硫代硫酸钠中的一种或几种;所述试剂R1的高分子加速剂包括脂肪醇聚氧乙烯醚、聚乙烯吡咯烷酮、聚丙烯酸钠、聚乙二醇、羟丙基甲基纤维素和羟甲基纤维素钠中的一种或几种;所述试剂R1的表面活性剂包括Triton系列、Tween系列、月桂醚、聚氧乙烯烷基苯基醚、聚氧乙烯壬基苯基醚和聚氧乙烯辛基苯醚中的一种或几种。
优选的,所述试剂R1的稳定剂为质量体积比0.2-2% 的牛血清蛋白BSA;所述试剂R1的高分子加速剂为质量体积比0.2-0.5% 的聚乙二醇PEG8000;所述试剂R1的防腐剂为质量体积比0.1-0.5%的Proclin300;所述试剂R1的表面活性剂为质量体积比0.05-0.1%Tween20;所述试剂R1的缓冲液为pH6.0-8.0的磷酸盐缓冲液。
进一步地,所述试剂R2的缓冲液包括磷酸盐缓冲液、硼酸缓冲液、甘氨酸缓冲液、Tris-Cl缓冲液、HEPS缓冲液中的一种或多种;所述试剂R2的稳定剂包括小牛血清、BSA、脱脂乳、明胶、甘露糖、葡萄糖、壳聚糖、山梨醇、甲醇、乙醇、乙二醇、丙三醇、Triton、Tween一种或几种;所述试剂R2的防腐剂包括叠氮钠、苯酚、Proclin、对羟基苯甲酸、对羟基苯甲酸乙酯和乙基汞硫代硫酸钠中的一种或几种;所述试剂R2的抗A群牛轮状病毒抗体包括鼠抗A群BRoV单克隆抗体、羊抗A群BRoV多克隆抗体、兔抗A群BRoV多克隆抗体、鸡抗A群BRoV单克隆抗体一种或多种混合。
优选的,所述试剂R2的稳定剂为质量体积比10-20%蔗糖、质量体积比0.5-2% BSA和质量体积比3-10%甘油;所述试剂R2的抗A群牛轮状病毒抗体纳米金颗粒为标记有鼠抗A群BRoV单克隆抗体的粒径为60±1.5nm的金纳米颗粒;所述试剂R2的防腐剂为质量体积比0.1-0.5%的Proclin300;所述试剂R2的缓冲液为pH6.0-8.0的磷酸盐缓冲液。金纳米颗粒与抗体质量比为1:0.8-1:1.6。
为解决第二个技术问题,本发明提供一种A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂的制备方法,该方法包括如下步骤:步骤1)烧制胶体金;步骤2)将抗体与胶体金纳米颗粒偶联,得到偶联抗体的纳米金颗粒溶液;步骤3)离心,沉淀用含稳定剂、防腐剂的缓冲液重悬,调整浓度至为0.2。
其中,步骤1)具体的包括:步骤1.1)配制1%氯金酸溶液,将1g氯金酸加入100mL超纯水中,4℃避光保存备用;步骤1.2)配制1%柠檬酸三钠溶液,将1g柠檬酸三钠溶于100mL超纯水中,备用;步骤1.3)在清洗干净的圆底烧瓶中加超纯水100mL,放入磁力搅拌子1枚,加入1%氯金酸溶液1mL,600rpm高速搅拌并加热至溶液沸腾,迅速加入1%柠檬酸三钠溶液1.5mL,继续加热和搅拌10min,溶液颜色先变黑后变红,停止加热并继续搅拌10min,然后停止搅拌恢复至室温并用超纯水恢复至100mL;制得胶体金溶液,超滤去掉小分子备用。
步骤2)具体的包括:步骤2.1)利用抗A群牛轮状病毒单克隆抗体杂交瘤细胞株,以体内诱生腹水的方式制备抗体;步骤2.2)用Protein G柱进行纯化,0.01M PBS、pH7.2、4℃透析过夜,12000rpm 、4℃离心30min,收集上清即得A群牛轮状病毒单克隆抗体,用紫外分光光度计或蛋白分析仪测定得出抗体浓度;步骤2.3)取100mL胶体金溶液,用1%调节pH至7.5-10.0,按最适蛋白量缓慢加入A群牛轮状病毒单克隆抗体,在磁力搅拌器下反应10min,加入BSA溶液至最终浓度为1%,继续搅拌5min,得到A群牛轮状病毒单克隆抗体金标复合物,4℃过夜。
步骤3)具体的包括:步骤3.1)将A群牛轮状病毒单克隆抗体金标复合物以3000rpm离心30min;步骤3.2)去除聚合凝集杂质,再以12000rpm、 4℃离心30min,弃上清,用重悬液(1%BSA+0.01MPBS)复溶,重复洗涤3次;步骤3.3)收集沉淀,用质量体积比20%蔗糖、质量体积比2% BSA、质量体积比10%甘油、质量体积比0.5%的Proclin300作为稳定剂的0.01M的PBS缓冲液(pH7.2)重悬沉淀,调整浓度至为0.2,分装备用。
本发明产生了如下有益效果:
1)本发明试剂盒具有较高的检测灵敏度和特异性,稳定性好,操作简单,反应时间短,从检测导出结果最多只需10min;
2)本发明试剂盒可适用于全自动生化分析仪、特种蛋白仪及分光光度计,反应后不产生沉淀,便于反应杯清洗;
3)本发明试剂盒与IPMA、ELISA、免疫荧光、免疫层析等方法对样本中BRoV检测数据统计分析,无显著差异,检测结果可靠,同时较胶乳法生产成本更低,具有较大的市场竞争力;
4)通过纳米金颗粒标记的A群牛轮状病毒抗体与待检样本反应前后溶液的浊度变化判断A群牛轮状病毒的存在与否。该方法不需要预处理样本,操作简便、准确可靠、重复性好,可用于全自动生化分析仪、特种蛋白仪及分光光度计上使用。
具体实施方式
本发明提供了一种A群牛轮状病毒检测试剂盒,其包含试剂R1和试剂R2。试剂R1为pH 6.0-8.0的缓冲液,其包括稳定剂、高分子加速剂、表面活性剂和防腐剂;所述试剂R2为A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂,其包括稳定剂、抗A群牛轮状病毒抗体纳米金颗粒、防腐剂和缓冲液。
其中,试剂R1的缓冲液包括醋酸盐缓冲液、氯化铵缓冲液、磷酸盐缓冲液、三羟甲基氨基甲烷TRIS缓冲液、硼砂-氢氧化钠缓冲液、甘氨酸缓冲液、3-(N-吗啉)丙磺酸MOPS缓冲液、3-(环己胺)-2-羟基-1-丙磺酸CAPSO缓冲液、4-羟乙基哌嗪乙磺酸HEPES缓冲液中的一种或几种。试剂R1的稳定剂包括亚氨基二乙酸、脂肪醇聚氧乙烯醚硫酸钠、乙二胺四乙酸二钠、二乙烯三胺五乙酸钠、1,2-环己二醇缩水甘油、甘露糖、葡萄糖、壳聚糖、山梨醇和牛血清蛋白中的一种或几种;试剂R1的防腐剂包括叠氮钠、苯酚、Proclin、对羟基苯甲酸、对羟基苯甲酸乙酯和乙基汞硫代硫酸钠中的一种或几种;所述试剂R1的高分子加速剂包括脂肪醇聚氧乙烯醚、聚乙烯吡咯烷酮、聚丙烯酸钠、聚乙二醇、羟丙基甲基纤维素和羟甲基纤维素钠中的一种或几种;所述试剂R1的表面活性剂包括Triton系列、Tween系列、月桂醚、聚氧乙烯烷基苯基醚、聚氧乙烯壬基苯基醚和聚氧乙烯辛基苯醚中的一种或几种。
作为一种优选方案,本发明的试剂R1的稳定剂为质量体积比0.2-2% 的牛血清白蛋白BSA;所述试剂R1的高分子加速剂为质量体积比0.2-0.5% 的聚乙二醇PEG8000;所述试剂R1的防腐剂为质量体积比0.1-0.5%的Proclin300;所述试剂R1的表面活性剂为质量体积比0.05-0.1% Tween20;
所述试剂R2的缓冲液包括磷酸盐缓冲液、硼酸缓冲液、甘氨酸缓冲液、Tris-Cl缓冲液、HEPS缓冲液中的一种或多种;所述试剂R2的稳定剂包括小牛血清、BSA、脱脂乳、明胶、甘露糖、葡萄糖、壳聚糖、山梨醇、甲醇、乙醇、乙二醇、丙三醇、Triton、Tween一种或几种;所述试剂R2的防腐剂包括叠氮钠、苯酚、Proclin、对羟基苯甲酸、对羟基苯甲酸乙酯和乙基汞硫代硫酸钠中的一种或几种;所述试剂R2的抗A群牛轮状病毒抗体包括鼠抗A群BRoV单克隆抗体、羊抗A群BRoV多克隆抗体、兔抗A群BRoV多克隆抗体、鸡抗A群BRoV单克隆抗体一种或多种混合。
作为一种优选方案,试剂R2的稳定剂为质量体积比10-20%蔗糖、质量体积比0.5-2% BSA和质量体积比3-10%甘油;所述试剂R2的抗A群牛轮状病毒抗体纳米金颗粒为标记有鼠抗A群BRoV单克隆抗体的粒径为60±1.5nm的金纳米颗粒;所述试剂R2的防腐剂为质量体积比0.1-0.5%的Proclin300;所述试剂R2的缓冲液为pH6.0-8.0的磷酸盐缓冲液。金纳米颗粒与抗体质量比为1:0.8-1:1.6。
其中,试剂R2为群牛轮状病毒抗体胶体金试剂,本发明提供一种试剂R2的制备方法该方法包括如下步骤:步骤1)烧制胶体金;步骤2)将抗体与胶体金纳米颗粒偶联,得到偶联抗体的纳米金颗粒溶液;步骤3)离心,沉淀用含稳定剂、防腐剂的缓冲液重悬,调整浓度至为0.2。
其中,步骤1)具体的包括:步骤1.1)配制1%氯金酸溶液,将1g氯金酸加入100mL超纯水中,4℃避光保存备用;步骤1.2)配制1%柠檬酸三钠溶液,将1g柠檬酸三钠溶于100mL超纯水中,备用;步骤1.3)在清洗干净的圆底烧瓶中加超纯水100mL,放入磁力搅拌子1枚,加入1%氯金酸溶液1mL,600rpm高速搅拌并加热至溶液沸腾,迅速加入1%柠檬酸三钠溶液1.5mL,继续加热和搅拌10min,溶液颜色先变黑后变红,停止加热并继续搅拌10min,然后停止搅拌恢复至室温并用超纯水恢复至100mL;制得胶体金溶液,超滤去掉小分子备用。
步骤2)具体的包括:步骤2.1)利用抗A群牛轮状病毒单克隆抗体杂交瘤细胞株,以体内诱生腹水的方式制备抗体;步骤2.2)用Protein G柱进行纯化,0.01M PBS、pH7.2、4℃透析过夜,12000rpm 、4℃离心30min,收集上清即得A群牛轮状病毒单克隆抗体,用紫外分光光度计或蛋白分析仪测定得出抗体浓度;步骤2.3)取100mL胶体金溶液,用1%调pH至7.5-10.0,按最适蛋白量缓慢加入A群牛轮状病毒单克隆抗体,在磁力搅拌器下反应10min,加入BSA溶液至最终浓度为1%,继续搅拌5min,得到A群牛轮状病毒单克隆抗体金标复合物,4℃过夜。
步骤3)具体的包括:步骤3.1)将A群牛轮状病毒单克隆抗体金标复合物以3000rpm离心30min;步骤3.2)去除聚合凝集杂质,再以12000rpm、 4℃离心30min,弃上清,用重悬液(1%BSA+0.01MPBS)复溶,重复洗涤3次;步骤3.3)收集沉淀,用质量体积比20%蔗糖、质量体积比2% BSA、质量体积比10%甘油、质量体积比0.5%的Proclin300作为稳定剂的0.01M的PBS缓冲液(pH7.2)重悬沉淀,调整浓度至为0.2,分装备用。
本发明的检测原理是利用抗原抗体反应,先加入试剂R1,使样本中抗原位点暴露,若待测样本中存在A群BRoV,则加入试剂2后,金标抗BRoV抗体与BRoV抗原反应形成不溶的抗原抗体复合物,从而产生一定浊度变化;若待测样本中不存在A群BRoV,则加入试剂2反应后溶液浊度不变,从而判断待测样本中A群牛轮状病毒的存在与否。
其中,纳米金颗粒以类似胶体状态存在,又称为胶体金。本发明所提供基于胶体金免疫比浊法的A群BRoV检测试剂盒中,试剂R1是一种促使抗原位点暴露促进抗原抗体反应的缓冲液,可以使用如表成分所示缓冲液。
磷酸二氢钠 0.286g
磷酸氢二钠 2.865g
BSA 2g
PEG8000 0.5g
Proclin300 0.5g
Tween-20 0.1g
纯水 100mL
作为一种具体实施方式,A群牛轮状病毒检测试剂盒的制备方法包括以下步骤:
1.60nm胶体金制备过程
所需玻璃器皿用重铬酸钾浓硫酸洗液浸泡48h,自来水冲洗,洗洁精洗涤干净,自来水冲洗10遍,蒸馏水冲洗3遍,蒸馏水浸泡24h后用去离子水冲洗3遍,烘箱烘干备用;
1%氯金酸溶液配置:1g氯金酸加入100mL超纯水中,4℃避光保存备用;
1%柠檬酸三钠溶液配置:1g柠檬酸三钠溶于100mL超纯水中;
在清洗干净的1000mL圆底烧瓶中加超纯水100mL,放入磁力搅拌子1枚,加入1%氯金酸溶液1mL,600rpm高速搅拌并加热至溶液沸腾,迅速加入1%柠檬酸三钠溶液1.5mL,继续加热和搅拌10min,溶液颜色先变黑后变红,停止加热并继续搅拌10min,然后停止搅拌恢复至室温并用超纯水恢复至100mL。电镜观察制得的胶体金粒径约为40±1.2nm,超滤去掉小分子备用。
2.试剂R2制备过程
A群牛轮状病毒单克隆抗体制备:利用抗A群牛轮状病毒单克隆抗体杂交瘤细胞株,以体内诱生腹水的方式大量制备抗体,用Protein G柱进行纯化,0.01M PBS(pH7.2)4℃透析过夜,12000rpm 4℃离心30min,收集上清即得A群牛轮状病毒单克隆抗体,用紫外分光光度计或蛋白分析仪测定OD280nm得出抗体浓度;
100mL胶体金溶液用1% K2CO3调节pH至9.6,按最适蛋白量缓慢加入A群牛轮状病毒单克隆抗体,在磁力搅拌器下反应10min,加入BSA溶液至终浓度为1%,继续搅拌5min,即得A群牛轮状病毒单克隆抗体金标复合物,4℃过夜;
次日,3000rpm离心30min,去除聚合凝集杂质,再于12000rpm 4℃离心30min,弃上清,用重悬液(1%BSA+0.01MPBS)复溶,重复洗涤3次;
收集沉淀,用质量体积比20%蔗糖、质量体积比2% BSA、质量体积比10%甘油、质量体积比0.5%的Proclin300作为稳定剂的0.01M的PBS缓冲液(pH7.2)重悬沉淀,调整浓度至OD540nm为0.2,分装备用。
试剂盒检测样本操作方法:
基于胶体金免疫比浊的A群牛轮状病毒检测试剂盒使用方法如下(日立7180全自动生化分析仪)
待测样本准备:现场用一次性取样勺取新鲜的呕吐物或粪便装入无菌采样管中,称取1g溶于1ml样品稀释液中,4℃ 3000rpm离心15min取上清至于冰盒中备用;
测定波长:主波长:540nm,副波长800nm;
试剂比例:R1:S:R2=200uL:10uL:60uL;
读点方式:在先加入试剂R1再加入样品S,反应5min后加入试剂R2,3s后读取吸光度A1,反应5min后读取吸光度A2,计算吸光度变化。
试剂盒试验结果分析:
(1)临界值及检测限确定
参考值以临界值为依据,样本中A群BRoV的存在与否是通过样本吸光度值与临界值之间的比较来判定的。
结果的判定:待测样本OD值≥CUT OFF值时,判为A群BRoV阳性;反之,为阴性。
采用21份5%BSA溶液作为阴性样本,用本试剂盒进行检测,记录检测结果,见表1。计算20次结果的均值与标准差SD,以均值加3倍标准差作为报告方法的临界值(CUT OFF=+3SD)。
其OD值中最小为0.179,最大为0.363,△为0.256,SD为0.048,CUT OFF=0.400,即当检测样本OD值≥0.4时判定为阳性。
表1 阴性样本检测OD值
样本 OD值 样本 OD值 样本 OD值
1 0.287 8 0.228 15 0.238
2 0.321 9 0.275 16 0.235
3 0.288 10 0.189 17 0.214
4 0.309 11 0.185 18 0.276
5 0.363 12 0.212 19 0.299
6 0.247 13 0.283 20 0.198
7 0.279 14 0.211 21 0.274
将纯化后的浓度为100ng/mL的A群BRoV按照7个梯度倍比稀释后进行检测(50ng/mL、25ng/mL、12.5 ng/mL、6.25 ng/mL、3.12 ng/mL、1.58 ng/mL、0.79 ng/mL)。结果显示,本发明检测试剂盒具有较高的灵敏度,最低检测限为1.58ng/mL。
(2)交叉反应检测
将牛轮状病毒、牛病毒性腹泻、产肠毒素大肠杆菌K88/K99/987P/F18粗体样品对其进行检测,根据测得的OD值比较待测样品的P/N值。结果表明,牛病毒性腹泻和大肠杆菌检测OD值均小于CO值0.4,同时P/N值均小于2.1,而牛轮状病毒OD值为2.568,P/N值为10.8(见表2)。表明本发明检测试剂盒特异性良好。
表2 交叉反应结果
待测抗原 OD值 P/N值
BRoV 2.169 8.87
K88 0.276 1.16
K99 0.366 1.06
987P 0.339 1.11
F18 0.241 1.76
BDV-MD 0.339 1.15
(3)不精密度分析
包括批内不精密度和批间不精密度的检测。
批内不精密度:连续重复测定BRoV阳性样本10次,操作按说明书进行,计算测定结果的平均值、标准偏差SD以及变异系数CV,结果见表3。
批间不精密度包括不同批次试剂及不同检测时间的不精密度检测。取3批检测试剂盒分别在不同时间(初检、第3天、第6天)检测BRoV阳性样本10次,共重复3次,计算出平均值、标准偏差SD以及变异系数CV等,结果见表3。结果表明,本发明检测试剂盒批内、批间不精密度CV值均低于15%。
表3 批内、批间不精密度检测结果
本发明产生了如下有益效果:
1)本发明试剂盒具有较高的检测灵敏度和特异性,稳定性好,操作简单,反应时间短,从检测导出结果最多只需10min;
2)本发明试剂盒可适用于全自动生化分析仪、特种蛋白仪及分光光度计,反应后不产生沉淀,便于反应杯清洗;
3)本发明试剂盒与IPMA、ELISA、免疫荧光、免疫层析等方法对样本中BRoV检测数据统计分析,无显著差异,检测结果可靠,同时较胶乳法生产成本更低,具有较大的市场竞争力;
4)通过纳米金颗粒标记的A群牛轮状病毒抗体与待检样本反应前后溶液的浊度变化判断A群牛轮状病毒的存在与否。该方法不需要预处理样本,操作简便、准确可靠、重复性好,可用于全自动生化分析仪、特种蛋白仪及分光光度计上使用。
综上所述,本发明不限于上述具体实施方式。本领域技术人员,在不脱离本发明的精神和范围的前提下,可做若干的更改或修饰。上述更改或修饰均落入本本发明的保护范围。

Claims (10)

1.一种A群牛轮状病毒检测试剂盒,包含试剂R1和试剂R2,其特征在于:
所述试剂R1为pH 6.0-8.0的缓冲液,其包括稳定剂、高分子加速剂、表面活性剂和防腐剂;
所述试剂R2为A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂,其包括稳定剂、抗A群牛轮状病毒抗体纳米金颗粒、防腐剂和缓冲液。
2.根据权利要求1所述的A群牛轮状病毒检测试剂盒,其特征在于:
所述试剂R1的缓冲液包括醋酸盐缓冲液、氯化铵缓冲液、磷酸盐缓冲液、三羟甲基氨基甲烷TRIS缓冲液、硼砂-氢氧化钠缓冲液、甘氨酸缓冲液、3-(N-吗啉)丙磺酸MOPS缓冲液、3-(环己胺)-2-羟基-1-丙磺酸CAPSO缓冲液、4-羟乙基哌嗪乙磺酸HEPES缓冲液中的一种或几种。
3.根据权利要求1所述的A群牛轮状病毒检测试剂盒,其特征在于:
所述试剂R1的稳定剂包括亚氨基二乙酸、脂肪醇聚氧乙烯醚硫酸钠、乙二胺四乙酸二钠、二乙烯三胺五乙酸钠、1,2-环己二醇缩水甘油、甘露糖、葡萄糖、壳聚糖、山梨醇和牛血清蛋白中的一种或几种;
所述试剂R1的防腐剂包括叠氮钠、苯酚、Proclin、对羟基苯甲酸、对羟基苯甲酸乙酯和乙基汞硫代硫酸钠中的一种或几种;
所述试剂R1的高分子加速剂包括脂肪醇聚氧乙烯醚、聚乙烯吡咯烷酮、聚丙烯酸钠、聚乙二醇、羟丙基甲基纤维素和羟甲基纤维素钠中的一种或几种;
所述试剂R1的表面活性剂包括Triton系列、Tween系列、月桂醚、聚氧乙烯烷基苯基醚、聚氧乙烯壬基苯基醚和聚氧乙烯辛基苯醚中的一种或几种。
4.根据权利要求3所述的A群牛轮状病毒检测试剂盒,其特征在于:
所述试剂R1的稳定剂为质量体积比0.2-2% 的牛血清蛋白BSA;
所述试剂R1的高分子加速剂为质量体积比0.2-0.5% 的聚乙二醇PEG8000;
所述试剂R1的防腐剂为质量体积比0.1-0.5%的Proclin300;
所述试剂R1的表面活性剂为质量体积比0.05-0.1% Tween20;
所述试剂R1的缓冲液为pH6.0-8.0的磷酸盐缓冲液。
5.根据权利要求1所述的A群牛轮状病毒检测试剂盒,其特征在于:
所述试剂R2的缓冲液包括磷酸盐缓冲液、硼酸缓冲液、甘氨酸缓冲液、Tris-Cl缓冲液、HEPS缓冲液中的一种或多种;
所述试剂R2的稳定剂包括小牛血清、BSA、脱脂乳、明胶、甘露糖、葡萄糖、壳聚糖、山梨醇、甲醇、乙醇、乙二醇、丙三醇、Triton、Tween一种或几种;
所述试剂R2的防腐剂包括叠氮钠、苯酚、Proclin、对羟基苯甲酸、对羟基苯甲酸乙酯和乙基汞硫代硫酸钠中的一种或几种;
所述试剂R2的抗A群牛轮状病毒抗体包括鼠抗A群BRoV单克隆抗体、羊抗A群BRoV多克隆抗体、兔抗A群BRoV多克隆抗体、鸡抗A群BRoV单克隆抗体一种或多种混合。
6.根据权利要求5所述的A群牛轮状病毒检测试剂盒,其特征在于:
所述试剂R2的稳定剂为质量体积比10-20%蔗糖、质量体积比0.5-2% BSA和质量体积比3-10%甘油;
所述试剂R2的抗A群牛轮状病毒抗体纳米金颗粒为标记有鼠抗A群BRoV单克隆抗体的粒径为60±1.5nm的金纳米颗粒;
所述试剂R2的防腐剂为质量体积比0.1-0.5%的Proclin300;
所述试剂R2的缓冲液为pH6.0-8.0的磷酸盐缓冲液;
金纳米颗粒与抗体质量比为1:0.8-1:1.6。
7.一种A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂的制备方法,其特征是包括以下步骤:
步骤1)烧制胶体金;
步骤2)将抗体与胶体金纳米颗粒偶联,得到偶联抗体的纳米金颗粒溶液;
步骤3)离心,沉淀用含稳定剂、防腐剂的缓冲液重悬,调整浓度至为0.2。
8.根据权利要求7所述的A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂的制备方法,其特征是所述步骤1)具体的包括:
步骤1.1)配制1%氯金酸溶液,将1g氯金酸加入100mL超纯水中,4℃避光保存备用;
步骤1.2)配制1%柠檬酸三钠溶液,将1g柠檬酸三钠溶于100mL超纯水中,备用;
步骤1.3)在清洗干净的圆底烧瓶中加超纯水100mL,放入磁力搅拌子1枚,加入1%氯金酸溶液1mL,600rpm高速搅拌并加热至溶液沸腾,迅速加入1%柠檬酸三钠溶液1.5mL,继续加热和搅拌10min,溶液颜色先变黑后变红,停止加热并继续搅拌10min,然后停止搅拌恢复至室温并用超纯水恢复至100mL;制得胶体金溶液,超滤去掉小分子备用。
9.根据权利要求7所述的A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂的制备方法,其特征是所述步骤2)具体的包括:
步骤2.1)利用抗A群牛轮状病毒单克隆抗体杂交瘤细胞株,以体内诱生腹水的方式制备抗体;
步骤2.2)用Protein G柱进行纯化,0.01M PBS、pH7.2、4℃透析过夜,12000rpm 、4℃离心30min,收集上清即得A群牛轮状病毒单克隆抗体,用紫外分光光度计或蛋白分析仪测定得出抗体浓度;
步骤2.3)取100mL胶体金溶液,用1% K2CO3调节pH至7.5-10.0,按最适蛋白量缓慢加入A群牛轮状病毒单克隆抗体,在磁力搅拌器下反应10min,加入BSA溶液至最终浓度为1%,继续搅拌5min,得到A群牛轮状病毒单克隆抗体金标复合物,4℃过夜。
10.根据权利要求7所述的A群牛轮状病毒抗体胶体金试剂的制备方法,其特征是所述步骤3)具体的包括:
步骤3.1)将A群牛轮状病毒单克隆抗体金标复合物以3000rpm离心30min;
步骤3.2)去除聚合凝集杂质,再以12000rpm、 4℃离心30min,弃上清,用重悬液(1%BSA+0.01MPBS)复溶,重复洗涤3次;
步骤3.3)收集沉淀,用质量体积比20%蔗糖、质量体积比2% BSA、质量体积比10%甘油、质量体积比0.5%的Proclin300作为稳定剂的0.01M的PBS缓冲液重悬沉淀,调整浓度至为0.2,分装备用。
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